小鼠肾成纤维细胞使用说明
小鼠成纤维细胞的marker基因_概述说明

小鼠成纤维细胞的marker基因概述说明1. 引言1.1 概述引言部分旨在给读者提供一个总览,介绍本篇长文的主题和内容逻辑。
本文将重点探讨小鼠成纤维细胞的marker基因,这些基因对于研究和治疗疾病具有重要意义。
在接下来的章节中,我们将详细讨论marker基因的定义、已知小鼠成纤维细胞marker基因以及它们的表达调控机制。
此外,我们还将介绍使用不同方法和技术检测marker基因的实用方法,并探讨这些marker基因在疾病诊断和治疗中的应用。
1.2 文章结构本文分为五个主要部分:引言、小鼠成纤维细胞的marker基因、marker 基因的检测方法和技术、marker基因在疾病诊断和治疗中的应用以及结论与展望。
1.3 目的本文目的在于为读者提供一份关于小鼠成纤维细胞marker基因领域最新进展以及相关应用领域的全面概述。
通过深入了解这些marker基因及其调控机制,我们可以更好地理解小鼠成纤维细胞的功能和性质,为疾病的诊断和治疗提供更准确、有效的方法。
此外,我们还将探讨当前marker基因研究的不足之处,并展望基于marker基因的治疗策略未来发展的前景。
归纳总结这些信息将为相关领域的科学家和医生提供指导,以推动其在临床实践中的应用和发展。
通过本文所呈现内容的详尽介绍,我们希望进一步促进对小鼠成纤维细胞marker基因及其潜力的理解和研究。
2. 小鼠成纤维细胞的marker基因2.1 marker基因的定义与意义在生物学研究中,marker基因是指特定细胞类型或组织中表达的特异性基因。
这些基因的表达模式可以用来标记和识别特定细胞类型或确定其功能。
对于小鼠成纤维细胞而言,marker基因的发现和研究对于了解成纤维细胞在生理和病理过程中的角色非常重要。
2.2 已知小鼠成纤维细胞marker基因已经有一系列已知的小鼠成纤维细胞marker基因被发现和研究。
其中一些已知的小鼠成纤维细胞marker基因包括:- COL1A1:编码胶原蛋白Iα链,是成纤维细胞合成和分泌的主要成分之一。
MEF小鼠胚胎成纤维细胞知识总结

MEF小鼠胚胎成纤维细胞知识总结2008-06-19 00:00 来源:丁香园点击次数:1517 关键词:MEF小鼠胚胎成纤维细胞知识总结分享到:收藏夹腾讯微博新浪微博开心网小鼠胚胎成纤维细胞的富集1、给13-14天的孕鼠注射大约0.5ml阿佛丁。
当鼠麻醉后,实施断颈法处死小鼠。
2、用70%乙醇擦拭腹部,把皮肤向后拉,暴露出腹膜。
用消毒过的工具,剪开腹壁以暴露出子宫角。
将子宫角移到10cm的皿里。
用10ml不含钙镁离子的PBS洗三遍。
3、用剪刀剪开每一测的胚囊,并将胚胎移到培养皿中。
4、用两副钟表镊子将胎盘和膜与胚胎分离开,分离后切除内脏(所有深色的东西)。
将胚胎转移到(有盖)培养皿中,用10ml不含钙镁离子的PBS洗三遍。
5、用带有弯钩的眼科剪将组织剪碎,当你剪的很累以致于不能再剪的时候,加入2ml胰蛋白酶/ED TA继续剪。
再加入另外5ml胰蛋白酶/EDTA,并在37℃孵育大约20分钟。
此时,返回至第一步,对下一只鼠进行操作。
6、执行1-4步,到将胚胎置于胰蛋白酶/EDTA中这一步。
7、吹打胰蛋白酶/EDTA中的胚胎,直到有很少的组织物残留。
将皿放回培养箱再孵育10分钟。
8、用20ml培养基以终止胰蛋白酶/EDTA的消化,将皿中的物质转移至50ml锥形管中。
9、混匀管内的物质,加入到含有20ml培养基的T75培养瓶中。
每个培养瓶中装大约3个胚胎。
10、将这些培养瓶放在培养箱中37℃培养过夜。
11、将胚胎置于PBS中,并重复第5步。
12、第二天更换培养基,以去除碎片和中毒的细胞及其分泌的物质。
13、当培养瓶中的细胞长到80-90%汇合时并仍处于指数生长期时,是冻存细胞的最佳时期。
一般说来,这发生在准备胚胎的第二天。
这可能或早或晚发生,所以请注意观察你的培养瓶。
注释:我们已用CF-1品系的鼠制备了成纤维细胞。
培养基成分:88%DMEM10%FBS1%NEAA1% 双抗对于新建立的细胞系,要对样本进行支原体检测。
原代小鼠心肌成纤维细胞提取

原代小鼠心肌成纤维细胞提取方法1.提前配置0.8%胰酶 3mL、0.1%胶原酶II 10mL(均用DMEM配置),放入37℃水浴锅中预热15min;准备1个50mL的离心管,提前加入10mL含10%FBS的完全培养基,冰浴备用;2.取5-10只7天出生内的C57乳鼠,用灭菌或消毒的组织剪剪开胸腔,迅速取出心脏,置于含2%双抗的预冷的DMEM培养基中;3.将心脏组织转移至超净台,用DMEM反复清洗,取出血液、大血管组织,将组织放入1个1.5mL的EP管中,充分剪碎(小于1mm3);4.用巴氏管向组织块中加入1mL预热的胰酶,反复吹打、吸入至含胰酶的离心管中,37℃水浴加热3min,适当振荡;[循环1]5.吸取上清液丢弃,余下的组织块中加入2mL胶原酶,37℃水浴加热5min,期间每分钟振荡1次,吸取上层液体至冰浴的完全培养基中;[循环2]6.向组织块中再次加入2mL新鲜、预热的胶原酶,用巴氏管或移液枪吹打混匀1min后(约20次)后水浴消化4min,随后吸取上层液体至冰浴的完全培养基中;[循环3]7.向组织块中再次加入2mL新鲜、预热的胶原酶,用巴氏管或移液枪吹打混匀2min后(约30次),此时肉眼可见组织块逐渐变小,呈透明粘液状,随后再次水浴消化4min,随后吸取上层液体至冰浴的完全培养基中;[循环4、5]8.向组织块中再次加入1mL新鲜、预热的胶原酶,用巴氏管或移液枪吹打混匀1min后(约20次),此时肉眼可见组织块逐渐消失,消化液变得浑浊,再次水浴消化3min,随后吸取上层液体至冰浴的完全培养基中;[循环6、7];9.将50mL离心管中的液体分装入2个15mL离心管中,1000rpm离心6min,小心吸去上清液,组织/细胞沉淀加入1mL完全培养基吹打混匀后转移至50mL的培养瓶中,加3mL完全培养基(含4%双抗),2h后可见细胞贴壁,12h内换液;2-3d后常规传代(1:2),P1-2用于实验。
一种小鼠或大鼠真皮成纤维细胞的分离培养方法

一种小鼠或大鼠真皮成纤维细胞的分离培养方法真皮成纤维细胞是一种重要的细胞类型,其在生物医学研究、组织工程和再生医学等领域具有广泛的应用前景。
以下是一种常用的小鼠或大鼠真皮成纤维细胞的分离培养方法:1. 实验前准备:- 小鼠或大鼠- 麻醉剂,如异氟醚等- 消毒剂- 必需的培养基和培养液2. 小鼠/大鼠的取材:- 麻醉小鼠或大鼠,确保其在实验过程中不会感到疼痛或不适。
- 消毒动物的表面,以减少细菌或其他微生物的污染。
- 取下小鼠/大鼠的皮肤。
使用消毒剪刀和镊子将皮肤切割成小块,以便后续的分离过程。
3. 细胞的分离和培养:- 将皮肤块转移到含有酶解消化液(如胰蛋白酶)的培养皿中,并在37°C的恒温搅拌器上进行酶解(通常为1-2小时)。
- 将酶解后的皮肤块过滤,移至新的培养皿中,加入培养基和培养液,如DMEM/F12或RPMI-1640,并添加10%胎牛血清。
- 将培养皿放在37°C的细胞培养箱中,保持适当的温度、湿度和CO2浓度。
- 培养皿中的细胞会开始生长和扩增。
定期更换培养基,并进行细胞的孵育以保持其正常生长。
4. 细胞的传代:- 当细胞密度达到80-90%时,使用胰蛋白酶或胰蛋白酶-EDTA溶液将培养皿中的细胞与培养皿底部松散的连接断开。
- 将细胞计数,并根据需要的细胞数量进行传代。
一般情况下,将细胞按照1:3或1:4的比例重新分装到新的培养皿中。
- 重复上述步骤,直到获得足够数量且健康的细胞。
这种方法能够有效地分离和培养小鼠或大鼠真皮成纤维细胞,为相关研究提供了重要的细胞资源。
通过优化培养条件和细胞的传代方法,可以获得高质量和稳定的细胞群体,以支持各种实验或应用的需要。
3T3-L1 细胞说明书

小鼠胚胎成纤维细胞3T3-L1说明书目录号:SCSP-5038细胞名称:3T3-L1细胞描述:这株细胞是3T3(Swiss albino)通过克隆分离而得到的能连续传代的亚株,表达insulin受体。
当细胞从快速分裂到汇合和接触抑制状态的过程中,细胞会经历脂肪前向脂肪的转化。
培养基中的高血清含量会增加脂肪的积累。
检测表明鼠痘病毒(ectromelia virus,ECTV)阴性。
小鼠品系:Swiss albino细胞来源:2018年引进生物安全等级:BSL-1完全培养液配方:见下方备注批次/冻存日期:详见冻存管/培养瓶标识参考传代周期:3天左右参考传代比例:1:2-1:4参考换液频率:每周2次冻存液:完全培养液95%,DMSO5%细胞状态:成纤维细胞,贴壁生长。
支原体检测结果:阴性STR鉴定结果:①该株细胞DNA进行小鼠细胞STR分型结果显示,扩增后图谱清晰,分型结果良好:1-1:10,15;1-2:13;2-1:9;3-2:14;4-2:19.3;5-5:13,15;6-4:15.3;6-7:12, 15;7-1:25.2,29;8-1:15,16;11-2:15;12-1:19;13-1:15.1;15-3:20.3;17-2:12,15;18-3:17,21;19-2:12;X-1:26。
②该株细胞确为小鼠细胞,没有人源细胞污染。
小鼠胚胎成纤维细胞3T3-L1细胞照片参考文献:备注:1.小鼠胚胎成纤维细胞3T3-L1完全培养液配方(100ml):DMEM(Invitrogen11960044)87mlNewborn calf serum(Ausbian)10mlGlutamax(invitrogen35050061)1mlNon-essential Amino Acids,100⨯(Invitrogen11140050)1mlSodium pyruvate100mM Solution(invitrogen11360070)1ml不可使用胎牛血清(FBS)2.该细胞起始接种密度应在3⨯103/cm2,并且在细胞达到80%融合或者密度介于5⨯104-6⨯104/cm2时传代,避免细胞完全融合。
小鼠肾脏病理切片解读

小鼠肾脏病理切片的解读需要考虑肾脏的结构和功能,以及可能出现的各种病理变化。
肾脏的基本功能是生成尿液,借以清除体内代谢产物及某些废物、毒物,同时经重吸收功能保留水分及其他有用物质,以调节水、电解质平衡及维护酸碱平衡。
肾脏的内部结构,可分为肾实质和肾盂两部分。
肾实质分内外两层:外层为皮质,内层为髓质。
肾皮质位于肾实质表层,富含血管,新鲜时呈红褐色,由一百多万个肾单位组成。
每个肾单位由肾小体和肾小管所构成,肾单位是肾脏结构和功能的基本单位。
在解读肾脏病理切片时,我们需要关注肾小体、肾小管和肾间质等不同结构的病理形态。
例如,肾小球纤维素样坏死的病理形态相较于正常样品,肾小球毛细血管壁坏死,成细丝状或颗粒状红染物,似纤维素。
弥漫增生性肾小球肾炎的病理形态相较于正常样品,由于内皮细胞和系膜增生,所以毛细血管球增大,细胞数目增多,肾小球囊腔狭窄,炎细胞浸润。
肾小管疾病的类型及其病理形态包括肾小管坏死和肾小管上皮细胞水肿变性²。
肾小管坏死的病理形态表现为肾小管上皮崩解,细胞碎片阻塞管腔²。
肾小管上皮细胞水肿变性的病理形态表现为肾小管上皮细胞肿胀,凸向管腔²。
肾间质疾病的类型及其病理形态包括急性过敏性间质性肾炎和肾盂肾炎。
急性过敏性间质性肾炎的病理形态表现为肾间质水肿,伴少量炎症细胞浸润。
肾盂肾炎的病理形态表现为肾盂中大量炎细胞聚集浸润。
这些都是一些基本的病理形态,具体的切片解读可能需要根据实际的病理切片和临床情况进行。
如果你需要更具体的帮助,建议你提供更多的信息,或者直接咨询相关的病理专家。
小鼠肾成纤维细胞 鉴定 vimentin-概述说明以及解释

小鼠肾成纤维细胞鉴定vimentin-概述说明以及解释1.引言1.1 概述概述部分的内容主要是对小鼠肾成纤维细胞的研究背景和意义进行简要介绍。
可以根据以下内容进行编写:概述小鼠肾成纤维细胞是一类重要的细胞类型,广泛存在于小鼠肾脏组织中,并在多种生理和病理过程中发挥着重要的作用。
这些细胞具有独特的表型和功能,可以通过特定的鉴定方法来准确识别。
近年来,随着生物学研究和生物医学领域的发展,对小鼠肾成纤维细胞的鉴定与研究引起了广泛的关注和研究兴趣。
通过对小鼠肾成纤维细胞的鉴定,我们可以深入了解其表型和功能特点。
首先,可以通过特定的细胞标记物如vimentin进行免疫细胞化学染色,从而确认其在组织中的定位和分布情况。
其次,通过研究小鼠肾成纤维细胞的特征和功能,可以了解其参与肾脏发育、维持肾脏结构和功能稳定的调节机制。
此外,小鼠肾成纤维细胞在肾脏疾病的发生和发展过程中也扮演着重要角色,其异常激活可能引起肾脏纤维化等病理变化。
深入研究小鼠肾成纤维细胞的重要性不仅可以加深对肾脏生物学过程的理解,也有助于揭示相关疾病的发生机制。
此外,对小鼠肾成纤维细胞进行进一步的应用和研究,也有助于发展针对肾脏疾病的新疗法和药物靶点。
本文将重点介绍小鼠肾成纤维细胞的鉴定方法、特征和功能,以及其在相关研究中的重要性和应用。
我们希望通过本文的撰写和阐述,能够促进对小鼠肾成纤维细胞的深入认识,进一步推动相关领域的研究发展,并为未来的研究方向提供重要参考。
1.2 文章结构文章结构部分的内容可以涉及以下几个方面:文章结构部分介绍了整篇文章的组织框架,主要包括引言、正文和结论三个部分。
引言部分是整篇文章的开篇,用来引入研究主题和背景,概述小鼠肾成纤维细胞的鉴定以及其重要性和应用。
接下来,文章会详细介绍小鼠肾成纤维细胞的鉴定方法、特征和功能,以及其在相关研究中的重要性和应用。
正文部分是本文的核心内容,主要分为2.1、2.2和2.3三个小节。
2.1 鉴定小鼠肾成纤维细胞:这一小节会详细介绍如何进行小鼠肾成纤维细胞的鉴定过程,介绍鉴定所使用的标志物和实验方法,以及鉴定结果的分析和解释。
小鼠胚胎成纤维细胞原代培养实验具体步骤及方法

小鼠胚胎成纤维细胞原代培养实验具体方法及步骤将小鼠的胚胎成纤维细胞(MEF)从机体中取出,经胰酶、螯合剂(常用EDTA)处理,分散成单细胞,置MEF生长培养基中培养,使细胞得以生存、生长和繁殖。
一、实验材料准备1. 动物孕期14至16天的孕鼠(小鼠)。
2. 试剂无Ca2+和Mg2+的PBS(D-PBS)、0.05%胰酶、0.53 mmol/L EDTA溶液、MEF生长培养基(高糖DMEM加10%FBS)。
3. 器械眼科直剪3把、眼科直镊3把、眼科弯镊2把、玻璃平皿3套、200目尼龙滤网、50 ml 和15 ml离心管和手术刀片。
以上物品均需要高压灭菌消毒处理。
二、具体操作1. 处死孕鼠,全身置于75%酒精里浸泡,然后在超净台中用剪刀和镊子将孕鼠皮肤剪开,用另外一组剪刀、镊子剪开腹部肌层,露出子宫,最后用第三组剪刀和镊子将子宫小心取出放在盛有D-PBS的玻璃平皿中,冲洗去血。
2. 用两把弯镊子将胚胎外的胞膜小心去除,然后夹掉头和内脏,将其余胚胎转移到一个装有30 ml D-PBS的50 ml离心管中,轻轻颠倒两次,倒掉D-PBS,再重复此步骤一次,注意要留少许D-PBS,然后将胚胎转移到另一装有D-PBS的平皿中,并用手术刀片将其细细切碎。
3. 用200 ul的移液枪反复、快速地吹打平皿中的液体,转移至15 ml离心管中,于4℃1500 rpm离心5分钟,倒掉上清,以10 ml胰酶重悬沉淀,放在37℃水浴中消化30分钟,且每隔五分钟轻轻晃动,使之充分消化。
4. 将上层细胞悬液倒入一个装有10 ml MEF生长培养基的50 ml离心管中,用200目的尼龙网过滤后,以1 500 rpm离心5分钟收集细胞,再用30 ml MEF生长培养基洗涤两次。
5. 细胞沉淀用15 ml MEF生长培养基重悬后进行细胞计数(一般8只14天的胎鼠可获得2-3x107细胞)。
6. 3x106细胞悬浮于15 ml MEF生长培养基中,接种到200 ml培养瓶中。
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小鼠肾成纤维细胞
小鼠肾成纤维细胞产品说明:
为使能尽快开展实验,派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期,且每次发货为汇合率达到70%的细胞,收到细胞后即可开展实验。
派瑞金提供的小鼠肾成纤维细胞取自新鲜的组织,按照标准操作流程分离培养。
研发的小鼠肾成纤维细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件,降低杂细胞污染,保证不同批次间细胞质量的稳定。
同时,派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程,所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测,保证细胞纯度在90%以上;同时也需经过微生物检测,保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。
小鼠肾成纤维细胞注意事项:
1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象,若有上述现象发生请及时和我们联系。
2. 仔细阅读细胞说明书,了解细胞相关信息,如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。
3. 请用相同条件的培养基用于细胞培养。
培养瓶内多余的培养基可收集备用,细胞传代时可以一定比例和自备的培养基混合,使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。
4. 建议收到细胞后前3天各拍几张细胞照片,记录细胞状态。
5. 该细胞只能用于科研,不得用于临床应用。
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