膜蛋白提取
植物膜蛋白提取方法
植物膜蛋白提取方法说实话植物膜蛋白提取这事，我一开始也是瞎摸索。
我试过超声破碎法来提取。
就像敲鸡蛋，想把里头的东西弄出来那种感觉。
把植物组织放在缓冲液里，然后用超声仪来破碎细胞。
可是我发现这种法子很容易把膜也给弄破喽，得到的膜蛋白纯度不咋高，好多其他乱七八糟的东西都混进去了。
这就好比炒菜的时候把不该放的调料都倒进去了，最后味道全乱套了。
后来呢，我又尝试了差速离心法。
这就像挑豆子，把大的小的分开那样。
先把植物组织破碎后，通过不同的离心速度把细胞器啊什么的和膜蛋白分离开。
开始的时候我老是掌握不好离心速度和时间，要么离心速度不够，那些东西分不开，要么就是离心太久了，把想要的膜蛋白都给弄丢了一部分。
经过好多次的尝试，我才慢慢摸准了一点规律。
比如说，先低速度短时间离心去掉那些大的残渣，然后再逐步提高离心速度和延长时间来纯化膜蛋白。
我有段时间还听别人说密度梯度离心法好使。
这方法有点像从水里分层捞东西。
就是用不同浓度的溶液形成一个密度梯度，然后离心，让膜蛋白在适合它密度的那个层面停下来，这样和其他物质分离开。
但是这个方法操作起来比较麻烦，各种溶液的配制就要很精确，我就老在这上面出错，溶液配不对后续根本得不到像样的结果。
还有就是用化学试剂来提取。
比如说表面活性剂。
这就跟用清洁剂去油污有点像，表面活性剂能把膜蛋白从细胞膜上给“扒拉”下来。
不过这化学试剂的种类和浓度可得选好了，选错了就像洗衣粉放太多把衣服都洗坏了似的，膜蛋白的活性啥的就全没了。
我就在选择表面活性剂的种类和浓度上栽过跟头，试了好多种，结果都不理想，不是蛋白没有提取出来就是提取出来的蛋白变性了失去活性了。
如果是新手上路的话，我觉得差速离心法可以先试试，毕竟相对来说比较直白一点，虽然可能会碰到不少问题，但是在调整离心速度和时间的过程中可以慢慢学习。
可千万别像我刚开始的时候，只知道按照书上的数值来，实际情况和书上可能有差别，要多做尝试才行。
在操作的全过程里，实验设备的清洁也很重要。
细胞膜蛋白的提取
细胞膜蛋白的提取1. 引言细胞膜蛋白是细胞膜上的蛋白质，它们在细胞的结构和功能中起着重要的作用。
细胞膜蛋白具有多种功能，包括细胞识别、信号转导、运输和通道形成等。
为了研究细胞膜蛋白的结构和功能，科学家需要从细胞中提取这些蛋白质。
本文将介绍细胞膜蛋白的提取方法和步骤。
2. 细胞膜蛋白的提取方法2.1 细胞膜蛋白的提取原理细胞膜蛋白是细胞膜上的蛋白质，与细胞膜紧密结合。
因此，提取细胞膜蛋白需要破坏细胞膜，并保持蛋白质的完整性。
常用的细胞膜蛋白提取方法包括机械破碎法、化学溶解法和超声波法等。
2.2 机械破碎法机械破碎法是一种常用的细胞膜蛋白提取方法。
其步骤如下：1.制备细胞悬浮液：将培养的细胞收集，并用缓冲液洗涤，得到细胞悬浮液。
2.破碎细胞：将细胞悬浮液置于低温条件下，加入适量的缓冲液，然后用高速搅拌器或超声波破碎仪破碎细胞，使细胞膜破裂。
3.离心：将破碎后的细胞悬浮液进行离心，分离出上清液和沉淀。
4.收集上清液：将上清液转移到新的离心管中，这个上清液中含有细胞膜蛋白。
2.3 化学溶解法化学溶解法是另一种常用的细胞膜蛋白提取方法。
其步骤如下：1.制备细胞悬浮液：将培养的细胞收集，并用缓冲液洗涤，得到细胞悬浮液。
2.加入溶解剂：向细胞悬浮液中加入适量的溶解剂，如磷酸盐缓冲液或甘油，使细胞膜破裂。
3.搅拌：将细胞悬浮液与溶解剂充分混合，并用搅拌器搅拌一定时间，使细胞膜蛋白溶解在溶液中。
4.离心：将溶解后的细胞悬浮液进行离心，分离出上清液和沉淀。
5.收集上清液：将上清液转移到新的离心管中，这个上清液中含有细胞膜蛋白。
2.4 超声波法超声波法是一种快速、高效的细胞膜蛋白提取方法。
其步骤如下：1.制备细胞悬浮液：将培养的细胞收集，并用缓冲液洗涤，得到细胞悬浮液。
2.加入超声波溶解剂：向细胞悬浮液中加入适量的超声波溶解剂，如磷酸盐缓冲液，使细胞膜破裂。
3.超声波处理：将细胞悬浮液置于超声波处理器中，进行超声波处理，使细胞膜破裂。
提取膜蛋白的方法
提取膜蛋白的方法提取膜蛋白是一项关键的实验步骤，用于研究膜蛋白的结构和功能。
本文将介绍几种常用的膜蛋白提取方法。
1. 浸泡法浸泡法是一种简单的膜蛋白提取方法。
将细胞或组织样品置于适当的缓冲液中，如磷酸盐缓冲液或生理盐水中，并加入一些溶解剂（如阴离子洗涤剂）以破坏膜结构。
浸泡一段时间后，离心以分离出溶液中的膜蛋白。
2. 磷脂双层溶液法磷脂双层溶液法利用磷脂双层膜的特性来提取膜蛋白。
首先，将细胞或组织样品放入含有磷脂双层的液体中。
磷脂双层膜与细胞膜相似，可吸附并保持膜蛋白的结构和功能。
然后，用洗涤液洗涤磷脂双层，使膜蛋白释放到洗涤液中。
3. 超声法超声法是一种物理方法，通过超声波的能量来提取膜蛋白。
将细胞或组织样品置于含有缓冲液的管中，并使用超声波处理。
超声波的能量可以破坏细胞膜结构，使膜蛋白溶解到缓冲液中。
然后，对溶液进行离心，将膜蛋白分离出来。
4. 酸碱提取法酸碱提取法利用pH的变化来提取膜蛋白。
首先，将细胞或组织样品放入酸性或碱性溶液中，并搅拌。
酸性或碱性环境可以破坏细胞膜结构，使膜蛋白溶解到溶液中。
然后，通过调整pH值，使膜蛋白沉淀，进一步提纯。
5. 亲水基质法亲水基质法是一种通过亲水基质与疏水膜蛋白的选择性结合来提取膜蛋白的方法。
细胞或组织样品与亲水基质接触，亲水基质与细胞膜的亲水区域结合，使膜蛋白释放到溶液中。
然后，通过离心和洗涤步骤来分离和纯化膜蛋白。
这些方法在膜蛋白的研究中应用广泛，但根据具体的实验目的和样品特性，可以选择适合的方法进行膜蛋白提取。
实验中还应注意选择合适的缓冲液、溶液浓度和温度，并结合离心、洗涤等步骤进行蛋白的纯化和分离。
此外，需要根据实验目的选择合适的检测方法，如SDS-PAGE、Western blot等来确定提取的膜蛋白的质量和纯度。
总之，膜蛋白提取是膜生物学研究的重要一环，不同方法适用于不同的样品和实验要求。
正确选择和操作提取方法可以高效地提取膜蛋白，并为后续研究提供可靠的样品。
膜蛋白的提取与分离
膜蛋白的提取与分离膜蛋白的分离一、简介：1细胞质膜资料1895年,0verton从研究细胞透性得出"细胞膜由连续的脂类物质组成"。
1925年Gorter&Grendel: 用脂单分子膜技术测定细胞膜中脂分子的总面积，提出："细胞膜是由双层脂分子组成"。
1935年Danielli&Davson ：从测定膜的表面张力得出细胞膜的"三明治结构模型"，即蛋白质－脂-蛋白质。
1959年Robertson: 用电镜观察生物膜提出"单位膜模型"，将膜的分子结构与超微机构统一起来厚度：2(暗)+( 亮)+2 (暗) =细胞质膜的主要功能概括如下：(1) 为细胞的生命活动提供相对稳定的内环境;(2) 选择性的物质运输，包括代谢底物的输入与代谢产物的排除，其中伴随着能量的传递；(3) 提供细胞识别位点，并完成细胞内外信息跨膜传递；(4) 为多种酶提供结合位点，使酶促反应高效而有序地进行；(5) 介导细胞与细胞、细胞与基质之间的连接;质膜参与形成具有不同功能的细胞表面特化结构。
2膜蛋白虽动物细胞主要有9种膜脂，而膜蛋白的种类繁多，多数膜蛋白分子数目较少，但却赋予细胞膜非常重要的生物学功能。
根据膜蛋白分离的难易及其与脂分子的结合方式，膜蛋白可分为两大类型：外在膜蛋白、内在膜蛋白。
(1) 外在膜蛋白为水溶性蛋白，靠离子键或其它较弱的键与膜表面的蛋白质分子或脂分子结合，因此只要改变溶液的离子强度甚至提高温度就可以从膜上分离下来，膜结构并不被破坏。
(2) 内在膜蛋白与膜结合非常紧密，一般讲只有用去垢剂(detergent)使膜解后才可分离出来。
获得大量有生物学活性的质膜蛋白对我们显得非常的重要。
附注：使用分级抽提方法获得的膜蛋白”中只有很少一部分是具备多跨膜区的整和膜蛋白，膜蛋白，到目前为止，仍然是蛋白组学的一个瓶颈，不管采用2—D技术也好，ICAT乃至proein microarray都还不能有效解决这一问题。
组织膜蛋白的提取方法
组织膜蛋白的提取方法
5、取沉淀,(即提取组织胞浆蛋白最后一步离心取上清后的沉淀）加入1mL冷的抽提Buffer，涡旋振荡混匀后，4℃放置10～15min；
【注：因抽提Buffer在室温时会分层，请务必于4℃混匀后加入】
6、4℃, 3000rpm 离心5min，取上清转移至新管（注意勿将沉淀带入上清），进行下步提取；
7、置于37℃水浴10min；
8、室温,13 000rpm离心5min，样品分成上层和下层（含膜蛋白）；
【注：建议使用进口透明性较好的微量离心管，可见下层为含膜蛋白的有机相。
上下两层因均为透明，只在交界处有一折光线，需仔细观察才可见到。
或室温静置30分钟～1小时亦可见分层。
以下亦同。
】
9、取下层，加入500μL冰冷灭菌水，4℃放置5min；
10、置于37℃水浴10min；
11、室温,13 000rpm离心5min，样品分成上层和下层（含膜蛋白）；
12、取下层，加入500μL冰冷灭菌水，4℃放置5min；
13、置于37℃水浴10min；
14、室温,13 000rpm离心5min，样品分成上层和下层（含膜蛋白）；
15、最终得到的下层即为膜蛋白提取物，BCA法测定蛋白含量（因残留有机相可能影响测定结果，此含量为相对参考值），分装冷冻保存。
膜蛋白抽提[5篇模版]
![膜蛋白抽提[5篇模版]](https://img.taocdn.com/s3/m/130473090166f5335a8102d276a20029bc646353.png)
膜蛋白抽提[5篇模版]第一篇：膜蛋白抽提二、蛋白抽提谈及蛋白分离，我们想到：超速离心，盐析法、超滤法、凝胶过滤法、等电点沉淀法、离子交换层析、亲和层析、吸附层析、逆流分溶、酶解法……有时这些方法常常组合到一起对特定的物质进行分离纯化。
由于蛋白质种类繁多，不同的蛋白质由于结构和组成的差异，其溶解度也各不相同.根据蛋白质的溶解特性，同时可选择不同的溶剂提取，分为水溶液提取和有机溶剂提取.但是针对膜蛋白的提取与细胞质蛋白，核蛋白提取不同之处在于它是嵌在膜中的，水溶性不好，基本方法就是用不同的离心速度去掉胞质蛋白等，最后用去污剂把蛋白从膜中释放出来。
膜蛋白分离纯化的重要步骤是选择适当的增溶用表面活性剂，一般常用的有胆酸盐，CHAPS(一种离子去污剂），Emulgen和Lubrol等表面活性剂。
1、分离膜蛋白的方法（原则性）：4)顺序抽提法：根据细胞蛋白溶解性的差异，用具有不同溶解能力的蛋白溶解液进行抽提的方法。
用Tris碱溶液裂解细胞提取高溶解性蛋白；把未溶解的pellet用标准液溶解提取高疏水性蛋白；最后用含复合表面活性剂的蛋白溶解液，最后可以再次抽提前两次抽提后不能溶解的膜蛋白。
5)centrifugal protein extraction原理：高渗的蛋白裂解液让细胞溶涨破裂后，超高速离心评价：尽管分级(胞浆和胞膜)之间有清洗的步骤,但是可溶蛋白组分和膜蛋白组分之间仍然有不少重复的点.该方法相较MOLLOY MP教授在1998年electrophoresis上发表的分级抽提法减去了第一步(用tris抽提水溶性蛋白)和最后一步(极难溶蛋白),在操作上也作了简化,总而言之是一种不错的方法。
（codegreen）6)detergent-based：提取时先裂解液裂胞膜（选用不同的去污试剂是关键），梯度离心分离细胞器(ER)，然后分级抽提方法。
例如，去掉细胞器之后的DEBRIS就是核膜，再裂解得到核膜蛋白。
膜蛋白的提取方法
膜蛋白的提取方法
膜蛋白的提取方法通常包括以下几个步骤：
1. 细胞裂解：将包含膜蛋白的细胞或组织用不同的方式进行裂解，例如超声波处理、酸碱处理、高压处理等。
2. 膜蛋白分离：通过离心、过滤等方法将膜蛋白分离出来。
3. 纯化：采用膜层联萃取、柱层析、电泳等方法对膜蛋白进行纯化。
4. 确认：通过蛋白质定量、SDS-PAGE、Western blot等方法验证膜蛋白的存在和纯度。
常见的膜蛋白提取方法有：
1. 酸性洗涤法：利用低pH值时，膜蛋白和膜脂亲性增强的特性，将细胞裂解物在酸性条件下洗涤获得膜蛋白。
2. 有机溶剂提取法：利用膜蛋白亲性较强的有机溶剂，如丙酮、甲醇等，将膜蛋白从细胞裂解物中提取出来。
3. 离心法：通过离心分离膜细胞，从而获得膜蛋白。
4. 免疫亲和层析法：利用特异性抗体将目标膜蛋白从混合蛋白中分离纯化。
以上方法的选择需根据具体情况来定，不同的细胞类型或膜蛋白性质有着不同的最佳提取方法。
(完整word版)膜蛋白提取
1分离组织膜蛋白的方法：1、取组织，加入10ml Buffer A 于冰上充分匀浆。
2、J6-HC离心机800rpm，4℃离心10min后，所得上清液转入超速离心管。
3、100000g，4℃离心1hr。
弃去上清，沉淀用适量的Buffer B重悬，冰上孵育2hr后分装至EP管，Eppendorf台式离心机10000rpm，4℃离心30min。
4、收集所得上清液即为膜组份。
Buffer A：0.32M 蔗糖，5mM Tris-HCl（PH 7.5），120mM KCl，1mM EDTA,1mM EDTA, 0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin。
冰上预冷。
Buffer B：20mM HEPES（PH 7.5），10%甘油，2% Triton X-100, 1mM EDTA, 1mM EDTA, 0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin。
冰上预冷。
2取约0.1g肝组织，加入2ml粉碎缓冲液，冰浴中超声粉碎，每次20秒，间隔30秒，共3次，4°c 105xg条件下离心2小时，上清液为胞浆蛋白，沉淀部分加入1ml胞膜蛋白提取液，超声粉碎，4°c 105xg条件下离心2小时，上清液为胞膜蛋白。
样品蛋白含量测定采用酚试剂法。
3我们实验室提取膜蛋白的方法如下：1．将细胞种于T75 或T175的培养瓶中培养数天，细胞铺满瓶底后，吸去培养液。
将PBS/EDTA 溶液(NaCl:0.1M,NaH2PO4:0.01M,EDTA:0.04%)加入量以覆盖细胞为止，置于培养箱或在超净台内消化3～5分钟，如仍未脱落瓶底，用吸管吹打，使细胞完全脱落。
2．收集细胞悬液于10毫升或50毫升的离心管中，1000rpm离心10分钟，去上清液。
鉴定膜蛋白的实验方法及步骤
鉴定膜蛋白的实验方法及步骤全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：膜蛋白是位于生物膜上的一种蛋白质，它在细胞内外沟通信息，调节物质的运输和细胞的形态结构等功能。
鉴定膜蛋白的方法和步骤对于研究细胞生物学和生物化学具有重要意义。
下面将介绍一种常用的鉴定膜蛋白的实验方法及步骤。
实验方法：1. 细胞培养和膜蛋白提取：需要将感兴趣的细胞株培养至对数生长期，然后采用适当的方法将细胞破碎并获得含有膜蛋白的细胞膜。
2. SDS-PAGE分析：将膜蛋白样品进行SDS-PAGE电泳，将蛋白分离出来。
3. 免疫印迹分析：将膜蛋白从SDS-PAGE凝胶上转移到聚丙烯酰胺膜上，然后用特异性的抗体探测膜蛋白。
4. Western blot分析：用二抗结合辅助探测靶蛋白。
5. 膜蛋白鉴定：根据Western blot结果，确定膜蛋白的存在与否，并分析其表达水平。
实验步骤：1. 提取膜蛋白：将细胞经过适当处理（如超声波破碎、离心等）后，得到含有膜蛋白的细胞膜，采用适当的方法（如亚硝酸铝沉淀法）沉淀膜蛋白。
2. 蛋白定量：用BCA或Bradford方法测定蛋白浓度。
3. SDS-PAGE电泳：将膜蛋白样品加入含有SDS的样品缓冲液中，加热变性，然后在聚丙烯酰胺凝胶上进行电泳。
4. Western blot：将凝胶电泳后的蛋白转移到PVDF或nitrocellulose膜上，用特异性抗体探测膜蛋白的存在。
5. 二抗结合：将与特异性抗体结合的二抗与酶标记共同作用于蛋白，然后用化学发光或显色底物观察膜蛋白。
通过上述实验方法及步骤，可以较为准确地鉴定膜蛋白的存在与表达水平，为深入研究膜蛋白的生物学功能和调控机制提供重要的实验数据。
希望以上内容对您有所帮助。
第二篇示例：膜蛋白是生物体中存在的一种具有重要功能的蛋白质，它主要存在于细胞膜中，起着传递信号、运输物质等重要作用。
鉴定膜蛋白的实验方法和步骤对于研究膜蛋白的功能和结构具有重要意义。
下面将介绍一种常用的鉴定膜蛋白的实验方法及步骤。
细胞膜蛋白的提取
细胞膜蛋白的提取
细胞膜蛋白的提取可以通过以下步骤进行：
1. 细胞收集：从所需的细胞类型中收集足够数量的细胞。
可以使用细胞培养方法培养细胞，或者从活体组织中分离细胞。
2. 细胞破碎：将细胞用适当的方法破碎，以释放细胞内的蛋白。
可以使用机械方法（如超声波破碎器或高压细胞击碎器）或化学方法（如洗涤液或界面活性剂）来破碎细胞。
3. 蛋白质提取：使用适当的缓冲液或溶液将细胞破碎物悬浮并离心，以去除细胞碎片和细胞核。
随后，可以使用不同的方法来提取膜蛋白，例如溶解细胞膜并提取蛋白。
4. 蛋白质纯化：使用不同的技术来纯化细胞膜蛋白。
这包括以蛋白质的特定性质为基础的方法，例如亲和层析、凝胶过滤层析、离子交换层析等。
5. 蛋白质浓缩：将纯化的细胞膜蛋白浓缩到所需的浓度。
可以使用蛋白质浓缩技术，例如氨基酸纤维柱、浓缩管或旋转蒸发器等。
6. 蛋白质鉴定：利用蛋白质检测方法，如SDS-PAGE、Western blotting或质谱分析等，确定提取的蛋白质的纯度和数量。
细胞膜蛋白的提取过程需根据实验目的和具体需求来选择和优化各个步骤。
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1分离组织膜蛋白的方法：1、取组织，加入10ml Buffer A 于冰上充分匀浆。
2、J6-HC离心机800rpm，4℃离心10min后，所得上清液转入超速离心管。
3、100000g，4℃离心1hr。
弃去上清，沉淀用适量的Buffer B重悬，冰上孵育2hr后分装至EP管，Eppendorf台式离心机10000rpm，4℃离心30min。
4、收集所得上清液即为膜组份。
Buffer A：0.32M 蔗糖，5mM Tris-HCl（PH 7.5），120mM KCl，1mM EDTA,1mM EDTA, 0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin。
冰上预冷。
Buffer B：20mM HEPES（PH 7.5），10%甘油，2% Triton X-100, 1mM EDTA, 1mM EDTA, 0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin。
冰上预冷。
2取约0.1g肝组织，加入2ml粉碎缓冲液，冰浴中超声粉碎，每次20秒，间隔30秒，共3次，4°c 105xg条件下离心2小时，上清液为胞浆蛋白，沉淀部分加入1ml胞膜蛋白提取液，超声粉碎，4°c 105xg条件下离心2小时，上清液为胞膜蛋白。
样品蛋白含量测定采用酚试剂法。
3我们实验室提取膜蛋白的方法如下：1．将细胞种于T75 或T175的培养瓶中培养数天，细胞铺满瓶底后，吸去培养液。
将PBS/EDTA 溶液(NaCl:0.1M,NaH2PO4:0.01M,EDTA:0.04%)加入量以覆盖细胞为止，置于培养箱或在超净台内消化3～5分钟，如仍未脱落瓶底，用吸管吹打，使细胞完全脱落。
2．收集细胞悬液于10毫升或50毫升的离心管中，1000rpm离心10分钟，去上清液。
3．按 2.5毫升（T75）/每瓶或5毫升（T175/ 每瓶加入冰冷的匀浆液（HEPES:50mM,PH7.4,MgCl2:3mM,EGTA:1mM）于离心管中，将溶液和沉淀转移到匀浆器中，匀浆。
4．将匀浆液转入离心管中，加入适量的Tris –HCl (50mM, PH7.4) 4oC, 18000rpm (40000g) 10分钟。
在沉淀中加入同前量的匀浆液，再匀浆，匀浆后加入适量的tris-HCl buffer. 4度18000rpm(40000g)离心，共离心三次。
5．在最后一次离心得到沉淀中按250微升每瓶（T75）或500微升每瓶（T175）加入tris-HCl buffer，匀浆，取50微升匀浆液测量蛋白浓度。
6．按实验要求，将匀浆分装于1毫升的Eppendoff 管中，其于-80oC 冰箱中待用。
主要基于膜蛋白分子量较大，在40000g时易沉降来分离。
做膜蛋白的免疫荧光，可以用荧光抗体染色，然后用荧光显微镜或共聚焦显微镜观察，具体的protocol可以找到，就不多说了。
需要注意的是，要弄清楚你所使用的一抗结合部位是在膜蛋白的胞外结构域还是胞内结构域，如果是胞外，可以直接染色；如果在胞内，则需要用无水甲醇在-20度处理10min，使细胞膜通透，然后再用抗体孵育，这样抗体才能进入细胞内与蛋白结合。
4一般对膜蛋白的提取都是采用梯度离心或者高速离心的方法分离，可是我们现有的离心机都无法达到所需要的转速，所以我们试着采用分布溶解分布沉淀的办法。
1）预冷的pbs洗去组织血液，除去结缔组织、脂肪。
2）4 ℃剪碎，加bufferA玻璃匀浆器匀浆至无大块状物，10 ℃超声波10min，重悬，再破碎5—10min。
3）12000rpm离心10min，沉淀用bufferB重悬，20 ℃超声波10min。
4）12000rpm离心10min，沉淀用bufferC抽提。
5）12000rpm离心10min，所得上清含有9%的膜蛋白。
6）12000rpm离心10min，沉淀加bufferD沸水煮5min，12000rpm离心10min，上清含有1%的膜蛋白。
bufferA: 40mM Tris basebufferB: 8M urea ,100mM DTT, 40mM Tris basebufferC: 6-7M urea, 0.2mmol/L PMSF,40mM Tris basebufferD: 1% SDS, 50mM DTT,25%Glycerol,in 0.4M Tris-HCl pH8.8我们做的是动物组织的膜蛋白,提出来电泳条带还可以,只是我们没有专一膜蛋白抗体来检测提出来的是否是膜蛋白.但是这个方法是可行的5三、蛋白提取操作步骤Ⅰ实体组织蛋白的提取1、组织样本（200～300mg）尽量去除脂肪组织和结缔组织等非目的组织，于冰上剪碎；2、组织样本中加入1mL Lysis Buffer（注：使用前，每mL Lysis Buffer加入1μL蛋白酶抑制剂和1μL 1M DTT），置玻璃均浆器冰上均质30～50次（或超声破碎细胞，每次30 S ，3～4次，每次间隔1 min），置于冰上冷却。
均质或超声破碎细胞后应镜检，细胞破碎率不小于90％；3、将均浆液转移至冷的离心管中，于4℃, 3000 rpm 离心10 min，弃沉淀；4、取上清转移至新冷离心管中，于4℃, 14 000 rpm 离心30 min，所得上清转至新管中，即为胞浆蛋白，分装冷冻保存；5、取沉淀，加入1mL冷的抽提Buffer，涡旋振荡混匀后，4℃放置10～15min；【注：因抽提Buffer在室温时会分层，请务必于4℃混匀后加入】6、4℃, 3000rpm 离心5min，取上清转移至新管（注意勿将沉淀带入上清），进行下步提取；7、置于37℃水浴10min；8、室温,13 000rpm离心5min，样品分成上层和下层（含膜蛋白）；【注：建议使用进口透明性较好的微量离心管，可见下层为含膜蛋白的有机相。
上下两层因均为透明，只在交界处有一折光线，需仔细观察才可见到。
或室温静置30分钟～1小时亦可见分层。
以下亦同。
】9、取下层，加入500μL冰冷灭菌水，4℃放置5min；10、置于37℃水浴10min；11、室温,13 000rpm离心5min，样品分成上层和下层（含膜蛋白）；12、取下层，加入500μL冰冷灭菌水，4℃放置5min；13、置于37℃水浴10min；14、室温,13 000rpm离心5min，样品分成上层和下层（含膜蛋白）；15、最终得到的下层即为膜蛋白提取物，BCA法测定蛋白含量（因残留有机相可能影响测定结果，此含量为相对参考值），分装冷冻保存。
6用RIPA强配方，把脱氧胆酸钠浓度调整至1.0%，同时加入NP-40和Triton X-100，浓度均为1%。
我刚做了一个7次跨膜蛋白，LHR的WB。
7提取总蛋白的方法不能用于膜蛋白的提取，提供一个常用的方法：先分离膜，在提取膜蛋白。
这类方法在园子里有不少介绍。
我们实验室曾经采用蔗糖梯度超速离心分离膜，据说效果还可以。
您可以试一下。
呵呵------8细胞破碎后，先低速离心,除去未破碎的细胞和大的细胞碎片。
保留上清，超速离心，可获得细胞膜。
然后用detergent溶液萃取，就可以得到膜蛋白溶液了。
9--------------------------------------------------------------------------------我有新的问题了。
哪位仁兄有好的提取细胞膜蛋白的裂解液配方。
我的膜蛋白总提不出来。
我的细胞是HEPG2；目的蛋白是LDL受体；我的配方是这样的：4%CHAPS , 8 mol/L urea, 0.1 mmol/L leupeptin, and 1.5 mmol/L phenylmethylsulfonyl fluoride 但是总提不出来。
急！！！！！呵呵，CHAPS提取膜蛋白能力较差，尝试加入1％ASB-14，或者加入1％Triton X-100, 与CHAPS联合抽提。
另外最好加入2M thiourea。
祝好运1.6% Triton X-100, 5 mol/L urea, 0.1 mmol/L leupeptin, and 1.5 mmol/L phenylmethylsulfonyl fluoride ;2M thiourea;thiourea 很贵吗？我现在没有，又要急着用，能不能不用thiourea??thiourea不是很贵，merck250g才300多rmb。
电泳时可以考虑用ASB-14，sb3-10。
没有的话，提取最好加点NP-40，2M thiourea还是要的，要是有TBP就更好了。
NP lysis buffer.NP配方，stock solution 20ml (50mM Tris-HCL (PH8.0), 5mMEDTA, 0.05%NaN3, 0.14M NaCL, 100mM NaF), 1% Nonidet P40, 0.2TIU/ml aprotinin, 1.5uM pepstatin A, 20mM Iodoacetamide. NP配好后分装，-80度保存。
用之前，加入NaV和PMSF。
混匀后立即置于冰上。
10如果你研究的蛋白表达比较丰富没有必要提取膜蛋白，直接用RIPA裂解液裂解后离心取可溶性蛋白变性做WB就可以了；如果你蛋白的含量低或抗体特异性很差的话，你应该用试剂盒或超速离心提取膜蛋白，可以起到富集和纯化的作用，使你更容易得到好的结果！11RAPI的裂解液只能说是强的非变性裂解液,而算不上是强的变性裂解液.提取膜蛋白一般都在变性条件下才可以.所以,你应该改用其他更适合的强的变性裂解液,如含SB3-10、DM、ASB-14等膜助溶剂,或者SDS-Bolied loading bufffer,2-D裂解液7M thiourea+2M urea也可以12--------------------------------------------------------------------------------组织膜蛋白提取：所在操作冰上进行（1）取组织，用PBS冲洗干净组织上的血液. 加入10ml Buffer A , 用剪刀尽可能剪碎组织,于冰上充分匀浆。
每次30秒,重复3-5次.（2）离心机1000rpm，4℃离心10min 后，所得上清液转入超速离心管。
(去掉大块组织及结缔组织)（3）100000g，4℃离心1hr, 弃去上清.(此为胞浆蛋白,若只提取胞浆蛋白,可用10000rpm, 4度, 30分钟离心，取上清即可)。
沉淀用适量的Buffer B重悬，4度过夜后，分装至EP管，Eppendorf 台式离心机10000rpm，4℃离心30min。