细菌内毒素
细菌内毒素检测方法
细菌内毒素检测方法细菌内毒素是一种细菌产生的有毒物质，它对人体和动物的健康造成了严重威胁。
因此，及时准确地检测细菌内毒素是非常重要的。
在本文中，我们将介绍几种常用的细菌内毒素检测方法，希望能够为相关领域的研究人员提供一些帮助。
首先，常用的细菌内毒素检测方法之一是生物学法。
这种方法利用动物（如小鼠、大鼠）或细胞培养物进行毒性试验，通过观察动物或细胞的生理、生化反应来判断细菌内毒素的毒性。
生物学法的优点是灵敏度高，能够检测到极微量的毒素，但缺点是操作复杂、耗时长、成本高，且容易受到其他因素的干扰。
其次，化学法也是一种常用的细菌内毒素检测方法。
这种方法利用化学试剂与细菌内毒素发生特异性反应，通过观察颜色、光度等变化来判断毒素的存在和含量。
化学法的优点是操作简便、结果可视化，但缺点是灵敏度相对较低，不能检测到极微量的毒素。
另外，免疫学法也是一种常用的细菌内毒素检测方法。
这种方法利用抗体与细菌内毒素发生特异性结合反应，通过免疫学方法（如免疫层析、免疫电泳）来检测毒素的存在和含量。
免疫学法的优点是灵敏度高、特异性强，但缺点是操作复杂、耗时长，且需要专门的实验设备和试剂。
最后，分子生物学法也是一种常用的细菌内毒素检测方法。
这种方法利用PCR、酶联免疫吸附试验（ELISA）等技术，通过检测细菌内毒素基因或蛋白来判断毒素的存在和含量。
分子生物学法的优点是灵敏度高、特异性强、操作简便，但缺点是需要专门的实验设备和试剂，且对操作人员的技术要求较高。
综上所述，针对细菌内毒素的检测，生物学法、化学法、免疫学法和分子生物学法都各有优缺点。
在实际应用中，可以根据实验的具体要求和条件选择合适的检测方法。
希望本文介绍的内容能够对相关领域的研究人员有所帮助，也希望在未来的研究中能够有更多更准确的细菌内毒素检测方法出现，为人类的健康保驾护航。
《细菌内毒素检查》课件
其他检测方法
热原质鲎试剂盒法
利用鲎试剂与内毒素结合后加热，通 过凝胶形成或浊度变化来检测内毒素 的含量。该方法适用于注射剂、输液 等样品。
高效液相色谱法
利用高效液相色谱技术分离内毒素， 通过紫外吸收或荧光检测器来检测内 毒素的含量。该方法适用于生物制品 、血液制品等样品。
03
细菌内毒素检查的应用
实验后的处理和安全防护
废液的处理
实验后产生的废液应按照实验室规定进行处理， 不得随意倾倒或排放。
实验垃圾的处理
实验后产生的垃圾应按照实验室规定进行分类和 处理。
ABCD
仪器的清洗和维护
实验后应对使用的仪器进行清洗和维护，以确保 其性能和精度。
个人防护
实验人员应穿戴个人防护装备，如实验服、手套 、口罩等，以降低交叉污染和感染的风险。
饮用水监测
01
通过细菌内毒素检查，可以检测饮用水中的细菌内毒素含量，
确保饮用水安全。
污水处理监测
02
在污水处理过程中，对出水进行细菌内毒素检查，可以评估污
水处理效果和出水质量。
环境样品监测
03
对土壤、空气等环境样品进行细菌内毒素检查，可以了解环境
中的细菌污染状况，为环境治理提供依据。
04
细菌内毒素检查的注意事 项
开发新型检测方法和技术
开发多组分检测技术
将多种细菌内毒素相关分子同时纳入检测范围，实现多组分的同 时检测，提高检测效率和准确性。
开发新型免疫学检测方法
利用新型免疫学技术，如单克隆抗体、免疫磁珠等，提高检测的特 异性和灵敏度。
开发新型生物信息学技术
利用生物信息学手段，对细菌内毒素相关基因和蛋白质进行高通量 筛选和鉴定，为新型检测方法的开发提供有力支持。
中国药典 细菌内毒素检验方法
中国药典细菌内毒素检验方法
中国药典细菌内毒素检验方法中，按以下步骤进行实验。
首先，制备试样溶液。
将待测样品溶解在合适的溶剂中，并通过过滤将溶液过滤至少两次以去除杂质。
然后，制备标准溶液。
将内毒素标准品按照指定浓度配制成溶液。
接下来，准备试管。
将标准溶液和试样溶液分别装入两个试管中，并加入适量的无菌生理盐水作为空白对照。
然后，进行混合。
轻轻旋转试管混合样品，确保溶液均匀混合。
接着，培养细菌。
将特定的细菌株接种在培养基中，分别加入试管中的样品溶液，并在适当条件下进行培养。
培养结束后，观察结果。
通过观察培养基的变化，比较试管中的样品溶液和空白对照的差异，判断样品中是否存在细菌内毒素。
最后，记录结果。
根据观察结果，记录样品的检验结果，并进行数据分析。
内毒素
内毒素endotoxin [,endəu’tɔksin]革兰氏阴性菌的菌体中存在的毒性物质的总称。
是多种革兰氏阴性菌的细胞壁成分，由菌体裂解后释出的毒素，又称之为“热原”。
单位Eu/ml。
其化学成分有磷脂多糖-蛋白质复合物，其毒性成分主要为类脂质A。
内毒素位于细胞壁的最外层、覆盖于细胞壁的黏肽上。
各种细菌的内毒素的毒性作用较弱，大致相同，可引起发热、微循环障碍、内毒素休克及播散性血管内凝血等。
内毒素耐热而稳定，抗原性弱。
可刺激机体产生抗体，但无中和作用，形成抗毒素，经甲醛处理不能成为类毒素。
内毒素是革兰氏阴性细菌细胞壁中的一种成分，叫做脂多糖。
脂多糖对宿主是有毒性的。
内毒素只有当细菌死亡溶解或用人工方法破坏菌细胞后才释放出来，所以叫做内毒素。
内毒素不是蛋白质，因此非常耐热。
在100℃的高温下加热1小时也不会被破坏，只有在160℃的温度下加热2到4个小时，或用强碱、强酸或强氧化剂加温煮沸30分钟才能破坏它的生物活性。
与外毒素不同之处在于：内毒素不能被稀甲醛溶液脱去毒性成为类毒素；把内毒素注射到机体内虽可产生一定量的特异免疫产物（称为抗体），但这种抗体抵消内毒素毒性的作用微弱。
内毒素脂多糖分子由菌体特异性多糖、非特异性核心多糖和脂质A三部分构成。
脂质A是内毒素的主要毒性组分。
不同革兰氏阴性细菌的脂质A结构基本相似。
因此，凡是由革兰氏阴性菌引起的感染，虽菌种不一，其内毒素导致的毒性效应大致类同。
这些毒性反应主要有：发热反应人体对细菌内毒素极为敏感。
极微量（1-5纳克/公斤体重）内毒素就能引起体温上升，发热反应持续约4小时后逐渐消退。
自然感染时，因革兰氏阴性菌不断生长繁殖，同时伴有陆续死亡、释出内毒素，故发热反应将持续至体内病原菌完全消灭为止。
内毒素引起发热反应的原因是内毒素作用于体内的巨噬细胞等，使之产生白细胞介素1、6和肿瘤坏死因子α等细胞因子，这些细胞因子作用于宿主下丘脑的体温调节中枢，促使体温升高发热。
细菌内毒素的概念
细菌内毒素的概念细菌内毒素，英文称作Enolotoxin，是G-菌细胞壁个层上的特有结构，内毒素为外源性致热原，它可激活中性粒细胞等，使之释放出一种内源性热原质，作用于体温调节中枢引起发热。
内毒素的主要化学成分为脂多糖中的类脂A细菌内毒素这个概念在1890年的时候就已被提了出来，它是在研究发热物质过程所引成的，1933年Boivin最先由小鼠伤寒杆菌提取出来，进行化学免疫学方面的研究，到1940年时候，Morgan使用志贺氏痢疾菌阐明了细菌内毒素是由多糖脂质及蛋白质三部分所组成的复合体，到了1950年以后，随着生物学，物理化学，免疫学以及遗传学等的进步发展，细菌内毒素的研究工作，尤其是其化学结构组成及各种生物活性间的关系也更加明确起来。
细菌英文叫Bacteria：为原核生物中的一类单细胞微生物由二分裂法繁殖。
若按革兰氏染色法可将细菌分为G+菌和G-菌两大类。
这两类细菌细胞壁的结构和化学组成存在很大差异。
唯有肽聚糖为其共同成分，但其含量的多少和肽链的性质有所不同，见下表：细胞壁较薄，厚约10－15nm，结构也较复杂。
肽聚糖含量低，仅占细胞干生10％左右，层薄又较疏松，因肽聚糖之间仅四肽侧链直接联结，缺乏五肽桥；肽聚糖居于细胞最内层，外面由内向外还有脂蛋白，外膜和脂多糖的三层聚合物。
（1）脂蛋白（lipoprotein）由类脂和蛋白质构成，联结在外膜与肽聚糖层之间，类脂一端经非共价键联结到外膜的磷脂上，另一端由共价键联结到肽聚糖肽链中的二氧基庚二酸残基上，使外膜和肽聚糖层构成一个整体。
（2）外膜（outer membrane）是革兰氏阴性菌细胞壁的重要结构，位于肽聚糖的外侧，其结构类似细胞膜，为液态的磷脂双层，其中镶嵌一些特异蛋白质，穿透外膜的内外双层，呈液态镶嵌体。
外膜中间有微小孔道，容许水溶性的小分子通过，以进行细胞内外的物质运输和交换。
除此之外，外膜还能防止胰蛋白酶和溶菌酶等进入，起到保护性屏障作用。
细菌内毒素介绍
细菌内毒素介绍细菌内毒素你了解多少?1.热点引导细菌内毒素，英文称作Endotoxin，是G-菌细胞壁个层上的特有结构，内毒素为外源性致热原，它可激活中性粒细胞等，使之释放出一种内源性热原质，作用于体温调节中枢引起发热，细菌内毒素的主要化学成分为脂多糖。
革兰氏阴性菌感染的危害性主要源自其释放的内毒素。
动物传染病多种细菌皆可产生内毒素，如大肠杆菌、沙门氏菌、巴氏杆菌、胸膜肺炎放线杆菌等，它们通过外源性感染和肠道系统内源性转位两种途径进入血液循环导致内毒素血症，是机体致病的重要毒力因子。
很多严重疾病(如损伤、烧伤、心、肾、消化系统、呼吸系统、肿瘤、自动免疫等方面的疾病)都直接或间接与革兰阴性菌感染及其释放的内毒素有关。
内毒素血症、休克和弥漫性血管内凝血等，LPS进入机体后可先后诱导细胞因子和黏附分子等炎性介质产生和释放，引起内皮细胞的损伤和屏障功能的改变，导致全身性炎症反应综合征和脓毒症，严重者可导致低血压、中毒性休克、弥漫性血管内凝血(DIC)、急性呼吸窘迫综合征(ARDS)、多器官功能衰竭(MOF)，甚至死亡。
白细胞数目改变，LPS初期可使血液中白细胞数目急剧下降，数小时后骨髓粒细胞又大量释放入血引发白细胞增多症。
该过程会导致动物免疫系统紊乱，增加病原体感染几率。
此外，内毒素还能导致怀孕动物流产、早产或死胎;抑制红细胞生成;具有致敏和抗敏作用等。
2.保健误区生产实践中许多人认为细菌病可用抗菌素治疗，只要通过药敏试验筛选出敏感药物，即可产生理想疗效，其实并非如此。
因为多种因素会导致药敏结果与实际效果不一致，如药物剂量、用法、血清型等。
细菌内毒素在人医上研究较多，但在兽医临床很少有人去考虑抗生素诱导细菌释放内毒素，以及某些革兰氏阴性菌会产生内毒素的问题，以致治疗效果差。
虽然现在防治内毒素损伤的方法和途径多种多样，如LPS抗体、细菌通透性增加蛋白、细胞因子拮抗剂、抗内毒素蛋白等，但尚无一种非常有效的手段。
去除内毒素的方法总结
内毒素的去除是做蛋白表达时至关重要的一步,同时也是非常棘手的问题，本文就针对内毒素的去除方法以及各方法的注意事项进行了归纳总结。
一、什么是内毒素？内毒素是革兰氏阴性细菌细胞壁中的脂多糖。
内毒素只有当细菌死亡溶解或用人工方法破坏菌细胞后才释放出来，所以叫做内毒素。
所有能引起热原反应的物质称为热原。
药品中的热原主要是细菌内毒素。
一般可以认为：细菌内毒素是热原，但热原不等于细菌内毒素。
二、细菌内毒素的理化性质•耐热性：彻底灭活需250℃高温干烤一小时•水溶性：可溶于水，生产中可用无热原水冲洗以除去热原。
•不挥发性•被吸附性：可被活性碳吸附•被酸碱破坏： 0.1M HCl或0.1M NaOH 浸泡4小时•被氧化剂破坏：30%双氧水浸泡4小时，可完全破坏三、器皿中内毒素的去除:a.干热法•适用对象：耐热物品如玻璃制品、金属制品等生产过程中所用的容器•处理方法： 180℃3～ 4h 或 250℃ 30min～ 2h•注意事项：• 1.在干烤前，被加热的玻璃器皿上最好不要有水珠，否则可能会使玻璃器皿损坏。
• 2.烘烤结束后，玻璃器皿不要马上从电热烘箱中拿出，要等温度适度降低之后才可以拿出，以免因温差太大而造成玻璃器皿损坏。
• 3.器皿上不能含有纸质或塑料制品，以免烘烤时燃烧或熔化。
b.化学降解法•适用对象：主要用于去除玻璃、塑料和其它高分子材料器皿上的内毒素。
•处理方法：常用3～5％双氧水、重铬酸钾硫酸清洁液（重铬酸钾∶硫酸∶水常用配比1∶1∶10 或1∶2∶8 ）、0.1M HCl或0.1 M NaOH浸泡去除。
一般处理4h以上。
•注意事项：佩戴防护用具，防止皮肤直接接触。
四、溶液中内毒素的去除但是，各种去内毒素的方法不是孤立的，可以相互结合使用。
比如，如果液相分离法得到的蛋白内毒素水平未达标，可以接着利用分子筛法进一步去除内毒素。
五、作为目前去内毒素常用的方法，液相分离法的注意事项值得我们重视1.液相分离方法应用于蛋白纯化中内毒素的去除a.目的蛋白上样后，用预冷的基础溶液+1% Triton X-114缓慢淋洗柱子，直至A280数值稳定不变；b.用预冷的去内毒素基础溶液淋洗柱子，直至A280数值达到基线，稳定不变；c.用各梯度去内毒素的洗脱液洗脱，收集各洗脱液于去内毒素的收集管中。
内毒素知识介绍
内毒素知识介绍(2010-01-16 10:00:17)转载分类：精彩推荐展示标签：抗体细胞因子蛋白酶试剂盒信号转导凋亡生化试剂干细胞生物ips细菌内毒素，英文称作Enolotoxin，是G-菌细胞壁个层上的特有结构，内毒素为外源性致热原，它可激活中性粒细胞等，使之释放出一种内源性热原质，作用于体温调节中枢引起发热。
内毒素的主要化学成分为脂多糖中的类脂A细菌内毒素这个概念在1890年的时候就已被提了出来，它是在研究发热物质过程所引成的，1933年Boivin 最先由小鼠伤寒杆菌提取出来，进行化学免疫学方面的研究，到1940年时候，Morgan使用志贺氏痢疾菌阐明了细菌内毒素是由多糖脂质及蛋白质三部分所组成的复合体，到了1950年以后，随着生物学，物理化学，免疫学以及遗传学等的进步发展，细菌内毒素的研究工作，尤其是其化学结构组成及各种生物活性间的关系也更加明确起来。
细菌英文叫Bacteria ：为原核生物中的一类单细胞微生物由二分裂法繁殖。
若按革兰氏染色法可将细菌分为G+菌和G-菌两大类。
这两类细菌细胞壁的结构和化学组成存在很大差异。
唯有肽聚糖为其共同成分，但其含量的多少和肽链的性质有所不同，见下表：关于细菌细胞壁结构，尤其G+/G-菌不同之处见下图所示：由以上结构模式图可以发现，G+菌与G-菌有不同之处，其中对于G-菌来说：细胞壁较薄，厚约10－15nm，结构也较复杂。
肽聚糖含量低，仅占细胞干生10％左右，层薄又较疏松，因肽聚糖之间仅四肽侧链直接联结，缺乏五肽桥；肽聚糖居于细胞最内层，外面由内向外还有脂蛋白，外膜和脂多糖的三层聚合物。
（1）脂蛋白（lipoprotein）由类脂和蛋白质构成，联结在外膜与肽聚糖层之间，类脂一端经非共价键联结到外膜的磷脂上，另一端由共价键联结到肽聚糖肽链中的二氧基庚二酸残基上，使外膜和肽聚糖层构成一个整体。
（2）外膜（outer membrane）是革兰氏阴性菌细胞壁的重要结构，位于肽聚糖的外侧，其结构类似细胞膜，为液态的磷脂双层，其中镶嵌一些特异蛋白质，穿透外膜的内外双层，呈液态镶嵌体。
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内毒素浓度
2λ
λ
0.5λ
0.25λ
阴性对照
鲎试剂
平行管
○
○
○
○
○
○
○
○
○
○
○
○
○
○
○
○
○
○
放入37℃±1℃的恒温器中，保温60分钟±2分钟
将试管从恒温器中轻轻取出，缓缓倒转180°，若管内形成凝胶，并且凝胶不变形、不从管壁滑脱者为阳性；形成的凝胶不坚实、变形或从管壁滑脱者为阴性；
b当L以EU/mg表示时，则C的单位为mg/ml或U/ml适用于供试品为固体状态，如粉针；或液体但是规定限值为应小于xx EU/mg或EU/U。
例：注射用阿莫西林钠
计算限值为0.15EU/mg，使用灵敏度为0.25EU/ml的鲎试剂进行检验。
需先称取一定重量的注射用阿莫西林钠，在已除去外源性内毒素的容器中，用细菌内毒素检查用水配制成一定浓度的溶液。
凝胶法干扰试验
预试验
正式干扰试验
预试验
目的：初步确定供试品的最大不干扰浓度（当限值以EU/mg或EU/U活性单位表示）或最小不干扰稀释倍数（当限值以EU/ml表示），为正式干扰实验提供依据；
优点：减少摸索过程、节省成本。
预试验
操作步骤：
将供试品溶液进行一系列倍数的稀释；
使用鲎试剂对每一稀释倍数进行检验，每一稀释倍数下做2支供试品管和4支供试品阳性对照（即含2.0λ和0.25λ浓度标准内毒素的该浓度的供试品稀释液）；
1.0 ml（0.06 EU/ml）2.0 ml（0.03 EU/ml）
1.0 ml（0.03 EU/ml）2.0 ml（0.015 EU/ml）
1.0 ml（0.015 EU/ml）2.0 ml（0.008 EU/ml）
（3）加样
用精密移液器分别吸取0.1ml的0.06、0.03、0.015、0.008EU/ml的内毒素溶液，加入已复溶的鲎试剂中，每浓度平行4管，吸取0.1mlBET用水加入另外2管鲎试剂内，作为阴性对照。
1.8.1最大有效稀释倍数是指供试品溶液被允许稀释的最大倍数，在不超过此稀释倍数的浓度下进行内毒素限值的检测。
MVD＝cL／λ
L：供试品的内毒素限值
c：供试品溶液的浓度
λ：在凝胶法中鲎试剂的标示灵敏度(EU/ml)，
或在光度测定法中所使用的标准曲线上最
低的内毒素浓度(如标准曲线为50、5、
0.5EU/ml三个浓度组成)
–缓冲液必须经过验证不含内毒素和干扰因子。
1.7限值（L）的确定
1.7.1-药品、生物制品的细菌内毒素限值（L）除药典有规定的，一般按以下公式确定：
L＝K／M
–按人用剂量计算限值时，如遇特殊情况，可根据生产和临床用药实际情况做必要调整，但需说明理由。
1.7.2计算举例：注射用阿莫西林钠
–根据国家药典委员会编纂的《临床用药须知》：“肌肉注射或稀释后静脉滴注，一次0.5～1g，一日3～4次：小儿按体重每日50～100mg/kg，分3～4次静脉滴注。”
例：注射用阿莫西林钠
计算限值为0.15EU/mg，使用灵敏度为0.125EU/ml的鲎试剂进行检验。
最小有效稀释浓度
c＝0.125 EU/ml÷0.15EU/mg＝0.833mg/ml
2、实验部分
2.1鲎试剂灵敏度复核试验
目的
－考察鲎试剂的灵敏度是否准确
－考察检验人员操作方法是否正确
－实验条件是否符合规定
另做2支阴性对照和2支阳性对照。
预试验
预试验结果判断：
当阴性对照为阴性，阳性对照为阳性时，实验为有效；
当系列浓度中出现供试品溶液2管为阴性，供试品阳性对照2管为阳性时，供试品阳性对照0.25λ管均为阴性时，认为供试品在该浓度下不干扰实验，此稀释倍数即为最小不干扰稀释倍数。
即可选择该稀释倍数和相邻浓度进行正式干扰实验。
3、鲎
3.1鲎(horseshoe crab)是一类与三叶虫(现在只有化石)一样古老的动物。鲎的祖先出现在地质历史时期古生代的泥盆纪，当时恐龙尚未崛起，原始鱼类刚刚问世，随着时间的推移，与它同时代的动物或者进化、或者灭绝，而惟独只有鲎从4亿多年前问世至今仍保留其原始而古老的相貌，所以鲎有“活化石”之称。又具有很高的药用价值。
烤至少30分钟，也可采用其他确证不干扰细菌内毒素检查的适宜方法。
–若使用塑料器械，如微孔板和与微量加样器配套的吸头等，应选用标明无内毒素并且对试验无干扰的器械。试验操作过程应防止微生物是污染。
1.6.2供试品溶液的制备
–某些供试品需进行复溶、稀释或在水性溶液中浸提制成供试品溶液。
–一般要求供试品溶液的pH值在6.0～8.0的范围内。对于过酸、过碱或本身有缓冲能力的供试品，需调节被测溶液（或其稀释液）的pH值，可使用酸、碱溶液或鲎试剂生产厂家推荐的适宜的缓冲液调节pH值。
1.8.2计算举例
a当L以EU/ml表示时，则浓度C的单位为1.0ml/ml
适用于供试品为溶液状态，并且规定限值为应
小于xx EU/ml。
例：替硝唑注射液，计算限值为0.5EU/ml，使用
灵敏度为0.125EU/ml的鲎试剂进行检验，则：
MVD＝1.0ml/ml×0.5EU/ml÷0.125EU/ml＝4倍
三、2010年版药典细菌内毒素检查法介绍
整体结构
1.综述部分
–检查法的描述
–试验的准备
–限值（L）的确定
–确定最大有效稀释倍数（MVD）
1.1细菌内毒素检查法介绍
细菌内毒素检查包括：
限量实验浊度法
动态浊度法
凝胶法｛光度测定法｛终点浊度法
半定量实验
显色基质法
动态显色法
终点显色法
可使用其中任何一种方法进行试验。当测定结果有争议时，除另有规定外，以凝胶法结果为准。
2.2
细胞分裂素（IL-1, IL-2, IL-6, IL-8）
内源性热原｛
产生细胞分裂素的物质
内毒素热原
外源性热原｛非内毒素热原（病毒、细菌、真
菌、抗体-抗原复合物、细胞分裂素）
2.3热原和内毒素的关系：
2.3.1热原是否就是内毒素？
在学术上仍有争议，热原不仅是细菌内毒素。但在药检的范畴，细菌内毒素是主要的热原物质，可以说无内毒素就无热原，控制内毒素就是控制热原。
何时进行
－使用新批号的鲎试剂
－试验条件发生可能影响检验结果的改变时
实验操作:
取细菌内毒素国家标准品或工作标准品一支，加入规定量的细菌内毒素检查用水溶解其内容物，用封口膜将瓶口封严，置旋涡混合器上混合15分钟。
然后进行稀释，制备成4个浓度的细菌内毒素标准溶液,即2.0λ、1.0λ、0.5λ、0.25λ（λ为所复核的鲎试剂的标示灵敏度），每稀释一步均应在旋涡混合器上混合30秒钟。
b光度测定法细菌内毒素检查用水，其内毒素含量应小于0.005EU/ml
1.5试验器械
移液管（或刻度吸管、微量加样器及无热原吸头）、凝集管（10×75mm）、试管、试管架、洗耳球、封口膜、计时器、75%酒精棉、剪刀、砂轮。
1.6试验的准备
1.6.1试验器械的要求
–试验所用的器皿需经处理，以去除可能存在的外源性内毒素。常用的方法是在250℃干
细菌内毒素检查法
一、细菌内毒素检查法的定义：
本法是利用鲎试剂与细菌内毒素产生凝聚反应的机理，以判断供试品中的细菌内毒素限度是否符合规定的一种方法。
二、背景介绍：
1、细菌内毒素
2、热原
3、鲎
1、细菌内毒素
细菌内毒素是一种革兰氏阴性细菌细胞壁的产物，当其死亡或菌体裂解时释放出的一类具有多种生物活性的毒性物质
1.2试验的准备
实验所需物品
细菌内毒素标准物质
细菌内毒素检查用水
凝胶法鲎试剂
漩涡混合器
适宜的恒温器37±1℃
电热干燥箱250℃
实验器械等
1.3细菌内毒素标准物质
a国家标准品
以内毒素国际标准品为基准标定效价。系自大肠埃系菌提取精制而成，用于标定、复核、仲裁鲎试剂灵敏度和标定细菌内毒素工作标准品的效价。
保温和拿取试管过程应避免受到振动造成假阴性结果。
结果判断：若最大浓度2λ管均为阳性，最低浓度0.25λ管均为阴性，阴性对照管阴性，试验方有效。
结果计算：反应终点浓度的几何平均值，即为鲎试剂灵敏度的测定值
λc=lg-1(ΣX/4)
式中X为反应终点浓度的对数值（lg）。
（反应终点浓度是指系列递减的内毒素浓度中最后一个呈阳性结果的浓度。）
分别计算用检查用水制成的内毒素标准溶液的反应终点浓度的几何平均值（ES）和用供试品溶液和稀释液制成的内毒素溶液的反应终点浓度的几何平均值（Et）；
当λc在0.5λ～2λ（包括0.5λ和2λ）时，方可用于细菌内毒素检查。
实验时，以标示灵敏度λ为该批鲎试剂的灵敏度。
试验举例：
（1）试剂
（2）试液配制
2.1 TAL制备：取TAL5支，每支加BET水0.5ml溶解后备用。将5支鲎试剂混匀，分装至10mm×75mm小试管中，每管0.1ml
2.2细菌内毒素标准溶液的制备：取工作标准品1支，加BET用水1.2ml，旋涡混合器混匀15分钟（100 EU/ml），以后每步均用BET用水稀释，混匀30秒钟。
特：
（1）.致热性：内毒素作用人体细胞，使之释放内源性热原，刺激下丘脑体温调节中枢，引起发热反应。
（2）.耐热性：需250度干热30分钟才能彻底灭活。
（3）.分子极性：多糖链亲水，脂肪链疏水，在水中呈不均匀分布。
（4）.鲎反应：能与鲎试剂发生多级酶促反应，形成凝胶。
2、热原
2.1热原是指临床上引起哺乳动物发热反应的物质
150600-200707 10000EU/支
b工作标准品