植物体内可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定(优选.)
植物体内可溶性糖含量的测定
植物体内可溶性糖含量的测定（蒽酮法）糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一，也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件，不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定，可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
一、目的：糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一，也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件，不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定，可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
二、原理糖类遇浓硫酸脱水生成糖醛或其衍生物，反应如下：糠醛或羟甲基糠醛进一步与蒽酮试剂缩合产生蓝绿色物质，其在可见光区620nm波长处有最大吸收，且其光吸收值在一定范围内与糖的含量成正比关系。
此法可用于单糖、寡糖和多糖的含量测定，并具有灵敏度高，简便快捷，适用于微量样品的测定等优点。
三、实验材料、仪器及试剂1．材料：植物组织叶片2．仪器：分光光度计恒温水箱20ml具塞刻度试管（3支）漏斗100ml 容量瓶刻度试管试管架剪刀研钵3．试剂：（1）200μg/ml标准葡萄糖：AR级葡萄糖100mg，蒸馏水溶解，定容至500ml。
（2）蒽酮试剂：1g蒽酮，用乙酸乙酯溶解，定容至50ml，棕色瓶避光处贮藏；（3）浓硫酸四、实验方法1．葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管，编号，按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。
在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂，再缓慢地加入5ml浓H2SO4，摇匀后，打开试管塞，置沸水浴中煮沸10分钟，取出冷却至室温，在620nm波长下比色，测各管溶液的光密度值（O D），以标准葡萄糖含量为横坐标，光密度值为纵坐标，作出标准曲线。
2．样品中可溶性糖的提取称取1克叶片，剪碎，置于研钵中，加入少量蒸馏水，研磨成匀浆，然后转入20ml刻度试管中，用10ml蒸馏水分次洗涤研钵，洗液一并转入刻度试管中。
置沸水浴中加盖煮沸10分钟，冷却后过滤，滤液收集于100ml容量瓶中，用蒸馏水定容至刻度，摇匀备用。
植物体内可溶性糖和可溶性蛋白含量测定
植物体内可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定摘要：目的通过标准曲线的绘制，测定白菜、芹菜、菠菜中可溶性蛋白和可溶性糖的含量，了解可溶性糖和可溶性蛋白的测定方式。
方式别离用蒽酮法和考马斯亮蓝染色法来测定植物体内可溶性糖和可溶性蛋白的含量。
结论关键词：白菜；芹菜；菠菜；可溶性蛋白含量；可溶性糖含量；蒽酮法；考马斯亮蓝染色法1 引言植物体内的可溶性糖和可溶性蛋白含量是重要的生理生化指标。
在作物的碳素营养中，作为营养物质主若是指可溶性糖和淀粉。
它们在营养中的作用要紧有：合成纤维素组成细胞壁；转化并组成其他有机物如核苷酸、核酸等；分解产物是其他许多有机物合成的原料，如糖在呼吸进程中形成的有机酸，可作为NH 3 的受体而转化为氨基酸；糖类作为呼吸基质，为作物的各类合成进程和各类生命活动提供了所需的能量。
由于碳水化合物具有这些重要的作用，因此是营养中最大体的物质，也是需要量最多的一类。
可溶性蛋白是植物体内氮素存在的要紧形式，其含量的多少与植物的代谢和衰老有紧密的关系，同时它与植物体维持渗透压抗脱水也有专门大关系。
白菜是叶用蔬菜，味道鲜美可口，营养丰硕，素有“菜中之王”的美称，为广大群众所喜爱。
芹菜属植物，富含蛋白质、碳水化合物、胡萝卜素、B族维生素、钙、磷、铁、钠等，同时，具有有平肝清热，祛风利湿，清肠利便、润肺止咳、降低血压、健脑镇定的功效。
菠菜一年生草本植物，菠菜含有丰硕的维他命A、维他命C及矿物质，它对各类贫血症和糖尿病、肺结核、高血压、风火赤眼等诸多疾病可起辅助医治作用。
2 材料与方式植物体内可溶性糖含量的测定材料新鲜的白菜、芹菜、菠菜叶片（剪碎后各取—）试剂葡萄糖标准溶液（200ug/ml)、蒽酮试剂仪器设备。
可溶性蛋白、可溶性糖、淀粉、淀粉酶测定方法
可溶性蛋白质含量的测定（考马斯亮蓝法）一、实验原理考马斯亮蓝G-250测定蛋白质含量属于染料结合法的一种。
考马斯亮蓝G-250在游离态下呈红色，当它与蛋白质的疏水区结合后变为青色，前者最大光吸收在465 nm，后者在595 nm。
在一定蛋白质浓度范围内蛋白质－色素结合物在595 nm波长下的光吸收与蛋白质含量成正比。
故可用于蛋白质的定量测定。
蛋白质与考马斯亮蓝G-250结合在2 min左右的时间内达到平衡，完成反应十分迅速，其结合物在室温下1 h内保持稳定。
该反应非常灵敏，可测微克级蛋白质含量，所以是一种比较好的蛋白质定量法。
二、实验材料、仪器和试剂1.仪器设备分光光度计，离心机，研钵，2. 试剂(1)牛血清白蛋白配成1000 μg/mL和100 μg/mL。
(2)考马斯亮蓝G-250：称取100 mg考马斯亮蓝G-250溶于50 mL 90%乙醇中，加入85%（W/V）磷酸100 mL，最后用蒸馏水定容至1000 mL。
此溶液在常温下可放置一个月。
(3)90%乙醇(4)磷酸（85%，W/V）三、实验步骤：1.可溶性蛋白的提取称取新鲜植物样品约0.5 g置于研钵中，加入5 mL 4o C下预冷的浓度为50 mmol/L，pH 7.0磷酸缓冲液和少量石英砂研磨成匀浆后，转入10 mL离心管中，在4 o C冰箱中静置10 min，于15000 rpm/min下冷冻离心25 min，上清液即为蛋白提取液。
4 o C下保存备用。
2.标准曲线的绘制(1)0-100 μg/mL标准曲线的制作取6支试管，按下表数据配制0-100 μg/mL血清白蛋白液各1 mL。
准确吸取所配各管溶液0.1 mL，分别放入10 mL具塞试管中，加入5 mL考马斯亮蓝G-250试剂，盖塞，反转混合数次，放置2 min后，在595 nm下比色，绘制标准曲线。
配制0-100 μg/mL血清白蛋白液管号 1 2 3 4 5 6100 μg/mL牛血清蛋白量(mL)蒸馏水量(mL)蛋白质含量(mg)1.00.20.80.020.40.60.040.60.40.060.80.20.081.00.10(2)0-1000 μg/mL标准曲线的制作另取6支试管，按表10-2数据配制0-1000 μg/mL牛血清白蛋白溶液各1 mL。
植物可溶性蛋白的测定
植物组织可溶性蛋白质的测定-考马斯亮蓝G-250法更新时间2015-5-191、目的：测定植物组织的可溶性蛋白含量，测定范围为100-1000ug/ml，高浓度需要稀释后测定。
小分子蛋白和肽的测定需要用福林酚试剂。
2、提取：用测定SOD （0.05M pH7.8磷酸缓冲液）或者POD （0.1 mol / L 磷酸缓冲液 （pH6.0）的提取液或者用水提取均可，但混匀后要放置0.5-1小时再离心，以充分提取。
单独测定时，取样品5g，加水50ml，破碎，冷藏存储，测前10000rpm离心10分钟备用，取样0.1-0.2ml测定（如果加水比较少，计算时应考虑材料水分）。
3、测定：以提取液为对照，以牛血清标准蛋白为标准，以考马斯亮蓝G-250为显色剂，显色2-30分钟内，在595nm 比色。
4、计算：可溶性蛋白含量（ug/g鲜重）=测定含量（ug）*总提取体积ml/取样体积ml/鲜重g。
5、试剂配制：5.1、牛血清白蛋白标准溶液的配制：准确称取0.100g牛血清白蛋白，溶于100mL蒸馏水中，即为1000μg／mL的原液，此液不用时应冷藏保存，可用15天。
将1000μg／mL牛血清白蛋白用提取液稀释10倍，作为工作液，浓度为100μg／mL。
5.2、考马斯亮蓝G-250蛋白显色剂：称取0.050g考马斯亮蓝G-250，溶于25mL95％乙醇中，加入85％（W／V）的磷酸50mL，最后用蒸馏水定容到500mL。
此溶液在常温下可放置1个月。
标准曲线及样品配制表 蛋白含量（μg） 100μg/ml标准蛋白（μl） 提取液 （μl） 考马斯亮蓝G-250显色剂 （ml）0 0 10002.5 20 200 80040 400 600 60 600 400 80 800 200100 1000 0样品* X（一般叶片为1000） 1000-x*注1：样品量依据显色调整，生长旺盛期小麦叶片可溶性蛋白含量一般为1mg/g数量级。
设计性实验报告植物可溶性蛋白质和糖含量的测定
设计性实验报告题目植物可溶性蛋白质和糖含量的测定课程名称：基础生物化学实验实验学期：2011至2012学年第一学期植物组织中可溶性蛋白质和糖含量的测定摘要本文以生菜、苹果为材料，采用考马斯亮蓝法（蛋白质）、蒽酮法（糖）、分光光度计法进行了可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定。
结果表明：生菜的蛋白质含量为5.88（mg/g），糖含量为0.0739g/100g；苹果中蛋白质含量为0.2926（mg/g），糖含量为0.2126g/100g。
即说明：生菜中蛋白质含量高于苹果，但苹果中的糖含量更高。
关键词可溶性蛋白、可溶性糖，考马斯亮蓝G-250染色法，蒽酮法，含量测定1、材料与方法1.1 蛋白质含量测定标准蛋白质溶液、考马斯亮蓝试剂、生菜、苹果分光光度计、离心机、研钵、烧杯、电子秤、移液管、试管等1.2 糖含量测定200ug/ml标准葡萄糖、蒽酮试剂、浓硫酸、生菜、苹果试管、水浴锅、分光光度计、研钵、电子秤、移液管、量筒、试管架2、实验步骤蛋白质含量的测定（考马斯亮蓝G-250染色法）2.1标准曲线的绘制取六只试管，按下表加入试剂，摇匀，向个管加入5ml考马斯亮蓝试剂，摇匀，并放置5min左右，以0号试管为空白对照，在595nm下比色测定吸光度。
以蛋白质含量为横坐标，以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。
2.2样品测定2.2.1样品提取分别秤取生菜、苹果鲜样 0.25～0.5g，用5ml蒸馏水或缓冲液研磨成匀浆后，3000r/min离心10min，上清液备用。
2.2.2 吸取样品提取液1.0ml（蛋白质含量适当稀释），放入试管中，加入5ml考马斯亮蓝试剂，摇匀，放置2min后在595nm下比色，测定吸光度，并通过标准曲线查得蛋白质含量。
糖含量测定2.3.葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管，编号，按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。
在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂，再缓慢地加入5ml浓H2SO4，摇匀后，打开试管塞，置沸水浴中煮沸10分钟，取出冷却至室温，在620nm波长下比色，测各管溶液的光密度值（OD），以标准葡萄糖含量为横坐标，光密度值为纵坐标，作出标准曲线。
植株可溶性蛋白含量的测定
植物体内可溶性蛋白含量的测定一目的：植物体内的可溶性蛋白质含量是一个重要的生理生化指标，如在研究每一种酶的作用时常以比活力（酶活力单位/毫克蛋白质）表示酶活力的大小及酶制剂纯度，这就需要测定蛋白质含量。
本实验用Folin—酚试剂法。
二原理：Folin—酚试剂法也称Lowry法，包括两步反应：第一步是在碱性条件下，蛋白质与铜作用生成蛋白质—铜络合物。
第二步是此络合物将试剂磷钼酸—磷钨酸（ Folin 试剂）还原，混合物深蓝色（磷钼蓝和磷钨蓝混合物），颜色深浅与蛋白质含量成正比。
因此，可利用其650nm波长下的特定吸收进行比色测定。
此方法操作简便，灵敏度比双缩脲法高 100 倍，定量范围为 5-100μg 蛋白质。
Folin 试剂显色反应由酪氨酸、色氨酸、半胱氨酸引起，因此样品中若含有酚类、柠檬酸和巯基化合物，均有干扰作用。
此方法的缺点是有蛋白质的特异性影响，即不同蛋白质因络氨酸、色氨酸含量的不同而使显色强度稍有不同。
三植物材料、仪器设备及试剂配制：（1）植物材料：100mg/L,300mg/L,500gm/L,700mg/L.以及0mg/L铅胁迫的黄瓜叶片（2）仪器设备：分光光度计、电子天平、离心机、生化培养箱、冷凝回流装置一套、玻璃研钵、移液管或移液枪、刻度试管、普通试管、玻璃棒、洗瓶、小烧杯等。
（3）试剂的配制：1、标准蛋白质溶液：称取25mg牛血清白蛋白，溶于100ml蒸馏水中，使最终浓度为250μg/ml。
2、Folin-酚试剂甲：是由A和B两种溶液组成的。
A 液：称取10g 碳酸钠（Na2CO3）溶液与 2g 氢氧化钠（NaOH）和0.25g酒石酸钾钠（KNaC4H4O6·4H2O）,用去离子水溶解并定容到500ml。
B 液：称取0.5g硫酸铜（CuSO4·5H2O）溶液，用去离子水溶解并定容到100ml。
每次使用前将 A 液与 B 液按 50 ∶ 1 的比例混合即成。
设计性实验报告植物可溶性蛋白质和糖含量的测定
设计性实验报告题目植物可溶性蛋白质和糖含量的测定课程名称：基础生物化学实验实验学期：2011至2012学年第一学期植物组织中可溶性蛋白质和糖含量的测定摘要本文以生菜、苹果为材料，采用考马斯亮蓝法（蛋白质）、蒽酮法（糖）、分光光度计法进行了可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定。
结果表明：生菜的蛋白质含量为5.88（mg/g），糖含量为0.0739g/100g；苹果中蛋白质含量为0.2926（mg/g），糖含量为0.2126g/100g。
即说明：生菜中蛋白质含量高于苹果，但苹果中的糖含量更高。
关键词可溶性蛋白、可溶性糖，考马斯亮蓝G-250染色法，蒽酮法，含量测定1、材料与方法1.1 蛋白质含量测定标准蛋白质溶液、考马斯亮蓝试剂、生菜、苹果分光光度计、离心机、研钵、烧杯、电子秤、移液管、试管等1.2 糖含量测定200ug/ml标准葡萄糖、蒽酮试剂、浓硫酸、生菜、苹果试管、水浴锅、分光光度计、研钵、电子秤、移液管、量筒、试管架2、实验步骤蛋白质含量的测定（考马斯亮蓝G-250染色法）2.1标准曲线的绘制取六只试管，按下表加入试剂，摇匀，向个管加入5ml考马斯亮蓝试剂，摇匀，并放置5min左右，以0号试管为空白对照，在595nm下比色测定吸光度。
以蛋白质含量为横坐标，以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。
蛋白质含0 20 40 60 80 100量（ug）2.2样品测定2.2.1样品提取分别秤取生菜、苹果鲜样 0.25～0.5g，用5ml蒸馏水或缓冲液研磨成匀浆后，3000r/min离心10min，上清液备用。
2.2.2 吸取样品提取液1.0ml（蛋白质含量适当稀释），放入试管中，加入5ml考马斯亮蓝试剂，摇匀，放置2min后在595nm下比色，测定吸光度，并通过标准曲线查得蛋白质含量。
糖含量测定2.3.葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管，编号，按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。
在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂，再缓慢地加入5ml浓H2SO4，摇匀后，打开试管塞，置沸水浴中煮沸10分钟，取出冷却至室温，在620nm波长下比色，测各管溶液的光密度值（OD），以标准葡萄糖含量为横坐标，光密度值为纵坐标，作出标准曲线。
植物体内可溶性蛋白和非可溶性蛋白含量的测定
植物体内可溶性蛋白和非可溶性蛋白含量的测定一、目的衰老是植物在长期进化和自然选择中形成的一种生物学现象，它可以在植物的细胞、器官和整体等不同水平上表现出来。
植物叶片衰老过程中，叶绿素含量下降，叶色变黄，蛋白质含量减少。
另外自由基代谢失调并在体内积累也是植物衰老的机理之一。
本实验主要是测定植物衰老过程中叶片蛋白质的变化，掌握植物体内可溶性蛋白和非可溶性蛋白的测定原理及方法。
二、原理植物材料经Tris－HCl缓冲液研磨、离心后，可溶性蛋白质溶于上清液中，非可溶性蛋白则存在于沉淀部分。
将沉淀用碱水解，则会得到非可溶性蛋白的提取液。
蛋白质提取液与考马斯亮蓝G－250反应呈蓝色。
在一定范围内，蛋白质的含量与反应液在595nm波长的吸光度呈正比，由此可求出蛋白质的含量。
三、材料、仪器设备及试剂1. 材料：植物叶片2. 仪器设备：高速冷冻离心机；分光光度计；恒温水浴；研钵（或组织捣碎机）；试管；移液管；洗耳球等；3. 试剂及配制提取液（50mmol·L－1Tris－HCl，pH7.8，含0.5 mmol·L－1MgCl2， 1 mmol·L－1EDTA，1 mmol·L－1二硫苏糖醇, 缩写：DTT）。
考马斯亮蓝溶液配制：称取考马斯亮蓝G－250 100mg，加95％乙醇50ml，和85％磷酸100ml，然后定容至1000ml。
0.15mol·L－1NaCl溶液牛血清蛋白标准母液配制:用0.15mol·L－1NaCl溶液配成100μg·ml－1牛血清蛋白标准液。
四、实验步骤1. 牛血清蛋白标准曲线的制作1.1取6支试管，编号，按下表配制每管含量为0～100μg的牛血清蛋白标准液。
加入表中试剂后，摇匀，以0号管为空白对照，在595nm波长处测定其吸光度（A）值。
1.2标准曲线绘制以牛血清蛋白含量为横坐标，吸光度值为纵坐标，绘制标准曲线。
2. 蛋白质的提取称取叶片0.3～0.5g，剪碎于冷冻过的研钵中加提取液3ml，加少量石英砂，在冰浴中快速研磨成匀浆，匀浆倒入离心管中，再用5ml提取液（分两次）将研钵中匀浆洗入离心管，然后在10000 r/ min，4℃条件下离心20min，上清液即为可溶性蛋白质提取液。
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赠人玫瑰，手留余香。
2.2 植物体内可溶性蛋白含量的测定
2.2.1材料
新鲜的白菜、芹菜、菠菜叶片（剪碎后各取0.5—1.0g）
2.2.2试剂
标准蛋白质溶液：用牛血清白蛋白配成含蛋白质100μg/的标准蛋白溶液;
90%乙醇；85%磷酸(W/V)；考马斯亮蓝G－250溶液
2.2.3仪器设备
分光光度计；量筒；研钵；烧杯；量瓶；移液管；具塞刻度试管；分析天平；恒温水浴；
2.2.4测定方法
0～100μg/ml标准曲线的制作：取六支试管，分别按下表数据配制0～100μg/ml血清白蛋白液1ml。
准确吸取所配各管溶液0.1ml，分别放入10ml具塞试管中，加入5ml考马斯亮蓝G—250试剂，盖塞，反转混合数次，放置2min后，在595nm下比色，绘制标准曲线。
样品提取液中蛋白质浓度的测定：吸取样品提取液1.0ml，放入具塞试管中(每个样品设置两个重复)，加入5Ml考马斯亮蓝G－250溶液，充分混合，放置2min后在595nm下比色，记录吸光值，并通过标准曲线查得蛋白质含量。
结果计算：样品蛋白质含量(mg/g鲜重）=(C*V/a)/W
式中C－查标准曲线所得每管蛋白质含量（mg）；
V－提取液总体积（ml）；
a－测定所取提取液体积（ml）；
W－取样量（g）。
3 结果分析
3.1 植物体内可溶性糖含量的测定
3.1.1可溶性糖标准曲线
表一：各试管中标准葡萄糖的吸光值
管号0 1 2 3 4 5
葡萄糖含量
0 40 80 120 160 200
（ug）
吸光度0 0.195 0.370 0.518 0.690 0.706
3.1.2芹菜、白菜、菠菜中可溶性糖的吸光值
吸光值样品名称
芹菜白菜菠菜
A1 0.358 0.347 0.333
A2 0.361 0.352 0.327
A3 0.367 0.351 0.327
平均值0.362 0.350 0.329
糖量为80.930μg；白菜样品溶液的含糖量为78.139μg；菠菜样品溶液的含糖量为73.256μg。
3.1.3可溶性糖含量计算
样品含糖量=样品含量（ug）*稀释倍数*100/{样品重（g）*106}g/100g鲜重
样品质量/g 吸光值查表所得含
糖量/μg
稀释倍数可溶性糖含量
/μg 芹菜 1.00 0.362 80.830 100 0.8083 白菜 1.00 0.350 78.139 100 0.7813 菠菜 1.00 0.329 73.256 100 0.7325
由表可知：芹菜中可溶性糖含量最高，白菜中含量居中，菠菜中可溶性糖含量最低。
3.2 植物体内可溶性蛋白含量测定
3.2.1 可溶性蛋白标准曲线
表1 各试管中标准蛋白质的吸光值
管号0 1 2 3 4 5
蛋白质含量
0 20 40 60 80 100
(ug)
吸光度0 0.286 0.578 0.852 0.921 1.250
3.2.2芹菜、白菜、菠菜中可溶性蛋白的吸光值
吸光值样品名称
芹菜白菜菠菜A1 0.095 0.122 0.085
A2 0.102 0.125 0.081
A3 0.097 0.128 0.080
平均值0.098 0.125 0.082
照标准曲线，可以得出：在1g蔬菜样品中移取的1ml样品溶液中，芹菜样品溶液含蛋白量为4.619μg；白菜样品溶液的含蛋白量为6.761μg；菠菜样品溶液的含蛋白量为3.349μg。
3.2.3可溶性蛋白计算
C ——查标准曲线值， ug V T ——提取液总体积， ml Vs ——测样时加样量，ml W F ——样品鲜重，g
4 讨论
通过实验对芹菜、白菜和菠菜体内的可溶性糖和可溶性蛋白的含量进行了测定，了解植物体内可溶性糖和可溶性蛋白的含量有利于我们更清楚地了解各种植物，同时通过实验也让我们更加清楚地了解了植物体内可溶性糖和可溶性蛋白在植物生长中的作用。
可溶性糖是植物植物生长发育和基因表达的重要调节因子，它不仅是能量来源和结构物质，而且在信号传导中具有类似激素的初级信使作用。
它的主要作用有以下几点：参与植物体内渗透压调节，在干旱环境中植物为了减缓由胁迫造成的生理代谢不平衡，细胞大量积累一些小分子有机化合物，可溶性糖就是这些小分子有机化合物之一，它通过渗透调节来降低水势，维持较高渗透压，保证细胞的正常生理功能；糖类能够以类似植物激素的方式作为一种信号分子存在，在植物的生长、发育、成熟核素哀牢等许多过程中发挥调控作用在种子萌发和种苗发育早期糖类可以调控植物的花转变，并且对植物花转变的调控具有多重效应，糖信号还可以调控叶片的衰老等；糖与植物氮调节之间存在代谢关系，而且不同的糖信号和氮信号转导途径可以在不同水平上相互响应等
)
/ ( 1000 * * * g mg W V V C F
S T
样品中蛋白质含量
植物体内的可溶性蛋白质大多数是参与各种代谢的酶类，可溶性蛋白质含量是一个重要的生理生化指标，测其含量是了解植物体总代谢的一个重要指标；在研究每一种酶的作用时，常以比活（酶活力单位／mg蛋白）表示酶活力大小及酶制剂纯度，这就需要测定蛋白质含量。
因此，测定植物体内可溶性蛋白质是研究酶活的一个重要项目。
参考文献
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[6] 赵江涛.李晓峰.李航.徐睿忞可溶性糖早高等植物带些调节中的生理作用 2006
学生设计性实验论文
题目：植物体内可溶性糖和可溶性蛋白含
量的测定
姓名魏会会学号2012132119
专业生物技术班级123班
相关实验课程名称基础生物化学实验
指导老师单树花
实验学期2013~2014学年第二学期
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