瑞氏-姬姆萨染液使用说明
瑞氏染色操作步骤
瑞氏染色操作步骤瑞氏染色是一种常见的染色技术，用于细胞、组织和生物样本的研究中。
该技术可用于确定细胞形态、染色体数量和形态、染色体变异等。
以下是瑞氏染色的操作步骤：1.样本处理：样本一般采用新鲜的、保存良好的细胞或组织样本。
在处理之前，需要检查样本是否符合要求。
例如，细胞样本应具有充足的数量和活力，组织样本应达到一定的厚度和大小。
此外，需要对样本进行预处理，如固定处理、去除上皮细胞等。
2.制片：制作干片是瑞氏染色的重要步骤。
首先，用无菌的玻片将样本涂抹均匀。
有时还需要使用刮片等工具辅助涂抹。
然后，制片需通过加热、干燥等过程。
这使得细胞或组织与玻片表面相关联，以便在后续染色过程中处理。
3.染色：将制片进行染色是瑞氏染色的核心步骤。
瑞氏染色使用吉姆萨染色（Giemsa stain）或艾因染色（Ehrlich stain）方法。
在吉姆萨染色中，可以使用不同的吉姆萨组合来改变细胞或染色体染色的颜色。
在艾因染色中，使用配制艾因染液进行染色。
两种方法的染色时间和温度也有所不同。
在染色过程中，需要控制好样本的染色时间和温度，以避免染色过度或过轻。
4.显微镜观察：经过染色后，制片需要用显微镜观察。
观察时要准确、认真、耐心、细致。
需要注意的是，显微镜的放大倍数和焦距要调整到合适的位置，以获得清晰的细胞或染色体图像。
5.结果分析：根据显微镜观察得到的图像，可以对样本进行分析和判断。
主要从细胞形态、染色体数量和形态、染色体变异等方面进行评估，并与常模比较，以便对生物样本进行分类、鉴定和研究。
总的来说，瑞氏染色是一种简单、常用的染色技术，适用于细胞、组织和生物样本的研究。
操作过程中需要注意样本处理、制片、染色、显微镜观察和结果分析等关键步骤。
只有仔细、细致地操作，才能获得高质量的实验数据。
瑞氏-姬姆萨染液使用说明
瑞氏-姬姆萨染液编码名称规格单位北京华越洋生物GT79355 瑞氏-姬姆萨染液100ml 瓶瑞氏-姬姆萨染液说明：华越洋瑞氏-姬姆萨染液是一种复合染液，兼有瑞氏和姬姆萨染液二者优点，主要应用于血液和骨髓涂片染色。
各种细胞及细胞的各种成分由于其化学性质不同，对瑞氏-姬姆萨染色液中的酸性染料和碱性染料的亲和力也不同，因此，标本涂片经瑞氏-姬姆萨染色液染色后，相应各类细胞呈现不同的着色，从而达到辨别其形态特征的目的。
姬姆萨染色液对胞浆着色力较强，能较好的显示胞浆的嗜碱性程度，着色清晰，色泽纯正，但是对胞核着色偏深,核结构显示较差。
瑞氏染色对细胞核着色程度适中，细胞核结构和色泽清晰艳丽，对核结构的识别较佳，但对胞浆着色较差，故采用瑞氏姬姆萨混合染色，具有染色效果好，对比清晰，操作简便等特点。
瑞氏-姬姆萨染液操作说明：华越洋瑞氏-姬姆萨染液可作为多种组织或细胞的染色使用，不同组织、细胞，不同的用途可以有不同的使用方法。
具体方法请根据自己需求参考既有文献，瑞氏-姬姆萨染液以涂片为例，仅供参考。
1、取涂片、自然干燥。
2、滴加瑞氏-姬姆萨染液2-3 滴覆盖整个标本涂片，染1-2 分钟。
3、滴加等量0.01M磷酸盐缓冲液（pH6.4-6.8），轻轻晃动玻片, 与瑞氏-姬姆萨染色液充分混匀，染色3-5 分钟。
4、水洗、吸干、镜检。
5、染色后胞浆和胞核的染色清晰分明，细胞核着色呈深浅不同的紫红色，胞浆呈浅红色，胞浆中颗粒区分明显。
瑞氏-姬姆萨染液注意事项：1、涂片厚薄适宜，涂片干透后固定，否则细胞在染色过程中容易脱落。
2、所加染液不能过少，以免蒸发而使染料沉淀。
冲洗时间不能过久，以防脱色。
3、染色对pH 十分敏感，稀释染液必须用缓冲液，冲洗用水应接近中性，否则可能会导致细胞染色异常，形态难以识别，甚至错误。
4、染色过淡可以复染，复染时应先加缓冲液，然后加染液。
染色过深可用流水冲洗或浸泡，也可用甲醇脱色。
瑞氏-姬姆萨染液相关染色液：名称规格名称规格中性红染色液(0.33%）500ml结晶紫水溶液(0.1%)100ml中性红染色液(0.5%）500ml核固红染色液(0.1%)100ml中性红染色液(0.1% 常规染色)100ml天狼星红染色试剂盒2*50mLTTC染色液（0.4%）500ml0.5%伊文斯蓝/埃文斯蓝溶液100mLMasson三色染色试剂盒7×50ml茜素红S染色液(1%,pH4.2)100mL普鲁士蓝染色试剂盒2*50ml0.2%核固红染色液100ml尼氏染色液(焦油紫法)2*100ml改良Lillie-Mayer苏木素染色液100ml吕氏碱性美蓝染色液（0.4%）100ml改良Lillie-Mayer苏木素染色液500ml亮绿SF染色液100ml Ehrlich苏木素染色液100ml溴甲酚绿-甲基红指示剂溶液100ml Ehrlich苏木素染色液500ml饱和油红O染色液100ml苏木素伊红混合染色液(一步法)100mlVan Gieson 染色液50ml苏木素伊红混合染色液(一步法)500mlVan Gieson 染色试剂盒3×50ml改良Harris苏木素染色液100mlSchiff试剂50ml改良Harris苏木素染色液500ml茜素红S染色液（0.2%）100ml Mayer苏木素染色液100ml煌焦油蓝染色液100ml Mayer苏木素染色液500ml2% TTC染色液100ml苏木素伊红(HE)染色液2×100ml革兰氏染色液试剂盒4×10ml苏木素伊红(HE)染色液2×500ml醋酸洋红染色液100ml Core苏木素染色液100ml姬姆萨原液100ml Core苏木素染色液500ml姬姆萨工作液100ml Carazzi苏木素染色液100ml瑞氏-姬姆萨复合染液100ml Carazzi苏木素染色液500ml瑞氏染液50ml Delafield苏木素染色液100ml结晶紫染色液(2.5%)10ml Delafield苏木素染色液500ml结晶紫染色液(1%)10ml Gill苏木素染色液(Gill No.1)100ml结晶紫染色液(0.1%)10ml Gill苏木素染色液(Gill No.1)500ml荚膜染色液（试剂盒）50ml×2Gill苏木素染色液(Gill No.2)100ml芽孢染色液（试剂盒）50ml×2Gill苏木素染色液(Gill No.2)500ml鞭毛染色液（试剂盒）100ml Gill苏木素染色液(Gill No.3)100ml石炭酸复红染液(苯酚品红染液)100ml Gill苏木素染色液(Gill No.3)500ml改良型石炭酸复红染液(苯酚品红染液)100ml Heidenhain铁苏木素染色液3×100ml 抗酸染色液（试剂盒）50ml×3天青石蓝苏木素染色液2×50ml 吕氏碱性美蓝染色液（0.1%）100ml改良MacConaill铅苏木素染色液140ml卢戈碘液（革兰氏染色）10ml苏木素无水乙醇溶液(5%)100ml番红染色液（沙黄）10ml苏木素无水乙醇溶液(10%)100ml卢戈碘液（标准碘液）100ml伊红染色液(进口水溶)100ml Mayer'苏木素染液(免疫组化)10ml伊红染色液(进口水溶)500ml HE染色液(试剂盒)3×10ml伊红染色液(水溶)100ml Cole氏苏木素染色液(常规染色)100ml伊红染色液(水溶)500ml Weigert苏木素染色液2×50ml伊红染色液(水溶,5%)100ml AB-PAS染色试剂盒50ml*6伊红染色液(醇溶)100ml糖原PAS染色液（过碘酸-雪夫染色液）50ml×2伊红染色液(醇溶)500ml糖原PAS染色液试剂盒（过碘酸-雪夫染色液）50ml×4Scott蓝化液500ml伊红染色液100ml氨水溶液(0.1%)500ml标准阿利新蓝染色液3×50ml氨水溶液(0.3%)500ml阿利新蓝染色液(pH2.5)100ml氨水溶液(0.5%)500ml阿利新蓝染色液(pH=1.0)（试剂盒）3×50ml氨水溶液(1%)500ml碱性品红乙醇溶液(5%)100ml天青石蓝B染色液50ml碱性品红水溶液(1%)100ml天青石蓝B染色液100ml。
瑞氏染液使用说明
瑞氏染液使用说明货号：G1040规格：50ml/100ml保存：室温避光保存，有效期至少2年。
产品说明：瑞氏染料是由碱性染料美蓝（Methvlem blue）和酸性染料伊红（Eostm Y）组成的复合染料，溶于甲醇。
伊红通常为钠盐，有色部分为阴离子。
美蓝通常为氯盐，有色部分为阳离子。
甲醇的作用：一是溶解美蓝和伊红，使其解离为有色美蓝正离子的和伊红负离子。
后两者可以选择性地吸附于血细胞内的不同成分而使其着色；二是固定细胞形态，加速染色反应，增强染色效果。
使用方法：本产品可作为多种组织或细胞的染色使用，不同组织、细胞，不同的用途可以有不同的使用方法。
具体方法请根据自己需求参考既有文献，本产品以涂片为例，举例说明，仅供参考。
1、取涂片、自然干燥。
2、滴加瑞氏染液染3分钟,使标本被其中甲醇所固定。
3、加等量PH6.4的磷酸盐缓冲液(或等量超纯水)轻轻晃动玻片,与瑞氏染色液混匀，静置5分钟。
4、水洗、吸干、镜检。
5、细菌染成蓝色，组织细胞胞浆红色，细胞核蓝色。
注意事项：1、涂片厚薄适宜，涂片干透后固定，否则细胞在染色过程中容易脱落。
2、所加染液不能过少，以免蒸发而使染料沉淀。
冲洗时间不能过久，以防脱色。
3、染色对pH十分敏感，稀释染液必须用缓冲液，冲洗用水应接近中性，否则可能会导致细胞染色异常，形态难以识别，甚至错误。
4、染色过淡可以复染，复染时应先加缓冲液，然后加染液。
染色过深可用流水冲洗或浸泡，也可用甲醇脱色。
相关试剂：P210010×多聚赖氨酸G1010姬姆萨染色液G1100伊红染色液G1140苏木素染色液(常规染色)G1120H-E染色试剂盒。
瑞氏-姬姆萨复合染色液使用说明
瑞氏-姬姆萨复合染色液使用说明货号：G3990保存：室温避光保存，有效期至少2年。
产品内容：2×100ml2×500ml Storage 试剂(A):Wright-Giemsa Stain100ml500ml RT避光试剂(B):磷酸盐缓冲液100ml500ml RT产品说明：瑞氏色素是酸性染料伊红(Eosin)和碱性染料亚甲蓝(Methylene Blue)组成的复合染料，对原生质的染色有很好的区别作用。
吉姆萨染液由天青Ⅱ与伊红混合而成，染色原理和结果与瑞氏染色法基本相同，姬姆萨染色液对胞浆着色力较强，能较好的显示胞浆的嗜碱性程度，特别对血液和骨髓细胞中的嗜天青、嗜酸性、嗜碱性颗粒，着色清晰，但是对胞核着色偏深，核结构显色不佳，常与故姬姆萨染液常与瑞氏染液联合使用。
Wright-Giemsa Stain以进口瑞氏色素和姬姆萨色素为主要原料，通过研磨配制而成，能呈现出清晰的细胞染色效果。
经常用于血液和细胞涂片、骨髓细胞涂片、细菌染色。
细胞质呈红色，细胞核及细菌呈蓝色，嗜酸性颗粒呈橘红色。
染液中加中性甘油，防止甲醇挥发或氧化，同时也可使血细胞染色较清晰。
该染液的特点：由瑞氏-姆姆萨复合染色液和磷酸盐缓冲液组成，等量混合使用或分别处理标本使用。
使用方法(仅供参考)：1、常规方法制备血液涂片或骨髓涂片或细菌涂片，待涂片自然干燥。
2、将血液涂片或骨髓涂片置于染色架上。
3、滴加适量Wright-Giemsa Stain覆盖涂片，室温染色1～2min。
4、涂片滴加等量磷酸盐缓冲液，轻轻晃动玻片或采用其他方式混合，使磷酸盐缓冲液不Wright-Giemsa Stain混匀，室温静置3～10min。
5、步骤3、4亦可以采用如下方法:取Wright-Giemsa Stain和磷酸盐缓冲液等量混合，即为Wright-Giemsa工作液，滴加该工作液于血液涂片或骨髓涂片上，室温静置3～10min。
瑞士-染色方法
瑞士-吉姆萨染色液使用方法
磷酸缓冲液1ml,蒸馏水9ml混匀即可使用。
工作液一般临时配置。
1：玻片上血膜下面过酒精灯几次干透后，加染色液2-3滴覆盖全膜；
2：约30-120秒钟，滴加缓冲液（染液与缓冲液的比例，血片为1:1.5）；
3：混匀后染色3-5分钟；
4：自来水冲洗数秒钟，静置待玻片干后滴香柏油镜检。
检查标准：
淋巴母细胞的形态：胞体比正常细胞大3～4倍，呈圆形或椭圆形，胞浆常有伪足突出，染色淡蓝，常有空泡，泡核增大，核质疏松，常呈细丝网状结构，可见核分裂现象；过渡型淋巴细胞的形态：介于上述母细胞与正常淋巴细胞之间，体积稍大，多在12～15μm，胞浆稍多，淡蓝色，核大于正常细胞，核质疏松。
注意和正常淋巴细胞的区别：淋巴细胞呈球形，平均直径10μm。
小淋巴细胞核大，呈圆形或卵圆形，有时核的一侧有缺陷，呈豆形，染色质粗大，细胞质很少，嗜碱性，核周围的细胞质常有淡染晕。
试验数据处理淋巴细胞的转化率以百分率计算，即：
转化率=活化细胞数/（活化细胞数+未转化细胞数）×100%。
瑞氏吉姆萨染色步骤
瑞氏吉姆萨染色步骤瑞氏吉姆萨染色是一种常用的细胞染色技术，它能使细胞的形态、结构和功能等方面的信息得到更加清晰的展现。
下面将介绍瑞氏吉姆萨染色的步骤。
一、制备细胞涂片首先需要制备细胞涂片，即取一定数量的细胞，将其分布均匀地涂在载玻片上。
制备细胞涂片时需要注意，要使细胞分布均匀，不要有过多的交叉和重叠现象。
二、固定细胞细胞涂片制备好后，需要进行固定。
固定的目的是防止细胞在染色过程中失去其原有形态和结构。
固定液可以用4%的乙醛或乙醇，也可以用甲醛进行固定。
三、染色在固定液起作用后，需要进行染色，这是瑞氏吉姆萨染色的核心步骤。
染色液的配方为：甲基绿、甲基红和亚甲蓝各1克，乙酸1毫升，蒸馏水100毫升。
将染色液滴在细胞涂片上，静置10-15分钟。
四、洗涤染色液静置后，需要用蒸馏水进行洗涤。
洗涤的目的是去除多余的染料和固定液。
五、脱水洗涤完成后，需要将细胞涂片进行脱水。
脱水的目的是使细胞涂片逐渐失去水分，加强细胞涂片的硬度和稳定性。
脱水可以用70%、80%、95%和绝对酒精进行，每种酒精浸泡时间为2-3分钟。
六、透明化脱水后，需要进行透明化处理。
透明化的目的是使细胞涂片变得透明，方便观察和保存。
透明化液可以用苯酚、苯酚-氯酸-甘油溶液等。
七、封片透明化完成后，需要进行封片，即用封片胶封住细胞涂片。
封片胶可以用环氧树脂或丙烯酰胶进行。
总结瑞氏吉姆萨染色是一种常用的细胞染色技术，能够使细胞形态、结构和功能等信息得到更加清晰的展现。
其步骤包括制备细胞涂片、固定细胞、染色、洗涤、脱水、透明化和封片。
不同的步骤需要注意不同的细节，只有每个步骤都严格按照要求操作，才能得到满意的染色结果。
姬姆萨染色液(10×Giemsastain)说明书
姬姆萨染色液(10×Giemsastain)说明书
本产品仅供体外研究使用，不得用于临床诊断
产品简介：
血液和细胞涂片、细菌、染色体显带、原生动物寄生虫等染色细胞核呈紫红色或蓝紫色,胞浆呈粉红色。
含10×磷酸盐缓冲液,1:1:8稀释后使用,但磷酸盐缓冲液稀释后即配即用,不易保存。
姬姆萨色素(又称吉姆萨色素)是由天青Ⅱ与伊红混合而成，Giemsa染色原理和结果与瑞氏染色基本相同，姬姆萨染色液对胞浆着色力较强，能较好的显示胞浆的嗜碱性程度，特别是对血液和骨髓细胞中的嗜天青、嗜酸性、嗜碱性颗粒，着色清晰，但是对胞核着色偏深,核结构显色不佳，故姬姆萨染液常与瑞氏染液联合使用。
Giemsa Stain以进口的姬姆萨色素、甲醇为主要原料，含特有衬染剂，经研磨配制而成，能呈现出清晰的细胞染色效果，
经常用于组织切片、血液和细胞涂片、细菌、染色体显带、原生动物寄生虫等染色。
嗜酸性颗粒为碱性蛋白质，与酸性染料伊红结合，染粉红色，称为嗜酸性物质；细胞核蛋白和淋巴细胞胞浆为酸性，与碱性染料美蓝或天青结合，染紫蓝色，称为嗜碱性物质；中性颗粒呈等电状态与伊红和美蓝均可结合，染淡紫色，称为中性物质。
瑞氏-吉姆萨染液配法
英文拼写 Wright's stain是由酸性染料伊红和碱性染料美蓝组成的复合染料，溶于甲醇。
后解离为带正电的美蓝和带负电的伊红离子。
使用方法瑞氏（Wright's staim；美蓝－伊红Ｙ）染色：1．瑞氏染料是由碱性染料美蓝（Methvlem blue）和酸性染料黄色伊红（Eostm Y）合称伊红美蓝染料即瑞氏（美蓝－伊红Ｙ）染料。
2．用甲醇作瑞氏染料溶剂，即成瑞氏染液。
甲醇是瑞氏染料良好溶剂，有两种作用：（1）甲醇使瑞氏染料中美蓝（M）与伊红（E）在溶液中离解，可使细胞成分选择性吸附其中的有色物质而着色。
甲醇ME（瑞氏染料）----→M+ + E-在配制的瑞氏染液中美蓝如放置过久即可氧化而含有天青，美蓝天青与伊红化合物能使核染成紫红色，但不能使胞浆染为蓝色，多余美蓝就可以使胞浆染成蓝色，染色主要是化学作用，是离子彼此结合的反应。
（2）甲醇具有强大的脱水力，可将细胞固定在一定形态及增加细胞结构的表面积，提高细胞对染料吸收作用，同时由于甲醇吸附染色液中的水，使染色液升温，加速染色反应。
染液配制(1) 瑞氏染液配制：瑞氏染料 830gm或1g甲醇（AR）500ml或600ml○先称干燥（事先放入温箱干燥过夜）瑞氏染料放置乳钵内，用乳棒轻轻敲碎染料成粉末，再行研磨至听不到研芝麻声即呈细粉末，加少许甘油或甲醇溶解研磨，使染料在乳缸内显“一面镜”光泽，而无染料粉粒沉着。
○再加较多量甲醇研磨呈一面镜光亮，静置片刻，将上层液体倒入一清洁储存瓶内（最好用甲醇空瓶），再加甲醇研磨，重复数次，至乳钵内染料及甲醇用完为止，摇匀，密封瓶口。
○存室温暗处，储存愈久，则染料溶解、分解就越好，一般储存3个月以上为佳。
(2) 缓冲液：●缓冲液作用：○染色对氢离子浓度是十分敏感的，据观察pH值的改变，可使蛋白质与染料形成的化合物重新离解。
○缓冲液须保持一定的pH使染色稳定，PBS的pH 一般在6.4~6.8，○偏碱性染料可与缓冲液中酸基起中和作用，偏酸性染料则与缓冲液中的碱基起中和作用，使pH恒定。
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瑞氏-姬姆萨染液使用说明
货号：G1020
规格：100ml/500ml
保存：室温避光保存，有效期至少2年。
产品说明：
瑞氏-姬姆萨染液是一种复合染液，兼有瑞氏和姬姆萨染液二者优点，主要应用于血液和骨髓涂片染色。
各种细胞及细胞的各种成分由于其化学性质不同，对瑞氏-姬姆萨染色液中的酸性染料和碱性染料的亲和力也不同，因此，标本涂片经瑞氏-姬姆萨染色液染色后，相应各类细胞呈现不同的着色，从而达到辨别其形态特征的目的。
姬姆萨染色液对胞浆着色力较强，能较好的显示胞浆的嗜碱性程度，着色清晰，色泽纯正，但是对胞核着色偏深,核结构显示较差。
瑞氏染色对细胞核着色程度适中，细胞核结构和色泽清晰艳丽，对核结构的识别较佳，但对胞浆着色较差，故采用瑞氏姬姆萨混合染色，具有染色效果好，对比清晰，操作简便等特点。
使用方法：
本产品可作为多种组织或细胞的染色使用，不同组织、细胞，不同的用途可以有不同的使用方法。
具体方法请根据自己需求参考既有文献，本产品以涂片为例，举例说明，仅供参考。
1、取涂片、自然干燥。
2、滴加瑞氏-姬姆萨染液2-3滴覆盖整个标本涂片，染1-2分钟。
3、滴加等量PH6.4的磷酸盐缓冲液(或等量超纯水)，轻轻晃动玻片,
与瑞氏-姬姆萨染色液充分混匀，染色3-5分钟。
4、水洗、吸干、镜检。
5、染色后胞浆和胞核的染色清晰分明，细胞核着色呈深浅不同的紫红色，胞浆呈浅红色，胞浆中颗粒区分明显。
注意事项：
1、涂片厚薄适宜，涂片干透后固定，否则细胞在染色过程中容易脱落。
2、所加染液不能过少，以免蒸发而使染料沉淀。
冲洗时间不能过久，以防脱色。
3、染色对pH十分敏感，稀释染液必须用缓冲液，冲洗用水应接近中性，否则可能会导致细胞染色异常，形态难以识别，甚至错误。
4、染色过淡可以复染，复染时应先加缓冲液，然后加染液。
染色过深可用流水冲洗或浸泡，也可用甲醇脱色。
相关试剂：
P210010×多聚赖氨酸
G1010姬姆萨染色液
G1040瑞氏染液
G1100伊红染色液
G1140苏木素染色液(常规染色。