实验十三 失血性休克模型的复制及治疗
家兔的失血性休克及其抢救
机能学实验报告家兔的失血性休克及其抢救摘要：【目的】：复制家兔失血性休克的动物模型；了解失血性休克的抢救，并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。
【方法】：采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型，将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。
【结果】：短时间内的少量的失血是可以恢复；大量失血是不可恢复的；自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。
【结论】：短时间少量失血机体是处于代偿期的，较长时间的大量失血机体已处于失代偿期，而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
关键词：失血性休克；代偿期；失代偿期引言：休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
失血导致血容量减少是休克常见的原因。
1、实验材料1.1实验动物：家兔；1.2实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；1.3实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2、实验步骤2.1.系统连接和参数设定将血压换能器接生物信号采集系统2通道。
启动RM6240系统，关闭其他通道，2通道模式为血压，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度100ml/s；采样频率800Hz。
2.2. 麻醉手术家兔称重，以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入200g/L氨基甲酸乙酯麻醉。
将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头，行气管插管手术，左侧颈总动脉，右侧颈外静脉，股动脉。
输液瓶充满一定量的生理盐水，静脉插管接输液装置，调节输液量至5～10滴/min。
股动脉插管的导管连接已肝素化的50ml注射器。
2.3. 颈部手术2.3.1. 备皮：左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）2.3.2. 切开皮肤：术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。
家兔失血性休克实验报告【失血性休克及其抢救实验报告】
2.2 仪器调试：在菜单中选择“血压〞。
下方做一“V〞型斜口，向心脏方向插入静脉插管，用已穿好的丝线扎紧
双击一通道，调整增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕 ZY， 插入管尖嘴部分稍后处，并以远心端丝线将插管缚紧固定，结扎血管同时
便于观看。
防插管从插入处滑出，静脉插管胜利后马上开始输液，并将输液速度调慢。
1.2 试验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；
13.5ml 由兔耳缘静脉内缓慢注入，留意观看家兔的反应。待麻醉后，将
1.3 试验仪器：铁架 XX，婴儿秤，RM6240 生物信号采集系统，手术剪 家兔仰卧固定于兔手术 XX 上，先后固定四肢及兔头。(以上步骤在做血压
1 把，止血钳，镊子，兔手术 XX，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血 调整因素时已完成)
Key Word】Shock; Uncontrolled hemorrhgic shock; microcircultion 1 试验材料
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1.1 对象：家兔 2.7kg；
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2.3 麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以 5ml/kg 的体重剂量
microcomputer biologicl signl cquisition nd processing system, the fourth chpter niml experiment technology. 3. The result: few bloodletting, blood pressure nd breth of decline, but in short time, rebounded, lrge bloodletting (45 ml), blood pressure, respirtory decline fster nd self recover cpcity reduction; Intrvenous tretment mesures for blood trnsfusion, roughly returned to norml. 4. Conclusion: smll mount of blood, the bodys own compenstory function cn mke blood pressure returned to norml; Excessive blood loss, the body will hppen decompensted role; The blood trnsfusion intrvenous tretment, blood pressure my restore bsic norml.
家兔失血性休克及其抢救实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。
实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。
实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。
结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。
实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。
实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。
实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。
其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。
结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。
失血性休克及其恢复
实验失血性休克及其恢复一、实验目的复制兔失血性休克模型，观察家兔在失血性休克时的表现及微循环变化，探讨失血性休克的发生机制。
了解失血性休克及其抢救。
二、实验材料家兔2.6kg 血压换能器、生物信号采集系统、注射器、氨基甲酸乙酯、生理盐水、微循环灌流器、肝素三、实验方法1、系统连接及参数设定启动RM6240系统，在“实验”菜单中选择“动脉血压的神经调节”，观测血压变化2、麻醉手术家兔称重，按5ml/kg体重剂量由耳缘静脉注射氨基甲酸乙酯。
共注射18ml。
将麻醉后的家兔仰卧位固定在兔台上，寻找左右颈总动脉及左颈总静脉。
实行动脉和静脉插管术。
左颈总动脉连接血压换能器，左颈总静脉连接生理盐水输液器，调整输液至5~10滴/分。
右颈总动脉连接已经肝素化的50ml注射器。
3、少量放血打开右颈总动脉的动脉夹，缓慢抽血，观察10分钟的心律、血压、呼吸的变化。
4、大量放血在少量放血10分钟后，按14~18ml/kg体重的量放血。
放血时间约10分钟，使动脉血压维持在1.5kpa左右。
如血压回升，继续放血。
5、失血性休克抢救将注射器内的血液注入右颈总静脉。
输血后观察血压、心律、呼吸的变化。
然后再输入生理盐水（60~100滴/分）进行抢救，直至各项生理指标恢复正常。
四、实验观察1、放血前家兔的血压、呼吸、心率2、记录少量放血时的10分钟内以上指标3、记录大放血10分钟内以上指标4、输血输液后的以上指标五、实验结果第一次少量放血时,血压明显下降,随后在自身稳态调节下呈波动回升.第二次大量放血时,血压下降幅度明显,也呈波动回升,但整体上趋于稳定值,在放血后阶段血压不再回升.输血后血压迅速上升,接近正常值.输液对血压影响不大.六、实验讨论1、休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要器官发生严重障碍的全身性病理过程。
当机体失血量少于全身血量的10%时，机体可通过自身的代偿功能使血压和组织灌流量保持基本正常，当机体快速失血超过总血量的20%左右，血容量急剧减少，静脉回流不足，心输出量减少，血压降低。
家兔失血性休克(95)
机能实验：家兔失血性休克及其实验性治疗（此作业得分95分仅供参考）一、实验目的1、复制家兔失血性休克模型。
2、观察失血性休克时和抢救过程中家兔各项观察指标变化并探讨发生机制。
二、实验原理失血会导致血容量减少，是休克的常见病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减超过总血量的25-30%，超出机体的代偿能力时，即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。
对于失血性休克的治疗，首先是强调止血和补充血容量，以提高有效循环血量和心排血量，改善组织灌流。
除此之外，可根据休克的不同发展阶段合理使用血管活性药物，改善微循环，必要时可给予抗炎等治疗。
三、实验材料1.实验动物：家兔（体重2.0kg以上）。
2.器材与药品：兔手术台，手术器械一套，注射器，动脉导管，静脉导管，三通管，气管插管，输液装置，丝线，体温计，木夹，压力换能器等。
25%乌拉坦，肝素生理盐水，生理盐水等。
四、实验方法与步骤（一）手术操作1.称重、麻醉、固定：取家兔一只，称重后按5ml/kg的剂量自耳缘静脉20%的乌拉坦溶液麻醉。
麻醉完成后将家兔固定于手术台上。
2.分离气管、血管并插管：切开颈部正中皮肤4-5cm，分离皮下组织和肌肉，游离气管，然后作一倒T形切口，插入气管插管，连接呼吸换能器，描记呼吸曲线；游离左侧颈总动脉，插入颈动脉导管，连接压力换能器，描记血压曲线；游离右侧颈外静脉，插入静脉导管，连接压力换能器，描记中心静脉压曲线。
3.心电的描记：分别将白色、红色、黑色心电电极放置在动物的左后肢、右前肢和右后肢皮下，描记心电波形。
4.预先按1ml/kg的剂量，经颈外静脉输入肝素钠对家兔给予肝素化处理。
（二）休克模型复制1.打开三通开关，使血液从颈总动脉流入含少量肝素抗凝的注射器内。
先缓慢放血20ml，观察血压变化情况；再次放血10ml，观察血压变化情况，直至平均动脉压降低至约40mmHg。
然后观察一段时间，若血压回升至45mmHg以上，则再次抽血，直至平均动脉压可维持在40mmHg达10min以上。
失血性休克试验
失血性休克实验实验性失血性休克【目的】了解失血性休克动物模型的复制方法；观察失血性休克时的主要体征及血流动力学变化特点；探讨失血性休克的发病机理及救治措施。
【原理】根据微循环学说，休克定义为各种原因引起有效循环血量减少，微循环灌流障碍，引起重要生命器官血液灌注不足，从而导致细胞功能紊乱的全身性病理过程。
休克的病因有多种，本实验采用颈动脉放血的方法，直接减少有效循环血量，复制低血容量性休克模型。
由于放血一定程度后可使循环血量不足，静脉回心血量减少，血压下降，通过压力感受器反射，引起交感神经兴奋，外周血管收缩，组织灌流量急剧减少，导致失血性休克。
通过输液，补充血容量，抢救休克，同时使用不同血管活性药物，比较其疗效，分析它们在失血性休克治疗中的作用。
【器材】BL-420生物机能实验系统，压力换能器两套，张力换能器一套，动物实验手术器械一套，静脉输液装置一套，尿量测定装置一套，10ml量筒一个，注射器（2ml、5ml、10ml、30ml），兔台，婴儿秤。
【药品】20%乌拉坦溶液，0.9%生理盐水，1%肝素生理盐水，1%去甲基肾上腺素，10%葡萄糖水注射液。
【动物】家兔。
【观察指标】动脉血压（Bp，mmHg）、中心静脉压（CVP ，mmHg）、呼吸（频率、深度）、尿量。
【方法】1.手术操作(1)家兔称重后，腹腔注射20%乌拉坦(5ml/kg)进行麻醉，将动物仰卧固定在实验台上，颈部和腹部剪毛备皮；(2)从甲状软骨至胸骨切迹之间切开颈部正中皮肤，切口长度约5cm；(3)翻开右侧皮肤，见颜色暗红且较粗大的颈外静脉。
由于静脉血管壁很薄且不易与筋膜区分，应使用血管钳沿血管走行方向小心钝性分离，将血管外层筋膜分离干净。
分离出约2～3cm左右的右侧颈外静脉后，穿双线备用。
(4)在气管左侧胸骨舌骨肌和胸锁乳突肌之间钝性分离，其深层即可见颈动脉鞘，触之有明显搏动感。
以血管钳仔细分离出左侧颈总动脉(注意：勿损伤迷走神经)，穿双线备用(图 1 )。
机能学实验病理生理学部分-家兔失血性休克及其实验性治疗实验报告
实验报告9 家兔失血性休克及其实验性治疗评分实验目的：家兔失血性休克模型的制备并观察其表现，了解高晶高胶液体对家兔失血性休克的疗效并探讨其机制。
实验原理：采用对家兔股动脉处放血的方法，10min内使MAP（平均动脉压）降至5.33kPa （40mmHg），并维持20 min，此时放血量已经达到20%以上，复制失血性休克的动物模型，利用解剖显微镜动态观察肠系膜微循环血流动力学的改变，再采用高晶高胶液进行扩容治疗，观察其对家兔失血性休克的治疗作用。
实验动物：家兔，2-3kg实验设备与试剂：动物秤，哺乳动物手术器械，储血瓶，烧杯，注射器(20ml，10ml，5ml)，血压换能器，呼吸换能器，生物信号采集系统，体温计，针头，血管插管，动脉夹，输液装置，棉线若干，纱布。
25%乌拉坦，肝素，生理盐水，微循环灌流液，7.5%氯化钠与6%低分子右旋糖酐混合液（即高晶高胶液）。
实验步骤：1、分组：生理盐水治疗组、高晶高胶液治疗组。
2、取正常家兔，称重后于耳缘静脉注射25%乌拉坦（4ml/kg体重），使家兔全身麻醉。
3、将实验兔固定于操作台，颈部备皮，手术暴露气管和颈总动脉，分别与呼吸描记装置和压力传感器连接，使用生物信号采集与分析系统记录MAP、Ps-d、HR。
4、在左侧股三角区域触及股动脉后，沿动脉行走方向做长约2cm的切口，插入长度约为40cm股动脉导管至下腔静脉入右心房处，插入深度约为20cm，导管外端连接三通管，一侧同输液瓶相连后，缓缓输入生理盐水（5-8d/min）以保持导管及静脉通畅，一侧经压力传感器与生物信号采集与分析系统连接，记录CVP。
5、在剑突下方1.5cm处向下沿正中线做长约5cm的腹正中切口，沿腹白线打开腹腔，找出一段游离度较大的小肠肠袢，轻轻拉出，置于微循环灌流盒内，用解剖显微镜观察肠系膜微循环情况。
6、将温度计插入直肠，测体温。
7、记录各项指标后，降低储血瓶，松动动脉夹，快速从左股动脉放血，10min内使MAP 降低至40mmHg，并维持20min，记录各项指标及储血瓶内血量。
失血性休克及其抢救模拟实验
失血性休克及其抢救模拟实验【摘要】目的：复制兔失血性休克模型。
观察兔在失血性休克时的表现及循环变化，探讨失血性休克的发生机制及救治方法。
了解失血性休克抢救。
方法：第二章微机生物信号采集处理系统，第四章动物实验技术。
结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（45ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。
结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。
【关键词】休克；失血性休克；微循环【Abstract】To copy rabbit model of hemorrhagic shock. Rabbits in hemorrhagic shock performance and cycle time, and to explore the mechanism of hemorrhagic shock. Understanding of hemorrhagic shock treatment. Methods Chapter biological signal acquisition and processing computer system, Chapter animal technology. The results of a small amount of bleeding, therabbits decreased blood pressure and breathing, but recovered in a short time; when a large number of blood (45ml), blood pressure, breathing down faster and lower self-recovery capability; for blood transfusion and other treatment measures, generally back to normal. Conclusion small loss of blood, the body's own compensatory role can make blood pressure returned to normal; loss of blood, the role of local experience decompensation occurred; by blood transfusion and other treatment, blood pressure was normal resume【Keywords】Shock; hemorrhagic shock; microcirculation【引言】家兔的生理构造与人相似，而我们总好奇什么时候我们会发生失血性休克并如何抢救，所以我们将利用家兔来探讨发生失血性休克的原因和具体抢救方法。
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实验十三失血性休克模型的复制及治疗【实验目的】
1.复制失血性休克的动物模型。
2.观察失血性休克发生前后动物症状体征变化。
3.探讨失血性休克的发病机制熟悉休克的治疗措施。
【实验原理】
休克是多种原因引起的急性微循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身病理过程。
休克的病因有许多种，本实验采用股动脉放血的方法，直接减少有效循环血量，复制低血容量性休克模型。
由于放血一定程度后可使循环血量不足，静脉回心血量减少，血压下降，通过压力感受器反射，引起交感神经兴奋，外周血管收缩，组织灌流量急剧减少，导致失血性休克。
通过输液，补充血容量，同时使用不同血管活性药物，抢救休克。
【实验材料】
1.实验对象家兔。
2.实验器材BL-420生物机能实验系统，手术器械一套，气管插管，动脉插管，股动脉插管，呼吸流量换能器。
3.实验药品20%乌拉坦，1%肝素，生理盐水。
【实验步骤】
1.取家兔1只，称重，从耳缘静脉注射20%乌拉坦5ml/kg进行麻醉，将家兔仰卧位固定于兔台上，用剪刀剪去颈部及下腹部的被毛，注意勿伤及皮肤。
2.做颈部手术，分离气管并插管，连接呼吸流量换能器，记录呼吸
曲线。
右侧颈外静脉分离并插管用于输液。
再做颈总动脉插管，用于描记动脉血压。
3.分离股动脉进行插管，放血的途径。
4.肝素化从耳缘静脉注射1%肝素2ml/kg。
5.松开动脉夹，从股动脉处缓慢放血，速度小于2ml/min，放血量约为全血的1/10，家兔的全血量按70～80ml/kg来计算，边放血，边观察血压的变化。
继续放血，当放血量约为全血量1/5～1/4，血压稳定在30～40mmHg之间，维持10～15min，观察动物各项生理指标的改变。
6.根据失血性休克的病理生理变化，按休克发病学的防治原则进行纠酸、扩容、应用血管活性药物及防治细胞损伤等治疗，自行设计抢救方案，观察并比较各项救治措施后血压和微循环的变化。
①建立耳缘静脉通路，5%葡萄糖生理盐水输液（输液量应根据失血量自行确定）。
②血液回输注射器内的血液快速从颈外静脉输回。
③去甲肾上腺素0.5mg去甲肾上腺素溶于25ml生理盐水中，静脉滴注（30min输完），与放血前所测得的收缩压高度作比较。
④654-2 2mg654-2溶于25ml生理盐水中，静脉滴注（30min输完），观察血压和微循环的变化。
⑤待抢救恢复后，结扎右侧迷走神经，在结扎处远心端剪断迷走神经，观察血压有何变化？刺激右侧迷走神经外周瑞，观察血压有何变化？
⑥处死动物耳缘静脉注射空气。
【注意事项】
1.保护耳缘静脉，注射时应从耳尖部进针，如不成功．再向耳根部移位。
2.实验过程中，均需保持动脉插管与血管平行，以免刺破血管。
3.本实验手术操作多，应尽量减少手术性出血和休克。
如失血过多时可先插颈外静脉或耳缘静脉输液。
【结果分析】
休克的发生、发展一般要经历微循环缺血期、微循环淤血期和微循环衰竭期三个时期。
在休克早期，各种原因引起交感-肾上腺髓质系统兴奋，儿茶酚胺大量释放，皮肤、腹腔内脏、肾小管上的α受体结合，使这些脏器微血管收缩，毛细血管前阻力明显升高，微循环灌流急剧减少。
动-静脉短路β受体结合，动-静脉吻合支开放，组织发生严重的缺血性缺氧。
病情继续发展，进入淤血缺氧期，由于长时间缺血缺氧，引起组织氧分压下降，二氧化碳、乳酸堆积，发生酸中毒，导致平滑肌对儿茶酚胺的敏感性下降，局部血管扩张，代谢产物增多，如组织胺释放增多，腺苷增多，钾离子增多，这些物质都可以造成血管扩张，微循环血管床大量开放，血液淤滞，有效循环血量减少，回心血量减少，心输出量和血压进行性下降。
家兔正常收缩压为105mmHg（14kPa）左右，本实验使家兔失血收缩压降至40 mmHg时，相当于中、重度休克状态。
中度失血性休克时，血容量锐减，血压下降，交感神经张力反射性增高，继而出现心率和呼吸加快；而重度休克时血压进一步下降，心、肺功能抑制，可出现心率减慢、呼吸困难和压力反射消失等现象。