细胞培养总结
细胞培养员个人工作总结
细胞培养员个人工作总结作为一名细胞培养员，我在过去一年中取得了许多进展和成就。
通过我的努力和专业知识，我对细胞培养的技术和操作有了更深入的了解，也使我在实验室工作中变得更加熟练和有效率。
在这一年中，我参与了多个细胞培养实验项目的设计和实施。
我学会了如何选择合适的细胞培养基和添加剂，以及如何进行无菌操作和细胞传代。
我也积累了丰富的细胞培养实验经验，能够独立完成各种类型的培养细胞，包括肿瘤细胞、干细胞和原代细胞等。
除了实验室操作技能的提高，我还注重了实验室安全和环境卫生。
我始终保持实验室的整洁和无菌环境，定期进行设备消毒和清洁，确保实验过程的准确性和可靠性。
在日常工作中，我也注重团队合作。
我与实验室同事合作紧密，共同解决实验中出现的问题和挑战。
我积极分享自己的经验和见解，与大家一起不断提高工作效率和质量。
通过这一年的工作，我对细胞培养技术和实验室管理有了更深入的了解，也提升了我的综合实验能力和团队合作能力。
我将继续努力，不断学习和提高自己的专业水平，为细胞培养实验工作贡献力量。
作为一名细胞培养员，我深知自己的责任是保证实验室中的细胞培养工作顺利进行，以支持科学研究和生物医学领域的发展。
通过不断学习和实践，我逐步完善了自己的技能和知识体系，获得了丰富的实验经验和专业能力。
在实验室工作中，细胞培养技术是最基础也是最核心的技能之一。
我始终严格遵循无菌操作的标准，确保细胞培养过程中的无菌、洁净和可靠性。
我熟练掌握了细胞传代和培养基配制等操作技能，能够有效地处理不同类型细胞的培养需求。
在肿瘤细胞的培养中，我理解了细胞株的特性和应用，有效地控制了细胞培养的质量和稳定性。
除了技术和操作方面的提升，我也不断完善自己的理论知识，并一直关注行业动态和前沿技术。
我积极参加各类学术讲座和学术会议，结合实验室工作实际需求，不断学习和探究最新的细胞培养技术和方法。
我了解到了一系列先进的培养技术和细胞处理工具，如细胞冷冻和解冻技术、细胞分选技术等，这些技术的应用有助于提高细胞培养效率和保证细胞的生物学特性。
细胞培养毕业实习报告总结
毕业实习报告总结：细胞培养首先，我要感谢我的导师和实验室的同事们，他们在我的实习期间给予了我无私的帮助和指导。
通过这次实习，我对细胞培养这一领域有了更深入的了解，也积累了宝贵的实践经验。
细胞培养是生物医学和生物技术领域中重要的实验技术，它通过模拟细胞在体内的生长环境，使细胞在体外继续生长和繁殖。
在实习期间，我学习了细胞培养的基本原理和操作技术，包括细胞的复苏、传代、胰蛋白酶消化、细胞计数、铺板等步骤。
我也了解了细胞培养中常用的仪器设备，如二氧化碳培养箱、显微镜、细胞计数仪等。
在实习过程中，我不仅掌握了细胞培养的基本技能，还参与了一些具体的实验项目。
我参与了一项关于细胞凋亡的研究，通过细胞培养技术，我成功地培养了所需细胞，并进行了凋亡实验。
通过观察细胞形态的变化和流式细胞术的分析，我得出了实验结果，并协助导师进行了数据分析和论文撰写。
这个过程中，我不仅学习了实验设计和数据分析的方法，还提高了自己的实验操作能力。
在实习期间，我也遇到了一些挑战和困难。
例如，细胞培养过程中细胞的生长速度较慢，有时需要耐心等待。
另外，细胞的复苏和传代过程中，也有一些技巧需要掌握。
通过请教导师和同事，我逐渐克服了这些困难，并取得了较好的实验结果。
通过这次实习，我不仅学到了专业知识和技能，还锻炼了自己的团队合作和沟通能力。
在实验室中，我与同事们共同合作，互相学习和帮助。
我们也定期进行实验室会议，分享实验进展和心得体会，这让我感受到了团队合作的重要性。
总之，这次细胞培养实习是一次非常宝贵的学习经历。
我不仅掌握了细胞培养的基本技能，还参与了一些具体的实验项目，并取得了较好的研究成果。
同时，我也学会了团队合作和沟通的能力。
我相信这次实习对我未来的学术研究和职业发展将产生积极的影响。
细胞培养技术员工作总结
细胞培养技术员工作总结总结一细胞培养一.基本理论概论原代培养：也叫初代培养，指直接从体内取出的细胞、组织和器官进行的第一次的培养。
传代培养：将细胞从一个培养瓶转移到另外一个培养瓶即称为传代或传代培养。
细胞系：原代培养物成功传代后，则称之为细胞系。
（如细胞系的生存期有限，则称之为有限细胞系；已获无限繁殖能力能持续生存的细胞系，称连续细胞系或无限细胞系。
）细胞株：通过选择法或克隆形成法从原代培养物或细胞系中获得具有特殊性质或标志物称为细胞株。
培养类型：细胞培养，组织培养，器官培养。
细胞生长的方式：贴附生长，悬浮生长培养细胞的形态（形态不一定，环境改变形态可能改变）：成纤维性型细胞，上皮型细胞（单层膜样生长），游走性细胞（游散生长，常有伪足跟突起）二.培养过程及要点（切记无菌操作）（一）工作环境的处理1.实验进行前，无菌室及无菌操作台以紫外灯照射30-60分钟灭菌，以70%酒精擦拭无菌操作抬面，并开启无菌操作台风扇运转10分钟后，才开始实验操作。
每次操作只处理一株细胞株，且即使培养基相同亦不共享培养基，以避免失误混淆或细胞间污染。
实验完毕后，将实验物品带出工作台，以70%酒精擦拭无菌操作抬面。
操作间隔应让无菌操作台运转10分钟以上后，再进行下一个细胞株之操作。
2.实验用品以70%酒精擦拭后才带入无菌操作台内。
实验操作应在台面之中央无菌区域，勿在边缘之非无菌区域操作。
无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞，必要物品，例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置，其它实验用品用完即应移出，以利于气流之流通。
3.小心取用无菌之实验物品，避免造成污染。
勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口，亦不要在打开之容器正上方操作实验。
容器打开后，以手夹住瓶盖并握住瓶身，倾斜约45?角取用，尽量勿将瓶盖盖口朝上放置桌面。
吸管口切勿碰到容器瓶口4.工作人员应注意自身之安全，须穿戴实验衣及手套后才进行实验。
对于来自人类或是病毒感染之细胞株应特别小心操作，并选择适当等级之无菌操作台（至少Classll）。
细胞实验要点总结
细胞实验要点总结引言细胞实验是研究细胞生物学和分子生物学的重要手段之一，通过对细胞的培养、处理和观察，可以深入研究细胞的结构、功能和相互作用。
本文将总结细胞实验中的关键要点，包括细胞培养、细胞处理和细胞观察等方面，以便研究人员在进行细胞实验时能够正确操作并获得可靠的结果。
一、细胞培养细胞培养是细胞实验的基础，良好的细胞培养条件对实验结果的准确性和可重复性起着至关重要的作用。
以下是细胞培养的关键要点：1. 细胞的来源选择在进行细胞实验前，需要选择合适的细胞系。
常用的细胞系有Hela细胞、293T细胞等。
选择细胞系时应考虑细胞特性、来源及适应性等因素。
2. 细胞培养基的选择细胞培养基应选择适合细胞生长和实验需要的培养基，常用的细胞培养基有DMEM、RPMI-1640等。
培养基中应添加适量的培养基补充物，如胎牛血清(FBS)、青年公牛血清等。
3. 培养条件的控制在细胞培养过程中，需要控制好温度、湿度、CO2浓度等条件。
一般细胞培养箱内的温度保持在37摄氏度，湿度保持在95％左右，CO2浓度保持在5％。
4. 无菌操作细胞培养需要在无菌条件下进行。
操作前应做好消毒，并佩戴无菌手套、面罩等防护用品。
培养器具、培养基等都应进行预处理，并确认无菌后使用。
二、细胞处理细胞处理是细胞实验中的关键步骤，包括细胞的处理、转染、感染等。
以下是细胞处理的要点：1. 细胞处理方法选择根据实验的需要，选择合适的细胞处理方法，如细胞刺激、细胞转染、细胞感染等。
不同的方法对细胞的处理方式和处理时间有不同的要求。
2. 转染试剂的优化在进行细胞转染实验时，需要优化转染试剂的浓度和转染条件。
根据实验的需要，选择适当的转染试剂，并进行试剂浓度的调优实验。
3. 细胞处理时间控制在进行细胞处理时，需要控制好处理时间，避免处理时间过长或过短对细胞产生影响。
处理时间应根据实验的需要和细胞的特性来确定，一般根据先前的文献资料或进行预实验来确定最佳处理时间。
细胞培养技术总结
细胞的生长特点
体外培养的细胞，按其生长方式可分为贴壁型和 悬浮型。 贴壁细胞的主要代表是成纤维细胞，一般在接种 后24h内贴壁，刚开始时细胞多呈圆形，随贴 壁时间延长，逐渐伸展成梭形或多边形。传代 后的成纤维细胞12h开始贴壁，24h内完全贴壁。 上皮细胞型、游走细胞型和多形型都属于贴壁 型细胞。 悬浮型细胞包括血液白细胞和癌肿瘤细胞，不需 要附着于底物而于悬浮状态下生长良好。
四、细胞的冻存与复苏
• 细胞冻存和复苏的基本原则：慢冻快融， 可以最大限度的保存细胞活力。 • 目前细胞冻存多采用甘油或二甲基亚砜作 保护剂，这两种物质能提高细胞膜对水的 通透性，加上缓慢冷冻可使细胞内的水分 渗出细胞外，减少细胞内冰晶的形成，从 而减少由于冰晶形成造成的细胞损伤。 • 冻存的细胞浓度：正常人的成纤维细胞浓 度： 5×106~1×107细胞/ml
细胞生长的三个阶段
• 潜伏期 ：细胞接种后先悬浮在培养液中，此时细胞 质回缩，胞体呈圆球形，继续培养便开始贴壁， 24h内便可长满瓶壁。 • 对数生长期 ：细胞增殖最旺盛的时期，随细胞数量 不断增多，生长空间逐渐减少，最后细胞互相接触 汇成一片。 • 停滞期：细胞数量达到饱和密度之后，停止增殖， 细胞数量不再增加，但仍有代谢活动，因而培养液 中的营养逐渐耗尽，代谢产物积累，此时需要分离 培养即传代，否则细胞会中毒，发生形态改变或者 脱落死亡，故传代应在细胞长满瓶壁80%的时候传 代最好。
注：细胞培养液要贮存在4℃冰箱，避免光照， 试验前放入37℃水浴中温热。
加血清的高糖培养液存放期为六个月，期间 谷氨酰胺会分解，若细胞生长不佳，可以 再添加适量谷氨酰胺。 环境条件：95%空气和5%CO2 的气体； 温度：37℃
三、细胞的消化传代
成纤维细胞生长至高密度时，须分殖至新的培养瓶中， 一般稀释比例为1:3 至1:6。 1.PBS缓冲液、0.25%的胰蛋白酶和含10%的DMEM预先 放入37℃水浴中温热； 2.倒掉培养瓶内旧的培养液，加入4~6ml PBS缓冲液洗 涤残留培养液； 3.加入2~3ml胰蛋白酶，放入37℃ CO2孵箱中消化2~3 分钟，镜检观察，如有细胞间隙变大，细胞质回缩 现象，加入培养液终止消化。 4.用吸管轻轻吹打瓶壁，使细胞脱落制成悬液，加入 离心管中，800rpm离心5min； 5.倾去上清液，加少量培养液重悬细胞，计数后调整 细胞浓度为1×107 /ml，在新的或者灭菌好的培养瓶 加入6ml左右新鲜培养液，将调整好浓度的细胞液 滴入培养瓶中，混匀，做好标记，放入37℃ CO2孵 箱培养。隔天换液。
细胞培养心得
养了很久的细胞，有一些经验和体会总结一下，和大家分享一下。
关于如何把细胞养的形态很好更漂亮。
1.不同的细胞，喜欢的环境是不一样的。
这个不仅仅是说培养基的不同，还有就是细胞生长的空间密度问题。
有一些细胞是数量多一点比较好生长，生长状态也比较好。
这种一般是属于生长速度慢的细胞。
譬如内皮细胞。
而有一些是细胞是数量少一点细胞状态会生长的比较好，譬如巨噬细胞和某些肿瘤细胞。
尤其是巨噬细胞，生长速度非常得快，贴壁速度很快，所以传代时就应该留很少量的细胞，这样细胞状态会比较好。
并且巨噬细胞比较喜欢扎堆生长，而堆与堆之间是有空间的。
如果长成相连在一起的一满片的时候，细胞形态基本上就会差了，老化的会比较多，对后期实验结果是不好的。
所以在养细胞的时候应该摸索该细胞喜欢的生长空间密度问题。
2.对于有些人总是会遇到养的细胞形态怎么都不好的问题。
这个其实是有一个方法可以改善的。
对于贴壁细胞，如果细胞形态不好，（或者细胞形态不清晰，表面似有异物等）可以在传代的时候进行如下操作：首先，倒掉旧的培养基，加入3ml新的培养基（有无血清的都可）洗涤一次，用滴管吸走，然后再加入3ml的培养基，进行预吹打，控制吹打力度，轻轻地大概沿着瓶底过一遍，然后吸走。
这时侯再开始正式的消化、吹打。
（巨噬细胞我们只吹打，不消化的）其次，把吹打下来的细胞悬液加入到新的培养瓶内，培养瓶事先加入培养基，放入培养箱内培养，按时间点观察细胞贴壁情况。
10分钟观察一次，20分钟，30分钟观察一次。
选择一个时间点，已经有部分细胞贴壁的情况下，重新置于洁净台，底面朝上迅速倒出其中的培养基，加入3ml 新培养基再轻轻洗一次。
然后加入完全培养基培养。
后续观察细胞生长情况以及形态。
我称之为“二传”。
呵呵。
如果一次效果还不理想，可重复多次。
直到找到细胞完美形态。
其中要注意，结合细胞喜欢的生长情况。
喜欢多一点数量长得好的细胞你就等贴壁细胞比较多点的时候再传。
反之亦然。
这个是我师兄发明的，谢谢他了。
细胞培养个人工作总结范文
细胞培养个人工作总结范文细胞培养是生物学实验中非常重要的一个环节，我在进行细胞培养工作中取得了一些经验和收获，现做以下总结：首先，在进行细胞培养实验时，我要保证实验室环境的洁净，经常对实验设备进行消毒和清洁，以防止细菌或其他有害物质的污染。
同时，在进行细胞培养时，要注意无菌操作，避免外界微生物的污染。
其次，我在培养细胞过程中，掌握了种植细胞的最佳条件和方法。
比如，在细胞培养的过程中，我严格控制培养基的pH值、营养物质的添加和细胞密度的控制，以保证细胞的健康生长和增殖。
另外，在细胞培养过程中，我也注意到了细胞的形态学变化和生长速度等指标的监测和记录，及时发现细胞的异常情况，以便及时调整培养条件。
最后，我在细胞培养实验中，还积累了大量的实践经验和技能，这些都将对我今后的科研工作产生积极的影响。
总而言之，通过细胞培养的个人工作总结，我进一步加深了对细胞培养工作的理解，提高了细胞培养技能，为今后的科研工作奠定了更加扎实的基础。
希望在今后的科研工作中，我能够不断积累经验，提高专业素养，为科学研究做出更多的贡献。
在细胞培养的工作实践中，我还学会了如何选择合适的细胞培养基和添加剂，以促进细胞的健康生长。
同时，我也学会了如何判断细胞的状态和纯度，并且掌握了一些常见的检测方法和技术，如细胞计数、细胞鉴定、细胞凋亡检测等。
这些技能不仅为我日常的细胞培养工作提供了坚实的保障，也为我未来的科研探索和学术研究奠定了基础。
在进行细胞培养的工作中，我还注意到了实验中的一些常见问题和解决方法。
比如，细胞在培养过程中出现的感染、细胞质纺锤体形成异常、细胞黏附不良等情况，这些都需要我们认真研究问题的根源，并采取相应的措施解决。
通过对实验过程中遇到的问题进行分析和总结，我得以不断提高自己的动手能力和解决问题的能力，使得我在工作中更加得心应手。
在实验的过程中，我发现了培养过程中一些可能的改进点。
比如，改进培养基的配方、优化培养条件、探索新的细胞培养技术等，这些都是我在细胞培养工作中不断努力的方向。
细胞培养实验总结总结
细胞培养实验总结引言细胞培养是现代生物学研究中常用的实验技术之一，它可以模拟体内环境，为研究细胞的生理生化过程提供便利。
本文对进行的细胞培养实验进行总结，包括实验目的、实验步骤、实验结果及讨论等内容。
实验目的本次实验的主要目的是通过细胞培养技术培养和观察细胞生长情况，了解细胞培养过程中的操作步骤和注意事项。
同时，通过添加不同培养基成分，探究对细胞生长和分化的影响。
实验步骤1.准备实验器材和培养基：将所需的培养基放置在无菌工作台上，同时清洗好所有需要使用的培养器皿和器械，保持无菌状态。
2.细胞传代：将上一代培养的细胞用无菌吸管吸取，移至新的培养器皿中，加入新鲜准备好的培养基。
细胞传代的目的是保持细胞的生长状态和纯度。
3.细胞观察：将培养器皿放置在显微镜下，使用适当倍率进行观察。
检查细胞的生长状况和细胞数量是否符合预期。
4.添加培养基成分：根据实验设计，可以在相应的培养器皿中加入不同的培养基成分，例如细胞分化因子、抗生素等。
目的是观察添加不同成分后细胞的生长和分化变化。
5.细胞采集：当细胞达到一定的生长密度时，可以进行细胞采集。
用无菌吸管吸出细胞悬液，将其置于离心管中，并进行离心处理，获取细胞沉淀。
6.分析实验结果：对培养的细胞进行计数、生长速率分析等统计，观察实验结果是否符合预期。
实验结果根据实验步骤和操作要求，我们成功地进行了细胞培养实验，并获得了一系列实验结果。
首先，观察到细胞在培养基中显示出良好的生长状态。
细胞数量逐渐增多，呈现典型的细胞周期。
观察到细胞的形态变化，细胞逐渐变大，细胞贴壁生长良好。
这说明培养基的成分和培养条件对细胞的生长具有重要影响。
其次，实验中添加了不同的培养基成分，包括细胞分化因子和抗生素。
观察到加入细胞分化因子后，部分细胞呈现出明显的分化现象，形成不同的细胞类型。
而加入抗生素后，观察到细胞数量减少，并且呈现出不同程度的细胞死亡。
这说明细胞分化和细胞存活受到培养基成分的影响。
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细胞培养学习总结
--贴壁细胞培养技术
一、细胞培养一般流程：
㈠、复苏：
1、实验前做好相关准备工作（水浴锅37℃；超净工作台的无菌环境；准备
好实验相关仪器和试剂）。
2、把冻存管从液氮灌中取出来，立即投入37℃（≦40℃）水浴锅中，晃动
冻存管，使液体在1min以内全部融解（关键步骤），用酒精棉擦拭其外壁，放到超净工作台里。
3、把上述细胞悬液吸到15ml的离心管中，加入适量培养基，(用培养基把
冻存管洗一遍，把粘在壁上的细胞都洗下来，转移时不要直接倒，以防污染)，1000转离心1-3min（可根据所培养细胞调整）。
4、吸弃上清液，加适量培养基把细胞吹散成细胞悬液，转移到培养瓶中，
加适量完全培养基（常为覆盖培养瓶底面即可）。
5、标好细胞种类和日期、培养人名字等，放到CO2培养箱中培养，细胞贴
壁后再换培养基。
6、注意观察细胞生长状态，及时换液或传代。
㈡、换液：
1、实验前做好相关准备工作（超净工作台的无菌环境；准备好实验相关仪
器和试剂）。
2、取出培养瓶，用75%酒精消毒后放入超净实验台。
3、吸弃旧培养液，用适量（如2ml）PBS（磷酸盐缓冲液）清洗细胞（可根
据细胞状态洗1-2遍，一般从没有细胞的那一侧倒掉）。
4、加入适量新鲜完全培养基，放回培养箱继续培养。
㈢、传代：
1、实验前做好相关准备工作（超净工作台的无菌环境；准备好实验相关仪
器和试剂）。
2、取出培养瓶，用75%酒精消毒后放入超净实验台。
3、吸弃旧培养液，用适量（如2ml）PBS（磷酸盐缓冲液）清洗细胞（可根
据细胞状态洗1-2遍）。
（前面步骤同换液）
4、加适当的胰蛋白酶（0.05%）(能覆盖细胞就行)，放入细胞培养箱中消化
1-2min（根据不同类型细胞而定）。
5、细胞都变圆后加如入等体积的完全培养基终止消化。
6、用滴管缓慢吹打细胞，使细胞都悬浮起来成细胞悬液，吸到15ml的离心
管中，1000转离心1-3min。
7、倒掉上清液，加1-2ml完全培养基，将细胞吹散成单个细胞。
8、根据细胞浓度把细胞传到几个培养瓶中，加入适量完全培养基（一般癌
细胞一个培养瓶分2个），放回培养箱中继续培养。
㈣、冻存：
1、实验前做好相关准备工作（预先配置好冻存液放入4℃保存，常为
10%DMSO+90%血清，配制过程中加入DMSO要缓慢，且边滴边摇；超净工作台的无菌环境；准备好实验相关仪器和试剂）。
2、取出培养瓶，用75%酒精消毒后放入超净实验台。
3、吸弃旧培养液，用适量（如2ml）PBS（磷酸盐缓冲液）清洗细胞（可根
据细胞状态洗1-2遍）。
4、加适当的胰蛋白酶（0.05%）(能覆盖细胞就行)，放入细胞培养箱中消化
1-2min（根据不同类型细胞而定）。
5、细胞都变圆后加入等体积的完全培养基终止消化。
6、用滴管缓慢吹打细胞，把细胞都悬浮起来成细胞悬液，吸到15ml的离心
管中，1000转离心1-3min。
（同细胞传代中步骤）
7、倒掉上清液，加入预制的冻存液制成细胞悬液，分装到灭菌的冻存管中，
（注意不要加满，预留其结冰后的空间，一般1.8ml的冻存管加入≦1.5ml 的细胞悬液）。
8、写明细胞种类、冻存日期。
放入4℃冰箱30min，-20℃冰箱30min，-80℃
冰箱过夜，最后放入液氮罐中保存。
一、细胞培养注意事项：
注意无菌操作，以防细胞污染，定期检查培养箱、超净台，按时观察细
胞状态，实验过程中注意保护自身安全。
㈠、注意无菌操作
1、实验进行前，超净工作台以紫外灯照射30-60 min灭菌，并开启操
作台风扇运转30min后，才开始实验操作。
2、实验进行前，实验人员应穿戴好实验服，口罩，手套。
3、所有拿进实验台的物品都应用75%酒精消毒。
4、在酒精灯10cm内进行操作，开盖或封盖前应用酒精灯灼烧灭菌，
但注意对有滤膜的培养瓶不应灼烧，以免细胞污染。
5、每次尽量只处理一个细胞株，以免发生细胞间污染。
6、实验结束后，处理好废液，用75%酒精擦净台面，开启紫外，照射
5min以上。
㈡、定期检查项目
1、培养箱之CO2 浓度、温度、及水盘是否有污染(水盘的水用无菌水，
每周更换)。
2、CO2钢瓶之CO2压力。
3、超净工作台内之气流压力，定期更换紫外线灯管及HEPA （高效空
气净化）过滤膜，预滤网(300 小时/预滤网，3000 小时/HEPA)。
㈢、观察细胞状态：
1、正常状态下，细胞贴壁生长，当培养液颜色变淡时，应换液。
对于
培养基中添加酚红指示剂的，若紫色变深，则应检查CO2供应，若
颜色变黄，则可能是换液或传代频率太低。
2、当培养瓶中细胞覆盖率达80%以上时，应传代。
3、若发现很浑浊，且有许多漂浮死细胞时，可能细胞被污染，应丢弃
被污染细胞并对培养箱进行灭菌操作。
二、所需设备
CO2培养箱（最好是内置紫外灯）；超净工作台；倒置显微镜；液氮罐；
低速离心机；恒温水浴锅；冰箱（-80℃）、（4℃及-20℃）；高压灭菌锅；
电热鼓风干燥箱；
三、所需仪器及试剂及易耗品
1、仪器：培养瓶（最好是带滤膜）；酸缸；滴管；胶头；离心管（15ml、
50ml）；酒精灯；打火机；废液缸（烧杯500ml）；冻存管；封口膜；
镊子；标记笔；棉花；
2、试剂：基础培养基（RTMI-1640培养基；MEM培养基；DMEN培养
基；无血清培养基等）；血清（小牛血清、胎牛血清、马血清等）；
胰酶(trypsin-EDTA solution)；PBS（磷酸缓冲盐溶液）；DMSO（二
甲基亚砜）；双抗（青霉素钠+链霉素）；
3、易耗品：手套（透明手套；橡胶手套）；口罩；（另白大褂）
四、仪器回收利用：
滴管、离心管清洗流程，
1、滴管清洗过程:
酸泡（1星期）--清水冲洗（20遍）--超声洗涤20min（2遍）--去离
子水冲洗（10遍以上）--晾干—烘箱干燥—高压灭菌—烘箱干燥
2、离心管清洗过程
洗衣粉水泡（1星期）--清水冲洗（10遍以上）--去离子水冲洗（10
遍以上）--晾干—烘箱干燥—高压灭菌—烘箱干燥。