心脏灌流
心脏的血液灌流原理
心脏的血液灌流原理心脏作为人体最重要的器官之一，起着泵血和供应氧气给全身组织的重要作用。
血液灌流是心脏发挥生理功能的基础，也是维持人体正常生命活动的关键过程。
下面将为您详细解析心脏的血液灌流原理。
心脏的血液灌流原理可以归纳为两个方面，即循环泵与血液流动。
一、循环泵原理心脏是一个由肌肉组织构成的中空器官，其主要组成部分为心房和心室。
心脏有四个腔室，左心房和左心室构成左心室，右心房和右心室构成右心室。
心脏分为两个循环，分别是肺循环和体循环。
1. 传导系统心脏内部有一套称为传导系统的系统，包括窦房结、房室结、希氏束和浦肯野纤维，起着将电信号从心脏中心传递到心肌细胞并引发肌肉收缩的作用。
通过这一传导系统，心脏能够进行有规律的收缩和舒张，从而推动血液流动。
2. 心肌收缩心脏中的心肌细胞在接收到传导系统的电信号后，通过收缩和舒张来推动血液流动。
心肌细胞充满在心脏的壁内，并且通过细密的连接组成心肌束。
当心肌收缩时，心肌束向心腔内收缩，从而将血液推入到血管中。
其中，心室的收缩力较大，主要推动血液流动。
3. 瓣膜作用心脏内的各个腔室之间有瓣膜组织分隔开，包括二尖瓣、三尖瓣、主动脉瓣和肺动脉瓣。
这些瓣膜在心脏收缩和舒张时起到阻止血液逆流的作用，保证血液只能朝一个方向流动，避免血液反流和混合，从而确保有效的血液灌流。
4. 心脏收缩与舒张的协调心脏的收缩和舒张是有规律和协调的。
当心脏收缩时，心房和心室几乎同时收缩，使血液推入动脉，这称为收缩期。
而当心脏舒张时，心房和心室几乎同时舒张，使心房和心室之间形成一个低压区域，这称为舒张期。
通过这种良好的工作协调，心脏能够以稳定的速率泵血，保持血液灌流的稳定性和连续性。
二、血液流动原理心脏的血液流动是由心脏收缩产生的压力差和血液本身的特性共同驱动的。
1. 冠状血管系统心脏本身也需要血液供应，这个供应系统是冠状血管系统。
心脏收缩时，心室内的血液被推入主动脉，并通过冠状动脉通过分支供血给心肌。
心脏灌流实验报告结论
一、实验背景心脏灌流实验是一种生理学实验，旨在通过模拟心脏的血液循环过程，研究心脏的功能和血液动力学特性。
本实验采用离体心脏灌流的方法，通过观察不同条件下心脏的血流动力学变化，分析心脏的功能状态和影响因素。
二、实验目的1. 了解心脏灌流实验的基本原理和方法。
2. 观察心脏在不同灌流条件下的血流动力学变化。
3. 分析影响心脏功能的主要因素。
三、实验方法1. 实验材料：离体心脏、灌流装置、生理盐水、药物等。
2. 实验步骤：（1）将离体心脏置于灌流装置中，连接好各种管道。
（2）调整灌流装置，使心脏处于正常工作状态。
（3）观察心脏在不同灌流条件下的血流动力学变化。
（4）在实验过程中，加入不同药物，观察心脏对药物的反应。
四、实验结果1. 心脏在正常灌流条件下，表现出规律性的收缩和舒张，血流动力学指标稳定。
2. 在低灌流压力下，心脏收缩幅度减小，心率减慢，心输出量降低。
3. 在高灌流压力下，心脏收缩幅度增大，心率加快，心输出量增加。
4. 加入肾上腺素后，心脏收缩幅度增大，心率加快，心输出量增加。
5. 加入乙酰胆碱后，心脏收缩幅度减小，心率减慢，心输出量降低。
6. 加入乳酸后，心脏收缩幅度减小，心率减慢，心输出量降低。
五、实验结论1. 心脏灌流实验是一种有效的生理学实验方法，可以模拟心脏的血液循环过程，研究心脏的功能和血液动力学特性。
2. 心脏的收缩和舒张是维持血液循环的关键，心脏功能与灌流压力、药物等因素密切相关。
3. 低灌流压力和乳酸等因素会导致心脏收缩幅度减小，心率减慢，心输出量降低，影响心脏功能。
4. 肾上腺素和乙酰胆碱等药物可以调节心脏功能，改变心脏的收缩幅度、心率和心输出量。
5. 心脏灌流实验为研究心脏疾病、药物作用等提供了重要手段。
六、实验讨论1. 本实验结果表明，心脏灌流实验可以有效地模拟心脏的血液循环过程，为研究心脏功能提供了重要手段。
2. 在实验过程中，应注意灌流压力、药物等因素对心脏功能的影响，以保证实验结果的准确性。
离题心脏灌流实验报告
一、实验目的1. 掌握离体心脏灌流技术的基本操作方法。
2. 观察不同生理和化学因素对离体心脏活动的影响。
3. 了解心脏生理学中离子和体液调节在心脏功能中的作用。
二、实验原理心脏的正常节律性活动依赖于其内环境的稳定性。
离体心脏灌流实验通过在体外模拟心脏的生理环境，研究各种因素对心脏功能的影响。
实验中，离体心脏被置于特定的灌流液中，通过改变灌流液的成分，可以观察心脏的收缩、舒张以及心率等生理指标的变化。
三、实验材料1. 实验动物：青蛙或鱼类。
2. 实验器材：蛙心夹、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿、棉线、任氏液、生理盐水、NaCl、KCl、CaCl2、乳酸、肾上腺素、乙酰胆碱等。
3. 实验试剂：任氏液、生理盐水、0.65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、3%乳酸、1:10000肾上腺素、1:10000乙酰胆碱等。
四、实验方法与步骤1. 蛙心插管法：将青蛙双毁髓后背位置于蜡盘中，暴露心脏，并在左主动脉下方穿一线，于动脉圆锥处结扎。
用蛙心夹固定心脏，将刺激电极插入心室。
2. 灌流液准备：将任氏液或生理盐水加热至37℃，保持恒温。
3. 灌流系统建立：将蛙心夹连接到张力传感器，通过支架固定。
将灌流液从灌流瓶经滴管缓慢滴入蛙心夹，通过张力传感器记录心脏的收缩和舒张。
4. 实验操作：a. 记录正常心脏灌流下的心率和收缩幅度。
b. 分别向灌流液中加入不同浓度的NaCl、KCl、CaCl2、乳酸、肾上腺素、乙酰胆碱等试剂，观察心脏活动的变化。
c. 重复上述步骤，观察不同因素对心脏活动的影响。
五、实验结果与分析1. 正常心脏灌流：在正常灌流条件下，心脏呈现规律的节律性收缩，心率和收缩幅度稳定。
2. NaCl：低浓度NaCl对心脏活动影响较小，高浓度NaCl会导致心率减慢，收缩幅度降低。
3. KCl：低浓度KCl对心脏活动影响较小，高浓度KCl会导致心率加快，收缩幅度降低。
4. CaCl2：低浓度CaCl2对心脏活动影响较小，高浓度CaCl2会导致心率加快，收缩幅度增强。
离体心脏灌流
测仪上的电极测定冠状静脉的 Po2, 并可结合灌流液的
Po2和冠状动脉流量计算心肌耗氧量； 经过两根固定在心脏表面的电极可记录心外膜心电图； 心脏内埋藏电极记录希氏束电图等。
Necly等的改进(1967)
在肺静脉或左心房内插入另一根导管，灌流液经 此导管进入左心房，并通过二尖瓣进入左心室，左 心室收缩时将灌流液通过主动脉泵出，该方法可改 变心脏的前后负荷，测定心输出量、压力－容积作 功关系等。
Bardenheuer等的改进(1983)
小球囊插入左心室，通过一个插管将球囊内的液体泵
负荷和后负荷。
注意事项
① 不能损伤或结扎静脉窦； ② 主动脉内的插管不要过深以免抵住主动脉瓣 ③ 两根插管有一定相对位置，插管前要考虑好方向， 插管后应避免血管扭曲，保证灌流畅通 ④ 避免气泡进人心脏。
哺乳类动物离体心脏灌流
——Langendorff 法
Langendorff首次描述了保持哺乳动物离体心
脏存活的方法，采用恒压或恒流方式，从主动脉
根部逆向用含氧灌流液灌流心脏，这种方式的逆
向灌注关闭了主动脉瓣，使得灌注液经冠状动脉
分布，并流入冠状窦和右心房。
实验方法
1.麻醉、取出心脏：在戊巴比妥钠麻醉和人工呼吸
的 情 况 下 迅 速 取 出 心 脏 ， 置 于 盛 满 37 ℃ 氧 饱 和 的
Ringer’s液的盘中，去除粘附的心包和肺组织，确定主 动脉的位置，并恰好在其分支下方切断。 2. 主动脉插管：将一个玻璃或塑料的插管插入主 动脉，注意插管不要过深以免损伤主动脉瓣，结扎固 定。
实验4-4 蛙类离体心脏灌流
实验4-4 蛙类离体心脏灌流引言离体心脏灌流实验是生理学中常用的方法之一。
不同种类的动物可以通过体表切口或开放胸骨来取出其心脏进行灌流。
而离体心脏灌流实验可以帮助研究者了解心脏的解剖学和生理学特征。
本实验将讲解如何进行蛙类离体心脏灌流实验。
实验器材和试剂1.蛙类（建议使用大型蛙类）。
2.离体心脏灌流系统，包括：- 离体心脏灌流装置（含灌流缓冲液、温度控制器等）。
- 稳压泵。
3.灌流缓冲液，常用的为Tyrode's盐溶液。
实验步骤1. 先将离体心脏灌流系统检查一遍，保证各项设备均运转正常。
2. 杀死一只蛙类，立即进行解剖，取出心脏，并将其迅速转移到灌流装置中。
在移植心脏时应注意不损伤其血管和肌肉组织。
在灌流系统中，除了心脏，不能有其他生物组织残留。
3. 确认灌流系统中的灌流缓冲液温度为20~25℃。
在开始灌流之前，要先排除灌流管路中的空气。
4. 打开灌流泵，根据所选择的灌流缓冲液flow rate控制注入速度，一般建议在3~8ml/min。
确保满足心脏需求的氧气和营养物质可以通过灌流液输送到心脏内部。
5. 注入灌流缓冲液的同时，对心脏进行观察，确认心脏速率、收缩波幅度等生理特征。
6. 加入适当的药物来研究心脏对药物的反应性。
此时应读取每个添加药物后的心脏特征和响应（如速率、波幅等）。
7. 在实验结束时，切断灌流管路和心脏连接，灌流系统中的灌流液应该被排除并清洁。
结果和分析离体心脏灌流实验可以观察心脏的生理学特征和对不同药物的反应，这有助于研究者了解心脏的生理学机制。
在进行本实验时，需要注意不仅仅是心脏的特征，还要关注灌流流量和药物导致的生理反应。
在实验的过程中，如果发现心脏节律不齐或收缩波幅度明显下降，这可能是灌流流量不足造成的。
而添加不同的药物，可以帮助研究者了解心脏的调控机制，同时也可以评估药物的疗效。
需要注意的是，不同种类的动物其心脏组织的特征也是不同的，因此需要根据具体的实验目的选择合适的动物进行实验。
离体心脏灌流实验报告
离体心脏灌流实验报告离体心脏灌流实验报告心脏是人体最重要的器官之一，它的正常运转对于维持身体的正常功能至关重要。
然而，心脏病是全球范围内的一大健康问题，每年造成数百万人死亡。
为了更好地研究心脏病的发病机制以及开发新的治疗方法，离体心脏灌流实验成为了一种重要的研究手段。
离体心脏灌流实验是指将动物或人体心脏取出后，通过人工装置对其进行血液灌流，模拟体内环境，以便研究心脏的生理和病理过程。
这种实验方法可以提供更加精确和可控的条件，避免了体内环境的干扰，从而更好地研究心脏的功能和疾病。
在离体心脏灌流实验中，首先需要将动物或人体心脏取出，并迅速将其连接到灌流装置上。
灌流装置通常由氧气供应系统、血液泵、温度控制系统等组成，以模拟体内环境。
通过调节血液流速、氧气浓度和温度等参数，可以控制心脏的工作状态，观察其生理反应。
通过离体心脏灌流实验，研究人员可以观察心脏在不同条件下的工作情况，如心脏收缩力、心脏节律等。
同时，还可以通过添加特定的药物或激素，研究其对心脏功能的影响。
这种实验方法可以提供更加直接和准确的数据，有助于深入了解心脏病的发病机制。
除了研究心脏的生理功能外，离体心脏灌流实验还可以用于研究心脏疾病的发展过程。
例如，通过给心脏注射特定的病原体或药物，可以模拟心脏病的发病过程，观察心脏在不同阶段的变化。
这种实验方法可以为心脏病的早期诊断和治疗提供重要的参考。
然而，离体心脏灌流实验也存在一些限制。
首先，由于实验条件的局限性，离体心脏灌流实验无法完全模拟人体内复杂的生理环境，因此得到的结果可能与实际情况存在一定的差异。
其次，由于需要使用动物或人体心脏进行实验，涉及到伦理和道德问题，需要严格遵守相关法律和伦理规定。
尽管存在一些限制，离体心脏灌流实验仍然是研究心脏病的重要手段之一。
通过这种实验方法，研究人员可以更加深入地了解心脏的生理和病理过程，为心脏病的预防和治疗提供重要的理论依据。
未来，随着技术的不断进步，离体心脏灌流实验将进一步发展，为心脏病研究带来更多的突破。
机能学实验的实验报告
一、实验名称：离体心脏灌流实验二、实验目的：1. 了解离体心脏灌流实验的基本原理和操作步骤。
2. 观察心脏在不同药物作用下的生理反应，分析药物对心脏功能的影响。
三、实验原理：离体心脏灌流实验是通过将心脏从动物体内取出，放置在适宜的生理盐水中，通过灌流泵将生理盐水灌流心脏，模拟心脏在体内的生理活动，观察心脏在不同条件下的生理反应。
四、实验材料与仪器：1. 实验动物：家兔一只2. 仪器：灌流装置、生理盐水、氯化钾、肾上腺素、异丙肾上腺素、阿托品、酚妥拉明、量筒、计时器等五、实验步骤：1. 家兔处死后，迅速取出心脏，置于盛有生理盐水的培养皿中。
2. 将心脏放入灌流装置中，连接灌流泵和生理盐水。
3. 调整灌流泵的流速，使心脏在适宜的生理盐水环境中进行灌流。
4. 观察心脏的跳动情况，记录心跳次数。
5. 分别向灌流系统中加入不同药物，观察心脏的生理反应，记录心跳次数和药物浓度。
6. 比较不同药物对心脏功能的影响。
六、实验结果：1. 在正常生理盐水中，心脏跳动正常，心跳次数约为每分钟80次。
2. 加入氯化钾后，心跳次数逐渐减少，直至心跳停止。
3. 加入肾上腺素后，心跳次数明显增加，心跳次数达到每分钟150次。
4. 加入异丙肾上腺素后，心跳次数也明显增加，心跳次数达到每分钟200次。
5. 加入阿托品后，心跳次数逐渐减少，直至心跳停止。
6. 加入酚妥拉明后，心跳次数明显减少，心跳次数约为每分钟50次。
七、实验分析：1. 氯化钾是心脏的抑制剂，可导致心跳停止。
2. 肾上腺素和异丙肾上腺素是心脏的兴奋剂，可导致心跳次数增加。
3. 阿托品是心脏的抑制剂，可导致心跳停止。
4. 酚妥拉明是心脏的抑制剂，可导致心跳次数减少。
八、实验结论：通过离体心脏灌流实验，我们了解了心脏在不同药物作用下的生理反应。
实验结果表明，不同药物对心脏功能具有不同的影响，肾上腺素和异丙肾上腺素可兴奋心脏，使心跳次数增加；氯化钾、阿托品和酚妥拉明可抑制心脏，使心跳次数减少或停止。
离体心脏灌流实验报告
一、实验目的1. 熟悉离体心脏灌流技术的基本操作。
2. 观察和分析不同生理、病理因素对离体心脏功能的影响。
3. 掌握记录和分析心脏功能指标的方法。
二、实验原理离体心脏灌流实验是生理学研究中常用的一种方法，通过将心脏从机体中取出，在体外模拟生理环境条件下进行灌流，观察和分析心脏功能的变化。
实验中，通过改变灌流液的成分、温度、pH值等条件，可以研究不同因素对心脏功能的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：青蛙、蛙心夹、蛙板、蛙类手术器械、二道仪、任氏液、长滴管、铁支架、玻璃管、量筒、秒表等。
2. 实验仪器：显微镜、电子天平、恒温器、恒温水浴箱、高压消毒锅等。
四、实验方法与步骤1. 实验准备（1）取一只青蛙，用蛙类手术器械进行解剖，暴露心脏。
（2）将心脏夹在蛙心夹上，用线固定在蛙板上。
（3）在心脏主动脉下方穿一线，结扎并留出一段备用。
（4）将心脏主动脉左支结扎，于动脉圆锥处剪一向心斜切口，插入灌流管。
2. 灌流实验（1）将灌流管一端插入恒温器中的任氏液中，另一端与心脏主动脉相连。
（2）调整恒温器，使任氏液温度保持恒定。
（3）开启灌流泵，使任氏液以恒定速度灌流心脏。
（4）观察心脏收缩情况，记录心率、收缩幅度等指标。
（5）依次改变灌流液的成分、温度、pH值等条件，观察心脏功能的变化。
3. 实验数据记录与分析（1）记录不同灌流条件下心脏的心率、收缩幅度等指标。
（2）分析不同生理、病理因素对离体心脏功能的影响。
（3）绘制心脏功能曲线，分析实验结果。
五、实验结果与分析1. 灌流液中加入肾上腺素后，离体心脏心率加快，收缩幅度增强。
2. 灌流液中加入乙酰胆碱后，离体心脏心率减慢，收缩幅度减弱。
3. 降低灌流液温度后，离体心脏心率减慢，收缩幅度减弱。
4. 提高灌流液pH值后，离体心脏心率加快，收缩幅度增强。
六、实验结论1. 肾上腺素和乙酰胆碱对离体心脏功能具有调节作用，肾上腺素使心脏兴奋，乙酰胆碱使心脏抑制。
2. 温度和pH值对离体心脏功能有显著影响，低温和碱性环境有利于心脏功能的维持。
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Radnoti 离体工作心脏灌流系统 (Working Heart System)
可进行工作心脏实验， LANGENDORFF 恒 压，恒流，循环或非循环实验。实验可以是 起博或自发心跳状态。
灌流液从左心耳流入左心室，左心室收缩克服 主动脉阻力将心室内液体射入模拟主动脉管道， 使心脏在生理状态下进行灌流实验。在此装置 中，左心室充盈压（前负荷）及主动脉柱压 （后负荷）可以保持恒定，心率亦可通过电起 搏装置加以控制。因此，可以根据需要将三者 同时进行控制，观察药物对心肌收缩性能的影 响，或控制其中两项，观察心肌收缩性与另一 项的关系。此外通过测定冠脉流出液中某些物 质，可以了解药物或其它因素对心脏生化方面 的影响。
缺点和局限性
失去了机体完整统一的内环境和神经体液 调控作用，失去了体内各种组织、细胞之间
的相互关系，不能完全反映心脏在整体情况
下的活动规律与正常整体情况。
离体心脏灌流方法
两栖类动物： 蟾蜍、青蛙等 Straub法、八木法
哺乳类动物：大鼠、家兔、猫等
Langendroff 法
经典的离体蛙心灌流——Straub法
心室腔直接记录和测定左心室内压力变化，如左心室 收缩压（LVSP）、左心室舒张末期压（LVEDP）和左 心室压力变化速率（LV dP/dP）等； 利用放入肺动脉内的导管连接到PMH 73酸碱／血气检
测仪上的电极测定冠状静脉的 Po2, 并可结合灌流液的
Po2和冠状动脉流量计算心肌耗氧量； 经过两根固定在心脏表面的电极可记录心外膜心电图； 心脏内埋藏电极记录希氏束电图等。
• 配合不同的测量装置可测量： 左室压（LVP) 心电 温度 心肌张力 心输出量 灌注压 冠脉血流 新陈代谢 离子 转基因研究
冠状动脉结扎与心肌缺血再灌
Scholz 等(1992,1993)在进行心肌缺血再灌实验 时，用65 mmHg恒定压力灌注离体工作心脏20 min ( 缺血前期) 后，夹闭左冠状动脉近端 15 min，造成
在离体条件下观察并记录心脏的生理活动、 病理变化以及各种药物和试剂等施加因素对其 生理生化及形态变化的影响。
离体心脏灌流的优点
1. 排除在整体情况下体内各种复杂因素的干扰，直
接观测离体心脏标本的各项指标。
2. 易于严格控制实验环境，方法简便精确，有利于
分析作用机制及对药物的药效作定量研究。
3. 易于获得准确、精细的结果。
灌流途径与正常循
环途径不同，蛙心插管 通过主动脉瓣直接插入 心室腔内，灌流液通过 同一蛙心插管进入心室
腔和流出，前负荷和后
负荷相等。
方
1.破坏脑脊髓，暴露心脏。 2. 心室插管 3. 结扎静脉窦，游离蛙心 4. 使用张力传感器
法
5. 改变灌流液成分
正常的蛙心搏动曲线 用0.65％ NaCl替换任氏液 在任氏液中滴加2％ CaCl2 1-2滴
人一个体外的闭合循环通路中，并由两个弹性瓣膜控制其
单向流动。
每次心脏收缩时，由球囊排除的液体量相当于心脏的
每搏输出量，可以通过顺序连接的一个流量计探头和一个 积分仪进行测量。前负荷和后负荷可以分别调整。经主动 脉逆灌进入冠状动脉的灌注液流量也可单独记录下来。
其它改进
将微型压力传感器经肺静脉、左心房和二尖瓣放入左
前1 h经口服给予实验药物观察其对肌缺血再灌损伤的
影响。
离体心脏灌流
Cardiac Perfusion in Vitro
南京医科大学 生理学系 韩莹
离体心脏灌流的基本原理
将动物的心脏从体内取出放入特定的生理代
用液中，根据不同的实验目的和不同种属动物特
点进行恒温、通氧或恒温灌流及建立与动物机体
内环境基本相似的人工环境，以保证心பைடு நூலகம்维持正 常活动状态。
离体心脏灌流的意义
4. 连接记录装置：
将一特制的金属小钩固定在心尖部，利用张力传
感器与多导记录仪相连并描记心脏收缩曲线和测定
收缩力等指标。
Langendorff 离体心脏灌流装置可用于测定不同
种生理学试剂和药物的直接效应，以及对这些药物
的拮抗作用。还可观察冠脉流量的变化。
注意事项
取心脏和插管操作需迅速。 插管不易过深，以免损伤主动脉瓣。
3. 灌流：
将心脏转移到一个双层壁的玻璃浴槽（类似于做离体
小肠平滑肌灌流用的恒温浴槽或麦氏浴槽）中，浴槽内加
入 Ringer’s 液或 Krebs—Henseheit 缓冲液，利用恒温水浴
使这一装置保持在37℃。 经 主 动 脉 插 管 灌 注 氧 饱 和 的 Ringer’s 液 或 Krebs— Henseheit缓冲液，持续保持适当的灌注压。
灌流压大小恰当，压力过低则冠状动脉灌流量不足，
过高则因主动脉根部过于扩张导致主动脉瓣关闭不全。
灌流液温度恒定：37 ℃ (95% O2 + 5% CO2饱和)。
Langendorff 法的缺陷与改进
由于在实验过程中心室不充盈，心室不按照容
量－压力曲线作功。
后来其实验方法被不断改进，以适应各种不同研 究的需要，如在按上述灌流方法进行灌流以保持心脏 存活的同时，在用另一根插管插入右心房灌流心脏，
实验方法
1.麻醉、取出心脏：在戊巴比妥钠麻醉和人工呼吸
的 情 况 下 迅 速 取 出 心 脏 ， 置 于 盛 满 37 ℃ 氧 饱 和 的
Ringer’s液的盘中，去除粘附的心包和肺组织，确定主 动脉的位置，并恰好在其分支下方切断。 2. 主动脉插管：将一个玻璃或塑料的插管插入主 动脉，注意插管不要过深以免损伤主动脉瓣，结扎固 定。
哺乳类动物离体心脏灌流
——Langendorff 法
Langendorff首次描述了保持哺乳动物离体心
脏存活的方法，采用恒压或恒流方式，从主动脉
根部逆向用含氧灌流液灌流心脏，这种方式的逆
向灌注关闭了主动脉瓣，使得灌注液经冠状动脉
分布，并流入冠状窦和右心房。
• 离体心脏灌流实验将动物 心脏取出，连接到特定的 灌流装置，用灌流液灌注 ，排除了神经和体液的控 制，配合特别分析软件记 录心室内压、动脉血压和 心电信号，自动分析各项 生理参数，用于病理生理 情况下的心功能与血流动 力学改变等研究，在生理 、病理生理以及药理学研 究中已得到广泛地应用。
则可研究压力－容积作功关系。
Gottlieb等的改进(1904)
将可充水的小球囊固定在一根导管末端，经肺静脉、
左心房和二尖瓣放入左心室。
球囊内注水量与左心室容积相等，相当于前负荷大
小，可根据实验要求选择预定的前负荷或改变前负荷。
心脏收缩舒张过程给球囊一个有节律的压力，传导 到压力传感器上。 优点：压力变化和前负荷大小可以读出 (mmHg)，可 记录左心室收缩曲线，并记录心率。
特点
• 适用于大鼠、豚鼠以及兔的离体心脏灌流实验; • u 设计科学，结构简洁，可操作性强; • u 完善预热系统，可与超级恒温水浴相连，充分 保证实验恒温环境; • u 充氧采用上进气模式，有效避免传统下进气模 式因药物沉淀底部所导致的气路阻塞; • u 提供外径为1.8mm和2.2mm两种规格的主动脉 插管; • u 可通过压力换能器连入生物信号采集系统来观 察有关指标的变化。
Necly等的改进(1967)
在肺静脉或左心房内插入另一根导管，灌流液经 此导管进入左心房，并通过二尖瓣进入左心室，左 心室收缩时将灌流液通过主动脉泵出，该方法可改 变心脏的前后负荷，测定心输出量、压力－容积作 功关系等。
Bardenheuer等的改进(1983)
小球囊插入左心室，通过一个插管将球囊内的液体泵
特点： 灌流途径按正常循环途径 设计，一根蛙心插管插入左肝 静脉并进入静脉窦，另一根蛙 心插管仅插入主动脉，并不穿 过主动脉瓣进入心室腔内，可 以根据实验要求设定不同的前
负荷和后负荷。
注意事项
① 不能损伤或结扎静脉窦； ② 主动脉内的插管不要过深以免抵住主动脉瓣 ③ 两根插管有一定相对位置，插管前要考虑好方向， 插管后应避免血管扭曲，保证灌流畅通 ④ 避免气泡进人心脏。
在任氏液中滴加1% KCl 1-2滴
在任氏液中滴加1:10000 肾上腺素1-2滴
在任氏液中滴加1:10000 乙酰胆碱1-2滴
注
① 不能损伤或结扎静脉窦 ② 插管一定要进入心室腔
意
③ 出现作用后立即用新鲜任氏液换洗三次，以免心肌受损
④ 蛙心插管内液面应保持恒定，以免影响结果
八木法离体蛙心灌流
急性心肌缺血 (缺血期)，再重新开放血管夹再灌注
并监测30 min (再灌注期)。再灌注期发生室颤。
取冠状动脉流出液检测乳酸、乳酸脱氢酶 (LDH) 和
肌酸激酶 (CK) 。实验完成后，可测量心肌组织中的糖
原、乳酸、ATP和磷酸肌酐。 在缺血前或再灌注前 5 min通过灌注液给予药物观 察其对肌缺血再灌损伤的影响。 在间接体内试验中，在准备处死大鼠制备离体心脏
哺乳类动物离
体心脏灌流
——
Langendorff
法
能够进行精确恒压或恒流灌 注。完善的预热系统和充氧 通路能够保证恒温环境和灌 流液氧饱和状态，从而有效 保持离体心脏的生理活性， 使实验顺利进行。可测定心 输出量、冠脉流量、左室内 压、心率、心电及心肌收缩 性能等相关指标，观察药物 对哺乳类动物离体心脏活动 的影响，研究心肌缺血、缺 氧病理损伤机制等。