神经干细胞的培养鉴定及分化
成年大鼠毛囊神经嵴干细胞的培养、鉴定及初步诱导分化
到 阳性 细 胞 。 ３ 讨 论
１２ 毛 囊 Ｎ Ｓ ． Ｃ Ｃ的 鉴定一ｐ ５ Ｎｅｔ ７ 、 ｓｉ 疫 荧光 细胞 化 学 ｎ免
Ｆ ２１： ， Ｎ２ ２ Ｂ ７ ２ ｇ ｍｌ ＧＦ，０ｎ ／ Ｆ １ １ １ ， ２ ，０ｎ ／ Ｅ ２ ｇ ｍｌ — ｂ
免疫荧光 细胞化 学 染 色结 果 显示 毛囊 ＮＣ Ｃ呈 ｐ ５ Ｓ ７ （ 神经嵴干细胞标 志物） 免疫荧光染 色 阳性 （ 图 Ｅ） 毛囊 附 ， 隆突部及 游出细胞 均呈 Ｎｅｔ （ 经 干细胞 标志 物 ） ｓｉ 神 ｎ 阳性
（ 图Ｆ 。 附 ）
２３ 诱 导 分 化 结 果 及 鉴 定 ．
ＧＦ ，７ 、５ Ｃ ２ ５ Ｏ２ ） ３ ℃ ９ Ｏ ／ 静置培 养 。６ｄ后剔 除 毛囊 ，
０ ２ 胰酶消化传代培养 ， ．５ 培养 液 同前 ， 每隔 ２ｄ换 一半
培养液 。
传代 细 胞 经 １ Ｆ Ｓ诱 导 １ 后 可 检 测 到 少 量 Ｏ Ｂ ４ｄ
２ １ 原代和传代培养的细胞观察 ．
毛囊 隆突贴块 培养 ２ｄ 后可见 Ｏ １ 个 细胞从 隆突部 ～ ５ 爬 出 ， ３ｄ后约 １ ０个 细胞 ， ２ ４ｄ后 细 胞 明显 增多 ， ６ｄ后 细 胞进一步增 多 ， 可增 至 成百 上 千个 。随着 游 出 细胞 的 增 多， 毛囊 隆突部逐渐缩小 （ 附图 Ａ，Ｂ ， ） 细胞 以隆突部 为 中 心向外周伸 展 ， 刚从 隆突 部 游 出或 刚分 裂 出 的细 胞为 圆 形， 很快便伸 出突起 呈梭形 或三 角形 ， 镜下 观察 常可见 细 胞的分裂象 ， 哑铃形 或形 状变 长 即将成 为哑 铃形 （ 图 呈 附 Ｃ 。传代培养的 细胞周 边光晕 较强 ， 胞形 态更 为多 样 ， ） 细 以椭 圆形和三角形 居 多 ， 也有梭 形 和多 角形 的 ， 常可 见细 胞 的分裂象 （ 附图 Ｄ 。 ）
大鼠胎脑神经干细胞的培养分化及鉴定的实验研究
胚胎神经干细胞 的体外培养体 系， ５ 的胎牛血清诱 导神经 干细胞分 化 ， 免疫荧 光染色技 术进行 对神经 用 ％ 用 千 细胞及诱 导分化 细胞 的鉴定 。结果 原代培 养 的神 经干细 胞折光性 强 ， 养第 ２ 培 ｄ开始 形成 细胞集 落 ， 第 ３ 形 成大的神经球。３～ ｄ ５代传代 的细胞 生长稳定 。经胎 牛血清诱导后第 ３ ｄ开始 ， 神经球开始 向周边发 出突 起， 悬浮 的细胞开始贴壁生长 。原代及传代培养的神经球表达 Ｎ ｓｎ阳性 ， 化细胞分别 表达 Ｎ Ｅ Ｇ Ａ ｅｔ ｉ 分 Ｓ 、 Ｆ Ｐ和 Ｇ Ｌ Ａ Ｃ阳性。结论 应用无血清培养技术可在体外培养 、 扩增 出神经 干细胞 。５ ％的胎牛血清可以诱 导神经干
Ｅｘｐ ｒｍ ｅ ａ ｔ ｄｙ ｏ ｕｌｉ ａ ｉｎ ， ｄ ｆｅ ｅ ｉ ｔｏ ｎｄ ｉ ｎｔｆｃ ｔｏ ｎ ｆ ｔ ｌｒ ｔ ｅ ｒ ｌ ｅ ｉ ｎｔ ｌｓ ｕ ｆ ｃ ｔｖ ｔｏ ｉｆ ｒ ｎｔａ ｉ ｎ ａ ｄｅ ｉ ａ ｉ ｎ ｉ ｅ ａ ａ ｓ ｎ ｕ ａ ｉ
ｓ ｍ ｅ ｓ Ｉ ｉｎｘ Ｗ ＮＧＸ ａ ｎ ， Ｈ Ｎ ｏｇｊｎ ｅ ａ． ｅａｔ ｅｔｆＮ ｕｏｕｇ ｒ ， ｅ ｔ ｃｌ ＵＪａ —ｉ Ａ ｉｏ ｇ Ｚ Ａ ＧＲ ｎ － ， ｔ １Ｄ ｐ ｒ ｎ ｅｒ ｒｅ ｔ ｅ ｌＬ ｎ， ｕ ｍ ｏ ｓ ｙｈ
豫 Ｈ ｓｉ ｌ Ｐ ． ａｊ ７ １０ ． ｈｎ ｏ ｔ Ｂ ｏ ２ ０ ４ Ｃ ｉａ ｐａ ｏ ｆ ｉ
ｆｅ ｄ ｕ ， ５ ｒ ｅ ｍｅ ｉ ｍ ％
ｏ ｈｅ ｗｏ ｂ ｖｎ ｓ ｒ ｍ ｗａ ｕｓ ｄ ｏ ｄｆｅ ｅ ｔａｉｎ．Ｉ ｆ ｔ ｍｂ ｏ ｉｅ ｅ ｕ ｓ ｅ ｆ ｒ ｉ ｒ ｎ ｉｔｏ ｆ ｍｍｕ ｅ ｌｕ ｒ ｓ ｅ ｃ ｎ ｆ ｏ ｅ ｃ ｎ ｅ
神经干细胞体外培养技术
神经干细胞体外培养与鉴定一前言神经干细胞(Neural stem cells, NSC S)是神经系统内能产生神经元和胶质细胞的未分化原始细胞【1-2】。
文献报道，NSC具有无限增殖、自我更新和多向分化能力，在适宜的环境条件下，能分化形成各种靶组织细胞【3-5】。
此外，NSC 还可用作为是细胞移植治疗的有效载体，被广泛用于神经疾病细胞或载体治疗。
根据目前的研究结果，其主要作用包括下列三方面：①NSC分化成宿主细胞来替代丢失细胞的作用；②分泌多种细胞因子发挥生物学功能；③桥接作用【6-8】。
基于NSC的上述特性，从而奠定了NSC在细胞替代治疗中有广泛应用前景，而如何获取NSC则是科学研究和临床实践中首先面临的关键问题。
本实验拟建立绿色荧光蛋白（Green fluorescent protein，GFP）转基因小鼠NSCs原代和传代培养技术，为后面的实验提供方法支持。
二实验所需仪器、试剂及其配制（一）实验仪器光学显微镜（Olympus,Japan）倒置荧光显微镜（LEICA DMIRB）冰冻切片机（Leica CM1900，Germany）光明DZKW型电热恒温水浴锅（北京市光明医疗仪器厂）XK96-A快速混匀器（姜堰市新康医疗器械有限公司）HT-200 电子天平（成都普瑞逊电子有限公司川制）FA1004型精密电子天平(上海良平仪器仪表有限公司)MP 8001单臂脑立体定位仪(深圳市瑞沃德科技有限公司)10μl微量进样器（Pressure-Lok，PRECISION SAMPLINGCORP，BATON ROUGE，LOUISIANA，Made in USA）0.5ml、1ml Eppendorff管（Ependorff）手术器械：眼科剪、解剖剪、显微剪、显微有齿镊及无齿镊、蚊式钳、刀柄刀片等。
（二）试剂1. DMEM/F12，Hank's液（Hyclone），N2（Gibico），bFGF（Invitrogen）。
神经干细胞的单层培养及分化过程中HES1和MASH1的表达变化
Ａ ｂ ｓ ｔ ｒ ａ ｃ ｔ ： 【 Ｏ ｂ ｊ ｅ ｃ ｔ ｉ ｖ ｅ 】Ｃ ｕ ｌ ｔ ｕ ｒ ｉ ｎ ｇ ｃ ｆ Ｎ Ｓ Ｃ ｉ ｎ ｗ ＇ ｔ ｒ ｏ ｗ ｅ ｒ ｅ ｉ ｎ ｖ ｅ ｓ ｉ ｔ ｇ ａ ｔ ｅ ｄ ，ｉ ｎ ｗ ｈ ｉ ｃ ｈ Ｎ Ｓ Ｃ ｃ ｏ ｕ ｌ ｄ ｐ ｒ ｏ ｌ ｉ ｆ ｅ ｒ ａ ｔ ｅ ａ ｎ ｄ ｄ ｉ ｆ ｆ ｅ ｒ ｅ ｎ ｔ ｉ ａ ｔ ｅ ．Ｔ ｈ ｅ ｅ ｘ ｐ ｒ ｅ ｓ ｓ ｉ ｏ ｎ ｃ ｈ ａ ｎ ｇ ｅ ｓ ｆ ｏ Ｈ Ｅ Ｓ １ ａ ｎ ｄ Ｍ Ａ Ｓ Ｈ １ ｗ ｅ ｒ ｅ ｄ ｅ ｔ ｅ ｃ ｔ ｅ ｄ ｄ ｕ ｒ ｉ ｎ ｇ ｔ ｈ ｅ ｄ ｉ ｆ ｆ ｅ ｒ ｅ ｎ ｔ ｉ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ ｃ ｆ Ｎ Ｓ Ｃ ． 【 Ｍ ｅ ｔ ｈ ｏ ｄ ｓ 】Ｔ ｈ ｅ ｃ ｅ ｒ ｅ ｂ ｒ ｕ ｍ ｓ ｆ ｏ ｒ ａ ｔ ｅ ｍ ｂ ｒ ｙ ｏ ｓ
化， Ｑ — Ｐ Ｃ Ｒ检测分化过程中 Ｈ Ｅ Ｓ １ 和Ｍ Ａ Ｓ Ｈ １ 的表达变化。【 结果】 神经球悬浮培养和单层贴壁培养均可得到的 Ｎ Ｓ Ｃ ； 分化 ３ ｄ
后， 在 不加入任何诱 导 因素的情况下 ， 单层 贴壁培养 的 Ｎ Ｓ Ｃ能更 高 比例 ［ （ １ ９ ． ５ ５±１ ． ０ ９ ） ％］ 地分 化为 １ ３ 一 ｔ ｕ ｂ ｕ ｌ ｉ ｎ ｍ阳性细 胞 ；
Ｃｕ ｌ ｔ ｕ ｒ ｅ ｏ ｆ Ｎｅ ｕ ｒ ａ ｌ Ｓ ｌ ｃ ｍ Ｃｅ ｌ ｌ ｉ ｎ Ｖｉ ｔ ｒ ｏ ａ ｎ ｄ ｌ ｈ ｅ Ｅｘ ｐ ｒ ｅ ｓ ｓ ｉ ｏ ｎ Ｃｈ ａ ｎ ｇ ｅ ｓ Ｏ ｆ ＨＥＳ １ ａ ｎ ｄ Ｍ ＡＳ Ｈ１
ｄ ｕｒ ｉ ｎｇ Ｄｉ ｆｅ ｒ ｅ ｎｔ ｉ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ
胎脑神经干细胞的培养及鉴定
１ｃ ｍ脑组织 一块 或 多块 ， 速 浸入 新 配 的中性 福 尔 迅
马林溶 液 ， 固定 ２ 。按 常规 系列 酒精 脱水 、 甲 再 ４ｈ 二 苯透 明 、 温箱 （５～ ６℃ ） 蜡 、 埋 ， 蜡切 片 黏 恒 ５ ５ 浸 包 石
着色较均匀 。室管膜下 区、 马、 海 纹状 体、 丘脑 、 嗅
①免疫组化检测 Ｎ ｓｎ的表达 ： ｅｔ ｉ 胚胎在
娩 出后 ０５ｈ内取 完 整脑 组 织 固定 于 中性 福尔 马林 ．
溶 液 ０ ５～１ｈ 待 脑 外层 稍硬 后 ， ． ， 用手 术 刀刺破 脑 膜 将胎脑组 织固定 ２ 。然后从 不 同部位 切取厚 ０ ５～ ４ｈ ．
２ １ 人 胎 脑 组织 Ｎ ｓｎ的 表达 Ｎ ｓｎ阳 性 着 色 ． ｅｔ ｉ ｅｔ ｉ 为棕黄 色颗 粒 ， 主要位 于神 经干细 胞 的胞 浆 中 ， 别 个 细胞胞 核着 色 。阳性 细 胞 呈 单个 细 胞 或 成 簇存 在 ，
球 、 等 部位 发 现数 量 不 等 的 Ｎ ｓｎ阳 性着 色 细 皮层 ｅｔ ｉ
胞， 小脑 、 干 、 髓部 位未 检测 到 Ｎ ｓｎ阳性 细胞 。 脑 脊 ｅｔ ｉ
于多 聚赖 氨 酸处 理 后 的玻 片 上 ， 温保 存 ， Ｎ ｓｎ 室 行 ｅｔ ｉ
２２ 细 胞 标 志 物 的 鉴 定 将 收 集 到 的 神 经 球 行 ． Ｎ ｓｎ免 疫荧 光染 色 ， 果显示 神经 球 呈绿 色荧 光 。 ｅｔ ｉ 结 原代 培养早 期形 成 的 细胞 团 ， 见 某 些 细 胞 团 中有 仅 散在 的极 少量 阳性 细胞 ， 而培 养 ３～ ４代 后 ， 细胞 球
载玻 片 ） 诱导分化 ５～ ， 出载 玻 片 ， 免 疫荧 光 ， ７ｄ取 行 细胞化 学检测 。
人胚脑组织干细胞的分离、培养与鉴定
人胚脑组织干细胞的分离、培养与鉴定神经干细胞（neural stem cells, NSCs）是一种具有自我更新及广泛分化潜能的细胞，它处于分化的非终末状态，可通过对称或不对称分裂出新的干细胞或分化潜能逐渐变小的子细胞，终于产生中枢神经系统的三种主要细胞，即神经元细胞、星形胶质细胞和少突胶质细胞。
采纳无血清培养和单细胞克隆法可从人胚脑皮层中分别得到具有自我更新和多分化潜能的神经干细胞，并采纳免疫荧光染色对其举行鉴定。
【材料】 1．组织来源胚龄10周自然流产的人胚胎。
2．培养用试剂（1）无钙镁PBS (CMF-PBS )。
(2）消化液：0.25%和0.02% EDTA混合消化液。
3．培养基配方和制备（1)人胚脑组织干细胞培养液：DMEM/F12 (1：1)无血清培养基，含有2% B27,20ng/ml表皮细胞生长因子（epidermalgrowth factor, EGF) ,20ng/ml bFGF。
(2）人胚脑组织干细胞诱导培养液：添加20％的DMEM/Fl2 (1：1)。
4．试验器材眼科直剪、眼科直镊、眼科弯镊、玻璃平皿、200目尼龙滤网、50ml和15ml离心管、手术刀片。
【办法】 1．取材无菌条件下分别出胚胎大脑皮质组织，剥除脑膜及表面血管，在PBS液中漂洗3次。
在含有DMEM/F12的培养液中，用眼科剪将其充分剪碎。
2．消化用0.25%和0.02% EDTA混合消化液消化细胞团5分钟，吸管将细胞团打散，加入含10% FBS的培养液终止反应。
3．分别细胞将细胞悬液移入离心管中，1000r/min离心5分钟，弃上清液。
用巴斯德吸管反复吹打组织碎块至彻低散开，离心洗涤后吹打制成细胞悬液，经100目不锈钢滤网过滤，制成单细胞悬液。
4．接种与培养细胞计数，将细胞以2x106/ml密度接种至培养板上。
置37℃,5% C02饱和湿度的孵箱中培养。
直至NSCs增殖形成神经球后再换液。
首次传代后每3天半量换液。
神经干细胞的培养
神经干细胞的培养一、神经干细胞的分离和传代无菌条件下取新生SD大鼠(出生48h内)脑组织，D-Hanks液充分漂洗后，在解剖显微镜下剥离脑膜，准确分离海马，用眼科剪将海马剪碎后，再转移到DMEM/F12(1:1)加B27 和bFGF(20ng/ml)的无血清培养基，吸管吹打机械分离制作单细胞悬液，台盼蓝染色后细胞计数，调整细胞浓度为5×104~5个/ml，置于24孔培养板中培养，每孔加入细胞悬液500μｌ。
待神经球形成后再次机械分离克隆制作单细胞悬液，仍以5×104个/ml的细胞浓度置于24孔培养板中培养，每孔加入细胞悬液500μｌ。
此后每7d机械分离克隆传代1次，方法同前。
二、BrdU标记将BrdU溶于无血清培养基，过滤除菌后加入神经球形成后再次机械分离克隆制作的单细胞悬液中(BrdU终浓度为5μmol/L)，培养7d待新的神经球形成后，将神经球转移到预先涂布有多聚赖氨酸的培养板中，贴壁2h行BrdU免疫细胞化学染色。
三、神经干细胞的诱导分化选取部分上述传代后形成的次代神经球种植于预先涂布有多聚赖氨酸的24孔培养板中，并加入有血清培养基(含10％胎牛血清的DMEM/F12)，一部分神经球于贴壁2h后行Nestin免疫细胞化学染色，另一部分神经球继续培养，观察其生长分化情况。
另将一部分次代神经球机械分离制成单细胞悬液后加入有血清培养基贴壁培养，7d后分别行Tuj1 、GFAP 、Galc 免疫细胞化学染色。
四、条件培养液的制备取1g鸡胚的后肢骨骼肌组织，加入9mlD-Hanks液中冰浴匀浆15min，离心获得上清液，过滤除菌后，加两倍体积DMEM/F12培养基制成条件培养液备用。
五、神经干细胞的定向诱导分化将一部分次代神经球机械分离制成单细胞悬液后分别加入条件培养液和有血清培养基(含10％胎牛血清的DMEM/F12)中对照贴壁培养，7d后均行ChAT免疫细胞化学染色。
六、免疫细胞化学染色培养细胞用4％多聚甲醛固定30min后，PBS充分漂洗，然后按ABC法分别行鼠抗Nestin，鼠抗Tuj1，兔抗GFAP，鼠抗Galc，鼠抗Brdu免疫细胞化学染色，用DAB和H2O2作为呈色剂，阳性着色为棕黄色。
小鼠胚胎中脑神经干细胞分离、培养及分化
小鼠胚胎中脑神经干细胞分离、培养及分化刘兵;刘洪涛;戴冀斌;彭超华;黄娟【摘要】目的:探讨小鼠胚胎中脑分离神经干细胞的体外培养方法,以获取高纯度的神经干细胞,为神经干细胞的深入研究提供试验材料。
方法:无菌条件下分离孕12~13 d小鼠胚胎中脑曲,制成单细胞悬液,碱性成纤维生长因子(bFGF)和B27存在的培养基中培养扩增,通过免疫细胞化学染色鉴定神经干细胞及子代细胞的分化方向,流式细胞术检测TH阳性神经元比例。
结果:培养的部分细胞体外分裂增殖,同时表达神经干细胞特异性抗原nestin,并向神经细胞和胶质细胞分化并经流式细胞仪检测自然分化为多巴胺能神经元的比例为3.25%。
结论:小鼠胚脑中脑存在具有多分化潜能的神经干细胞,它们能在体外稳定培养、传代和分化。
【期刊名称】《长江大学学报：医学卷》【年(卷),期】2006(000)012【总页数】4页(P)【关键词】神经干细胞;培养;分化;中脑【作者】刘兵;刘洪涛;戴冀斌;彭超华;黄娟【作者单位】长江大学医学院;武汉大学医学院;武汉大学医学院;湖北荆州;湖北荆州;湖北武汉【正文语种】中文【中图分类】Q813神经干细胞(neural stem cells, NSCs)是一类广泛存在于胚胎及成体中枢神经系统的早期未分化细胞，被认为是神经系统的“发源地”[1]。
应用神经干细胞移植的方法修复神经系统脑的损伤与治疗人类神经退行性疾病中更显示出其优越性,其中最具有代表性的就是怕金森病，然而，这种方法在患者中广泛应用的障碍就是胚脑移植的问题。
本试验对小鼠胚胎中脑神经干细胞的分离和培养进行了尝试，为神经干细胞的进一步研究奠定基础。
1 材料与方法1.1 材料1) 实验动物孕12～13 d昆明小鼠(E12～13 d，SPF级)，由武汉大学医学院实验动物中心提供。
2) 试剂 DMEM/F12培养基，特优级胎牛血清(FBS),B27均购自GIBCO公司；碱性成纤维生长因子(bFGF)购自Peprotech公司；胰酶(Trypsin)、DNA酶1(DNase1)、左旋多聚赖氨酸(PLL)和DAPI购自SIGMA公司。
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朱琼，女，1990年生，重庆市人，汉族，2009年第三军医大学毕业，在读硕士，主要从事神经干细胞治疗阿尔茨海默病的作用及机制研究。
通讯作者：徐亚丽，博士，副主任医师，副教授，解放军第三军医大学第二附属医院超声科，重庆市 400037Zhu Qiong, Studying for master’s degree, Department of Ultrasound, Second Affiliate Hospital of Third Military Medical University, Chongqing 400037, China Corresponding author: Xu Ya-li, M.D., Associate chief physician, Department of Ultrasound, Second Affiliate Hospital of Third Military Medical University, Chongqing 400037, China神经干细胞的培养鉴定及分化朱 琼1，皋月娟2，高顺记1，陈 重1，刘 政1，徐亚丽1(1解放军第三军医大学第二附属医院超声科，重庆市 400037；2解放军第三○二医院超声科，北京市 100039)引用本文：朱琼，皋月娟，高顺记，陈重，刘政，徐亚丽. 神经干细胞的培养鉴定及分化[J].中国组织工程研究，2017，21(17):2708-2713. DOI: 7.17.014 ORCID: 0000-0002-1810-5009(朱琼) 文章快速阅读：不仅能分化为多种类型的神经细胞替代缺失神经组织，同时能产生多种细胞因子，如脑源性神经营养因子、神经生长因子及胶质源性神经营养因子等，并促进突触发生，调节其可塑性，且能重建部分环路和功能，是神经元替代治疗的理想靶细胞。
细胞分化：指同一来源的细胞逐渐由全能到多能，最后到单能，从而产生形态功能不同的细胞群的过程，其本质是基因组在时间和空间上的选择性表达。
如神经干细胞能分化为多种类型神经细胞：星形胶质细胞、小胶质细胞及神经元。
同时该过程受局部微环境调节，多种理化因素都能诱导全能细胞产生分化，如血清诱导神经干细胞分化。
摘要背景：神经干细胞在神经损伤修复和退行性疾病中有广泛的应用前景，体外培养鉴定及促神经元诱导分化是后续研究的基础。
目的：采用悬浮神经球培养法分离培养神经干细胞并对其鉴定，了解生物学特性。
方法：采用悬浮神经球培养法从C57BL/6胎鼠大脑半球分离培养神经干细胞，观察形态特征及超微结构，CCK-8法绘制生长曲线，流式细胞仪检测细胞周期，免疫荧光法检测特异性标志蛋白Nestin 的表达；用体积分数为1%和10%的血清诱导分化后，免疫荧光法检测GFAP 、βⅢ-tubulin 和MBP 的表达。
结果与结论：①体外培养得到悬浮生长的神经球，生长曲线和细胞周期表明细胞增殖力强；②透射电镜观察到神经干细胞核浆比高，呈未分化状态；③Nestin 免疫荧光阳性；④不同体积分数的血清诱导后均可分化为星形胶质细胞、神经元和少突胶质细胞，体积分数为1%血清能诱导分化得到更多的神经元细胞；⑤结果表明，采用悬浮神经球培养法成功分离培养得到了神经干细胞，低体积分数血清有利于神经干细胞向神经元分化。
关键词：干细胞；分化；神经干细胞；培养；鉴定；血清；诱导分化；国家自然科学基金 主题词：神经干细胞；细胞, 培养的；血清；细胞分化；组织工程 基金资助：Cultivation, identification and differentiation of neural stem cellsZhu Qiong 1, Hao Yue-juan 2, Gao Shun-ji 1, Chen Zhong 1, Liu Zheng 1, Xu Ya-li 1 (1Department of Ultrasound, Second Affiliate Hospital of Third Military Medical University, Chongqing 400037, China; 2Department of Ultrasound, the 302nd Hospital of PLA, Beijing 100039, China)AbstractBACKGROUND: Neural stem cell transplantation is an emerging therapeutic option in the recovery of neural lesions and neurodegenerative diseases. Neural stem cell culture and differentiation lay a foundation for the further study.OBJECTIVE: To improve the techniques for the isolation, cultivation, differentiation and identification of neural stem cells, and to explore the biological characteristics of cells.METHODS: The neural stem cells from C57BL/6 fetal rats were isolated and cultured in vitro using neurophere culture method followed by morphological and ultrastucture examination. The growth curve and cell cycle of passage 3 cells were drawn and analyzed. Nestin expression was tested by immunofluorescence. Neural stem cells induced in 1% and 10% fetal bovine serum were identified using anti-GFAP, anti-βIII -tubulin and anti-MBP by immunofluorescence.RESULTS AND CONCLUSION: The neurospheres exhibited strong cell proliferation ability. Under transmission electron microscope, there was a high nuclear/cytoplasmic ratio in the neural stem cells, indicating a lowdifferentiation degree. Immunofluorescence analysis revealed that neural stem cells were positive for Nestin. The induced cells were positive for GFAP, βIII -tubulin, and MBP, indicating these cells were induced to differentiate into astrocytes, neurons and oligodendrocytes, and there were more neurons in 1% fetal bovine serum than thosein 10% fetal bovine serum. In conclusion, we could successfully isolate neural stem cells in C57BL/6 mice, and low concentration of fetal bovine serum contributes to more neurons differentiated from neural stem cells.Subject headings: Neural Stem Cells; Cells, Cultured; Serum; Cell Differentiation; Tissue EngineeringFunding: the National Natural Science Foundation of ChinaCite this article: Zhu Q, Hao YJ, Gao SJ, Chen Z, Liu Z, Xu YL.Cultivation, identification and differentiation of neural stem cells. Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu. 2017;21(17):2708-2713.0 引言Introduction神经干细胞是神经系统内具有自我复制更新和多向分化潜能的细胞[1-2]。
许多神经系统疾病都与神经干细胞数量及功能紊乱有关[3]，因此神经干细胞在神经损伤修复和退行性疾病中有广泛的应用前景[4-6]，如肌萎缩侧索硬化症、阿尔茨海默症、脑卒中等[7-9]。
神经干细胞散在分布于成年哺乳动物的大脑内，主要是海马齿状回颗粒下层和侧脑室的室管膜下区[10]，且具有自我更新能力，能分化为胶质细胞和神经元[11-12]，同时体内的神经干细胞具有向损伤区迁移的能力，但迁移数量和再生能力有限[13-14]，所以神经干细胞的体外扩增培养、移植及定向分化是目前研究的热点。
研究表明，将人源性的神经干细胞移植到大鼠体内，能有效改善认知功能，为神经退行性疾病提供了新的治疗方法[15]。
实验采用悬浮神经球培养法分离培养孕12-14 d C57BL/6胎鼠大脑半球神经干细胞，观察神经干细胞的形态及生物学特征，并采用不同浓度血清诱导神经干细胞分化，为应用细胞移植治疗神经系统疾病提供理论依据。
1材料和方法Materials and methods1.1 设计细胞观察性实验。
1.2 时间及地点于2015年6至12月在第三军医大学第二附属医院中心实验室完成。
1.3 材料1.3.1 实验动物孕12-14 d C57BL/6小鼠，体质量25-35 g，由第三军医大学实验动物中心提供，许可证号为SCXK(渝)2005-0007。
实验过程中对动物处置符合动物伦理学标准。