金属螯合层析介质
金属螯合亲和层析介质用于六聚组氨酸融合蛋白的纯化研究

李淑娟等:金属萱台亲和层析介质用于六聚组氨酸融台蛋白的纯化研究度测定结果可粗略计算:200血裂解液纯化后所得cDl55D1融合蛋白量约为200旭。
2.5co.cM.Asp-sephar∞e用于六聚组氨酸融合蛋白大量纯化的初步研究根据小量纯化的优化条件,将介质体积放大25倍纯化六聚组氨酸融合蛋白cDl55Dl,取50%的co-cM.A叩一sephar姻e悬浮液1.5mL与5mL含cDl55Dl的细胞裂解液孵育,co.cM.A8p.s8pIl哪se悬浮液装入层析柱中,洗柱后用5mL含200mml,L咪唑的c液洗脱蛋白,收集洗脱液5mL。
用Bmd州法测定蛋白浓度并计算可知蛋白质总量为4.6n蜗。
2.6Co・CM-Asp.sepharo辨与Ni・NTA・A辨ro辨的比较将co.cM.Asp—seph删se与商品化Ni—N1俳Agarose进行蛋白纯化的比较,取50%的co-cM.A8p.sephalose悬浮液和50%的Ni.NTA.A静ro特悬浮液各60皿分别与200ftL含六聚组氨酸融合蛋白gp4l(分子量36kD)的细胞裂解液孵育,并按各自清洗溶液对介质清洗后洗脱蛋白,对纯化后的剩余液和洗脱液进行sDS.PAGE,结果如图6所示。
从图6中可看出经c0.CM.Asp.sepharo∞与Qiagen公司的Ni.N1rA.A∞”介质纯化后剩余液中蛋白质的组成几乎一样,洗脱得到卵41蛋白的量相当,说明两者蛋白结合容量差别不大。
但是,以Ni.NTA.A朗f08e纯化后的洗脱液电泳结果中可见有少量杂蛋白的条带,而且与co.cM.Asp.s印har∞e相比,Ni,MrA.Ag啪眈介质纯化后剩余液泳道中杂蛋白减少较多,说明有较多的杂蛋白非特异性结合到Ni.NTA.Agm”介质上,便影响了纯化后所得蛋白的纯度。
这与文献中报道含镍螯台介质可与不含六个组氨酸残端的蛋白结合,因而会表现出一定非特异性吸附的结果一致““。
而以co-cM.Asp.sepharose纯化的洗脱液电泳条带中不存在杂蛋白,可见co—cM.Asp.sephamse对融合蛋白选择性高,非特异性吸附降低,因而表现出较好的纯化效果。
纯泰镍离子金属螯合亲和层析介质(Ni-NTA)使用说明书(完全版)[1]
![纯泰镍离子金属螯合亲和层析介质(Ni-NTA)使用说明书(完全版)[1]](https://img.taocdn.com/s3/m/274baf4ec850ad02de8041eb.png)
mM Tris·Cl,用高浓度HCl调节pH至6.3。 z 缓冲液G: 8 M Urea,100 mM NaH2PO4,100
mM Tris·Cl,用高浓度HCl调节pH至4.5。 各种溶液配制完毕后,最好进行脱气处理,0.45 μm滤膜过滤备用。 注:也可按照可溶性蛋白的缓冲液配制与操作方式 进行,只需在缓冲液中加入8M脲或6M盐酸胍。
让介质自然沉降。
3) 从上端管口将另一垫片缓慢推至介质沉降平
面,使介质表面保持水平状态,注意避免垫片
与介质接触面滞留气泡(如对实验要求并非十
分严格,为提高流速,可不覆盖上垫片)。
4) 在使用一段时间后,如果层析柱流速减慢,可
先用小镊子沿边缘将垫片推翻,夹出垫片,倒
出介质,清洗或更换新的垫片后,按2)、3)所
层析柱中;静置30min,让介质自然沉降。
3) 从上端管口将转换杆出液端缓慢推至介质沉降
平面,使介质表面保持水平状态,注意避免转
换杆与介质接触面间滞留气泡。
4) 在使用一段时间后,如果流速减慢,可先卸下
上转换杆,将介质倒出,再取出下转换接头中
滤网,清洗或更换后重新装柱。
4. 过柱:
1) 用5~10倍介质体积的缓冲液A平衡亲和柱;
六、 实验实例
1. Ni-NTA Agarose 纯化 His-tag 蛋白 z 层析介质:纯泰®NTA 1ml;对照介质(国际领
先品牌)1ml z 样品:表达可溶性 His-tag 融合 thioredoxin 的
大肠杆菌 BL21 裂解液 z 结合缓冲液:10mM Na2HPO4,1.8mM KH2PO4,
3. 操作步骤:
生化分析实验金属螯和层析MCAC_XP

• Column: Glutathione Sepharose 4B, pre-packed • Binding: PBS + 1% Triton X-100 • Elution: 5 mM Glutathione, 50 mM Tris.HCl,
金属螯合层析的介质通常是在惰性 支持物上接有固定化的金属离子, 组氨酸与金属离子具有螯合作用, 对于具有不同组氨酸含量的不同蛋 白质分子对于一定金属离子的亲和 力大小不同 ,因而可通过柱层析进 行分离。
二、金属螯合剂
在Sepharos上接有亚氨基二乙酸 Iminodiacetic acid , IDE 将氯化锌或硫酸铜等溶液通过该柱时即
Affinity tag
Ligand
Glutathione-S-Transferase (GST) Glutat
Nickel ions
E tag sequence
Anti-E antibody
ZZ (domain B of protein A) IgG
M GuHCl (depends on tag) • A protease cleavage site allows the tag to be
removed after purification • Purity typically >90% in one step
Elution with Competing free ligand
四、实验方法
20mM, pH8.0 PBS+0.5M NaCl + CuSO4 平衡Buffer平衡 上样 改变 pH 或 离子强度洗脱 50mM EDTA 再生除去金属离子
镍离子金属鳌合亲和层析介质(Ni-NTA)说明

镍离子金属鳌合亲和层析介质(Ni-NTA)说明书一、简介金属螯合亲和层析介质,又称固定金属离子亲和色谱,其原理是利用蛋白质表面的一些氨基酸,如组氨酸能与多种过渡金属离子如Cu2+,Zn2+,Ni2+,Co2+,Fe3+发生特殊的相互作用,能够吸附富含这类氨基酸的蛋白质,从而达到分离纯化的目的。
因此,偶联这些金属离子的琼脂糖凝胶就能够选择性地分离出这些含有多个组氨酸的蛋白以及对金属离子有吸附作用的多肽、蛋白和核苷酸。
半胱氨酸和色氨酸也能与固定金属离子结合,但这种结合力要远小于组氨酸残基与金属离子的结合力。
镍NTA亲和层析介质(Ni-NTA )具有特异性好、流速快的优点,颗粒粒度均匀,粒径小,并且螯合镍更稳定,能耐受更高的还原剂,物理和化学稳定性好,批次重复性好。
本产品已经螯合好镍离子,使用更方便。
二、性能参数:三、适用范围分离带His标签的重组蛋白及能被金属离子吸附的多肽、蛋白、核苷酸、磷酸化蛋白。
四、应用实例实验名称:Ni-NTA 分离带His标签的重组蛋白实验步骤:1、Ni-NTA 装柱,1.6×20cm,柱床体积为10ml;2、用缓冲液1平衡2~5个床体积,流速为2ml/min;3、将20ml细胞破碎液(50mM PBS,pH7.4,0.5M NaCl)0.45μm滤膜过滤,上样,流速为1ml/min;4、用缓冲液1再洗2~5个床体积,流速为2ml/min;5、用分别含10、20、50、100、200、300、400mM咪唑的缓冲液3进行阶段洗脱,流速为2ml/min,收集各阶段洗脱峰,用SDS-PAGE检测融合蛋白的分子量大小和纯度;6、用纯水流洗5个柱床体积,再用20%的乙醇流洗3个柱床体积,流速为2ml/min,柱子置于+4-8℃环境中保存。
缓冲液组成:缓冲液1:50mM pH7.4的PBS缓冲液。
配制:0.5M NaH2PO419ml,0.5M Na2HPO481ml,NaCl 29.3g,加适量水溶解后定容到1000ml。
实验十一 金属螯合亲和层析分离蛋白质

实验十一金属螯合亲和层析分离蛋白质【实验目的】1.学习亲和层析的原理。
2.掌握亲和层析法分离蛋白质的技术与操作。
【实验原理】亲和层析是以普通凝胶作载体,连接上金属离子制成螯合吸附剂,用于分离纯化蛋白质,这样的方法称为金属螯合亲和层析。
蛋白质对金属离子具有亲和力是这种方法的理论依据。
已知蛋白质中的组氨酸和半胱氨酸残基在接近中性的水溶液中能与镍或铜离子形成比较稳定的络合物,因此,连接上镍或铜离子的载体凝胶可以选择性地吸附含咪唑基和巯基的肽和蛋白质。
过渡金属元素镍在较低pH范围时(pH 6-8),有利于选择性地吸附带咪唑基和巯基的肽和蛋白质,在碱性pH时,使吸附更有效,但选择性降低。
金属螯合亲和层析行为在很大程度上,由被吸附的肽和蛋白质分子表面咪唑基和巯基的稠密程度所支配,吲哚基可能也很重要。
本实验室纯化的目的蛋白是用IPTG诱导表达的pGFPuv,该蛋白是和6His融和表达的,含有特定的组氨酸标记物,这种可溶性蛋白质能用金属亲和层析法进行分离,且操作简单,快速,纯化效率高。
【试剂与器材】〈一〉试剂1. 0.05mol/L EDTA—0.5mol/L ,NaCL溶液100mL2. 2mol/L NaCL 溶液50mL3. 1mol/L NaOH溶液50mL4. 0.2mol/L NiSO4溶液50mL5. 平衡缓冲液:50mmol/L Tris-HCL,500mmol/L NaCL,pH7.0 500mL6. Ni2+Chelating Sepharose Fast Flow 5-10 mL7. 重组pGFPuv质粒大肠杆菌工程菌经诱导表达的细胞裂解蛋白样品20—50ml8. 洗涤液:50mmol/L咪唑,50mmol/L Tris-HCL,500mmol/L NaC,pH 7.09. 洗脱液:300mmol/L咪唑,50mmol/L Tris-HCL,500mmol/L NaCL.pH7.010 20%乙醇溶液50ml〈二〉器材1. 1.5cm X 50cm层析柱2. 蠕动泵3. 紫外检测仪4. 自动收集器5. 伍豪色谱工作站【操作方法】1. 样品的制备细胞的培养及荧光蛋白表达看实验十,细胞的破碎及蛋白的收集如下:收集在25 ℃用细胞培养液,8000r/min,离心5min,去上清液,菌体用平衡缓冲液洗涤一次,离心收集菌体,用三分之一(细胞培养液)体积的平衡缓冲液充分悬浮,冰浴下进行高压破菌处理。
金属螯合层析MCAC_XP1

四、实验方法
20mM, pH8.0 PBS+0.5M NaCl + CuSO4 平衡Buffer平衡 上样 改变 pH 或 离子强度洗脱 50mM EDTA 再生除去金属离子
Affinity-tagged fusion proteins
Matrix
Specific ligand
Recombinant fusion proteins
Deliberately designed for affinity purification
Affinity tag
Ligand
Glutathione-S-Transferase (GST) Glutathione Oligo(Histidine) Nickel ions E tag sequence Anti-E antibody ZZ (domain B of protein A) IgG Protein aros上接有亚氨基二乙酸 Iminodiacetic acid , IDE
将氯化锌或硫酸铜等溶液通过该柱时即 可制备出锌或铜等金属螯合剂。
IDE Na+
三、影响吸附的因素
1. 与金属离子的性质有关 Cu2+、Zn2+、Ca2+、Ni2+、 Mg2+等 2. 与样品的性质有关 His含量不同 His分布位置不同 Buffer 的 pH 及 离子强度
第七章 金属螯合层析
一、基本原理 金属螯合层析 Metal Chelate Chromatography, MCC 又称为固定化金属离子吸附层析 Immobilized Metal Ion Adsorption Chromatography, IMAC 金属螯合层析是利用不同蛋白质分子表面所含 组氨酸的差别而将其分离纯化的一种层析技术。 金属螯合层析的介质通常是在惰性支持物上接 有固定化的金属离子,组氨酸与金属离子具有 螯合作用,对于具有不同组氨酸含量的不同蛋 白质分子对于一定金属离子的亲和力大小不同 , 因而可通过柱层析进行分离。
ida金属螯合亲和层析介质

ida金属螯合亲和层析介质引言:ida金属螯合亲和层析介质是一种重要的生物分离技术,广泛应用于生物医学、生物化学和生物工程等领域。
它是通过金属离子与靶分子之间的特异性配位作用,实现对靶分子的高效分离和纯化的方法。
本文将介绍ida金属螯合亲和层析介质的原理、制备方法、应用领域及发展前景。
一、ida金属螯合亲和层析介质的原理ida金属螯合亲和层析介质的原理基于金属离子与靶分子之间的特异性配位作用。
ida(亚铁二胺四乙酸)是一种广泛应用的金属螯合剂,它能够与多种金属离子形成稳定的配合物。
通过将ida固定在载体上,可以构建ida金属螯合亲和层析介质。
二、ida金属螯合亲和层析介质的制备方法制备ida金属螯合亲和层析介质的方法主要包括固定化ida的选择、载体的选择和固定化方法的选择。
固定化ida时,可以选择将ida 直接固定在载体上,也可以选择使用交联剂将ida与载体交联。
常用的载体包括琼脂糖、聚丙烯酰胺凝胶等。
三、ida金属螯合亲和层析介质的应用领域ida金属螯合亲和层析介质在生物医学、生物化学和生物工程等领域有广泛的应用。
在生物医学领域,ida金属螯合亲和层析介质可用于药物分离纯化、疾病诊断和治疗等方面。
在生物化学领域,ida 金属螯合亲和层析介质可用于蛋白质纯化、酶分离和多肽合成等方面。
在生物工程领域,ida金属螯合亲和层析介质可用于基因工程药物的纯化和制备等方面。
四、ida金属螯合亲和层析介质的发展前景ida金属螯合亲和层析介质作为一种高效、选择性的分离技术,具有广阔的发展前景。
随着生物医学和生物工程领域的不断发展,对高纯度生物分子的需求越来越大,ida金属螯合亲和层析介质作为一种有效的分离工具将会得到更广泛的应用。
同时,随着新型材料和新型固定化方法的不断涌现,ida金属螯合亲和层析介质在分离效率和选择性上将会有更大的突破。
结论:ida金属螯合亲和层析介质是一种重要的生物分离技术,通过金属离子与靶分子之间的特异性配位作用,实现对靶分子的高效分离和纯化。
镍离子金属螯合亲和层析介质使用说明书(完全版)

让介质自然沉降。
3) 从上端管口将另一垫片缓慢推至介质沉降平
面,使介质表面保持水平状态,注意避免垫片
与介质接触面滞留气泡(如对实验要求并非十
分严格,为提高流速,可不覆盖上垫片)。
4) 在使用一段时间后,如果层析柱流速减慢,可
先用小镊子沿边缘将垫片推翻,夹出垫片,倒
出介质,清洗或更换新的垫片后,按2)、3)所
6. 介质保存
4℃~8℃条件下,介质可长期保存于20%乙醇 中。
7. SDS-PAGE检测:
1) 不同浓度SDS-PAGE分离胶分离范围
-2-
分离胶浓度 6% 8% 10% 12% 15%
分离范围 50~150kD 30~90kD 20~80kD 12~60kD 10~40kD
2) SDS-PAGE操作流程
镍离子金属螯合亲和层析介质使用说明书(完全版)
一、 简介
三、 适用范围
金属螯合亲和层析,又称固定金属离子亲和色 谱,其纯化原理是利用蛋白质表面的组氨酸与多种 过渡金属离子如Cu2+,Zn2+,Ni2+,Co2+,Fe3+形成 配位相互作用,从而能够吸附富含这类氨基酸的蛋 白质,从而达到分离纯化的目的。因此,固定有这 些金属离子的琼脂糖凝胶就能够选择性地纯化这 类含有多个组氨酸的蛋白以及多肽和核苷酸。半胱 氨酸和色氨酸与固定金属离子结合力要远小于组 氨酸残基,对纯化影响不大。
二、 性能参数
特点
基质 配体 配体密度 吸附载量 介质平均粒径 最大流速
pH范围
保存温度 保存液体
特殊NTA、IDA结构设计,蛋白载 量大,专一性高,使用寿命长
6%的交联琼脂糖凝胶
NTA-Ni2+/
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金属螯合层析介质(征求意见稿)编制说明《金属螯合层析介质》国家标准起草工作小组二〇一九年一月《金属螯合层析介质》国家标准编制说明(征求意见稿)一、任务来源本国家标准的制定任务列入国家标准化管理委员会专项《国家质量基础的共性技术研究与应用》项目《生物产业共性技术标准研究》中课题《海洋生物产品质量控制与检测技术标准研究》,项目编号“2016YFF0202304”。
本项任务由中国标准化研究院提出并归口,定于2019年完成。
本标准起草工作组由中国科学院过程工程研究所等单位共同组成。
二、目的和意义金属螯合层析是近40年来出现的一种亲和层析技术,也称固定化金属离子亲和层析。
它于1975年首先被Porath和他的合作者们成功用于分离纯化人血清蛋白,并在此后的三十年里迅速发展。
该法利用蛋白质表面的某些氨基酸和金属离子发生特殊的相互作用的原理,从而实现蛋白质分离。
高流速琼脂糖金属螯合层析介质是将亚氨基二乙酸(IDA)、次氮基三乙酸(NTA)等配基键合在高流速琼脂糖微球上,并螯合金属离子Ni2+(或其它金属离子)而形成的一种亲和层析介质[1](图1)。
该类层析介质具有吸附容量大、选择性好、分辨率高、易于再生以及成本较低等优点,在标签蛋白等生物大分子纯化领域具有极为广泛的应用。
图1 金属螯合层析介质(IDA)结构示意图(X可以是H2O、缓冲液中离子以及蛋白配体等)目前国内外已有多家企业进行金属螯合层析介质的生产,由于缺乏相应的国家标准,金属螯合层析介质的性能要求没有统一标准,从而对其应用造成很大困扰,严重阻碍该类介质和层析技术的应用发展水平,对我国生物产业产生不利影响。
以金属螯合层析介质的载量测定方法为例,一种方法是将介质装柱并连在层析仪上,平衡后经含有His-乳酸脱氢酶的样品上样,上样结束后,依次经淋洗和洗脱,收集洗脱液,根据洗脱液中蛋白含量计算洗脱载量;另一种方法是用纯His-乳酸脱氢酶上样,依次经平衡和洗脱,收集洗脱液,根据洗脱液蛋白含量计算洗脱载量。
这两种方法测定同一介质样品得到的结果具有明显差异。
类似问题也出现在其他的参数测定上。
因此建立关于金属螯合层析介质的国家标准具有重要意义。
在此基础上,通过标准化工作提高介质及相关技术发展水平,促使我国相关产业在国际贸易方面取得话语权,推动我国层析介质及相关产业在国际上占有一席之地。
三、标准制定原则(一)标准编制原则金属螯合介质属于生物体系分离材料,重点围绕介质的主要性能要求,设定相应技术内容。
在确保产品质量的基础上,充分体现产品的特点。
(二)标准制订主要依据1、标准编写遵循GB1.1-2009《标准化工作导则第1部分:标准的结构和编写规则》的有关要求。
2、标准编写内容参考我国与化学品相关的法规、标准,包括GB/T 601 化学试剂标准滴定溶液的制备、GB/T 603 化学试剂试验方法中所用制剂及制品的制备等等。
四、标准主要技术内容(一)标准适用范围的说明本标准规定了金属螯合层析介质的质量要求、检测方法、检验规则、标志、包装、运输和贮存的标准。
本标准适用于骨架为琼脂糖微球的金属螯合层析介质的生产与检测。
(二)内容提要金属螯合层析介质的主要理化性质包括外观、粒径、流速、配基密度、动态载量、微生物污染和化学稳定性等。
2.1 外观2.1.1 方法提要采用光学显微镜观测金属金属螯合层析介质的外观形貌。
光学显微镜使用普及率高,可观测范围一般在数微米到数百微米之间,样品处理过程和观测过程都简便易行,观测结果清晰、重复性好,是常用的材料外观表征方法之一[2]。
金属螯合层析介质的外观形貌主要包括球形和透明性,其尺寸大小在光学显微镜的测量范围内[3]。
2.1.2 试剂和材料实验用水应符合GB/T 6682-1992中三级要求。
光学显微镜。
砂芯漏斗为G3(4.5-9 μm)。
真空泵极限真空0.1MPa。
2.1.3 样品前处理用量筒量取5 mL金属螯合层析介质,置于50 mL砂芯漏斗中。
用三级水清洗5次每次2 min,抽干5 min。
将洗净的琼脂糖白球置于烧杯中,琼脂糖白球上应有2 cm的三级水。
混匀后得到琼脂糖白球与水的混合体系。
2.1.4 样品观测用塑料吸管吸取1 mL金属螯合层析介质与水的混合体系置于载玻片上,调整显微镜放大倍数。
以视野里80%以上面积均为白球为标准,用塑料吸管增减载玻片上的微球,最后用盖玻片压上。
调节光学显微镜焦距,使视野中的影像清晰。
拍摄金属螯合层析介质照片并保存。
图2 金属螯合层析介质光学显微镜照片2.1.5 方法验证为了确定检验方法,标准起草单位已委托三家单位对方法进行复核验证。
2.2 粒径及其分布2.2.1 方法提要粒径和粒径分布是微球最基本的性质参数,对流速和分辨率均有重要影响[2]。
金属螯合层析介质是球形颗粒,其大小用直径来量度。
微球用于生化分离介质时,其粒径通常较小。
常见的金属螯合层析介质粒径范围是45-165μm,平均粒径是90μm[4]。
分辨率更高的一类金属螯合层析介质,其平均粒径为34μm。
采用激光粒度分析仪测定金属螯合层析介质的粒径方法十分简便[2]。
平均粒径及其粒径分布的定义如下:其中d B i为单个介质的粒径,d B n为所统计的一定数量介质颗粒的平均值,N 为所统计的介质颗粒的数目。
2.2.2 试剂和材料实验用水应符合GB/T 6682-1992中三级要求。
砂芯漏斗为G3(4.5-9 μm)。
真空泵极限真空0.1MPa。
2.2.3 样品前处理方法同2.1.3。
2.2.4 样品测定设置测量颗粒类型为通用型,分散剂类型为水,分析模式为单峰模式,添加样品进行测定。
通过激光粒度仪的检测结果包括平均粒径值及其分布图。
以45-165 μm为例,根据粒径分布(如图1中表格)按公式(1)计算该粒径范围内微球数量所占百分比。
(1)式中:W粒径——45-165 μm粒径范围内微球数量所占百分比,单位是%;W1,W2,……W x——符合45-165 μm范围的各粒径范围百分比,例如图1中45.709 μm-52.481 μm的球所占百分比为5.35%。
体积平均粒径按公式(2)计算: (2)图3 金属螯合层析介质粒径分布图2.2.5 允许差同一试样三次测定结果之差,应不超过平均值的5%。
表1 精密度试验(n=3)试验序号平均粒径值(μm)1 88.982 88.703 89.01x 88.90s 0.17RSD(%) 0.19%2.2.6 方法验证为了确定检验方法,标准起草单位已委托三家单位对方法进行复核验证。
2.3 配基密度(金属离子(Ni2+)密度)测定2.3.1 方法提要金属螯合层析法是利用蛋白质表面的某些氨基酸和金属离子发生特殊的相互作用的原理,从而实现蛋白质分离。
因此金属螯合层析介质上的金属离子Ni2+(或其它金属离子)的数量对蛋白的吸附量有很大的影响。
检测时将一定量的Ni2+与未螯合金属离子的介质反应,将反应后剩余的Ni2+进行定量,即可算出金属螯合层析介质螯合的金属离子的量。
该方法操作简单,精确性好,可重复性较高。
2.3.2 试剂和材料乙二胺四乙酸二钠,基准氧化锌,浓盐酸,氨水,氯化铵,铬黑T,六水合硝酸镍,紫脲酸铵,无水乙醇,氯化钠,盐酸羟胺,天平,容量瓶,广口瓶,层析柱(Φ1.00 cm×20.00 cm),滴定管。
2.3.3 样品前处理用量筒量取5 mL金属螯合层析介质,置于50 mL砂芯漏斗中。
用三级水清洗5次每次2 min,再用0.1 mol/L EDTA 溶液清洗5次每次5min将介质上螯合的金属离子清洗净,最后用三级水清洗5次每次2 min,抽干5 min。
2.3.4 装柱称取2.00 g抽干的偶联IDA(或NTA)配基的琼脂糖微球(未螯合金属离子),将其与水的混合浆液倒入层析柱中,堵住柱子出口,静置,待柱床层稳定。
柱子上端充满水,放入上筛板。
打开柱子入口,连续向柱中通入三级水(10个柱体积),保持床层稳定。
2.3.5 样品检测准确量取50 mL标定的0.05 mol/L 的Ni(NO3)2•6H2O溶液,匀速通过柱内,立即收集流出液;用去离子水洗涤珠体表面未被吸附的Ni2+离子,同时收集流出液,同上步收集的流出液混合。
反应后的Ni(NO3)2溶液用氨水调节pH值至7~8,加入50 mL氨-氯化铵缓冲液乙,0.25g紫脲酸胺指示剂,用0.1mol/L的EDTA标准溶液进行滴定至溶液由黄色变为紫色为终点。
记录所消耗的EDTA标准溶液的体积,进行计算。
2.3.6 结果表示根据公式(2)计算湿胶Ni2+的螯合量:C N2+=CEDTA´(VEDTA,0-VEDTA,1)W´1.42´1000 (2)式中,C N2+——湿胶Ni2+的螯合量,单位为微摩尔每毫升μmol/ml;C EDTA——EDTA 标准溶液的浓度,单位为摩尔每升mol/L;V EDTA,0——反应前的Ni(NO3)2溶液消耗EDTA标准溶液的体积,单位为毫升mL;V EDTA,1——反应后收集到的Ni(NO3)2溶液消耗EDTA标准溶液的体积,单位为毫升mL;W——称量的样品重,单位为克g;1.42——1g湿胶的体积为1.42 mL。
2.3.7 允许差同一试样三次测定结果之差,应不超过平均值的5%。
表精密度试验(n=3)试验序号Ni2+离子密度(umol/ml)1 53.322 57.903 56.20x 55.81s 2.32RSD(%) 4.15%2.3.8 方法验证为了确定检验方法,标准起草单位已委托三家单位对方法进行复核验证。
2.4 动态载量2.4.1 方法提要金属螯合层析介质的动态载量是表征介质动态吸附平衡的参数之一,它是指每克干介质或每毫升湿介质在一定操作条件下吸附某一特定物质的实际容量。
“一定的操作条件”是指所用的缓冲液的种类、工作液的pH值、杂质存在情况及操作流速等特定的操作条件。
在层析柱内操作时,其与流速有关,因此,动态吸附性能又称为动力学容量[4],在实际生产中较好的动态载量能更有效的提高生产效率,降低生产成本。
本方法先将金属螯合介质装柱,再使用层析系统将足够量的目标蛋白吸附到金属螯合介质上,最后将吸附上的蛋白洗脱并收集,根据洗脱液蛋白含量计算动态载量。
层析系统操作简便,自动化程度高,测定重复性好,是测定金属螯合层析介质动态载量的通用方法。
2.4.2 试剂和材料组氨酸标记蛋白冻干粉,十二水合磷酸氢二钠,二水合磷酸二氢钠,氯化钠,咪唑。
中低压蛋白层析系统。
紫外分光光度计。
pH计。
层析柱(Φ1.60cm×20.00 cm)。
过滤装置。
微滤膜:0.45μm。
真空泵极限真空0.10 MPa。
2.4.3 样品前处理方法同2.1.3。
2.4.4装柱将介质与水的混合浆液倒入层析柱中,堵住柱子出口,静置,待柱床层稳定(Φ1.60 cm×5.00 cm),柱子上端充满水。