鹅掌楸属群体遗传结构及分子系统地理学研究
中国鹅掌楸遗传多样性研究

中国鹅掌楸遗传多样性研究
刘丹;顾万春;杨传平
【期刊名称】《林业科学》
【年(卷),期】2006(42)2
【摘要】鹅掌楸属(Liriodendron)为古老残遗双种属植物,该属植物在第三纪曾广布于北半球。
由于第四纪冰川的压力,现存于中国的鹅掌楸(L.chinense)处于濒危状态,急需保护。
中国鹅掌楸星散分布于长江流域以南海拔450~1800m 的阔叶林中(方炎明,1994;郝明日等,1995),是优质速生的工业用材树种和园林绿化树种,是我国二级重点保护的濒危树种。
据初步研究,中国鹅掌楸因其星散间断分布型式、群体规模较小、群体结构的衰退趋势和对生境的特定要求,该物种正处在濒危状态(贺善安等,1999)。
因此,
【总页数】4页(P116-119)
【作者】刘丹;顾万春;杨传平
【作者单位】中国林业科学研究院资源信息研究所,北京,100091;中国林业科学研究院林业研究所,北京,100091;东北林业大学,哈尔滨,150040
【正文语种】中文
【中图分类】S718.46
【相关文献】
1.中国鹅掌楸扦插繁殖试验研究 [J], 张富云;赵燕
2.中国鹅掌楸网袋容器育苗轻基质配方的研究 [J], 裴会明;杜坤
3.中国鹅掌楸与北美鹅掌楸种间杂交的胚胎学研究 [J], 尹增芳;樊汝汶
4.中国鹅掌楸与北美鹅掌楸种间杂交的胚胎学研究 [J], 尹增芳;樊汝汶
5.不同中国鹅掌楸种源对镉吸收分配特性研究 [J], 孙小艳;辛在军;刘淑娟;李晓晖;刘建平
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孑遗植物鹅掌楸的研究现状与保护对策

工 业园 区净化 空气 。
2 研 究 现 状
21 生 殖 生 物 学 .
较 高 的北 欧 、 陵 兰 岛 和 阿拉 斯 加 等 地 ; 了 新 生 代 第 三 格 到 纪, 鹅掌楸 广 泛分布 在 欧亚 大陆和 北 美洲 ; 第四纪 冰 J 以 后 『 1
仅 在 我国 的南方 和北 美洲 的东 南部 有 分布 , 为 孑遗植 物 , 成 在 被子 植物 中处 于原 始而 孤立 的地 位 。 由于地理 的变迁 、 残 存 种群 生态 系统 的变化 、 树种 本身 的生物 学 特性 、 然群 体 天
北 美鹅 掌 楸在 原 产地 的 自然结 籽 率仅 为 1% , 引种 0 而 到 南京 明孝 陵的 1株结 籽 率还不 到 1 中 国鹅 掌楸 的自然 %;
结籽 率一般 在 1 %以下 , 些较大 的种群 达 1 . 5 一 8 % 。 9 因此 , 旨在探 讨 鹅掌 楸低 生 育能 力原 因的 生殖 生物学 研究 广泛 开
展、 这 雌
种 子萌 发 率低 以及 人 为 因 素等 影 响 , 致 中 国鹅 掌楸 目前 导
处 于濒 危状 态【 16 l 9 8年 我 国政 府就 将 中国鹅掌 楸 列为 国家 】 。
花粉 品 质 调 查 、 粉 管 生长 过程 观 察 、 器 数 量 与 结 实 率 花 花 的关 系 、 子 与胚 胎 发 育及 胚胎 学 上 一 些超 微 结构 观 察等 种
(T ieF rsyA miirt niJa g i rvn eT ie in x 3 3 0 Ja gi ae f oet ) ‘ ah oet d ns ai in x Po ic ,ah a gi 4 7 0; inx d myo rsr r t o n J Ac F y
马褂木遗传多样性研究

马褂木遗传多样性研究姓名:梁艳学号:13720154 专业:风景园林1.马褂木的研究进展1.1马褂木概述马褂木又名鹅掌楸(Liriodendron Chinense),双飘树,中国特有的珍稀植物,鹅掌楸为木兰科鹅掌楸属落叶大乔木。
叶大,形似马褂,故有马褂木之称。
已被列入国家II 级重点保护野生植物。
马褂木树型笔直、生长发育快,且花形似郁金香,具有较高的观赏价值。
1.1.1地理分布特点主要分布在长江流域以南,其分布区东起浙江省青田县,西直至云南省金平县(103°15’E),北界为陕西省紫阳县(32°38’N),向南也至云南省金平县(22°37’N),我国马褂木天然林分分布于11个省的84个县,再向南一直可延伸到越南北部。
近年来滥砍乱伐现象严重,马褂木天然林种群急剧减少。
贺善安通过调查发现59个分布点的种群个体数均小于10株。
目前只有在西部亚区的武夷山和大类山区有较大的种群分布。
广西分布区内只有三江县、全州县、资源县、融水县、环江县和乐业县等地发现有马褂天然种群。
马褂木天然林的急剧减少,使该物种有瀬危灭绝的危险,所以对马褂木进行种质资源的保护十分迫切。
1.1.2形状特征马褂木为木兰科鹅掌楸属落叶大乔木,随着纬度分布的不同落叶时间也不同,高纬度地区落叶稍早,约在9月~10月,低讳度地区稍晚,约在11月~12月。
树皮呈灰褐色,枝条呈灰色或灰褐色,个别种源的幼稚呈绿色。
叶大,形似马褂,故有马褂木之称;叶互生,叶面呈亮绿或深绿色,叶背灰绿色。
雌雄同株同花,花单生,内二轮花瓣,大部分呈现黄色,花形与郁金香类似,故中国马褂木被誉为“中国郁金香树”。
1.1.3生殖特性一般情况下花的马褂木树龄在15年以上,开花时间为5月,为虫媒花植物。
马褂木面临瀕危的另一个原因是实率较低。
樊汝文、周坚(1992)等通过系统观察分析鶴掌揪开花结果的整个发育过程[9]得到验证。
马褂木种子发芽率较低,一般为5%,最高可达35%,北美鹅掌楸发芽率则比马褂木高很多,北美鹅掌揪一般发芽率为89~90%。
北美鹅掌楸CPP 转录因子家族LtTCX2 基因的克隆与分析

㊀Guihaia㊀Jul.2020ꎬ40(7):998-1009http://www.guihaia-journal.comDOI:10.11931/guihaia.gxzw201908003刘换换ꎬ杨立春ꎬ张成阁ꎬ等.北美鹅掌楸CPP转录因子家族LtTCX2基因的克隆与分析[J].广西植物ꎬ2020ꎬ40(7):998-1009.LIUHHꎬYANGLCꎬZHANGCGꎬetal.CloningandexpressionanalysisofCPPtranscriptionfactorfamilyLtTCX2geneinLiriodendrontulipifera[J].Guihaiaꎬ2020ꎬ40(7):998-1009.北美鹅掌楸CPP转录因子家族LtTCX2基因的克隆与分析刘换换ꎬ杨立春ꎬ张成阁ꎬ郝自远ꎬ李火根∗(南京林业大学ꎬ南方现代林业协同创新中心ꎬ南京210037)摘㊀要:CPP(cystein ̄richpolycomb ̄likeproteinorTesmin/TOS1 ̄like)家族属于成员数目较少的一类转录因子基因家族ꎬ含有保守的富含Cystein的CRC结构域ꎬ在植物发育进程中ꎬ主要参与花发育㊁细胞分裂㊁分子进化等ꎮ为了探索CPP转录因子家族在北美鹅掌楸花发育中的作用ꎬ该文以北美鹅掌楸(Liriodendrontulipifera)为材料ꎬ采用RACE技术克隆出1个CPP ̄like家族基因ꎬ命名为LtTCX2ꎬ全长2866bpꎮ通过NCBI网站在线分析ꎬORF长2424bpꎬ编码了807个氨基酸ꎬ含2个保守的TSO1 ̄likeCXC结构域ꎬ分子量为88699.25Daꎬ理论等电点为5.83ꎬ不稳定系数为62.38ꎬ疏水性平均值为-0.619ꎬ预测为亲水性蛋白㊁非跨膜蛋白㊁核蛋白ꎬ不含信号肽及切割位点ꎮ氨基酸比对及系统进化分析结果显示ꎬLtTCX2与其他物种的CPP家族TCX蛋白具有较高的同源性ꎬ与亚洲莲(Nelumbonucifera)的NnTCX2㊁胡杨(Populuseuphratica)的PeTCX2进化关系最近ꎮ荧光定量PCR结果显示ꎬLtTCX2基因在叶片中表达量最高ꎬ在萼片㊁花瓣中几乎不表达ꎬ表达量由高至低如下:叶片㊁花芽㊁雌蕊㊁雄蕊㊁茎㊁根㊁花瓣㊁萼片ꎮ以上结果说明ꎬLtTCX2属于较古老㊁保守的一类基因ꎬ可为从分子生物学层面研究鹅掌楸属植物系统进化提供一定的理论依据ꎮ关键词:北美鹅掌楸ꎬCPP ̄like家族ꎬLtTCX2基因ꎬCRC结构域ꎬ组织特异性表达中图分类号:Q943㊀㊀文献标识码:A文章编号:1000 ̄3142(2020)07 ̄0998 ̄12开放科学(资源服务)标识码(OSID):CloningandexpressionanalysisofCPPtranscriptionfactorfamilyLtTCX2geneinLiriodendrontulipiferaLIUHuanhuanꎬYANGLichunꎬZHANGChenggeꎬHAOZiyuanꎬLIHuogen∗(Co ̄InnovationCenterforSustainableForestryinSouthernChinaꎬNanjingForestryUniversityꎬNanjing210037)Abstract:CPP(Cystein ̄richpolycomb ̄likeproteinorTesmin/TOS1 ̄like)proteinfamilyareonekindoftranscriptionfactorswithfewermembersandpossessaconservedꎬCys ̄richCRCdomains.CPPtranscriptionfactorfamilyplaysan收稿日期:2019-10-17基金项目:国家自然科学基金(31770718ꎬ31470660)ꎻ江苏省高校优势学科项目(PAPD)[SupportedbytheNationalNaturalScienceFoundationofChina(31770718ꎬ31470660)ꎻPriorityAcademicProgramDevelopmentofJiangsuHigherEducationInstitutions(PAPD)]ꎮ作者简介:刘换换(1991-)ꎬ女ꎬ江苏徐州人ꎬ博士研究生ꎬ主要从事林木遗传育种研究ꎬ(E ̄mail)lhh91@foxmail.comꎮ∗通信作者:李火根ꎬ博士ꎬ教授ꎬ研究方向为林木遗传育种ꎬ(E ̄mail)hgli@njfu.edu.cnꎮimportantroleintheplantdevelopmentofreproductivetissueandcelldivision.InthisstudyꎬaCPP ̄likefamilygenewasclonedbyRACEmethodsfromLiriodendrontulipiferanamedLtTCX2toexplorethefunctioninregulatingflowerdevelopment.ThefulllengthofLtTCX2was2866bp.LtTCX2containedanopenreadingframe(ORF)of2424bpꎬen ̄coding807aminoacidswithtwoconservedTSO1 ̄likeCXCdomainsbybioinformaticsanalysisonNCBIsite.Themolecularweightofproteinwas88699.25Daꎬisoelectricpointwas5.83andcoefficientofinstabilitywas62.38.LtTCX2waspre ̄dictedtobehydrophilicandnon ̄transmembranenucleoproteinwithoutsignalpeptide.TheaminoacidhomologysequenceandphylogeneticanalysisdemonstratedthatLtTCX2hadhighhomologywithotherCPP ̄likefamilyproteinsandwasmostcloselyrelatedwithNnTCX2inNelumbonuciferaandPeTCX2inPopuluseuphratica.Real ̄timequantitativePCRshowedthatLtTCX2genewashighlyexpressedintheleafandhardlyexpressedinthesepalandpetal.Thetissuespecificexpressionorderfromhightolowwasthattheleafꎬflowerbudꎬpistilꎬstamenꎬstemꎬrootꎬpetalandsepal.Thesere ̄sultssuggestedthatLtTCX2isaratherconservativegeneandprovideseveralhelptothephylogeneticevolutionofLirio ̄dendronplantsfromthemolecularbiologylevel.Keywords:LiriodendrontulipiferaꎬCPP ̄likefamilyꎬLtTCX2geneꎬCRCdomainꎬtissuespecificexpression㊀㊀CPP ̄like蛋白是一类广布于生物中㊁成员较少的转录因子ꎬ目前未在酵母中发现ꎮCPP家族基因具有1~2个高度保守㊁富含半胱氨酸Cys的CXC结构域C1和C2(pfam036308ꎬCX ̄CX4CX3YCX ̄CX6CX3CXCX2C)ꎬ以及连接二者㊁长度可变的保守的R序列(RNPXAFXPK)ꎬ3段保守序列即构成保守的CRC结构域(C1 ̄RNPXAFX ̄PK ̄C2)(Songetal.ꎬ2000ꎻAndersenetal.ꎬ2007)ꎮCPP家族基因主要集中于动物方面的调控研究ꎬ在植物中的功能研究较少(闵浩巍ꎬ2013)ꎬ在植物中主要参与细胞分化㊁繁殖器官发育ꎮLiuetal. (1997)首次在拟南芥(Arabidopsisthaliana)中获得的CPP ̄like家族基因是TSO1ꎮTSO1是一种核蛋白ꎬ在花器官中高度表达ꎬ调控细胞分裂与细胞膨大(Hauseretal.ꎬ1998)ꎮ通过对tso1突变体的研究ꎬ该基因对细胞的方向性增长发挥作用ꎬ并影响到有丝分裂和胞质分裂ꎬ说明TSO1基因对拟南芥花器官的形成是必需的ꎬ推测其可能是编码花器官细胞分裂的重要元件(Liuetal.ꎬ1997ꎻHauseretal.ꎬ1998ꎬ2000)ꎮ随后ꎬ在大豆(Glycinemax)中发现了1个CPP1蛋白ꎬ发现其参与共生根瘤中leghemoglobin基因调控(Cvitanichetal.ꎬ2000)ꎮ目前已陆续在大豆㊁水稻(Oryzasativa)㊁小麦(Triticumaestivum)㊁玉米(Zeamays)等植物中发现CPP ̄like家族基因ꎬ并对它们的功能进行了一些探索(Yangetal.ꎬ2008ꎻ王凯ꎬ2010ꎻ孟超敏等ꎬ2014ꎻZhangetal.ꎬ2015ꎻSongetal.ꎬ2016ꎻ潘冉冉等ꎬ2018)ꎮ水稻和拟南芥CPP ̄like家族都具有高度保守的CRC结构域ꎬ单子叶和双子叶植物分化之前ꎬCPP ̄like家族基因发生过大幅度的扩张ꎬ分化完成后ꎬ二者的CPP ̄like家族基因按照物种特异性的方式进行了扩张ꎬ拟南芥存在基因丢失现象ꎬ而两段CXC结构域及R序列则是协同进化(Yangetal.ꎬ2008ꎻ王凯ꎬ2010)ꎮ目前ꎬ对CPP转录因子在单子叶和真双子叶植物中的少数模式植物中进行了初步的进化分析ꎬ对该家族在基部被子植物中的进化过程尚待探索与研究ꎮ鹅掌楸属(Liriodendron)隶属于木兰科(Mag ̄noliaceae)ꎬ是第四纪冰川作用后的孑遗植物ꎬ自然散落分布ꎮ鹅掌楸属植物是基部被子植物系的典型植物ꎬ在植物进化发生系统中具有特殊地位ꎬ且保存了许多花部器官原始特征ꎬ是研究开花植物进化进程的理想树种(Ronseetal.ꎬ2003ꎻZahnetal.ꎬ2005)ꎮ鹅掌楸属主要包括两个种ꎬ鹅掌楸(L.chinense)和北美鹅掌楸(L.tulipifera)(Parksetal.ꎬ1983)ꎮ北美鹅掌楸和鹅掌楸有着相似的外形ꎬ但要比鹅掌楸高大ꎬ花色丰富ꎬ花型优美ꎬ且属于典型的蜜源植物ꎬ具有重要的生态和经济效益ꎬ是北美地区最大且观赏性优良的树种之一(Beckꎬ1990)ꎮ北美鹅掌楸相比于其他树种ꎬ不需要精细的管理ꎬ很少受到病虫害的侵害ꎬ对金属毒害也有一定的防御功能ꎬ是优良的园林绿化树种(Klugh9997期刘换换等:北美鹅掌楸CPP转录因子家族LtTCX2基因的克隆与分析etal.ꎬ2003)ꎮ本文选择基部被子植物中的北美鹅掌楸为材料ꎬ采用RACE法克隆出CPP ̄like家族LtTCX2基因ꎬ并对其组织特异性表达和生物信息学进行分析ꎬ以期为后人研究北美鹅掌楸CPP ̄like家族基因㊁花的发育调控提供一定的研究理论基础ꎻ结合LtTCX2基因的系统进化分析ꎬ初步探索该基因在植物中的理论进化过程ꎬ以期为鹅掌楸属植物在被子植物中的地位提供分析生物学层面的新思路及依据ꎮ1㊀材料与方法1.1材料与试剂材料:北美鹅掌楸选自位于江苏省镇江市句容下蜀的南京林业大学实习林场基地鹅掌楸属种源试验林ꎬ均为成年ꎬ树龄为27aꎮ试验林营建于1993年ꎬ地理位置为119ʎ14ᶄE㊁31ʎ59ᶄNꎮ采集北美鹅掌楸新鲜的花芽㊁根㊁茎㊁叶㊁萼片㊁花瓣㊁雄蕊㊁雌蕊ꎬ做好标记ꎬ迅速置于液氮中ꎬ带回实验室ꎬ存于-80ħ超低温冰箱中保存ꎮ试剂:多糖多酚植物总RNA提取试剂盒(离心柱型)购自天根生化科技(北京)有限公司ꎻ巯基乙醇购自上海捷瑞生物工程有限公司ꎻpEASY ̄BluntCloningKit克隆载体试剂盒㊁EasyPureQuickGelExtractionKit切胶回收试剂盒㊁大肠杆菌菌株Trans1 ̄T1phageresistantchemicallycompetentcell感受态㊁X ̄gal㊁核酸染料GelStain均购自北京全式金生物技术有限公司ꎻPrimeScriptTMRTMasterMix(PerfectRealTime)㊁SMARTerRACE5ᶄ/3ᶄKit和3ᶄ ̄FullRACECoreSetwithPrimeScripRTaseKit均购自TAKARA公司ꎻDNAMarker㊁GreenTaqMix㊁PhantaMaxSuper ̄FridelityDNAPolymerase均购自南京诺唯赞生物科技有限公司ꎻ琼脂糖Agarose购自北京擎科生物技术公司ꎻ无水乙醇等其他化学试剂均为国产或进口分析纯ꎮ1.2北美鹅掌楸组织总RNA提取及反转录北美鹅掌楸根㊁茎㊁叶等组织的总RNA提取主要按照多糖多酚植物总RNA提取试剂盒(离心柱型)说明书进行ꎬ所得产物于-80ħ超低温冰箱中保存ꎮRNA完整性使用1%凝胶电泳检测ꎬ若28S和18SrRNA两条带亮度为1.5~2倍ꎬ无弥散片状㊁条带消失ꎬ则说明RNA完整性较好ꎮRNA浓度检测使用微量分光光度计(NANODROP2000ꎬThermoFisher公司)ꎬ若OD260/280㊁OD260/230比值处于1.8~2.1之间ꎬ说明RNA质量较好ꎮ反转录采用10μL体系ꎬ反转录酶5ˑPrimerScriptRTMasterMix加入2μLꎬRNA使用500ngꎬddH2O补足10μLꎬ轻柔混匀ꎮ反转录反应条件:37ħ反应15minꎬ85ħ反转录酶失活5sꎬ4ħ终止反应ꎬ所得即为cDNA第一条链ꎬ用作克隆目的基因中间片段的模板ꎬ-20ħ保存备用ꎮ3ᶄRACE㊁5ᶄRACE所使用的cDNA分别参照3ᶄ ̄FullRACECoreSetwithPrimeScripRTaseKit㊁SMARTerRACE5ᶄ/3ᶄKit说明书进行ꎮ1.3引物合成与测序所用引物均由南京金斯瑞生物科技有限公司完成ꎬ测序由上海杰李生物技术有限公司完成ꎮ1.4北美鹅掌楸LtTCX2基因全长克隆在本实验室的北美鹅掌楸转录组测序数据库中根据NR功能注释ꎬ挑选一条CPP ̄like家族TSO1 ̄like的unigeneꎬ基因ID为c108078.graph_c0ꎬ共3174bpꎮ使用Oligo7设计中间片段引物ꎬ以cDNA为模板ꎬ高保真酶为PhantaMaxSuper ̄FridelityDNAPolymeraseꎬ配制50μL体系的反应液ꎮPCR反应程序:95ħ预变性3minꎬ95ħ变性15sꎬ退火15sꎬ72ħ延伸60s/kbꎬ35个循环ꎬ72ħ彻底延伸5minꎬ4ħ终止反应ꎮ使用1.5%琼脂凝胶电泳检测PCR产物ꎬ120V电压电泳40minꎬ于凝胶成像仪中拍照并切下含有目的片段的凝胶ꎬ参照EasyPureQuickGelExtractionKit说明书进行目的片段回收ꎮ将目的片段连接到pEASY ̄Blunt载体中ꎬ并转化大肠杆菌Trans1 ̄T1感受态细胞ꎬ均匀涂在加入抗生素的LB平板上ꎬ37ħ过夜培养ꎬ进行蓝白斑筛选ꎬ对8个菌落进行PCR检测ꎬ使用M13通用引物ꎬ挑选3个片段大小正确的阳性菌落送至公司测序ꎮ获得正确的中间片段后ꎬ设计3ᶄRACE㊁5ᶄRACE引物ꎬ采用巢式PCR扩增ꎬ反应体系㊁PCR条件㊁连接转化㊁菌落检测与中间片段扩增相同ꎮ将中间片段㊁3ᶄRACE㊁5ᶄRACE所得序列使用BioXM2.6软件进行拼接ꎬ获得基因0001广㊀西㊀植㊀物40卷全长ꎬ将全长序列于NCBI数据库中的ORFFinder网站进行在线预测ORFꎬ在起始密码子和终止密码子附近设计引物ꎬ验证ORF的准确性ꎬ将完整的ORF于NCBI数据库中的BLASTProtein进行在线功能比对ꎬ结合比对结果㊁其他物种的序列以及保守结构域ꎬ对目的基因进行命名ꎮLtTCX2基因全长克隆实验中所用引物见表1ꎮ表1㊀LtTCX2基因引物序列Table1㊀PrimersequencesofLtTCX2gene引物名称Primernames引物序列PrimersequencesLtTCX2F1TCTGTTGTTTCCCTCTGTTCTLtTCX2R1ACCCTTCACATCTGCAATTACLtTCX2F2AGGCGATCGAGATGGACACLtTCX2R2ATGTATGGGGGATGTTAGTCGTC3ᶄRACEInnerCGCGGATCCTCCACTAGTGATTTCACTATAGG3ᶄRACEOuterTACCGTCGTTCCACTAGAGATTT3ᶄRACEGSP1GATTACTGAAGCCCAAAAGGATG3ᶄRACEGSP2CATCTCAAGTTCCTCTTGGCAGGCTTC5ᶄRACEUPMTAATACGACTCACTATAGGGCAAGCAGTG ̄GTATCAACGCAGAGT5ᶄRACEUPSCTAATACGACTCACTATAGGGC5ᶄRACEGPS1TCATCCTGGCATCTCCCCTGCAACTC5ᶄRACEGPS2CTCCCGATATCACATCTTTCTTORFFAGGCGATCGAGATGGACACORFRAAAACCTACCTTCTCTCACCGActin97FTTCCCGTTCAGCAGTGGTCGActin97RTGGTCGCACAACTGGTATCGRT ̄qPCRFTAGCCCCAAGAAGAAAAGGTGCAART ̄qPCRRAAGGCTCAACACAGTAGACACCA1.5生物信息学分析将基因全长放入ORFFinder(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/orffinder/)在线分析预测开放阅读框ORFꎬ确定基因编码蛋白序列ꎻ通过ExPASyProtParam(https://web.expasy.org/protparam/)在线分析蛋白质氨基酸组成㊁含量㊁分子量㊁等电点等特性ꎻ通过ProtScale(https://web.expasy.org/protscale/)在线软件分析蛋白疏水性分析ꎻ通过ExPASyTMpred(https://www.ch.embnet.org/soft ̄ware/TMPRED_form.html)和TMHMM(https://www.cbs.edu.dk/services/TMHMM ̄2.0)在线分析蛋白跨膜区㊁扩膜方向ꎻ通过SOPMA(https://npsa ̄prabi.ibcp.fr/cgi ̄bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html)和SWISS ̄MODEL(https://swiss ̄model.expasy.org/)在线预测分析蛋白的二级结构和三级结构ꎻ通过在线软件SignalP ̄4.0Server(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP ̄4.0/)预测蛋白的信号肽ꎻ通过TargetP1.1Server(http://www.cbs.dtu.dk/services/TargetP/)和WoLFPSORT(https://wolfpsort.hgc.jp/)在线软件预测蛋白亚细胞定位ꎻ通过MotifScan(https://myhits.isb ̄sib.ch/cgi ̄bin/motif_scan)在线分析该蛋白的结构域ꎻ将蛋白序列与NCBI网站进行BLASTProtein比对ꎬ选择与之同源性较高的蛋白序列ꎬ通过DNAMAN软件ꎬ进行蛋白同源性比对分析ꎻ于NCBI上搜索其他物种的同源序列ꎬ使用MEGA7软件构建进化树(Kumaretal.ꎬ2004)ꎮ1.6实时荧光定量PCR分析以花芽㊁根㊁茎㊁叶㊁萼片㊁花瓣㊁雄蕊㊁雌蕊的RNA反转录后的cDNA为模板ꎬ本实验室筛选出较稳定的LcActin97为内参引物ꎬLtTCX2基因引物见表2ꎬ进行半定量PCR反应(Tuetal.ꎬ2019)ꎮ荧光定量PCR反应为10μL体系ꎬcDNA共50ngꎬ使用ABI热循环仪ꎬ反应程序:95ħ预变性1minꎬ95ħ变性5~10sꎬ60ħ延伸30~34sꎬ40个循环ꎬ1个溶解曲线95ħ15sꎬ60ħ1minꎬ95ħ15sꎮ反应结果后ꎬ将数据导出ꎬ参照2 ̄ΔΔCT法计算该基因的相对表达量ꎬ使用ORIGIN软件绘制基因表达图ꎮ2㊀结果与分析2.1北美鹅掌楸组织总RNA提取将北美鹅掌楸花芽㊁根㊁叶㊁茎㊁萼片㊁花瓣㊁雄蕊㊁雌蕊共8个组织的总RNA按照多糖多酚植物总RNA提取试剂盒(离心柱型)提取RNAꎮ通过1%凝胶电泳检测RNA完整性ꎬ发现28S和18SrRNA两条带亮度为1.5~2倍ꎬ无明显弥散片状㊁条带消失现象ꎬ且OD260/280㊁OD260/230比值处于1.8~2.1之间ꎬ说明RNA质量㊁完整性较好(图1)ꎮ10017期刘换换等:北美鹅掌楸CPP转录因子家族LtTCX2基因的克隆与分析图1㊀北美鹅掌楸8个组织总RNA提取完整性检测Fig.1㊀DetectionoftotalRNAineightpartsfromLiriodendrontulipifera2.2北美鹅掌楸LtTCX2基因克隆从北美鹅掌楸转录数据库中筛选1个CPP ̄like家族unigeneꎬ总长度3174bpꎬ通过设计引物依次进行中间片段扩增㊁3ᶄRACE扩增㊁5ᶄRACE扩增ꎬ回收产物进行连接转化ꎬ挑选阳性克隆送至公司测序ꎬ拼接出目的基因的完整序列ꎮ鉴于LtTCX2基因片段过长ꎬ将其中间片段分为两部分依次扩增ꎮ通过NCBI网站进行ORF验证ꎬ设计引物验证ORF序列的准确性(图2)ꎮ最终ꎬLtTCX2基因全长2866bpꎬORF为2424bpꎬ编码了807个氨基酸ꎬ5ᶄUTR长228bpꎬ3ᶄUTR长214bpꎮM.DNAMarkerꎻAꎬB.中间片段扩增ꎻC.3ᶄRACE扩增ꎻD.5ᶄRACE扩增ꎻE.ORF验证ꎮM.DNAMarkerꎻAꎬB.IntermediatefragmentPCRꎻC.3ᶄRACEfragmentPCRꎻD.5ᶄRACEfragmentPCRꎻE.ORFverification.图2㊀LtTCX2基因克隆电泳图Fig.2㊀PCRamplificationresultofLtTCX2gene2.3北美鹅掌楸LtTCX2基因生物信息学分析2.3.1蛋白理化性质及跨膜区预测分析㊀将LtTCX2基因序列放入NCBI在线软件进行ORF预测ꎬ确定基因编码的蛋白序列ꎮ结果显示ꎬLtTCX2基因的ORF长2424bpꎬ编码了807个氨基酸ꎬ以ATG为起始密码子ꎬTGA为终止密码子ꎮ通过MotifScan在线分析LtTCX2蛋白的结构域ꎬ含有2个TSO1 ̄likeCXC结构域ꎬ分别位于504~545㊁590~631aa(图3)ꎮ将ORF编码的蛋白序列通过ExPASyProtParam在线分析氨基酸组成㊁含量㊁分子量等ꎮLtTCX2蛋白总分子式为C3819H6084N1096O1256S39ꎬ分2001广㊀西㊀植㊀物40卷图3㊀北美鹅掌楸LtTCX2蛋白的结构域预测Fig.3㊀DomainpredictionofLtTCX2protein子量为88699.25Daꎬ由807个氨基酸残基组成ꎬ理论等电点为5.83ꎬ带正电荷(Arg+Lys)的氨基酸残基数为100个ꎬ带负电荷(Asp+Glu)的氨基酸残基数为115个ꎮ蛋白质分子氨基酸组成中丝氨酸(Ser)含量最高ꎬ共96个ꎬ占11.9%ꎬ其次为谷氨酸(Gluꎬ65个ꎬ8.1%)ꎬ色氨酸(Trpꎬ1个ꎬ0.1%)含量最低ꎮ该蛋白在哺乳动物体外网织红细胞中的半衰期为30hꎬ在酵母中半衰期大于20hꎬ在大肠杆菌中半衰期大于10hꎮ不稳定系数为62.38ꎬ脂溶性指数为65.37ꎬ疏水性平均值为-0.619ꎮ通过ProtScale在线软件进行蛋白疏水性分析ꎬ横坐标为蛋白质氨基酸残基ꎬ纵坐标为该位点氨基酸残基疏水性值ꎬ正值表示疏水性氨基酸ꎬ负值表示亲水性氨基酸ꎮLtTCX2蛋白含有疏水区域和亲水区域ꎬ疏水性平均值为-0.619ꎬ为亲水性蛋白(图4:A)ꎮ通过ExPASyTMpred和TMHMM在线软件预测分析蛋白跨膜区㊁扩膜方向ꎮTMpred表明ꎬLt ̄TCX2蛋白仅在第39~58aa处具有一个跨膜螺旋ꎬTMHMM结果进一步表明LtTCX2为非跨膜蛋白(图4:BꎬC)ꎮ2.3.2蛋白二级结构、三级结构预测㊀通过SOPMA在线预测分析蛋白的二级结构ꎮLtTCX2蛋白具有4种二级结构ꎬ无规则卷曲(Cc)占70.63%ꎬα螺旋(Hh)占20.32%ꎬ延伸链(Ee)占6.94%ꎬβ转角占2.11%(图5:A)ꎮ通过SWISS ̄MODEL网站使用同源建模法在线预测蛋白质的三级结构(图5:B)ꎮ2.3.3信号肽预测与亚细胞定位㊀通过SignalP ̄4.0Server在线软件预测蛋白的信号肽ꎬ结果表明ꎬLtTCX2蛋白不含信号肽及切割位点(图6)ꎮ蛋白亚细胞定位通过两种不同方法预测ꎬ即TargetP1.1Server和WoLFPSORT在线软件ꎬ结合两个结果ꎬ预测该蛋白主要定位于细胞核ꎬ应为核蛋白(表2ꎬ表3)ꎮ2.3.4氨基酸同源性分析㊀将LtTCX2氨基酸序列放入NCBI中BLAST比对分析发现ꎬLtTCX2氨基30017期刘换换等:北美鹅掌楸CPP转录因子家族LtTCX2基因的克隆与分析A.蛋白疏水性预测ꎻBꎬC.蛋白跨膜区预测ꎮA.HydrophobicitypredictionꎻBꎬC.Transmembraneregionsprediction.图4㊀LtTCX2蛋白疏水性和跨膜区的预测分析Fig.4㊀HydrophobicityandtransmembraneregionpredictionofLtTCX2protein酸与其他物种的CPP ̄like家族蛋白具有较高的同源性ꎬ大多具有保守的CRC结构域ꎮ选择与LtTCX2同源性较高的15个蛋白序列ꎬ通过DNA ̄MAN软件ꎬ进行氨基酸同源性比对分析ꎮ15个蛋白分别为沉水樟(Cinnamomummicranthumf.kane ̄hiraeꎬRWR88930.1)㊁亚洲莲(NelumbonuciferaꎬXP_010259114.1ꎬXP_010256140.1)㊁葡萄(VitisviniferaꎬXP_010649949.1ꎬXP_010649950.1)㊁可可(TheobromacacaoꎬXP_007034831.2)㊁博落回(MacleayacordataꎬOVA15531.1)㊁欧洲甜樱桃(PrunusaviumꎬXP_021828183.1)㊁土瓶草(CephalotusfollicularisꎬGAV57585.1)㊁桃(PrunuspersicaꎬXP_020410865.1)㊁胡桃(JuglansregiaꎬXP_018839385.1)㊁毛果杨(PopulustrichocarpaꎬXP_024462660.1)㊁胡杨(P.euph ̄ratica)㊁银白杨(P.albaꎬTKR83702.1)㊁海枣(PhoenixdactyliferaꎬXP_008789994.1)ꎮ结果表明16个蛋白序列同源性达66.28%ꎬCPP ̄like家族蛋白具有较高的保守性ꎬ尤其是N端㊁C端(图7)ꎮ2.3.5系统发育进化分析㊀在NCBI上搜索已经发表的CPP ̄like家族的蛋白序列ꎬ除了氨基酸同源4001广㊀西㊀植㊀物40卷A.二级结构ꎻB.三级结构ꎮA.SecondarystructureꎻB.Tertiarystructure.图5㊀LtTCX2蛋白二级㊁三级结构预测Fig.5㊀SecondaryandtertiarystructurepredictionsofLtTCX2protein表2㊀通过TargetP1.1预测LtTCX2蛋白亚细胞定位Table2㊀SubcellularlocalizationpredictionofLtTCX2proteinbyTargetP1.1Server蛋白名称Proteinname亚细胞结构Subcellularstructure可信度Credibility(%)LtTCX2叶绿体膜cTP56.9线粒体膜mTP2.8分泌通路信号肽SP0.6其他Other71.6性分析的15个蛋白ꎬ还包括胡杨(XP_011026909.1ꎻXP_011039720.1ꎻXP_011019786.1)㊁银白杨(TKR83702.1)㊁拟南芥(NP_001328549.1ꎻNP_001328548.1ꎻNP_193213.5ꎻAEE83496.1ꎻNP_566717.1)㊁月季(RosachinensisꎬXP_024179390.1)㊁白梨(PyrusbretschneideriꎬXP_009345300.1)㊁绒毛状烟草(NicotianatomentosiformisꎬXP_009591884.1)㊁芜菁(BrassicarapaꎬXP_009135825.1)㊁野草莓(Fragariavescasubsp.vescaꎬXP_011459206.1)ꎬ共27个具有Tesmin/TSO1 ̄likeCXC2结构域的蛋白表3㊀通过WoLFPSORT预测LtTCX2蛋白亚细胞定位Table3㊀SubcellularlocalizationpredictionofLtTCX2proteinbyWoLFPSORT蛋白名称Proteinname细胞核Nuclear叶绿体Chloroplast高尔基体Golgiapparatus线粒体基质Mitochonodrialmatrix液泡Vacuole内质网EndoplasmicreticulumLtTCX214-----序列进行进化树构建(图8)ꎮ通过MEGA7软件采用邻接法(Neighbor ̄joiningꎬNJ)法ꎬ设置参数自展值(Bootstrap值)为1000次进行进化分析ꎬ结果显示ꎬ北美鹅掌楸与莲㊁胡杨的TCX2蛋白明显聚成一个分支ꎬ说明三者进化关系较近ꎮ2.4北美鹅掌楸LtTCX2基因的组织特异性表达分析将北美鹅掌楸花芽㊁根㊁叶㊁茎㊁萼片㊁花瓣㊁雄蕊㊁雌蕊共8个组织的总RNA参照说明书进行反转录以获得cDNAꎬ以鹅掌楸的LcActin97为内参基因ꎬ采用相对定量的方法进行RT ̄qPCRꎮ检测50017期刘换换等:北美鹅掌楸CPP转录因子家族LtTCX2基因的克隆与分析图6㊀LtTCX2蛋白的信号肽预测分析Fig.6㊀ThesignalpeptidepredictionofLtTCX2protein实线部分表示2个保守结构域CXCꎻ虚线部分表示保守的R序列ꎬ连接2个CXC结构域ꎮSolidlinesindicatedthetwoconservedCXCdomainsꎻDottedlinesindicatedtheconservedRsequencesconnectingthetwoCXCdomains.图7㊀LtTCX2氨基酸序列同源性分析Fig.7㊀HomologyanalysisofLtTCX2protein6001广㊀西㊀植㊀物40卷图8㊀LtTCX2蛋白系统发育进化树Fig.8㊀PhylogeneticanalysisofLtTCX2proteinLcActin97㊁LtTCX2基因在8个组织中的半定量表达情况ꎬ以检验荧光定量引物的特异性以及cDNA的质量ꎮ由图9:A可知ꎬ内参基因LcActin97在8个组织中的表达量相对稳定ꎬ条带亮度相对一致ꎬ可以用于此8个组织的荧光定量PCR实验ꎬLtTCX2基因在8个组织中均有表达ꎬ在花芽㊁雄蕊㊁雌蕊㊁叶片中表达量较高ꎮ将LtTCX2基因的RT ̄qPCR实验数据导出后ꎬ以花芽的表达量为参照ꎬ采用2-ΔΔCt法计算相对表达量ꎬ分析其在8个组织中的表达情况ꎮ由图9:B可知ꎬLtTCX2基因的半定量和荧光定量PCR表达结果相对一致ꎬ在叶片中表达量最高ꎬ花芽次之ꎬ花瓣㊁萼片中最少ꎮ3㊀讨论与结论北美鹅掌楸花型优美㊁花色变化丰富ꎬ花蜜量大ꎬ且较于鹅掌楸结实率高ꎬ是研究繁殖器官发育的较理想材料ꎮ目前ꎬ有关北美鹅掌楸花部器官发育分子调控的研究较少ꎬ且多集中于花色合成方面ꎬ雌蕊㊁雄蕊等繁殖器官发育调控起步较晚ꎮCPP ̄like家族转录因子广泛分布于各种生物中ꎬ主要参与生物的细胞分裂与性器官发育ꎬ目前研究多以动物为对象ꎬ在植物中研究较少ꎬ且起步较晚ꎮ本文在北美鹅掌楸中分离出1个CPP ̄like家70017期刘换换等:北美鹅掌楸CPP转录因子家族LtTCX2基因的克隆与分析A.LtTCX2基因半定量表达情况ꎻB.LtTCX2基因荧光定量PCR表达情况ꎮA.Semi ̄quantitativeexpressionanalysisofLtTCX2geneꎻB.Real ̄timequantitativePCRanalysisofLtTCX2gene.图9㊀LtTCX2基因的组织特异性表达Fig.9㊀ExpressionofLtTCX2geneineighttissues族基因ꎬ命名为LtTCX2ꎬ全长2866bpꎬ编码区长2424bpꎬ编码了807个氨基酸ꎮ组织特异性表达分析表明ꎬ该基因在叶片中表达量最高ꎬ花芽次之ꎬ花瓣㊁萼片中最少ꎬ整体表达水平差异不大且水平不高ꎬ推测LtTCX2并不是调控北美鹅掌楸繁殖器官发育的主要基因ꎮ目前关于植物CPP转录因子ꎬ既研究它们在细胞分裂与繁殖器官发育的调控ꎬ又聚焦于它们在植物系统进化历程ꎮ通过对模式植物水稻和拟南芥生物信息分析发现ꎬ所有的CPP ̄like家族都具有高度保守的CRC结构域ꎬ单子叶㊁双子叶植物分化之前ꎬ植物CPP ̄like家族基因发生过大幅度的扩张(王凯ꎬ2010)ꎮ在单子叶和双子叶植物分化完成之后ꎬ拟南芥和水稻基因组中的基因家族按照物种特异性方式进行扩张ꎬ拟南芥存在基因丢失现象ꎬ而两段CXC结构域序列及R序列在长期进化过程中是协同进化的(Yangetal.ꎬ2008)ꎮ但对除水稻㊁拟南芥以外的其他植物的CPP ̄like家族研究较少ꎬ亟待补充ꎬ且该家族在基部被子植物中的进化过程尚待探索与研究ꎮ本文经过对北美鹅掌楸LtTCX2蛋白氨基酸序列分析以及结构域预测ꎬ表明LtTCX2蛋白亦具有2个保守且富含半胱氨酸CXC结构域C1和C2ꎬ以及连接C1㊁C2保守的R序列ꎬ具有完整的㊁高度保守的CRC结构域ꎬ再次说明了CRC结构域的高度保守性ꎮ根据被子植物的系统进化分析ꎬ被子植物分为基部被子植物和真双子叶植物ꎬ真双子叶植物可分为基部真双子叶植物和核心真双子叶植物ꎮ木兰目㊁无油樟目和睡莲目属于基部被子植物ꎬ无油樟目和睡莲目更接近基部被子植物ꎬ而木兰藤目和核心被子植物处于并列的分支ꎬ北美鹅掌楸属于典型的基部被子植物(Qiuetal.ꎬ2005ꎻJansenetal.ꎬ2007)ꎮ通过北美鹅掌楸LtTCX2蛋白系统进化树构建分析ꎬ表明北美鹅掌楸与亚洲莲㊁胡杨的TCX2蛋白明显聚成一个分支ꎬ说明三者进化关系较近ꎮ北美鹅掌楸LtTCX2与亚洲莲进化关系较近ꎬ与木本植物的模式植物胡杨次之ꎬ其系统进化结果与被子植物进化进程相一致ꎬ说明CPP ̄like家族属于较古老㊁保守的一类基因ꎬ可以为从分子生物学层面研究植物系统提供一定的理论帮助ꎮ目前关于其他植物CPP ̄like家族的研究匮乏ꎬ北美鹅掌楸更是鲜少见报ꎮ本文仅针对该家族中的1个基因进行了克隆与分析ꎬ初步探索其在基部被子植物中的表达㊁进化过程ꎬ日后仍需对其及其他成员继续探索与研究ꎬ分析该家族基因在木兰科中的进化关系及进化方式ꎮ8001广㊀西㊀植㊀物40卷参考文献:ANDERSENSUꎬALGREEN ̄PETERSENRGꎬHOEDLMꎬetal.ꎬ2007.Theconservedcysteine ̄richdomainofatesmin/TSO1 ̄likeproteinbindszincinvitroandTSO1isrequiredforbothmaleandfemalefertilityinArabidopsisthaliana[J].JExpBotꎬ58(13):3657-3670.BECKDEꎬ1990.LiriodendrontulipiferaL.yellow ̄poplar[M]//BURNSRMꎬHONKALABH.SilvicsofNorthAmericaꎬ2:Hardwoods.U.S.DepartmentofAgricultureꎬAgricultureHandbook654ꎬWashingtonDC:406-416.CVITANICHCꎬPALLISGAARDNꎬNIELSENKAꎬetal.ꎬ2000.CPP1ꎬaDNA ̄bindingproteininvolvedintheexpres ̄sionofasoybeanleghemoglobinc3gene[J].PANSꎬ97(14):8163-8168.HAUSERBAꎬHEJQꎬPARKSOꎬetal.ꎬ2000.TSO1isanovelproteinthatmodulatescytokinesisandcellexpansioninArabidopsis[J].Developmentꎬ127(10):2219-2226.HAUSERBAꎬVILLANUEVAJMꎬGASSERCSꎬ1998.Arabi ̄dopsisTSO1regulatesdirectionalprocessesincellsduringfloralorganogenesis[J].Geneticsꎬ150(1):411-423.JANSENRKꎬCAIZꎬRAUBESONLAꎬetal.ꎬ2007.Analysisof81genesfrom64plastidgenomesresolvesrelationshipsinangiospermsandidentifiesgenome ̄scaleevolutionarypatterns[J].PNASꎬ104(49):19369-19374.KLUGHKRꎬCUMMINGJCꎬ2003.VariationinorganicacidexudatesamongmycorrhizalspeciescolonizingLiriodendrontulipiferaL.(yellowpoplar)inthepresenceofaluminum[C]//SavannahꎬGeorgia:EcologicalSocietyofAmericaAnnualMeetingAbstractsꎬ88:186.KUMARSꎬTAMURAKꎬNEIM.2004.MEGA3:integratedsoftwareformolecularevolutionarygeneticsanalysisandse ̄quencealignment[J].BriefBioinformꎬ5(2):150-163.LIUZꎬRUNNINGMPꎬMEYEROEITZEMꎬ1997.TSO1func ̄tionsincelldivisionduringArabidopsisflowerdevelopment[J].Developmentꎬ124(3):665-672.MENGCMꎬJIJHꎬLIXLꎬetal.ꎬ2014.ElectroniccloneandbioinformaticsanalysisofCPPtranscriptionfactorgenesfromwheat[J].Biotechnologyꎬ24(4):39-42.[孟超敏ꎬ姬俊华ꎬ李雪林ꎬ等ꎬ2014.小麦CPP转录因子基因的电子克隆及生物信息学分析[J].生物技术ꎬ24(4):39-42.]MINHWꎬ2013.FunctionalanalysisofabioticstressrelatedgeneZmRAV1andZmTCX8.1inZeamays[D].Beijing:ChinaAgriculturalUniversity:16-19.[闵浩巍ꎬ2013.玉米抗逆相关基因ZmRAV1和ZmTCX8.1的功能研究[D].北京:中国农业大学:16-19.]PANRRꎬWEIMMꎬWANGYJꎬetal.ꎬ2018.Cloningandex ̄pressionanalysisofHbCCP1inrubbertree(Heveabrasilien ̄sis)[J].JPlantPhysiolꎬ54(5):763-772.[潘冉冉ꎬ位明明ꎬ王亚杰ꎬ等ꎬ2018.巴西橡胶树HbCPP1基因的克隆与表达分析[J].植物生理学报ꎬ54(5):763-772.]PARKSCRꎬMILERNGꎬWENDELJFꎬetal.ꎬ1983.GeneticdivergencewithinthegenusLiriodendron(Magnoliaceae) [J].AnnMoBotGard.70(4):658-666.QIUYLꎬDOMBROVSKAOꎬLEEJꎬetal.ꎬ2005.Phylogeneticanalysesofbasalangiospermsbasedonnineplastidꎬmito ̄chondrialꎬandnucleargenes[J].IntlJPlantSciꎬ166(5):815-842.RONSEdeCRAENELPꎬSOLTISPSꎬSOLTISDEꎬ2003.Evo ̄lutionoffloralstructuresinbasalangiosperms[J].IntJPlantSciꎬ164(S5):S329-S363.SONGXYꎬZHANGYYꎬWUFCꎬetal.ꎬ2016.Genome ̄wideanalysisofthemaize(ZeamayL.)CPP ̄likegenefamilyandexpressionprofilingunderabioticstress[J].GenetMolResꎬ15(3):gmr.15038023.SONGJYꎬLEUNGTꎬEHLERLKꎬetal.ꎬ2000.RegulationofmeristemorganizationandcelldivisionbyTSO1ꎬanArabi ̄dopsisgenewithcysteine ̄richrepeats[J].Developmentꎬ127(10):2207-2217.TUZHꎬHAOZYꎬZHONGWPꎬetal.ꎬ2019.IdentificationofsuitablereferencegenesforRT ̄qPCRassaysinLiriodendronchinense(Hemsl.)Sarg[J].Forestsꎬ10(5):441.WANGKꎬ2010.BioinformaticanalysisoftheCPPtranscriptionfactorsfamilyinAabidopsisandrice[J].BiotechnolBullꎬ(2):76-84.[王凯ꎬ2010.拟南芥和水稻CPP转录因子家族的生物信息学分析[J].生物技术通报ꎬ(2):76-84.]YANGZꎬGUSꎬWANGXꎬetal.ꎬ2008.MolecularevolutionoftheCPP ̄likegenefamilyinplants:insightsfromcomparativegenomicsofArabidopsisandrice[J].JMolEvolꎬ67(3):266-277.ZAHNLMꎬKONGHꎬLEEBENS ̄MACKJHꎬetal.ꎬ2005.TheevolutionoftheSEPALLATAsubfamilyofMADS ̄boxgenes:apre ̄angiospermoriginwithmultipleduplicationsthroughoutangiospermhistory[J].Geneticsꎬ169(4):2209-2223.ZHANGLꎬZHAOHKꎬWANGYMꎬetal.ꎬ2015.Genome ̄wideidentificationandexpressionanalysisoftheCPP ̄likegenefamilyinsoybean[J].GenetMolResꎬ14(1):1260-1268.(责任编辑㊀何永艳)90017期刘换换等:北美鹅掌楸CPP转录因子家族LtTCX2基因的克隆与分析。
孑遗植物鹅掌楸的研究现状与保护对策

孑遗植物鹅掌楸的研究现状与保护对策作者:朱秋生叶金山来源:《现代农业科技》2010年第09期摘要鹅掌楸因其在植物分类地位的特殊位置,成为研究系统进化、遗传多样性、杂交育种、物种地理分布以及居群与群落生态的重要研究对象。
综述了鹅掌楸的生物学特征及其生殖生物学、地理分布及遗传变异、杂交育种的研究现状,同时探讨中国鹅掌楸的保护对策。
关键词鹅掌楸;研究现状;保护对策中图分类号 S792.210.4 文献标识码A文章编号 1007-5739(2010)09-0202-02ResearchStatusandProtectionCountermeasuresofRelictPlantLiriodendronspp.ZHU Qiu-sheng 1YE Jin-shan 2(1 Taihe Forestry Administration in Jiangxi Province,Taihe Jiangxi 343700; 2 Jiangxi Academy of Forestry)AbstractBecause of the special condition in the vegetation classification,Liriodendron spp. became a kind of important material of study phylogenetic evolution,geneticvariation,hybridization,species geographical distribution and population and community ecology. This review focused on the research advance on biological characteristics,reproductivebiology,geographical distribution and genetic variability and hybridization of Liriodendron spp. At the same time,the protective measures of Liriodendron chinense were explored.Key wordsLiriodendro spp.;research status;protection comtermeasures木兰科鹅掌楸属,目前仅存2个物种,即中国鹅掌楸(Liriodendron chinense)和北美鹅掌楸(Liriodendron tulipif-era)。
孑遗植物鹅掌楸的研究现状与保护对策

孑遗植物鹅掌楸的研究现状与保护对策摘要鹅掌楸因其在植物分类地位的特殊位置,成为研究系统进化、遗传多样性、杂交育种、物种地理分布以及居群与群落生态的重要研究对象。
综述了鹅掌楸的生物学特征及其生殖生物学、地理分布及遗传变异、杂交育种的研究现状,同时探讨中国鹅掌楸的保护对策。
关键词鹅掌楸;研究现状;保护对策ResearchStatusandProtectionCountermeasuresofRelictPlantLiriodendronspp.ZHU Qiu-sheng 1YE Jin-shan 2(1 Taihe Forestry Administration in Jiangxi Province,Taihe Jiangxi 343700; 2 Jiangxi Academy of Forestry)AbstractBecause of the special condition in the vegetation classification,Liriodendron spp. became a kind of important material of study phylogenetic evolution,genetic variation,hybridization,species geographical distribution and population and community ecology. This review focused on the research advance on biological characteristics,reproductive biology,geographical distribution and genetic variability and hybridization of Liriodendron spp. At the same time,the protective measures of Liriodendron chinense were explored.Key wordsLiriodendro spp.;research status;protection comtermeasures木兰科鹅掌楸属,目前仅存2个物种,即中国鹅掌楸(Liriodendron chinense)和北美鹅掌楸(Liriodendron tulipif-era)。
鹅掌楸群体空间遗传结构研究

鹅掌楸群体空间遗传结构研究种群遗传结构及其影响因子的研究是保护遗传学的重要内容,它不仅是探讨物种形成以及植物适应和进化机制的基础,也是针对物种制定有效保护策略和措施的依据。
影响植物居群内遗传结构的生态和进化因素很多,而遗传变异的空间分布是种群遗传结构的重要特征之一。
空间遗传结构是影响群体短期进化过程的重要因素,开展种群空间遗传结构研究有助于了解种群动态,对于濒危植物的保护策略的制订有重要的指导意义。
鹅掌楸(Liriodendron chinense (Hemsl.) Sarg.)为木兰科鹅掌楸属植物,星散分布于我国华东、中南及西南地区以及越南北部。
由于鹅掌楸种群规模小,生境片段化,自然结实率低,天然更新不良,从而被列为我国二级保护树种。
本文以1个残存的天然种群和2个遗传结构清楚的人工群体为研究对象,采用SSR分子标记进行亲本分析与谱系重建,进而揭示鹅掌楸空间遗传结构,期望为鹅掌楸的保护策略制定提供理论依据。
主要研究结果如下:三种常用亲本分析软件效率的比较。
在亲本分析中,常用基于最大似然法的软件(如CERVUS, COLONY和PAPA)进行亲本推定,但不同软件各有其特点,其分析结果与亲本推定效率有时相差较大。
为比较三种常用亲本分析软件(CERVUS3.0, COLONY2.0和PAPA2.0)的效率及特点,本文以包含278个鹅掌楸潜在亲本及90个鹅掌楸已知亲本的子代群体为材料,利用13对EST-SSR位点信息,分析子代亲本并与其真实亲本进行对照,进而评价三种亲本分析软件的效率,期望为林木亲本分析软件选择提供参考。
研究结果表明,13个SSR位点在实验群体中检测出的等位基因数(A)、观测杂合度(Ho)及Shannon多样性指数(I)平均值分别为5.23,0.4766和1.4636,表明该批引物多态性高,适合用于亲本分析。
就亲本分析效率而言,总体上看,谱系清楚的子代远高于谱系不清的子代,单亲分析远高于双亲分析。
鹅掌楸生理生态研究现状综述

Re s e a r c h Re v i e w o n Phy s i o l o g i c a nd Ec o l o g i c Cha r a c t e r i s t i c s o f Li r i o d e n d r o n c hi ne ns e
C AI Ha o ' _ . J I NG Z h i - n o n g ,
( 1 . E n g i n e e r i n g R e s e a r c h C e n t e r f o r A g r i c u l t u r e a n d E c o l o g y i n P o y a n g L a k e V a l l e y , N a n c h a n g J i a n g x i 3 3 0 0 4 5 , C h i n a ;
摘 要: 木兰科鹅 掌楸属 , 目前仅存 2个物种 , 即 中国鹅掌楸
d r 0 n c h i n e n s e ) 和北美鹅 掌楸 . t u l i p i r e r a ) 。 中国
鹅掌楸是 国家 Ⅱ级珍稀濒危保护植物 , 国内许 多学者对其进行 了研 究。 但对鹅 掌楸生理生态研 究的较少 , 本文将从鹅掌
p h y s i o l o g i c a l e c o l o g y o f L .c h i n e se .A t t h e s a me t i me ,t h i s p a p e r h a s e x p l o r e d t h e f o c u s o f f u t u r e r e s e a r c h o n t h e b a s i s o f
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鹅掌楸属群体遗传结构及分子系统地理学研究作为被子植物中最原始的类群,木兰科植物对研究有花植物的起源、分布和系统发育有重要价值。
木兰科(Magnoliaceae)鹅掌楸属(Liriodendron)为第三纪孑遗树种,现仅存两个种,即鹅掌楸(L. chinense Sarg.)和北美鹅掌楸(L. tulipifera Linn.)。
鹅掌楸和北美鹅掌楸是典型的东亚-北美间断分布“种对”。
是植物群体遗传学和分子系统发育地理学的理想材料。
本研究以北美鹅掌楸、鹅掌楸31个自然群体及5个子代群体为研究对象,利用SSR分子标记检测鹅掌楸属树种天然群体的遗传结构及子代遗传多样性,分析种内不同群体的遗传分化及亲缘关系,比较鹅掌楸种间遗传多样性及遗传分化,以及鹅掌楸及其子代的遗传多样性和群体间分化。
检测群体、家系及个体三层次的遗传变异分配程度。
同时,通过对特定基因序列(cpDNA的psbA-trnH和trnT-trnL基因片段及nrDNA ITS序列)的克隆测序,推测鹅掌楸属植物第四纪冰期的避难所,以探讨鹅掌楸属群体地理分布形成的原因。
主要研究结果如下:鹅掌楸天然群体遗传结构。
利用14对SSR引物对12个鹅掌楸天然群体的318个个体的遗传多样性进行扩增检测,发现鹅掌楸天然群体有较高的遗传多样性(H<sub>e</sub>=0.7385)。
鹅掌楸群体之间存在中等的遗传分化(Fst=0.1956)以及低水平的基因流
(N<sub>m</sub>=1.0283)。
此外,在其中6个群体中检测到显著的瓶颈效应。
Mantel检验结果表明,
鹅掌楸天然群体遗传距离和地理距离存在极显著相关性(r=0.5011, P=0.002)。
据此,推测地理隔离和片段化分布导致了鹅掌楸群体结构的形成。
且鉴于云南南部群体与其他群体在表型及基因变异上均存在较大差异,可将其视为鹅掌楸的一个变种。
鹅掌楸、北美鹅掌楸遗传多样性比较。
鹅掌楸属树种有较高的遗传多样性(H<sub>e</sub>=0.7793),且无论是天然群体还是种源群体,均发现北美鹅掌楸的遗传多样性高于鹅掌楸。
鹅掌楸23.28%的遗传变异存在群体间,且群体间的基因流N<sub>m</sub>仅为0.8239。
而北美鹅掌楸仅有8.75%的遗传变异存在群体间,但群体间基因流明显高于鹅掌楸,达N<sub>m</sub>=2.6077。
根据遗传距离,用UMPGA法构建聚类图,13个天然群体分为两个类群:云南的两个群体YN-JP和YN-MLP群体为一类群;其它11个群体为一类群。
进一步证实鹅掌楸云南南部群体与鹅掌楸其他群体的遗传分化较大。
鹅掌楸天然群体与子代群体遗传多样性比较。
比较了5个鹅掌楸天然群体及其自由授粉子代群体的遗传多样性,发现鹅掌楸天然群体遗传多样性
(N<sub>e</sub>=4.14, H<sub>e</sub>=0.74)高于子代群体
(N<sub>e</sub>=3.51, H<sub>e</sub>=0.68)。
天然群体中,12.54%的遗传变异存在群体间,而子代群体中,有17.22%变异存在于群体间,天然群体的基因流(N<sub>m</sub>=1.7432)大于子代群体的基因流(N<sub>m</sub>=1.2017)。
表明鹅掌楸群体间遗传分化有增大的趋势。
鹅掌楸群体、家系、个体三水平分子遗传变异。
利用14个SSR分子标记分析鹅掌楸群体、家系及个体三个层次的遗传变异模式。
结果显示,鹅掌楸遗传变异在各层次上表现不同:群体水平上,JX群体变
异最大(N<sub>ei</sub>=0.63),XY群体最小(N<sub>ei</sub>=0.41);家系水
平上,XY26家系变异最小(N<sub>ei</sub>=0.2487),ST27的N<sub>ei</sub>
最大(0.5642);个体水平上,LP25-27遗传多样性最大(N<sub>ei</sub>=0.4456),XY3-2最小(N<sub>ei</sub>=0)。
分子变异分析(AMOVA)结果显示,鹅掌楸在
群体间、群体内家系间以及家系内个体间这3个层次均存在极显著的遗传分化,分别占总变异的16.47%、20.77%、62.76%。
表型数据分析结果显示,鹅掌楸苗高性状在群体、家系、个体三水平的变异模式与分子数据结果相似。
可见,鹅掌楸大多数变异(表型、遗传)都存在于群体内家系间及个体间,而群体间变异较小。
鹅掌楸属树种的分子系统地理学研究。
利用2个叶绿体基因(psbA-trnH、trnT-trnL)及1个核基因(nrDNAITS)的序列变异信息研究了鹅掌楸属2个种的分子系统地理学。
在2个叶绿体基因(psbA-trnH、trnT-trnL)中,鹅掌楸共检测到29个变异位点,多于北美鹅掌楸的19个。
且鹅掌楸的核苷酸多态性(π=0.004135, θ
w=0.005305)也高于北美鹅掌楸(π=0.00204, θw=0.004125)。
鹅掌楸有61.424%遗传变异存在于群体之间,北美鹅掌楸有13.855%的遗传变异存在于群体间。
利用Tajima’s D,Fu and Li’s D*和F*中性检测分析两个基因座的进化模式,结果表明鹅掌楸属树种在历史上均经历过群体扩张。
TCS分析、系统树分析和单倍型地理分布的结果显示,鹅掌楸和北美鹅掌楸在冰期后各自扩张。
推测位于云贵高原及其周边地区的鹅掌楸群体在第四纪冰期不受冰期气候的影响,且位于武夷山南麓的FJ-WYS鹅掌楸群体及位于大娄山北坡的GZ-XS群体所处地区很有可能分别为鹅掌楸东、西部群体的第四纪冰期避难
所。
鹅掌楸属nrDNAITS的长度变化幅度(808~852bp)与被子植物一致。
而在鹅掌楸中ITS的长度变化幅度大于北美鹅掌楸。
鹅掌楸属在ITS区中总共检测到90个变异位点,其中信息位点为53个。
其中北美鹅掌楸中检测到的变异位点(S=62)和信息位点数(I=51)都高于鹅掌楸(S=46,I=12)。
同时,在ITS1、5.8s和ITS2区,北美鹅掌楸中检测到的变异位点和信息位点数也都高于鹅掌楸。
另外,不管在ITS区还是在ITS1、5.8s和ITS2区,北美鹅掌楸的核苷酸多态性都比鹅掌楸高。
对ITS基因座位的进化模式分别进行了Tajima’s D,Fu andLi’s D*和F*中性检测。
结果显示,在鹅掌楸属的水平上,都表现为负值,且Fu and Li’s D*和F*中性检测达到显著负值,也支持鹅掌楸属树种群体扩张模式。
以白玉兰为外类群,利用nrDNAITS序列变异信息对鹅掌楸属各群体进行了系统发育分析。
鹅掌楸、北美鹅掌楸所有个体基本分为北美鹅掌楸和鹅掌楸两个分支。
结果支持鹅掌楸属树种早期分东亚和北美两支,随后在这两个大陆上各自分布扩张,独立进化。