玉米赤霉烯酮对雄性小鼠生殖系统的毒性作用_董双_何剑斌_张燚_龙淼

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饲料中玉米赤霉烯酮的危害和脱毒方法研究进展

饲料中玉米赤霉烯酮的危害和脱毒方法研究进展

福建畜牧兽医第38卷第6期2016年参考文献:[1]Hommee P,Easterday B.Characteristics of A-Turkey-Wis⁃consin-1966virus[J].Avian Dis,1970,14(1):66-74. [2]陈伯伦,张泽纪,陈伟斌.禽流感研究I.鸡A型禽流感病毒的分离与血清学初步鉴定[J].中国兽医杂志,1994,20(10): 3-5.[3]Sun Y,Liu J.H9N2influenza virus in China:a cause ofcon⁃cern[J].Protein Cell,2015,6(1):18-25.[4]殷震,刘景华.动物病毒学[M].2版.北京:科学出版社,1997:736-767.[5]Liu J H,Okazaki K,Mweene A,et al.Genetic conservation ofhemagglutinin gene of H9influenza virus in chicken popu⁃lation in Mainland China[J].Virus Genes,2004,29(3):329-334.[6]Guo Y J,Krauss S,Senne D A,et al.Characterization of thepathogenicity of members of the newly established H9N2 influenza virus lineages in Asia[J].Virology,2000,267:279-288.[7]Brown I H,Banks J,Manvell R J,et al.Recent epidemiolo⁃gy and ecology of influenza A viruses in avian species in Europe and the Middle East[J].Dev Biol(Basel),2006,124: 45-50.[8]Nili H,Asasi K.Natural cases and an experimental study ofH9N2avian influenza in commercial broilerchickens of Iran [J].Avian Pathol,2002,31(3):247-252.[9]Liu D,Shi W,Shi Y,et al.Origin and diversity of novel avianinfluenza A H7N9viruses causing human infection:phylo⁃genetic,structural,and coalescent analyses[J].Lancet,2013,381 (9881):1926-1932.[10]Guan Y,Shortridge K F,Krauss S,et al.Two lineages ofH9N2influenza virus continue to circulate inland-based poultry in southeastern China[J].Intemational Congress Series,200l,1219:187-193.饲料中玉米赤霉烯酮的危害和脱毒方法研究进展吴先斌福建金新农饲料有限公司福建南平353000摘要玉米赤霉烯酮(Zearalenone,ZEN)是一种具有类雌激素活性的霉菌毒素,有较强毒性,给畜牧生产及人类健康造成极大威胁。

玉米赤霉烯酮对小鼠胸腺上皮细胞的毒性作用

玉米赤霉烯酮对小鼠胸腺上皮细胞的毒性作用

玉米赤霉烯酮对小鼠胸腺上皮细胞的毒性作用梁梓森;许利娜;马勇江;邓衔柏;李英;范小龙;李玉谷;宁章勇【期刊名称】《中国兽医学报》【年(卷),期】2009(29)7【摘要】采用台盼蓝计数、流式细胞仪分析等方法,离体研究玉米赤霉烯酮对小鼠胸腺上皮细胞增殖与细胞周期的影响,结果发现:不同质量浓度(1~25mg/L)玉米赤霉烯酮对小鼠胸腺上皮细胞的增殖均具有显著抑制作用(P〈0.05),并表现出与剂量和处理时间依赖性关系。

高剂量(10~25mg/L)ZEA使小鼠胸腺上皮细胞细胞周期显著阻滞于G2/M期(P〈0.05),并存在剂量依赖性关系。

这些结果表明,玉米赤霉烯酮对小鼠胸腺上皮细胞有直接毒害作用。

【总页数】4页(P894-897)【关键词】玉米赤霉烯酮;细胞增殖;细胞周期;胸腺上皮细胞;小鼠【作者】梁梓森;许利娜;马勇江;邓衔柏;李英;范小龙;李玉谷;宁章勇【作者单位】华南农业大学兽医学院【正文语种】中文【中图分类】S852.44【相关文献】1.玉米赤霉烯酮和脱氧血腐镰刀菌烯醇对雌性动物的生殖毒性及作用机制 [J], 高爽;梁珍;邓俊良;杨颜铱;陈芸2.玉米赤霉烯酮对小鼠胸腺细胞凋亡的影响 [J], 梁梓森;许利娜;马勇江;邓衔柏;范小龙;李玉谷;宁章勇3.玉米赤霉烯酮对小鼠胸腺上皮细胞线粒体的影响 [J], 范小龙;许利娜;剡海阔;邓衔柏;许绮文;梁梓森;马勇江4.呕吐毒素、玉米赤霉烯酮和烟曲霉毒素B1单一及联合致小鼠毒性作用 [J], 张静;朱风华;高晨;陈甫;朱连勤;张婷5.玉米赤霉烯酮与脱氧雪腐镰刀菌烯醇联合染毒对雄性小鼠生殖毒性的影响及茶多酚的缓解作用 [J], 曹利; 吴金节; 王希春; 赵杰; 陈铃霞; 谢昕; 冉梦; 申茂玉; 朱雷; 冯士彬; 李玉因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

玉米赤霉烯酮对小鼠血常规及血液生化指标的影响

玉米赤霉烯酮对小鼠血常规及血液生化指标的影响

醇 、 甲基 亚 砜 等 。在 动 物 体 内, EA 由 胃肠 道 吸 二 Z 收, 在肝 细胞 和小 肠 黏膜 上皮 细胞 中进 行代 谢 , 后 最 还 原为 玉米 赤霉 烯醇 ( erln lZ )2。 zaae o , OL _ ] 研 究表 明 , E 与植 物性 雌 激 素 和 环 境 中雌 激 ZA
中 图分 类 号 :8 2 4 ¥5.4 文献标识码 : A 文 章 编 号 :0 75 3 ( 0 0 0—0 90 1 0—0 8 2 1 )50 7—4
玉 米 赤 霉 烯 酮 ( e rl o e Z A,o ON, zaae n , E n rz Z N) 过去 又称 F 2毒 素 , 由禾谷 镰 刀 菌 、 色 镰 E , 一 是 黄
( 南 农 业 大 学 兽 医学 院 , 东 广 州 5 0 4 ) 华 广 1 62
摘 要 : 采用 单 次腹 腔 内注射 不 同剂 量 ( 5 5 、 0 / g 的 玉米 赤 霉烯 酮 (er l o e Z A) 研 究 2 、 0 1 0mg k ) z aae n , E , n Z A 对 小 鼠血 液 毒 性 作 用 。血 常 规 分 析 表 明 , E 不 能 引起 小 鼠 贫 血 , 导致 淋 巴细 胞 明 显 减 少 ( < E Z A 可 P
1 2 方 法 .
刀 菌 、 贼镰 刀菌 , 半裸 镰 刀菌 等镰 刀 菌 属真 菌 产 木 和
生 的一种 非类 固醇 类 , 具 有 雌 激 素样 活性 的 真 菌 但
毒素 。Z A是 一 类 2 4 二 羟 基 苯 甲 酸 内酯 类 化 ] E ,-
合物 , 学 名 为 6( 0羟 基一一 基一 化 -1 一 6氧 十一 一 烯 基 ) 一 碳 J 3 雷锁 酸 内 酯 (- 1 一 y r x 一一O Ota s1u d c — 6[ 0h d o y6 X —rn一一 n ee n 1一一eoc ci a i l tn ) EA为 白色 晶体 , y]Jrs ry l cd a o e 。Z 3 c c

镰刀菌及玉米赤霉烯酮对家畜繁殖性能的影响及防制

镰刀菌及玉米赤霉烯酮对家畜繁殖性能的影响及防制

镰刀菌及玉米赤霉烯酮对家畜繁殖性能的影响及防制
张丁华;王艳丰
【期刊名称】《现代畜牧兽医》
【年(卷),期】2004(000)007
【摘要】2003年9月至2004年4月,我校养殖场饲养的猪、牛、羊等家畜出现繁殖障碍,具体表现为母猪发情期延长,屡配不孕,仔猪初生重小;奶牛发生流产,乳房炎发病率升高;绵羊发情期延长。

经过我们对所用饲料调查及检测,认为是由镰刀菌产生的玉米赤霉烯酮毒素侵害所致。

现笔者对镰刀菌及玉米赤霉烯酮毒素的来源、毒害机理及对家畜繁殖性能的影响及防制作以阐述。

【总页数】2页(P11-12)
【作者】张丁华;王艳丰
【作者单位】河南省农业学校,河南,郑州,451400;河南省农业学校,河南,郑
州,451400
【正文语种】中文
【中图分类】S852.662
【相关文献】
1.脱氧雪腐镰刀菌烯醇与玉米赤霉烯酮联合暴露对r体外培养鸡脾脏淋巴细胞内环境稳态的影响 [J], 任志华;王亚超;邓俊良
2.玉米赤霉烯酮对家畜繁殖性能和人体健康的影响 [J], 单妹;许梓荣;冯建蕾
3.玉米赤霉烯酮对家畜繁殖性能和人体健康的影响 [J], 单妹;许梓荣;冯建蕾
4.玉米赤霉烯酮对家畜繁殖性能和人体健康的影响 [J], 单妹;许梓荣;冯建蕾
5.玉米赤霉烯酮与脱氧雪腐镰刀菌烯醇联合染毒对雄性小鼠生殖毒性的影响及茶多酚的缓解作用 [J], 曹利; 吴金节; 王希春; 赵杰; 陈铃霞; 谢昕; 冉梦; 申茂玉; 朱雷; 冯士彬; 李玉
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玉米赤霉烯酮所致氧化应激的研究进展

玉米赤霉烯酮所致氧化应激的研究进展

玉米赤霉烯酮所致氧化应激的研究进展
王建花;张燚;龙淼
【期刊名称】《畜牧与饲料科学》
【年(卷),期】2015(0)9
【摘要】玉米赤霉烯酮是一种真菌毒素,对动物具有生殖毒性、免疫毒性、细胞毒性、遗传毒性,并有促癌作用,还能引起机体的氧化应激.玉米赤霉烯酮广泛存在于饲料和谷物中,能引起动物慢性中毒、机能异常甚至死亡,对畜牧养殖业危害严重.介绍了玉米赤霉烯酮所致的氧化应激作用及其机制,以期为阐明该作用机制涉及的信号转导通路提供理论依据.
【总页数】3页(P30-32)
【作者】王建花;张燚;龙淼
【作者单位】沈阳农业大学畜牧兽医学院,辽宁沈阳 110866;沈阳农业大学畜牧兽医学院,辽宁沈阳 110866;沈阳农业大学畜牧兽医学院,辽宁沈阳 110866
【正文语种】中文
【中图分类】S859.82
【相关文献】
1.玉米赤霉烯酮对原代大鼠睾丸支持细胞增殖相关基因表达以及氧化应激的影响[J], 徐明龙;郭保平;胡进;牛亚茹;肖成;徐银学
2.玉米赤霉烯酮和脱氧雪腐镰刀菌烯醇对动物毒性的研究进展 [J], 周建川;史东辉;计成
3.粮油作物中玉米赤霉烯酮检测方法研究进展 [J], 刘梅;张晋欣;刘沙沙;马玥
4.中药缓解玉米赤霉烯酮毒性研究进展 [J], 康俊港;李杨;姜国均;刘明超
5.玉米赤霉烯酮脱毒以及植物精油抑菌作用的研究进展 [J], 周英焕;冯雪莲;李留安;焦小丽
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玉米赤霉烯酮对体外培养鸡脾脏淋巴细胞凋亡的影响

玉米赤霉烯酮对体外培养鸡脾脏淋巴细胞凋亡的影响

动物营养学报2018ꎬ30(8):3285 ̄3292ChineseJournalofAnimalNutrition㊀doi:10.3969/j.issn.1006 ̄267x.2018.08.048玉米赤霉烯酮对体外培养鸡脾脏淋巴细胞凋亡的影响李欣虹1㊀郑若愚1㊀辜彦霏1㊀陶思邑1㊀任志华1㊀王亚超2㊀邓俊良1∗(1.四川农业大学动物医学院ꎬ成都611130ꎻ2.西南科技大学ꎬ绵阳621010)摘㊀要:本试验旨在研究玉米赤霉烯酮(ZEA)对体外培养鸡脾脏淋巴细胞凋亡的影响ꎮ选用40~60日龄健康的伊莎公鸡ꎬ无菌条件下取脾脏ꎬ制备淋巴细胞悬液ꎮZEA染毒浓度为0(对照)㊁0.10㊁0.40㊁1.60㊁6.25和25.00μg/mLꎬ染毒48h后检测体外培养鸡脾脏淋巴细胞凋亡率㊁坏死率㊁细胞线粒体膜电位㊁细胞内活性氧(ROS)含量以及B淋巴细胞瘤-2(Bcl ̄2)㊁Bcl ̄2相关X蛋白(Bax)㊁Bak ̄1㊁p53及半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3(caspase ̄3)mRNA表达量及细胞培养液上清中上述相应凋亡基因蛋白含量ꎮ结果显示:与对照组比较ꎬZEA染毒导致鸡脾脏淋巴凋亡率㊁坏死率㊁ROS含量㊁细胞培养上清液中p53㊁Bax㊁Bak ̄1及caspase ̄3的含量以及细胞内p53㊁Bax㊁Bak ̄1及caspase ̄3的mRNA表达量显著或极显著提高(P<0.05或P<0.01)ꎬ且随毒素浓度升高而升高ꎻ而ZEA组细胞线粒体膜电位和上清液Bcl ̄2含量却极显著低于对照组(P<0.01)ꎮ由此可知ꎬZEA染毒可促进体外培养鸡脾脏淋巴细胞凋亡ꎬ且呈剂量依赖性ꎮ关键词:玉米赤霉烯酮ꎻ鸡脾脏淋巴细胞ꎻ凋亡ꎻ线粒体ꎻ活性氧中图分类号:S816㊀㊀㊀㊀文献标识码:A㊀㊀㊀㊀文章编号:1006 ̄267X(2018)08 ̄3285 ̄08收稿日期:2018-01-05基金项目:国家自然科学基金项目(31402269)ꎻ四川农业大学2018年本科生科研兴趣培养计划项目作者简介:李欣虹(1997 )ꎬ女ꎬ四川凉山人ꎬ本科生ꎬ从事动物中毒病理研究ꎮE ̄mail:1871426174@qq.com∗通信作者:邓俊良ꎬ教授ꎬ博士生导师ꎬE ̄mail:dengjl213@126.com㊀㊀玉米赤霉烯酮(ZEA)又称F ̄2毒素ꎬ是由镰刀菌(主要是禾谷镰刀菌ꎬ此外还有三线镰刀菌㊁木贼镰刀菌㊁雪腐镰刀菌以及粉红镰刀菌等)产生的一种类雌激素样霉菌毒素ꎬ在霉变的谷类作物和动物性食品中广泛存在ꎮZEA可促进细胞凋亡ꎮKim等[1]研究发现ꎬZEA可导致小鼠精细胞严重损害ꎬ出现不同程度的凋亡小体ꎬ且随着作用时间延长和浓度增加而加重ꎬ精原细胞和精母细胞表现更明显ꎮ余增丽等[2]对乳腺癌的MCF ̄7细胞研究发现ZEA对细胞的增殖活性是通过调节B淋巴细胞瘤-2(Bcl ̄2)基因和Bcl ̄2相关X蛋白(Bax)基因的表达抑制了细胞凋亡所获得的ꎬ且ZEA可以显著提高细胞色素P450家族1亚科A多肽1(CYP1A1)酶的活性及其mRNA表达ꎮ邓友田等[3]也研究得出ZEA能够促进Bc1 ̄2mRNA和蛋白表达ꎬ而抑制Bax的表达ꎬZEA可提高人乳腺癌细胞系 MCF27细胞增殖活力并促进有丝分裂指数ꎬ并通过对Bc1 ̄2和Bax表达的调节作用ꎬ抑制雌激素耗尽所诱导的MCF27细胞凋亡ꎮ符达[4]给大鼠饲喂不同剂量的ZEA发现ꎬZEA可对大鼠p53基因第8外显子的构象产生影响ꎬ导致外显子中2个条带上碱基对出现以嘧啶与嘌呤的互换突变为主的突变ꎮ而p53基因与细胞周期生长的调节㊁细胞转化的调节㊁DNA复制及诱导程序性死亡有密切关系ꎬp53基因通过Bal ̄2家族作用调控细胞凋亡[5]ꎮ在Yu等[6]关于ZEA诱导小鼠RAW264.7巨噬细胞死亡机制的研究中ꎬZEA染毒处理导致细胞线粒体膜电位的损失及Bcl ̄2和Bax蛋白在线粒体的变化ꎬ细胞质释放细胞色素C和凋亡诱导因子ꎬ过氧化氢酶抑制ZEA诱导㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报30卷RAW264.7细胞减少ꎮ㊀㊀ZEA作用于免疫系统的主要靶器官是脾脏ꎬ可导致脾脏淋巴细胞凋亡ꎬ进而使机体免疫功能降低ꎮ马勇江等[7]研究ZEA对离体培养脂多糖活化小鼠脾脏淋巴细胞具有显著促凋亡作用ꎬ且促进强度与其剂量呈依赖性关系ꎮ但目前关于ZEA对鸡脾脏细胞凋亡方面的研究较少ꎮ因此ꎬ本研究以原代培养鸡脾脏淋巴细胞为模型ꎬ从细胞水平上研究镰刀菌毒素ZEA染毒对鸡脾脏淋巴细胞的凋亡及其调控基因的影响ꎬ以便阐明ZEA染毒对鸡脾脏淋巴细胞的影响及其分子机制ꎮ1㊀材料与方法1.1㊀试验材料㊀㊀试验动物:东北农业大学动物医学院动物中心提供的40~60日龄健康的伊莎公鸡ꎮ㊀㊀胎牛血清(FBS)购自Gibco公司ꎻ4-羟乙基哌嗪乙磺酸(Hepes)㊁ZEA及无酚红的RPMI1640培养基均购自Sigma公司ꎻ细胞凋亡检测试剂盒[用异硫氰酸荧光素标记的膜联蛋白V(AnnexinV ̄FITC)和碘化丙啶(PI)双染]购自ACTGene公司ꎻ2ᶄꎬ7ᶄ-二氢二氯荧光黄双乙酸钠(DCFH ̄DA)与罗丹明123(Rh123)购自Sigma公司ꎻTrizol试剂盒㊁M ̄MLV反转录酶㊁DNA抽提试剂盒及RNA酶均购自Invitrogen公司ꎻrTaq酶等PCR反应试剂购自TaKaRa(大连)生物公司ꎻ溴化乙锭(EB)购自Sigma公司ꎻ鸡的Bax㊁Bak ̄1㊁Bcl ̄2㊁p53及半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3(caspase ̄3)酶联免疫吸附测定(ELISA)检测试剂盒均购自上海生工生物公司ꎮ1.2㊀试验方法1.2.1㊀脾脏淋巴细胞悬液的制备㊁培养及处理㊀㊀在无菌条件下ꎬ将鸡脾脏取出ꎬ放入盛有磷酸盐缓冲液(PBS)的培养皿里ꎬ用PBS轻轻洗涤脾脏周围的血液残渣ꎬ仔细剥去脾脏周围结缔组织ꎬ将其移入另一个盛有PBS并浸泡有200目网筛的培养皿中ꎬ用镊子将脾脏放在200目铜网上ꎬ用20mL一次性注射器的内芯轻轻研磨ꎬ过滤ꎬ将滤液适当稀释成一定浓度的细胞悬液ꎬ再将细胞悬液移入预先装有鸡淋巴分离液离心管里ꎬ即缓缓以1ʒ1体积比将细胞悬液移入到鸡淋巴分离液上层ꎬ2000r/min常温离心15minꎬ用巴氏吸管移取淋巴细胞ꎬ加入冷的PBS洗涤ꎬ1500r/min4ħ离心5minꎬ弃去上清液ꎬ加入不含毒素的RPMI1640完全培养液(加FBS)再洗涤1次ꎬ重悬ꎬ计数ꎬ并用台盼蓝检测细胞活力大于95%ꎮ㊀㊀前期试验已检测染毒48h时ꎬZEA的半抑制浓度(IC50)为(23.91ʃ4.96)μg/mLꎮ通过IC50筛选出ZEA的作用浓度为对照组0㊁Z1组0.10μg/mL㊁Z2组0.40μg/mL㊁Z3组1.60μg/mL㊁Z4组6.25μg/mL和Z5组25.00μg/mL[8]ꎮ1.2.2㊀流式细胞仪测定细胞凋亡率和坏死率㊀㊀染毒培养48h时ꎬ收集细胞ꎬ1500r/min离心3minꎬ用PBS洗涤细胞3次ꎮ离心后ꎬ加500μLBindingBuffer制备细胞悬液ꎬ再加入10μLAnnexinV ̄FITC和5μLPIꎬ室温避光反应5~15minꎬ用流式细胞仪测定细胞凋亡率和细胞坏死率ꎬ同时以不加AnnexinV ̄FITC及PI作为试剂对照ꎮ激发波长为488nmꎬAnnexinV ̄FITC的绿色荧光通过异硫氰酸荧光素(FITC)通道(FL ̄1ꎬ530nm)检测ꎬPI的红色荧光通过PI通道(FL ̄2ꎬ585nm)检测ꎮ每个样品以10000个细胞计数进行统计ꎬ数据由流式细胞仪的标准计算机程序分析获得ꎮ1.2.3㊀细胞内活性氧(ROS)含量的测定㊀㊀染毒培养48hꎬ收集细胞ꎬ1500r/min离心3minꎬ后用PBS洗涤细胞3次ꎮ选用对细胞内过氧化氢(H2O2)特异性结合的荧光染料DCFH ̄DA对细胞内ROS进行检测ꎬ用PBS悬浮细胞ꎬ加入DCFH ̄DA染液使其终浓度为100μmol/Lꎬ混匀ꎬ37ħ避光孵育30minꎬPBS洗涤3次ꎬ在流式细胞仪测定其平均荧光强度(激发波长488nmꎬ发射波长530nm)ꎮ1.2.4㊀细胞线粒体膜电位的测定㊀㊀染毒培养48hꎬ收集细胞ꎬ1500r/min离心3minꎬ后用PBS洗涤细胞2~3次ꎮ选用对线粒体特异性结合的荧光染料罗丹明123对线粒体膜电位进行检测ꎬ用PBS悬浮细胞ꎬ加入罗丹明123染液使其终浓度为5μg/mLꎬ混匀ꎬ37ħ避光孵育30minꎬPBS洗涤3次ꎬ在流式细胞仪测定其平均荧光强度(激发波长488nmꎬ发射波长530nm)ꎮ1.2.5㊀上清液中Bc1 ̄2㊁p53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3含量测定(ELISA法)㊀㊀染毒培养48h后ꎬ收集细胞培养上清液ꎬ3000r/min离心20minꎬ吸取上清ꎬ-20ħ保存备68238期李欣虹等:玉米赤霉烯酮对体外培养鸡脾脏淋巴细胞凋亡的影响用ꎬ按ELISA试剂盒说明书测定上清液中Bc1 ̄2㊁p53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3的含量ꎮ1.2.6㊀细胞内凋亡调控基因Bc1 ̄2㊁p53㊁Bax㊁Bak ̄1及caspase ̄3的mRNA表达测定㊀㊀按RNA提取试剂盒说明书操作ꎬ最终获得组织总RNAꎻ取组织总RNA适量ꎬ按PrimeScriptRT ̄PCRKit说明书进行反转录ꎬ将提取的RNA转化为cDNAꎬcDNA保存于-80ħ备用或立即用于PCRꎮ根据GenBank中发表的鸡的β-肌动蛋白(β ̄actin)㊁Bc1 ̄2㊁p53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3的全基因序列ꎬ应用Prime5.0软件设计特异的上㊁下游引物ꎬ并经GenBankBlast进行同源性检索后由Invitrogen公司(上海)合成ꎮ引物序列及参数见表1ꎮ表1㊀引物序列及参数Table1㊀Primersequencesandparameters基因Genes引物序列Primersequences(5ᶄ 3ᶄ)扩增长度Amplificationlength/bpGenBank登录号GenBankaccessionNo.β肌动蛋白β ̄actinF:CACCACAGCCGAGAGAGAAATR:TGACCATCAGGGAGTTCATAGC135L08165B淋巴细胞瘤-2相关X蛋白BaxF:GTGATGGCATGGGACATAGCTCR:TGGCGTAGACCTTGCGGATAA90XM_422067.2p53F:GAGATGCTGAAGGAGATCAATGAGR:GTGGTCAGTCCGAGCCTTTT145X13057.1B淋巴细胞瘤-2Bcl ̄2F:ATCGTCGCCTTCTTCGAGTTR:ATCCCATCCTCCGTTGTCCT150Z11961.1Bak ̄1F:ATGGATGCCTGTCTGTCCTGTTCR:GCAGAGCAGTCCAAAGACACTGA106NM_001030920.1半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3Caspase ̄3F:ACTCTGGAATTCTGCCTGATGACAR:CATCTGCATCCGTGCCTGA129NM_204725.1㊀㊀相关基因cDNA的PCR反应体系包括cDNA㊁上游与下游引物㊁高保真酶㊁Premix和ddH2Oꎬ反应条件为95ħ预变性30sꎬ按95ħ变性5sꎬ60ħ退火34sꎬ40个循环ꎬ4ħ终止反应ꎻ取PCR扩增产物于1.5%琼脂糖凝胶电泳2hꎬ凝胶成像仪拍照记录PCR结果ꎮ1.3㊀数据分析㊀㊀采用REST软件(Pfaffl)分析毒素处理样品各目的基因mRNA的表达丰度ꎬ应用SPSS13.0软件对数据进行显著性F检验及相关性分析ꎻ其中上述各项指标的测定重复3个不同批次的细胞ꎬ每批细胞每个样本重复3次ꎬ数据以平均值ʃ标准差表示ꎬP<0.05为差异显著ꎬP<0.01为差异极显著ꎮ2㊀结㊀果2.1㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞凋亡率和坏死率的影响㊀㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞凋亡率和坏死率的影响见表2ꎮZEA染毒时ꎬ细胞凋亡率各组间差异显著(P<0.05)ꎮ细胞坏死率除Z2组和Z3组差异不显著(P>0.05)外ꎬ其余各组间差异均极显著(P<0.01)ꎮ当ZEA浓度达到6.25μg/mL以上ꎬ细胞凋亡和坏死均有所减缓ꎮ㊀㊀除Z5组较Z4组淋巴细胞的凋亡率和坏死率均有所下降外ꎬ其余试验组的细胞凋亡率和坏死率均随ZEA浓度的升高而升高ꎬ各ZEA组细胞凋亡率和坏死率均极显著高于对照组(P<0.01)ꎻ且同浓度下ꎬ脾脏淋巴细胞的凋亡率均高于坏死率ꎬ表明ZEA染毒主要导致脾脏淋巴细胞凋亡ꎮ2.2㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞内ROS含量与线粒体膜电位的影响㊀㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞内ROS含量与线粒体膜电位的影响见表3ꎮZEA染毒48hꎬ鸡脾脏淋巴细胞ROS含量随毒素浓度的升高而增加ꎬ各ZEA组ROS含量极显著高于对照组(P<0.01)ꎻ而线粒体膜电位随毒素浓度的升高而降低(Z3组除外)ꎬ各ZEA组线粒体膜电位极显著低于对照组(P<0.01)ꎮROS含量除Z3组与Z4组间差异不显著(P>0.05)外ꎬ其余各组间差异显著(P<7823㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报30卷0.05)ꎻZEA组间线粒体膜电位差异显著(P<0.05)ꎮ表2㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞凋亡率和坏死率的影响Table2㊀EffectsofZEAontheapoptoticrateandnecroticrateofchickenspleniclymphocytes%组别Groups凋亡率Apoptoticrate坏死率Necroticrate对照Control8.40ʃ0.20Ef2.30ʃ0.03EeZ124.40ʃ1.50De4.10ʃ0.20DdZ225.90ʃ2.40Dd4.90ʃ0.12Cc玉米赤霉烯酮ZEAZ329.30ʃ2.70Cc4.90ʃ0.30CcZ451.10ʃ3.40Aa12.10ʃ0.80AaZ540.40ʃ3.00Bb10.70ʃ0.32Bb㊀㊀同列数据肩标不同大写字母表示差异极显著(P<0.01)ꎬ不同小写字母表示差异显著(P<0.05)ꎬ相同小写字母表示差异不显著(P>0.05)ꎮ下表同ꎮ㊀㊀Inthesamecolumnꎬvalueswithdifferentcapitallettersuperscriptsmeanextremelysignificantdifference(P<0.01)ꎬandwithdifferentsmalllettersuperscriptsmeansignificantdifference(P<0.05)ꎬwhilewiththesamesmalllettersuperscriptsmeannosignificantdifference(P>0.05).Thesameasbelow.表3㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞内ROS含量与线粒体膜电位的影响Table3㊀EffectsofZEAonintracellularROScontentandmitochondrialmembranepotentialinchickenspleniclymphocytes组别Groups活性氧ROS线粒体膜电位Mitochondrialmembranepotential对照Control1.43ʃ0.03De5.92ʃ0.07AaZ14.03ʃ0.12Cd5.54ʃ0.10BbZ24.78ʃ0.15Bc4.58ʃ0.15Dd玉米赤霉烯酮ZEAZ35.23ʃ0.16Bb5.32ʃ0.10CcZ45.31ʃ0.20Bb4.06ʃ0.10EfZ510.15ʃ0.30Aa4.15ʃ0.20Ee2.3㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞培养上清液中Bc1 ̄2㊁p53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3含量的影响㊀㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞培养上清液中Bc1 ̄2㊁p53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3含量的影响见表4ꎮ针对Bcl ̄2含量ꎬ除Z1组与Z2组间差异不显著(P>0.05)外ꎬ其余各组间差异均极显著(P<0.01)ꎻ针对p53含量ꎬ各组间均差异显著(P<0.05)ꎻ针对Bax含量ꎬZ1组㊁Z2组㊁Z3组和对照组之间差异均不显著(P>0.05)ꎬZ4组和Z5组之间及与上述各组间差异极显著(P<0.01)ꎻ针对Bak ̄1含量ꎬ各组间差异均显著(P<0.05)ꎻ针对caspase ̄3含量ꎬ除Z3组和Z4组间差异不显著(P>0.05)外ꎬ其余各组间均差异显著(P<0.05)ꎮ㊀㊀由此表明ꎬp53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3含量随毒素浓度的升高而增加ꎬBcl ̄2含量随毒素浓度的升高而降低ꎬ具有显著的剂量依赖关系ꎮ2.4㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞Bc1 ̄2㊁p53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3mRNA表达的影响㊀㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞Bc1 ̄2㊁p53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3mRNA表达的影响见表5ꎮ针对Bcl ̄2mRNA表达量ꎬZ1组㊁Z2组和Z3组间Bax/Bcl ̄2值差异不显著(P>0.05)ꎬ但显著高于对照组(P<0.05)ꎬZ4组和Z5组极显著高于其他各组(P<0.01)ꎻ针对p53mRNA表达量ꎬ各ZEA组极显著高于对照组(P<0.01)ꎻ针对BaxmRNA表达量ꎬ各组间差异显著(P<0.05)ꎻ针对Bak ̄1mRNA表达量ꎬ除Z2组和Z3组间差异不显著(P>0.05)外ꎬ其余各组间差异极显著(P<0.01)ꎻ针对caspase ̄3mRNA表达量ꎬ对照组㊁Z1组㊁Z2组和Z3组间差异不显著(P>0.05)ꎬZ4组和Z5组极显著高于其他各组(P<0.01)ꎬ且2组间差异极显著(P<0.01)ꎮ㊀㊀由此表明ꎬ除caspase ̄3mRNA表达量在Z188238期李欣虹等:玉米赤霉烯酮对体外培养鸡脾脏淋巴细胞凋亡的影响组㊁Z2组和Z3组略小于对照组外ꎬBax/Bcl ̄2值以及Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3的mRNA表达量随毒素浓度的升高而增加ꎬ具有显著的剂量依赖关系ꎮ表4㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞培养上清液中Bc1 ̄2㊁p53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3含量的影响Table4㊀EffectsofZEAoncontentsofBc1 ̄2ꎬp53ꎬBaxꎬBak ̄1andcaspase ̄3insupernatantsofchickenspleniclymphocytes组别GroupsB淋巴细胞瘤-2Bcl ̄2/(μg/L)p53/(pg/L)B淋巴细胞瘤-2基因相关X蛋白Bax/(μg/mL)Bak ̄1/(ng/L)半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3Caspase ̄3/(pmol/L)对照Control48.84ʃ1.51Aa270.46ʃ20.72Cf5.20ʃ0.06Cc170.31ʃ6.72Cf11.18ʃ1.52CeZ131.76ʃ1.45Bb282.02ʃ7.54Ce5.21ʃ0.33Cc179.81ʃ2.24Ce13.45ʃ1.47CdZ230.73ʃ1.63Bb307.36ʃ5.66Cd5.31ʃ0.15Cc214.64ʃ5.22Cd21.34ʃ0.45Bc玉米赤霉烯酮ZEAZ325.21ʃ1.31Cc588.78ʃ23.71Bc5.73ʃ0.20Cc331.80ʃ2.24Bc26.70ʃ0.53ABbZ420.13ʃ1.42Dd632.80ʃ13.20Bb8.67ʃ0.21Bb410.96ʃ3.73Ab27.28ʃ0.50ABbZ514.74ʃ1.27Ee818.19ʃ11.32Aa11.17ʃ0.40Aa447.72ʃ26.03Aa30.99ʃ0.60Aa表5㊀ZEA对鸡脾脏淋巴细胞Bc1 ̄2㊁p53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3mRNA表达的影响Table5㊀EffectsofZEAonmRNAexpressionofBc1 ̄2ꎬp53ꎬBaxꎬBak ̄1andcaspase ̄3inchickenspleniclymphocytes组别GroupsB淋巴细胞瘤-2基因相关X蛋白/B淋巴细胞瘤-2Bax/Bcl ̄2p53B淋巴细胞瘤-2基因相关X蛋白BaxBak ̄1半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3Caspase ̄3对照Control1.00ʃ0.04De1.00ʃ0.02Cf1.00ʃ0.11Cf1.02ʃ0.08Ee0.98ʃ0.03CcZ11.17ʃ0.04CDcd1.23ʃ0.08Bd1.25ʃ0.01Be1.37ʃ0.05Dd0.96ʃ0.05CcZ21.21ʃ0.06CDcd1.46ʃ0.10Ab1.40ʃ0.03ABd1.52ʃ0.04Cc0.94ʃ0.05Cc玉米赤霉烯酮ZEAZ31.31ʃ0.02Cc1.36ʃ0.09Bc1.43ʃ0.09ABc1.55ʃ0.05Cc0.93ʃ0.04CcZ41.57ʃ0.06Bb1.52ʃ0.07Aa1.44ʃ0.10ABb2.12ʃ0.05Bb1.33ʃ0.03BbZ53.23ʃ0.15Aa1.32ʃ0.03Bd1.59ʃ0.08Aa3.18ʃ0.04Aa3.73ʃ0.25Aa3㊀讨㊀论㊀㊀本实验室前期研究表明ꎬZEA在体内试验中可以诱导小鼠肾脏细胞㊁脑细胞和肝脏细胞的凋亡[8-11]ꎬ在体外试验中可以诱导猪脾脏淋巴细胞凋亡[12]ꎮ在本试验中ꎬZEA可以诱导体外培养鸡脾脏淋巴细胞凋亡ꎬ结果和前期试验结果一致ꎮ㊀㊀线粒体在氧化代谢过程中产生大量ROSꎮ在自由基产生过多或抗氧化防御系统作用减弱时ꎬ机体不能有效清除线粒体内ROSꎬ造成蓄积ꎬ过量蓄积的ROS可氧化线粒体渗透性转运孔上的相应氧化还原敏感位点ꎬ导致线粒体膜电位降低㊁线粒体肿胀和进一步产生ROSꎬ进而造成线粒体的氧化损伤[13]ꎮ本研究结果表明ZEA染毒使鸡脾脏淋巴细胞内ROS大量积累ꎬ线粒体膜电位极显著下降ꎬ和上述研究一致ꎮ㊀㊀细胞凋亡的信号传导途径是经过特殊的死亡信号激活半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶系统来实现的[14]ꎮcaspase ̄3是在多种诱导剂刺激后导致凋亡的关键酶ꎬ它的活化预示着细胞凋亡执行阶段的开始ꎮ正常情况下ꎬ它以酶原形式存在于胞质中ꎬ当细胞接受凋亡刺激时ꎬ它被系列反应激活ꎬ进而诱导细胞发生凋亡[15-17]ꎮZEA可诱导猪卵巢颗粒细胞凋亡依赖半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶凋亡通路[18]ꎮ本研究结果显示ꎬZEA能够诱导体外培养鸡脾脏淋巴细胞caspase ̄3的mRNA表达量增加ꎬ分泌在上清液中的caspase ̄3蛋白也增加ꎬ且呈剂量效应关系ꎬ和上述试验结果一致ꎮ㊀㊀在细胞凋亡过程中ꎬp53蛋白起着至关重要的作用ꎮp53蛋白主要集中于核仁区ꎬ能与DNA特9823㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报30卷异结合ꎬ具有明显的细胞转化抑制作用ꎬ对保护细胞基因组DNA的完整性具有重要作用ꎮ如果DNA受到外来损伤ꎬp53可作为转录因子诱导一系列下游基因的表达ꎬ介导细胞停止在G期ꎬ使DNA有足够的时间得到修复ꎮ如果DNA损伤严重ꎬ修复失败㊁并且不可逆则p53启动凋亡程序诱导细胞凋亡[19]ꎮAyedBoussema等[20]研究ZEA对人的肝细胞是激活p53ꎬ通过p53途径以剂量依赖方式诱导细胞凋亡ꎮYu等[6]研究ZEA对RAW264.7巨噬细胞的毒性作用ꎬ其中p53的激活起到了关键作用ꎮBouaziz等[21]研究ZEA对人的肝癌细胞的毒性ꎬ得出ZEA引发p53依赖的凋亡通路致细胞凋亡的分子机制ꎮ本试验结果也表明ZEA从基因水平改变了鸡脾脏淋巴细胞p53的表达ꎬ干扰了p53凋亡通路的调控ꎬ从而诱发鸡脾脏淋巴细胞凋亡ꎮ㊀㊀Bcl ̄2家族蛋白在调节通过线粒体使细胞凋亡过程中起着至关重要的作用ꎬBcl ̄2蛋白主要分布于线粒体膜㊁核膜及内质网膜上ꎬ参与维持线粒体膜的完整性ꎬ防止细胞色素C的释放ꎬ阻止凋亡的 内源性激活 ꎬ是细胞的抗凋亡成员[22]ꎮ当Bax形成同源二聚体Bax ̄Bax时ꎬ诱导细胞凋亡ꎬ随着Bcl ̄2表达量的上升ꎬ越来越多的Bax二聚体分开ꎬ与Bcl ̄2形成比Bax ̄Bax二聚体更稳定的Bax ̄Bcl ̄2的异二聚体ꎬ从而中和了Bax ̄Bax二聚体调节细胞凋亡的作用ꎬ即细胞内Bax/Bcl ̄2的值对于决定细胞接受刺激信号后存活与否起关键作用ꎮBcl ̄2过量表达细胞存活ꎬBax过量表达则细胞凋亡[23]ꎮYuan等[24]研究得出ZEA诱导小鼠雄性生殖细胞的凋亡基因Bax的mRNA的表达增加ꎬBcl ̄2的mRNA表达减少ꎮYu等[25]研究ZEA对人的乳腺癌MCF ̄7细胞的研究ꎬ发现ZEA显著抑制细胞凋亡ꎬ存在剂量依赖性ꎬWesternblot和多重RT ̄PCR分析显示ꎬ抗凋亡的Bcl ̄2蛋白和mRNA水平上调ꎬ促凋亡的Bax下调ꎬ说明ZEA具有雌激素活性ꎬ并能促进MCF ̄7细胞通过细胞周期由G0/G1期减少和S期的显著增加的进展ꎬ通过Bcl ̄2表达调控抑制细胞凋亡ꎮ本试验结果显示ꎬ在ZEA对鸡脾脏淋巴细胞作用下ꎬBak ̄1的表达均有所升高ꎬBax/Bcl ̄2值也增加ꎬ其蛋白含量也随之增加或减少ꎮ4㊀结㊀论㊀㊀①本试验表明ꎬ随ZEA浓度升高ꎬ细胞凋亡调控蛋白p53㊁Bax㊁Bak ̄1和caspase ̄3的含量升高ꎬBcl ̄2含量却下降ꎻZEA上调Bcl ̄2家族基因(Bax和Bak ̄1)㊁p53基因和caspase ̄3基因表达ꎬ抑制Bcl ̄2家族基因中Bcl ̄2基因表达ꎮ㊀㊀②ZEA通过激活p53和半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶通路而诱导细胞凋亡增加ꎬ并且凋亡是由氧化应激引起ꎮ参考文献:[1]㊀KIMIHꎬSONHYꎬCHOSWꎬetal.Zearalenonein ̄ducesmalegermcellapoptosisinrats[J].ToxicologyLettersꎬ2003ꎬ138(3):185-192.[2]㊀余增丽ꎬ张立实ꎬ吴德生.玉米赤霉烯酮对乳腺癌细胞MCF ̄7增殖和凋亡的影响[J].中国预防医学杂志ꎬ2005ꎬ39(5):328-331.[3]㊀邓友田ꎬ袁慧.玉米赤霉烯酮毒性机理研究进展[J].动物医学进展ꎬ2007ꎬ28(2):89-92. 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玉米赤霉烯酮的遗传毒性研究进展

玉米赤霉烯酮的遗传毒性研究进展

玉米赤霉烯酮的遗传毒性研究进展李荣芳;邬静;袁莉芸;伍勇;袁慧【期刊名称】《上海畜牧兽医通讯》【年(卷),期】2009(000)006【摘要】@@ 玉米赤霉烯酮(Zearalenone, ZEA),又称F-2毒素,具有雌激素样作用,是一种常见的环境内分泌干扰物(environmental endocrine disruptors,EED),是由镰刀菌产生的一种霉菌毒素.它广泛存在于霉变的玉米、高粱、小麦等谷类作物和奶类品中,且繁殖快,代谢产物多,残留时间长,给畜牧业带来很大的危害.ZEA具有很强的细胞毒性,对机体的各种脏器具有明显的毒害作用.本文就ZEA的遗传毒性作用机制方面的研究状况进行综述,包括引起染色体变异,诱导DNA损伤与氧化损害,引起基因突变,此外,也有文献报道ZEA可以影响细胞间缝隙连接作用.【总页数】2页(P26-27)【作者】李荣芳;邬静;袁莉芸;伍勇;袁慧【作者单位】湖南农业大学动物医学院,湖南,长沙,410128;湖南农业大学动物医学院,湖南,长沙,410128;湖南农业大学动物医学院,湖南,长沙,410128;湖南农业大学动物医学院,湖南,长沙,410128;湖南农业大学动物医学院,湖南,长沙,410128【正文语种】中文【相关文献】1.玉米赤霉烯酮毒性及其脱毒方法研究进展 [J], 时从来;李金贵2.饲料中玉米赤霉烯酮的污染状况及其毒性研究进展 [J], 张天姝3.玉米赤霉烯酮对母猪的繁殖毒性研究进展 [J], 吴峰洋; 杨新宇; 栗金丽; 陈宝江4.玉米赤霉烯酮和脱氧雪腐镰刀菌烯醇对动物毒性的研究进展 [J], 周建川;史东辉;计成5.中药缓解玉米赤霉烯酮毒性研究进展 [J], 康俊港;李杨;姜国均;刘明超因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

玉米赤霉烯酮对BHK细胞毒性作用的研究

玉米赤霉烯酮对BHK细胞毒性作用的研究

玉米赤霉烯酮对BHK细胞毒性作用的研究韩薇;缪德年;赵志辉【摘要】采用多种方法研究了玉米赤霉烯酮(Zearalenone,ZEA)染毒对叙利亚仓鼠肾细胞(BHK细胞)的影响.结果表明:ZEA可引起BHK细胞活力显著降低(P<0.05),至染毒后24 h,40 μg/mL ZEA剂量组细胞活力下降95%.ZEA对BHK细胞DNA的损伤作用也非常明显,40 μg/mL剂量组DNA拖尾率达对照组的80倍.试验中40μg/mL剂量组24 h时检测到DNA ladder条带.ZEA使BHK细胞内SOD 活性显著降低(P<0.05),细胞培养液中MDA含量则显著升高(P<0.05).对细胞作用24 h后,最高剂量组(40 μg/mL)细胞培养液中MDA含量与对照组相比升高了5倍,而细胞的抗氧化能力却降至对照组的1/4左右.上述结果表明:ZEA作用于BHK细胞后,细胞活力下降,DNA受到损伤,引发细胞凋亡;并且ZEA引发了BHK细胞过氧化物生成增加,抗氧化能力下降.【期刊名称】《上海农业学报》【年(卷),期】2013(029)006【总页数】5页(P44-48)【关键词】玉米赤霉烯酮;毒性作用;叙利亚仓鼠肾细胞;单细胞凝胶电泳;噻唑蓝;黄嘌呤氧化酶;丙二醛【作者】韩薇;缪德年;赵志辉【作者单位】上海市农业科学院农产品质量标准与检测技术研究所,上海201403;上海市农业科学院畜牧兽医研究所,上海201106;上海市农业科学院农产品质量标准与检测技术研究所,上海201403【正文语种】中文【中图分类】S858玉米赤霉烯酮(Zearalenone,ZEA)是一种霉菌毒素,是由镰刀菌属的三线镰刀菌、禾谷镰刀菌和玉米赤霉菌等产生的一种具有类雌性激素作用的真菌毒素,主要污染玉米、小麦、大麦等农作物和动物饲料[1]。

ZEA为白色晶体,分子式C18H22O5,熔点161~163℃,不溶于水,易溶于乙醚、甲醇等有机溶剂。

ZEA 为2,4-二羟基苯甲酸内脂类化合物,具有雌激素活性。

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董双,何剑斌,张燚,等.玉米赤霉烯酮对雄性小鼠生殖系统的毒性作用.[J].畜牧与兽医,2016,48(6):25-29Dong S,He J B,Long M,et al.Toxic effects of zearalenone on male reproductive system in mice[J].Animal Husbandry&Veterinary Medicine,2016,48(6):25-29玉米赤霉烯酮对雄性小鼠生殖系统的毒性作用董双,何剑斌*,张燚,龙淼*(沈阳农业大学畜牧兽医学院,辽宁沈阳110866)摘要:为探讨玉米赤霉烯酮(ZEA)对雄性生殖系统的毒性作用,本试验选取清洁级昆明系雄性小鼠93只,随机分成5组:25mg/kg、50mg/ kg、75mg/kg ZEA处理组、溶剂对照组(DMSO)、空白对照组(生理盐水),进行腹腔注射染毒,每天1次,连续5d,于末次染毒后第2天摘眼球采血并脱颈处死动物,分离睾丸和附睾,测定脏器系数、精子密度和活力,睾丸酶的活力水平以及血清睾酮和雌激素的浓度。

结果显示,与对照组相比,玉米赤霉烯酮显著地降低小鼠的体重和精液品质,睾丸乳酸脱氢酶(LDH)、碱性磷酸酶(AKP)、酸性磷酸酶(ACP)的活力随着染毒剂量的增加显著升高(P<0.01,P<0.05),血清睾酮和雌激素浓度随染毒剂量的增加显著下降(P<0.01,P<0.05)。

该结果提示,玉米赤霉烯酮对雄性小鼠生殖系统具有严重的损伤作用,影响生精功能。

关键词:玉米赤霉烯酮;睾丸;附睾;精液品质中图分类号:S856.9文献标志码:A文章编号:0529-5130(2016)06-0025-05Toxic effects of zearalenone on male reproductive system in miceDONG Shuang,HE Jian-bin,LONG Miao,ZHANG Yi(College of Animal Science and Veterinary Medicine,Shenyang Agricultural University,Shenyang110866,China)Abstract:To examine toxic effects of zearalenone(ZEA)on male reproductive system,93clean grade adult male Kunming mice were ran-domly divided into5groups and exposed to intraperitoneal injection of ZEA at25,50and75mg/kg body weight,DMSO and normal saline solution,respectively for5days.The mice were sacrified at the6th day after eyeball blood sampling.The testis and epididymis viscera inde-xes,semen quality,testis enzyme activity and serum concentrations of testosterone and estrogen were assessed.The results showed that com-pared with the control group,ZEA significantly decreased the body weight,semen quality,increased the testis enzyme activity and decreased serum concentrations of testosterone and estrogen(P<0.01,P<0.05).In conclusion,ZEA can hurt male reproductive system and affect the spermatogenic function.Key words:zearalenone;testis;epididymis;semen quality;testosterone玉米赤霉烯酮(zearalenone,ZEA)是由镰刀菌属的霉菌,如黄色镰孢霉、禾谷镰孢霉、轮枝镰孢霉产生的类雌激素作用的次级代谢产物,是一种大环β-二羟基苯甲酸内酯类[1-2]。

这种霉菌毒素存在于各类农作物中,如收割前后的小麦、大麦、玉米、高粱等,以及农产品加工阶段,进而污染世界范围内的人类食物和动物饲料,给全球带来巨大的经济损失。

ZEA不仅具有肝肾毒性、遗传毒性、免疫毒性,还收稿日期:2015-06-30基金项目:中国博士后科研基金项目(2014M551125);国家自然科学基金项目(31201961、31302152)作者简介:董双(1989-),女,硕士生,研究方向:临床兽医学*通信作者:何剑斌(1969-),男,硕士生导师,教授,研究方向:临床兽医学,E-mail:hejianbin69@;龙淼(1978-),男,讲师,博士,研究方向:动物营养代谢病及中毒病,E-mail:longjlau@ 由于其能够与17β-雌二醇竞争性结合雌激素受体(ER),具有雌激素效应,干扰机体的内分泌系统,产生生殖毒性,进而影响动物的正常生理活动,引起靶器官、靶组织甚至机体的多个系统发生病变[3-5],对人类和动物的健康危害极大。

ZEA作为一种外源性内分泌干扰物,其生殖毒性是当今科研领域的一大研究热点。

有研究显示,ZEA对机体的生殖系统损害极大[6]。

研究表明玉米赤霉烯酮呈剂量依赖性方式诱导猪卵巢颗粒细胞发生细胞凋亡和细胞坏死,从而减少细胞的增殖[7],还能够引起断奶仔猪发生氧化损伤和炎症反应[8],并且玉米赤霉烯酮还使断奶雌鼠的初情期提前,并干扰雌鼠的早期妊娠[9]。

ZEA不仅影响雌性动物的繁殖机能,还损害雄性动物的生殖系统,能够引起大鼠的睾丸萎缩,并诱导生精细胞发生凋亡[10],睾丸间质细胞发生凋亡和细胞自噬[11],且抑制睾酮的分泌[12],从而影响精子的生成,导致潜在的生殖问题。

国内外学者做了大量的体内体外试验,以期揭示出ZEA生殖毒性的作用机制,然而,关于ZEA对雄性生殖毒性的研究相对较少。

因此,我们通过检测小鼠睾丸和附睾脏器系数、精液品质、睾丸关键性酶活力的水平以及血清睾酮和雌激素的质量浓度,就ZEA对雄性生殖系统的毒性作用进行初步研究,为进一步探讨其毒性作用机制提供有力参考。

1材料与方法1.1试验动物健康清洁级的昆明系雄性小鼠95只,8周龄,体重为40-45g,购自辽宁长生生物技术有限公司。

小鼠食用同种灭菌饲料,自由饮水和采食,定期添加饲料和饮用水,并更换垫料和清洁粪便,每天光照12h,适应性饲养1周,无异常后进行试验。

1.2药品和试剂ZEA和二甲基亚砜(DMSO)均购自美国Sigma 公司。

乳酸脱氢酶(LDH)、碱性磷酸酶(AKP)、酸性磷酸酶(ACP)测定试剂盒购自南京建成生物工程研究所。

血清睾酮和雌二醇放射性免疫试剂盒购自北京北方生物技术研究所。

1.3分组和染毒将93只雄性昆明小鼠随机分成5组,第1组为空白对照组10只;第2组为溶剂对照组10只,腹腔注射DMSO和生理盐水的混合液;第3组25只、第4组25只和第5组25只为ZEA处理组,分别腹腔注射25mg/kg、50mg/kg、75mg/kgZEA。

每天1次,连续染毒5d,根据体重增减染毒剂量。

1.4样本采集于末次染毒后第2天,对小鼠进行摘眼球采血与脱颈处死,分离两侧睾丸和附睾,并称重。

每组取4只小鼠的左侧睾丸放入4%中性甲醛溶液中固定,其余睾丸经液氮冻存后,转移至-80ħ超低温冰箱中保存。

双侧附睾需立即放入2mL37ħ预热的生理盐水中,进行精子计数和活力检查。

小鼠的血液室温下静置1h,3000r/min离心15min后收集血清于-20ħ保存。

1.5小鼠的行为观察和睾丸与附睾的脏器指数每天观察动物的采食、饮水、行为活动、毛色、尿液和粪便等有无异常,染毒前后各测定体重一次,以观察ZEA对小鼠生长状况的影响。

于末次染毒后剖检那一天称量小鼠的体重,脱颈处死后,分离睾丸和附睾并称重,计算脏器系数。

脏器指数(%)=脏器重量(g)/小鼠体重(g)ˑ100。

1.6精液品质的检测精子活力的检测:采取两侧附睾,立即置于2 mL37ħ预热的生理盐水中剪碎,吸管吹打混匀,制备成精子悬液,置于37ħ水浴锅中孵育20min后,取1滴悬液置于37ħ预热的清洁的血细胞计数板上,盖上盖玻片,在高倍镜下连续计数200个精子,精子活力分级依照WHO对精子的分级标准,分为:Ⅰ快速直线的向前运动;Ⅱ慢速或迟钝的直线或非直线向前运动;Ⅲ不向前的运动;Ⅳ不活动。

整个操作和观察在室温下进行,并在10min内结束。

精子活动度(%)=(Ⅰ+Ⅱ+Ⅲ)/(Ⅰ+Ⅱ+Ⅲ+Ⅳ)ˑ100%。

精子计数:将余下的精子悬液置于60ħ水浴中处死精子。

吸取一滴精子悬液于血细胞计数板的计数池内,按照红细胞计数法,计数5个中方格内的精子总数,记为n a,按下列公式计算精子总数N a(106/ mL)=naˑ100000。

精子畸形的观察:取精子悬液一滴,用2%伊红染色5min,制成精液涂片,晾干后,甲醇固定,晾干后高倍镜下观察畸形精子。

1.7睾丸标志酶的活力检测取-80ħ冰箱保存的睾丸,每组5个,严格按照试剂盒说明书配制试剂并制备组织匀浆液,按要求检测LDH、AKP、ACP的活力。

1.8血清睾酮和雌二醇的浓度从-20ħ冰箱中取出血清,恢复至室温后,严格按照试剂盒说明操作,制作标准曲线,检测血清睾酮和雌二醇的浓度,由中国医科大学实验室协助完成。

1.9统计学处理采用SPSS17.0软件进行数据分析,实验数据以均数ʃ标准误表示,P<0.05具有统计学意义。

2结果2.1行为观察和成活率在染毒期间,空白对照组和溶剂对照组的小鼠采食和饮水正常,尿液和粪便正常,毛色光滑,活动灵敏;而ZEA处理组的小鼠反应迟钝,少动,精神不振,毛色光泽度降低,较少采食和饮水,有的表现为肌肉震颤,走路不稳,严重者在染毒第4天死亡。

各组动物死亡情况如表1所示。

表1各试验组小鼠死亡情况组别动物数/只死亡动物数/只空白对照组100溶剂对照组100低剂量组251中剂量组258高剂量组2510如表2所示,每组随机抽取5只小鼠,各试验组小鼠在染毒5d前后的体重变化。

在连续染毒5d后,ZEA各处理组小鼠的体重均下降,但中剂量组(50 mg/kg)体重下降不明显,低剂量(25mg/kg ZEA)和高剂量(75mg/kg ZEA)组的小鼠体重与空白对照组相比,明显降低(P<0.05),尤其是高剂量组(P<0.01)。

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