DNA琼脂糖凝胶电泳
DNA的琼脂糖凝胶电泳实验原理和操作步骤
DNA的琼脂糖凝胶电泳实验原理和操作步骤DNA的琼脂糖凝胶电泳是一种常用的分子生物学技术，用于分析DNA 的大小和纯度，以及进行DNA分子的分离和纯化。
凝胶电泳实验可以帮助我们确定DNA样本的大小和获得纯化的DNA片段供进一步研究使用。
下面是DNA琼脂糖凝胶电泳实验的原理和操作步骤。
【原理】DNA琼脂糖凝胶电泳是根据DNA分子在电场中的不同迁移速率来分离大小不同的DNA片段。
琼脂糖凝胶是一种凝胶状物质，其孔隙大小能够将DNA分子限制在一定范围内，较大的DNA分子迁移速率较慢，而较小的DNA分子迁移速率较快。
琼脂糖凝胶通常是在平均浓度为1%至2%之间的范围内制备，以便在不同大小的DNA分子之间提供适当的分辨率。
实验中，DNA样品通过切割酶或PCR等方法获得，样品经过核酸电泳缓冲液稀释，并在琼脂糖凝胶板上进行电泳。
凝胶板两侧连接电源，DNA 的带电粒子将在电场的作用下从负极迁移到正极，迁移过程中形成DNA的“条带”，条带的位置和长度反映了DNA的大小。
通常，DNA条带由荧光染料或核酸染料标记，以便在电泳结束后进行可视化。
【操作步骤】以下是DNA琼脂糖凝胶电泳实验的一般操作步骤：1.制备琼脂糖凝胶板：a.准备琼脂糖粉末和核酸电泳缓冲液（通常为TAE或TBE缓冲液）。
b.按照说明书将琼脂糖粉末溶解于核酸电泳缓冲液中。
c.将溶液加热至沸腾并搅拌，使琼脂糖完全溶解。
d.将溶液倒入预先准备好的电泳仓中，插入梳子或制备好的孔板，使其凝固。
2.样品制备：a.提取DNA样品并测定其浓度。
b. 将DNA样品稀释到适当浓度，通常为10-50 ng/μL。
c. 添加适当的加载缓冲液，通常是一些染料和甘胺酸（glycine）或其他添加剂。
3.DNA加载和电泳：a.打开琼脂糖凝胶仓盖，将DNA样品负载于凝胶孔内。
b.将DNA负载区域和样品标注在电泳仓中，以便在电泳结束后可以准确识别DNA带。
c.关闭盖子，将电泳仓放入电泳设备中。
dna琼脂糖凝胶电泳条件
dna琼脂糖凝胶电泳条件DNA琼脂糖凝胶电泳是一种常用的DNA分析技术，广泛应用于分子生物学和遗传学研究中。
凝胶电泳通过将DNA片段在电场作用下沿凝胶运动，根据片段大小的不同被分离出来，从而实现对DNA样品的检测和分析。
本文将详细介绍DNA琼脂糖凝胶电泳的条件和步骤，并解释其原理和应用。
DNA琼脂糖凝胶电泳条件的设定是成功进行分析的关键。
下面将一步一步回答关于电泳条件的问题。
1. 凝胶选择：DNA琼脂糖凝胶电泳通常使用琼脂糖（agarose）凝胶，因其透明度高、质地均匀且易于制备和使用。
琼脂糖的浓度通常在0.5%至2%之间，视待测DNA片段的大小而定。
较长的DNA片段，一般需要较低浓度的琼脂糖。
2. 缓冲液选择：DNA琼脂糖凝胶电泳常用的缓冲液是TAE（三乙酸铝溶液）或TBE（三硼酸盐溶液）。
这两种缓冲液都能提供适当的离子强度和pH值，维持DNA 片段的稳定移动。
常见的TAE缓冲液配方是：40 mM三乙酸（Tris-Acetate）、1 mM EDTA（乙二胺四乙酸）。
TBE缓冲液配方为：90 mM三硼酸（Tris-Borate）、1 mM EDTA。
在使用缓冲液前，必须经过滤以去除杂质。
3. 电场强度设定：电泳过程中的电场强度直接影响DNA片段的迁移速度，因此需要根据待测DNA片段的大小和琼脂糖浓度来设定适当的电压。
通常，电场强度设置在5至10 V/cm之间，以避免DNA的热失活和琼脂糖的熔化。
4. 标准品选择：为了对待测DNA片段的大小进行估测，我们需要在电泳实验中加入标准品。
标准品是一系列已知大小的DNA片段，通常以Kb（千碱基对）为单位。
标准品可以购买或通过PCR扩增获得。
根据标准品的迁移位置和待测样品的迁移位置，可以估测待测DNA片段的大小。
5. 采样和加载样品：将待测DNA样品与DNA标记染料混合（如溴化乙锭）后，小心加载到琼脂糖凝胶的预制孔中。
为了减少加载误差，可以在样品中加入DNA大小标记品和负载控制品（如碱基作为分子量标准品）。
琼脂糖凝胶电泳检测DNA
五、主要事项
1．影响DNA在琼脂糖凝胶中迁移速率的因素： a ． DNA分子大小迁移速率U与logN成反比（N为碱基对 数目）。分子大小相等，电荷基本相等（DNA结构重复 性）。分子越大，迁移越慢。等量的空间结构紧密的电 泳快（超螺旋>线性DNA） b． 琼脂糖浓度：logU=logU0 Kr 胶浓度，U为迁移率， U0 为DNA的自由电泳迁移率，为胶浓度，Kr为介质阻 滞系数。不同的凝胶浓度，分辨不同范围的DNA Agarose： 0.5%： 1-30 kb； 0.7%： 0.8-12 kb 1.2%： 0.4-7 kb； 1.5%： 0.2-3 kb
五、主要事项
c． DNA构象：一般迁移速率超螺旋环状 >线状DNA>单链开环。当条件变化时， 情况会相反，还与琼脂糖的浓度、电流强 度、离子强度及EB含量有关。 d． 所加电压：低电压时，线状DNA片段 的迁移速率与所加电压成正比。使分辨效 果好，凝胶上所加电压不应超过5V/cm
五、主要事项
e． 碱基组成与温度：一般影响不大4 -30 ℃
5． 将电泳样品与溴酚蓝混合后将样品依次点入加样孔中；
DNA 5µl + ddH2O 3µl + 溴酚蓝2µl 共10µl于0.5ml tube中 混合后点样； 6． 将制胶板放入电泳槽中，加入电泳液，打开电泳仪，使核酸 样品向正极泳动； 7． 电泳完成后切断电源，取出凝胶，放入0.5 µg/ml的溴化乙 锭（EB）溶液中染色10－15 min，清水漂洗后置于紫外透 射仪上观察电泳结果，并照相记录。
实验10 琼脂糖凝胶电泳检测DNA
一、实验原理
DNA 分子在琼脂糖凝胶中泳动时有电荷效应 和分子筛效应。DNA 分子在高于等电点的pH 溶液
DNA琼脂糖凝胶电泳(原)
凝胶制作过程
1. 根据电泳需要，配臵合适浓度的电泳及制胶缓冲液，一 般为1× TAE或0.5×TBE。
注意：用于电泳的缓冲液和用于制胶的缓冲液必须是相同的。
2. 根据制胶量及凝胶浓度，在加有一定量的电泳缓冲液 的三角锥瓶中，加入准确称量的琼脂糖粉。
注意：总液体量不宜超过三角锥瓶的50%容量。
3. 在微波炉中加热溶解琼脂糖至清明、透亮。
琼脂糖凝胶电泳操作简单、快速，通过调整其使
用浓度，使得分辨率达到大多数实验的要求，因此成 为分离、鉴定、纯化核酸分子的常用方法。但在实际 的操作过程中经常出现一些问题，如凝胶电泳图谱的 条带模糊不清，条带弯曲变形, 凝胶图谱变形，灌制
凝胶后的点样孔撕裂不整齐等，使得电泳结果的重复
性差。
二、相关概念
上样注意事项
加样时枪头不要碰坏凝胶控壁，否则DNA带型不整齐，加 样前要用枪头吸打凝胶孔中的溶液以赶走样品空中的气泡； 每孔最大上样量取决于DNA样品片段的大小，数目及样品 孔形状与容量； 每孔最大上样容积决定于样品孔体积； DNA marker可在两侧的样品孔均加上。
电压和温度
电泳时电压应该不超过20V/cm，电泳温度应该低
4.在软件界面点击“拍摄”按钮即可。
注：1、尽量减少紫外照射时间，调焦距和位臵时可以用白光。 2、不同凝胶结果对比时，用相同焦距、曝光时间和光圈大小。
如何调节焦距、聚焦、光圈以获得 高质量的图片？
三个最重要的可调参数分别是焦距、聚焦 和光圈。其中焦距调节清晰度，聚焦调节图像 大小，光圈调节明暗。一般先调光圈至适宜的 亮度后，再调聚焦将图像放到最大，最后调节 焦距，在图像较大的情况下焦距比较容易调节 到最清晰状态，然后再把图像缩放在适宜大小 后成像即可。
质粒DNA的琼脂糖凝胶电泳
具有扁平 结构，能嵌入到DNA碱基对间，对线状分子与开环分子影响较小而对超螺旋态的分子影响较大。
1.2
150bp～6kb
300bp～7kb
300bp~7kb
1.5
80bp~4kb
200bp~4kb
200bp~4kb
2.0
100bp~3kb
100bp~3kb
3.0
500bp~1kb
500bp~1kb
4.0
100bp~500bp
6.0
10bp～100bp
2、DNA电泳影响因素 主要分两方面：DNA分子特性和电泳条件。 （1）DNA分子大小 DNA分子越大在胶中摩擦阻力就越大，泳动也越慢， 迁移速率与线状DNA分子质量的对数值成反比。 （2）DNA分子构型 相同分子量质粒DNA，构型不同电泳时受的阻力不同，泳动速率不同。常规电泳中质粒DNA分子的3种构型泳动速率：超螺旋最快、线状次之，开环最慢。
3、DNA电泳上样缓冲液 主要作用如下： （1） 螯合Mg2＋，防止电泳过程中DNA被降解（2） 增加样品密度以保证DNA沉入加样孔内，一般上样缓冲液中加入一定浓度的甘油或蔗糖，这样可以增加样品的比重。大片段电泳中采用Ficoll（聚蔗糖），可减少DNA条带的弯曲和托尾现象。 （3）指示剂监测电泳的行进过程，一般加入泳动速率较快的溴酚蓝指示电泳的前沿，它的速率约与300bp的线状双链DNA相同。
1 2 3 4
不同类型琼脂糖分离DNA片段大小的范围
DNA琼脂糖凝胶电泳
DNA琼脂糖凝胶电泳一,实验原理琼脂糖凝胶电泳是分离和纯化DNA 片段的常用技术.把DNA样品加入到一块包含电解质的多孔支持介质(琼脂糖凝胶)的样品孔中,并置于静电场上.由于DNA分子的双螺旋骨架两侧带有含负电荷的磷酸根残基,因此在电场中向正极移动.在一定的电场强度下,DNA分子的迁移速度取决于分子筛效应.具有不同的相对分子质量的DNA片段泳动速度不一样,因而可依据DNA分子的大小来使其分离.凝胶电泳不仅可分离不同分子质量的DNA, 也可以分离相对分子质量相同,而构型不同的DNA分子.在电泳过程中可以通过示踪染料或相对分子质量标准参照物和样品一起进行电泳而得到检测.相对分子质量标准参照物相对可以提供一个用于确定DNA片段大小的标准.在凝胶中加入少量溴化乙锭(ethidium bromide, EB),其分子可插入DNA的碱基之间,形成一种络合物,在254～365nm波长紫外光照射下,呈桔红色荧光,因此也可对分离的DNA进行检测.一般琼脂糖凝胶电泳适用于大小在0.2kb～50kb范围内的DNA 片段.本实验介绍琼脂糖凝胶的制备以及琼脂糖凝胶电泳在DNA片段分离中的应用方法.琼脂糖凝胶浓度（%）线状DNA分子分离范围（kb）0.3 5--600.6 1--200.9 0.5--71.2 0.4--61.5 0.2--32.0 0.1--2琼脂糖凝胶电泳是用于分离纯化和鉴定核酸的方法，根据琼脂糖的溶解温度，把琼脂糖分为一般琼脂糖和低熔点琼脂糖。
低熔点琼脂糖的熔点为62--65,溶解后在37下维持液体状态约数小时,主要用于DNA片断的回收、质粒与外源性DNA的快速连接等。
DNA在琼脂糖凝胶中的迁移速度与琼脂糖浓度、DNA分子量及其构象、电泳缓冲液、电场强度等因素有关，一般说来，DNA片断越大或者琼脂糖浓度越大，其迁移速率越大；而电场强度越高，其迁移速率越大。
不同浓度琼脂糖凝胶DNA分离范围见上图表。
二,仪器及试剂1.仪器及耗材:水平电泳槽,电泳仪,凝胶成像分析系统,微波炉,微量移液器,透明胶带,点样或parafilm,100 ml或250 ml锥形瓶,量筒,吸头等.2.试剂及配制:50×TAE缓冲液的配制:2 mol/L Tris-乙酸,0.05 mol/L EDTA(pH 8.0)配制1000 mlTris 242 g冰乙酸 57.1 ml0.5 mol/L EDTA 100 ml加入600 ml去离子水后搅拌溶解,将溶液定容至1 L后.高温高压灭菌,室温保存.1×TAE缓冲液的配制:称量20 ml的50×TAE缓冲液,再加入980 ml的去离子水.溴化乙啶贮存液:10 mg/ml 溴化乙啶配制:100 ml称取1 g溴化乙啶,置于100 ml烧杯中,加入80 ml去离子水后搅拌溶解.将溶液定容至100 ml后,转移到棕色瓶中.室温保存.6×上样缓冲液:0.25%溴酚蓝,0.25%二甲苯青FF,30%甘油.配制:10 ml溴酚蓝 25 mg二甲苯青FF 25 mg甘油 3 ml用6×TAE缓冲液定溶至10 ml,分装成1 ml/管.-20℃保存.其它试剂:DNA样品,DNA Ladder ,琼脂糖三,操作步骤1. 制备1%琼脂糖凝胶(大胶用70ml,小胶用50ml):称取0.7 g(0.5g)琼脂糖置于锥形瓶中,加入70 ml(50ml)1×TAE,瓶口倒扣小烧杯.微波炉加热煮沸3次至琼脂糖全部融化,摇匀,即成1.0%琼脂糖凝胶液.2. 胶板制备:取电泳槽内的有机玻璃内槽(制胶槽)洗干净,晾干,放入制胶玻璃板.取透明胶带将玻璃板与内槽两端边缘封好,形成模子.将内槽置于水平位置,并在固定位置放好梳子.将冷却到65℃左右的琼脂糖凝胶液混匀小心地倒入内槽玻璃板上,使胶液缓慢展开,直到整个玻璃板表面形成均匀胶层.室温下静置直至凝胶完全凝固,垂直轻拔梳子,取下胶带,将凝胶及内槽放入电泳槽中.添加1×TAE电泳缓冲液至没过胶板为止.3. 加样:在点样板或parafilm上混合DNA样品和上样缓冲液,上样缓冲液的最终稀释倍数应不小于1X.用10 ul微量移液器分别将样品加入胶板的样品小槽内,每加完一个样品,应更换一个加样头,以防污染,加样时勿碰坏样品孔周围的凝胶面.(注意:加样前要先记下加样的顺序).4. 电泳:加样后的凝胶板立即通电进行电泳,电压60-100V,样品由负极(黑色)向正极(红色)方向移动.电压升高,琼脂糖凝胶的有效分离范围降低.当溴酚蓝移动到距离胶板下沿约1cm处时,停止电泳. (5)电泳完毕后,取出凝胶,用含有0.5 ug/ml的溴化乙锭1×TAE溶液染色约20 min,再用清水漂洗10 min.(6)观察照相:在紫外灯下观察,DNA存在则显示出红色荧光条带,采用凝胶成像系统拍照保存.四,常见问题及注意事项1.配琼脂糖时应使其完全熔化后方可制胶.2.琼脂糖凝胶易于破碎,操作时要轻缓.3.电泳时应注意电源线路,预防触电.4.溴化乙淀具有致癌作用,配制及使用时应带乳胶或一次性塑料手套.并在专门的实验室内使用.5.紫外线对人体有损伤作用,开灯时间不宜太长,注意防护.6.DNA带形状模糊:DNA加样过多;电压太高;凝胶中有气泡.7.质粒DNA的存在形式有3种,①共价闭环DNA(cccDNA),常以超螺旋形式存在;②开环DNA(ocDNA),此种质粒DNA的两条链中有一条发生一处或多处断裂,因此可以自由旋转从而消除张力,形成松弛的环状分子;③线状DNA,因质粒DNA的两条链在同一处断裂而造成.因此质粒DNA电泳的结果中有可能出现三条泳带,它们的泳动速度为: cccDNA > 线状DNA > ocDNA.添加来自TIANGEN的资料:1,琼脂糖:不同厂家＼不同批号的琼脂糖，其杂质含量不同,影响DNA的迁移及其荧光背景的强度,应有选择的使用.2,凝胶的制备:凝胶中所加的缓冲液应该与电泳槽中的相一致,溶化的凝胶应该及时倒入板中,避免倒入之前凝固结块,倒入板中的凝胶应该避免出现气泡,以免影响电泳结果.3,电泳缓冲液:为保持电泳所需的离子强度和PH,应经常更新电泳缓冲液.4,样品加入量:一般情况下,0.5CM宽的梳子可加0.5微克的DNA量,加样量的多少依据加样孔的大小及DNA中片断的数量和大小而定.当加样孔大时,样品上样量应相应加大,否则会造成条带浅甚至辨认不清楚;反之,则应该适当减少加样量,但是上样量过多会造成加样孔超载,从而导致拖尾或扩散,对于较大的DNA此现象更明显.5,DNA样品中盐浓度会影响DNA的迁移率,平行对照样品中应该使用同样的缓冲条件以消除这种影响.6,DNA迁移率取决于琼脂糖的浓度,迁移分子的形状及其大小.采用不同浓度的凝胶有可能分辨范围广泛的DNA分子,制备琼脂糖凝胶可根据DNA分子的范围来决定凝胶的浓度.小片断DNA的检测应采用聚丙烯酰胺凝胶电泳,以提高分辨率.。
DNA的琼脂糖凝胶电泳DNA实验技术方法
DNA的琼脂糖凝胶电泳DNA实验技术方法琼脂糖凝胶电泳（Agarose gel electrophoresis）是一种常用的分离和分析DNA分子的技术方法。
本文将对DNA的琼脂糖凝胶电泳实验技术方法进行详细介绍。
1.原理琼脂糖凝胶电泳是一种基于DNA分子大小的分离方法。
DNA分子在电场的作用下，由于带负电荷，会向阳极移动。
由于琼脂糖凝胶的孔径不同，不同大小的DNA分子会被琼脂糖凝胶所阻碍，大分子相对较慢，小分子相对较快地通过凝胶孔隙。
通过电泳，可以将不同大小的DNA分子分离开来，形成一条条带状。
2.实验步骤（1）制备琼脂糖凝胶：将适量的琼脂糖加入1×TAE缓冲液中，加热溶解，冷却至约60℃时加入适量的乙溴酸溶液，振荡均匀后倒入电泳槽中，插入梳子形成孔洞。
（2）样品制备：将待测DNA溶解在缓冲液中（常用缓冲液为1×TBE或1×TAE），加入适量的显色剂（如溴化乙锭），混合均匀。
（3）装料和电泳：将样品倒入琼脂糖凝胶的样品槽中，注意避免气泡的产生。
将电泳槽连接电源，接通电源，设定适当的电压（通常为100-150V）进行电泳。
（4）分析结果：电泳结束后，关闭电源，取出凝胶，放入紫外光透射仪中观察凝胶上的DNA带状条带，并进行照相或记录。
3.实验注意事项（1）凝胶制备：凝胶溶液要充分均匀，避免不均匀分布造成的电泳结果不准确。
（2）样品制备：样品在加入缓冲液中时要充分混匀，避免DNA在样品中的不均匀性造成的电泳结果不准确。
（3）电泳条件：电泳条件包括电压、时间、缓冲液等。
较高的电压可以加快电泳速度，但会产生较多的带展平现象。
合适的电压应根据实验需要调整。
（4）结果分析：在紫外光透射仪下观察DNA带状条带时，要小心操作，避免DNA样品受到过长时间的紫外线照射。
4.应用领域琼脂糖凝胶电泳广泛应用于分离和分析DNA分子。
常见的应用领域包括：DNA片段的分子量测定、PCR产物分析、DNA测序结果的验证、突变检测等。
琼脂糖凝胶电泳鉴定DNA
琼脂糖凝胶电泳鉴定DNA琼脂糖凝胶电泳琼脂糖凝胶电泳是用琼脂或琼脂糖作支持介质的一种电泳方法。
对于分子量较大的样品，如大分子核酸、病毒等，一般可采用孔径较大的琼脂糖凝胶进行电泳分离。
琼脂糖凝胶约可区分相差100bp的DNA片段，其分辨率虽比聚丙烯酰胺凝胶低，但它制备容易，分离范围广，尤其适于分离大片段DNA。
普通琼脂糖凝胶分离DNA的范围为0.2-20kb，利用脉冲电泳，可分离高达10^7bp的DNA片段。
琼脂糖凝胶电泳操作流程准备干净的配胶板和电泳槽注意DNA酶污染的仪器可能会降解DNA，造成条带信号弱、模糊甚至缺失的现象。
选择电泳方法一般的核酸检测只需要琼脂糖凝胶电泳就可以；如果需要分辨率高的电泳，特别是只有几个bp的差别应该选择聚丙烯酰胺凝胶电泳；用普通电泳不合适的巨大DNA链应该使用脉冲凝胶电泳。
注意巨大的DNA链用普通电泳可能跑不出胶孔导致缺带。
正确选择凝胶浓度对于琼脂糖凝胶电泳，浓度通常在0.5～2％之间，低浓度的用来进行大片段核酸的电泳，高浓度的用来进行小片段分析。
低浓度胶易碎，小心操作和使用质量好的琼脂糖是解决办法。
注意高浓度的胶可能使分子大小相近的DNA带不易分辨，造成条带缺失现象。
适合的电泳缓冲液常用的缓冲液有TAE和TBE，而TBE比TAE有着更好的缓冲能力。
电泳时使用新制的缓冲液可以明显提高电泳效果。
注意电泳缓冲液多次使用后，离子强度降低，PH值上升，缓冲性能下降，可能使DNA电泳产生条带模糊和不规则的DNA带迁移的现象。
电泳的合适电压和温度电泳时电压不应该超过20V/cm，电泳温度应该低于30℃，对于巨大的DNA 电泳，温度应该低于15℃。
注意如果电泳时电压和温度过高，可能导致出现条带模糊和不规则的DNA带迁移的现象。
特别是电压太大可能导致小片段跑出胶而出现缺带现象DNA样品的纯度和状态是电压太大可能导致小片段跑出胶而出现缺带现象DNA样品的纯度和状态注意样品中含盐量太高和含杂质蛋白均可以产生条带模糊和条带缺失的现象。
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溶
胶
准备胶槽
凝胶冷却至50° 凝胶冷却至50°C，加EB至终浓度0.5µg/ml EB至终浓度 至终浓度0.5µg/ml
铺
胶
凝胶凝固后取出梳子
加缓冲液
准备样品
点
样
电Байду номын сангаас
泳
注意观察溴酚蓝染液的迁移
紫外灯下观察电泳结果
照
相
不同浓度琼脂糖分离DNA分子的范围 不同浓度琼脂糖分离DNA分子的范围
琼脂糖浓度（ 琼脂糖浓度（%） 0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0 分离范围（kb） 分离范围（kb） 55-60 11-20 0.80.8-10 0.50.5-7 0.40.4-6 0.20.2-4 0.10.1-3
琼脂糖凝胶中DNA的观察 琼脂糖凝胶中DNA的观察
溴化乙锭（EB）—DNA：紫外光下 红色荧光 溴化乙锭（EB） DNA：
主要实验器材
电泳仪
缓冲液 琼脂糖
凝胶槽
梳子 电泳槽 取液器
溴酚蓝
电泳槽结构
操作步骤
琼脂糖凝胶的制备：溶化，冷却，EB 琼脂糖凝胶的制备：溶化，冷却， 凝胶板的制备：加梳子， 凝胶板的制备：加梳子，倒胶 样品的制备：样品+1/5体积溴酚蓝 样品的制备：样品+1/5体积溴酚蓝 加样：加样端为负极（黑） 加样：加样端为负极（ 电泳：5V/cm 电泳： 观察：紫外灯下观察，照相 观察：紫外灯下观察，
DNA琼脂糖凝胶电泳 DNA琼脂糖凝胶电泳
实验原理
琼脂糖为链状多糖 →绳状琼脂糖束→大网孔型 绳状琼脂糖束→ 凝胶 ——分离、鉴定、纯化DNA ——分离 鉴定、纯化DNA 分离、 影响DNA迁移率的因素 DNA分子的大小 迁移率的因素： 分子的大小、 影响DNA迁移率的因素：DNA分子的大小、构 象，凝胶浓度，电压，电泳缓冲液的组成 凝胶浓度，电压， 缓冲液pH>DNA Pi，DNA带负电荷 带负电荷， 缓冲液pH>DNA Pi，DNA带负电荷，迁移率与 分子量对数成反比 DNA分子构象影响迁移率 共价闭环DNA> DNA分子构象影响迁移率：共价闭环DNA>线 分子构象影响迁移率： 状DNA>开环DNA DNA>开环DNA