大肠菌群检测方法

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大肠菌群检测(MPN法)

大肠菌群检测(MPN法)

大肠菌群检测(MPN法)大肠菌群检测(MPN法)是一种常用的微生物学技术,可用于检测土壤、水源、食品等中的大肠菌群进行水质和食品安全监测。

本文将介绍大肠菌群及其检测方法-最可能数法(MPN法)。

一、大肠菌群概述大肠菌群是以肠道菌属为主体的一类细菌,包括肠道埃希菌、沙门氏菌、志贺菌、伤寒杆菌等成员,它们可以在人类和动物的肠道中生存并繁殖。

在自然界中,大肠菌群也是广泛存在的微生物家族,如彗星菌、副肠杆菌、耶尔森氏菌等都属于大肠菌群。

1.菌落计数法该方法主要是利用琼脂平板培养皿在水培的条件下,大肠菌群在培养基上经不同时间的生长,形成菌落来进行菌数计数。

缺点是容易受到其他微生物的干扰,只能算出概略的数值,一定误差,没有国家标准。

2. 硝酸德钠试剂法将测样加硝酸德阳试剂进行加热,最终乳黄色的镜检测前进行比色,得出含大肠菌群的细菌群落达标后延迟显色的时间。

该方法已被最可能数(MPN)法所替代。

3. 最可能数法(MPN法)该方法先将测量的样品分别稀释到不同浓度下,再将每一份稀释液添加到以琼脂平板固化培养基为基础的不同培养液中,观察哪一份培养液出现大肠菌群的生长,最后通过MPN表格计算每85ml或100ml的水样中最可能含有的大肠菌群数量,计算公式为:10^x = n / 联合效价(即dilution rate的倒数)其中,x代表最可能数,n代表测量到大肠菌群的样品数。

在实际工作中,MPN法检测显示出了较好的结果,优点是用固定方法,可重复性好,而且可以通过相关将分析获得定量值,便于与相关的标准进行比较。

三、大肠菌群的检测范围1. 水源:大肠菌群检测是办公室里检测饮用水可能携带的最佳方法。

一般情况下,检测过程是检测水中的微生物是否合乎标准。

2.食品:由于食品生产经常存在卫生要求,因此食品也是大肠菌群检测重要的一环。

例如,必须检测火腿或肉类制品中的大肠菌群是否合格以确保食品安全。

3. 其他领域:大肠菌群检测可以用于医学、农业、环境和建筑等领域,如医院污水浑浊度的检测和土壤中大肠菌群的检测。

大肠菌群检验方法课件

大肠菌群检验方法课件

平板计数
证实实验
分离培养
证实试验
↓ 报告
两步法
MPN计数法
1.推测试验:样品稀释后,选择三个稀释度,每个 稀释度接种三管LST肉汤。36±1℃ 培养48±2h,观察是否产气。 2.证实试验:将产气管培养物接种煌绿乳糖胆盐 (BGLB)肉汤管中,36±1℃培养 48±2h,观察是否产气。以BGLB产 气为阳性。查MPN表,报告每ml(g) 样品中大肠菌群的MPN值。
大肠菌群检验方法
介绍
由于大肠菌群指的是具有某些特性的一组 与粪便污染有关的细菌,即:需氧及兼性 厌氧、在37℃能分解乳糖产酸产气的革兰 氏阴性无芽胞杆菌。 因此大肠菌群的检测一般都是按照它的 定义进行。有两步法、三步法
大肠菌群
两部法 三步法

MPN计数法

平板计数法


乳糖发酵试验


推测试验
证实实验
三步法
乳糖发酵试验、分离培养和证实试验
三步法:
1.乳糖发酵试验:样品稀释后,选择三个稀释度,每个释 度接种三管乳糖蛋白胨发酵管。36±1℃ 培 养 48±2h,观察是否产气。 2.分离培养:将产气发酵管培养物转种于伊红美蓝琼脂平 板上,36±1℃培养18-24h,观察菌落形态。
3.证实试验:挑取平板上的可疑菌落,进行革兰氏染色观 察,同时接种普通乳糖发酵管36±1℃, 24±2h,观察产气情况。
主题一
示例一,引出主题 解释细节 进行练习以巩固所学内容
主题二
示例二,引出主题 解释细节 进行练习以巩固所学内容
总结
回顾所学内容 总结学习方法 与学员的互动交流,获取反馈信息
其它信息
参考书籍、电子文档等 咨询服务联系方式 ……

大肠菌群检测(平板计数法)

大肠菌群检测(平板计数法)

平板菌落数的选择
选择菌落数在15-150之间的平板,分别计数平板上出现的典型和可疑大肠菌群菌落。 典型菌落为紫红色,菌落周围有胆盐与酸形成的沉淀环,菌落直径为0.5mm或更大。
什么样的菌落必须要做证实试验
一是非典型菌落,如在颜色、直径与典型菌落不符合的菌落。 另一种情况是被检样品中含有乳糖以外的其他糖类,如牛奶、饮料等样品。本
36℃±1 ℃ 18h ~24h
挑选10个菌落分别 接种到BGLB
VRBA琼脂
配方(g/L): 蛋白胨:7.0; 酵母粉:3.0;乳糖:10.0;3号胆盐:1.5;中性红:0.03;结晶紫:0.002;氯化 钠:5.0; 琼脂:15.0;pH 7.4±0.1,25℃ 其中蛋白胨提供氮源;酵母粉提供生长促进因子和B族维生素;乳糖提供碳源, 大肠菌群发酵乳糖,产生酸性物质;3号胆盐是一种抑菌剂,主要是抑制革兰氏 阳性菌;结晶紫也是一种抑菌剂,主要是抑制革兰氏阳性菌和一部分革兰氏阴性 菌;中性红是一种指示剂,在酸性条件显红色,碱性条件下显无色。氯化钠维持 细菌生长时的渗透压。琼脂是一种凝固剂。
10倍系列稀释
选择2~3个适宜稀释度的样液,接种VRBA平板
36℃±1℃
18~24h
计数典型和可疑菌落
注:VRBA(结晶紫中性红胆盐 琼脂)又称为:VRB或VRBL
BGh
报告结果
平板计数法操作
菌落数在15-150之 间的平板,计数典型
和可疑菌落
典型菌落为紫红色周围有 红色胆盐沉淀环,0.5mm
来大肠菌群的定义是发酵乳糖,但由于样品含有的其他糖类混入了培养基,使 得不能分解乳糖但能分解其他糖类的细菌也能够长出红色菌落,所以需要进行 证实实验。
结果报告
经最后证实为大肠菌群阳性的BGLB管的百分比乘以计数的平板菌落数,再乘 以稀释倍数,即为每g (mL)样品中大肠菌群数 。

大肠菌群检测方法

大肠菌群检测方法

大肠菌群检测方法一、器皿及药品试管:Ø 10×100mm(或者其它规格),按每种样品接种5个平行样计算所需试管的数目。

小导管:每一根试管配一根小导管试管塞:同试管配套,能耐130度的高温。

烧杯:250ml,每种样品一个,1000 ml3个以上吸液管:5 ml,每种样品一支。

量筒:200 ml一支试管架:一个,孔目与所需试管数目一致。

三角瓶:按所需总体积制备2个药品:乳糖胆盐发酵管NACL:生理盐水0.82%的浓度。

天平一台(0-100g)或者其它规格二、试样的制备及药品的配制(1)乳糖胆盐发酵管配制:按试管的数目及每试管的体积50 ml。

算出所需试管的总数及体积,按3.6%浓度称取乳糖胆盐发酵管的重量,放入三角瓶中,加入所需的体积的水。

加热搅拌均匀,使其完全溶解。

(2)生理盐水的配制:根据所需总体积,(每种样品200ml)按0.82%的浓度称取NACL的重量,并到入三角瓶中,加入所需的体积的水,加热搅拌均匀使其完全溶解,用棉团塞紧,并用纸包好瓶口,以备灭菌三、试验步骤(1)轻轻从试管壁放入小导管,将乳糖胆盐发酵管溶液到入试管内,管内不能产生气泡,每管50 ml,导管用试管塞塞紧,放入大烧杯并用压力锅灭菌。

将所需250ml烧杯、量筒、吸液管、已配好的生理盐水全部灭菌。

(2)在灭菌前先将无菌室的灭菌两小时以上,将以上灭菌好的器皿及药品移入灭菌好的工作台上(无菌室内)冷却。

(3)检验员将采好的样品及医用手套放入无菌室的送样口内。

(4)检验员带上口罩进入无菌室,带上手套,准确称取10 ±1g每个样品,剪碎后分别入已灭菌250 ml烧杯中,并作好记号以便识别,加入已冷却200 ml生理盐水,充分混匀。

(5)用吸液管吸取以上生理盐水样液5 ml,加入50 ml乳糖胆盐发酵管试管内,每种样品做5个平行样,将所有加入样液的试管置35℃±2℃的培养箱,培养24小时后观察,如不产酸也不产气,则报告为大肠菌群阴性。

检测大肠菌群的方法

检测大肠菌群的方法

检测大肠菌群的方法
大肠菌群的检测方法可以包括以下几个方面:
1. 培养方法:可以采用传统的培养方法,将样本在含有特定培养基的培养皿上进行培养,并在适当条件下培养出大肠菌群。

然后通过形态特征、生理特性以及生物化学反应等来鉴定大肠菌群。

2. 分子生物学方法:包括PCR、实时荧光PCR、测序等技术。

通过特定引物扩增大肠菌群的特异基因片段,比如16S rRNA基因或者其他特定的核酸片段,然后通过序列比对和进化关系分析来确定大肠菌群的存在和数量。

3. 免疫学方法:可以使用特异性抗体进行检测,如免疫荧光染色、酶联免疫吸附试验(ELISA)等方法,通过检测特定抗原的存在来判断大肠菌群的存在。

4. 生化方法:通过检测样品中特定的代谢产物来间接判断大肠菌群的存在,比如检测大肠菌产生的气体(如氢气、二氧化碳等)、产酸性物质等。

这些方法可以根据具体的需求和实验条件选择合适的方法进行大肠菌群的检测。

大肠菌群测定方法

大肠菌群测定方法

大肠菌群测定方法 Company number:【0089WT-8898YT-W8CCB-BUUT-202108】大肠菌群及检验一、大肠菌群介绍大肠菌群并非细菌学分类命名,而是卫生细菌领域的用语,它不代表某一个或某一属细菌,而指的是具有某些特性的一组与粪便污染有关的细菌,这些细菌在生化及血清学方面并非完全一致,其定义为:需氧及兼性厌氧、在37℃能分解乳糖产酸产气的革兰氏阴性无芽胞杆菌。

一般认为该菌群细菌可包括大肠埃希氏菌、柠檬酸杆菌、产气克雷白氏菌和阴沟肠杆菌等。

大肠菌群分布较广,在温血动物粪便和自然界广泛存在。

调查研究表明,大肠菌群细菌多存在于温血动物粪便、人类经常活动的场所以及有粪便污染的地方,人、畜粪便对外界环境的污染是大肠菌群在自然界存在的主要原因。

粪便中多以典型大肠杆菌为主,而外界环境中则以大肠菌群其他型别较多。

大肠菌群是作为粪便污染指标菌提出来的,主要是以该菌群的检出情况来表示食品中有否粪便污染。

大肠菌群数的高低,表明了粪便污染的程度,也反映了对人体健康危害性的大小。

粪便是人类肠道排泄物,其中有健康人粪便,也有肠道患者或带菌者的粪便,所以粪便内除一般正常细菌外,同时也会有一些肠道致病菌存在(如沙门氏菌、志贺氏菌等),因而食品中有粪便污染,则可以推测该食品中存在着肠道致病菌污染的可能性,潜伏着食物中毒和流行病的威胁,必须看作对人体健康具有潜在的危险性。

大肠菌群是评价食品卫生质量的重要指标之一,目前已被国内外广泛应用于食品卫生工作中。

二、大肠菌群检验方法:由于大肠菌群指的是具有某些特性的一组与粪便污染有关的细菌,即:需氧及兼性厌氧、在37℃能分解乳糖产酸产气的革兰氏阴性无芽胞杆菌。

因此大肠菌群的检测一般都是按照它的定义进行。

目前国内采用的进出口食品大肠菌群检测方法主要有国家标准和原国家商检局制订的行业标准。

两个标准方法在检测程序上略有不同。

(一)国家标准:国家标准采用三步法,即:乳糖发酵试验、分离培养和证实试验。

大肠杆菌检测步骤

大肠杆菌检测步骤

餐饮具用大肠菌群测试片
采样:
(1)随机抽取消毒后准备使用的各类食具(碗、盘、杯等),取样量可根据大、中、小不同饮食行业每次采样6件~10件,每件贴纸片两张,每张纸片面积25cm²
(5cmX5cm)。

(2)用无菌生理盐水湿润大肠菌群检测用纸片后,立即贴于食具内侧表面,30s后取下,置于无菌塑料袋内.
(3)筷子以5只为一件样品,用灭菌1mL吸管吸取无菌生理盐水湿润纸片后,立即将筷子进口端(约5cm)抹试纸片,每件样品抹拭两张,放入无菌塑料袋内。

培养:
将已采样的纸片置于37℃恒温培养箱中培养16h~18h,取出观察结果。

结果判断:
若纸片保持紫蓝色不变,或有红色斑点但斑点周围无黄晕者为大肠菌群阴性;在红色斑点周围有黄晕,或纸片变黄并在黄色背景上呈现红色斑点或片状红晕为阳性。

国家标准规定:在50cm的纸片上(即两片纸片上),大肠菌群不得检出。

大肠菌群的检测方法

大肠菌群的检测方法
1.设备和材料
⑴吸管:1ml,具有0.1ml刻度;5ml和10ml,具1ml刻度。
⑵培养箱:36±1℃。
⑶均质器。
⑷天平:感量0.1g。
⑸显微镜。
⑹菌落计数器。
⑺冰箱:0~5℃和-15~20℃。
⑻微波炉。
2.培养基和试剂
⑴去氧胆酸盐琼脂(DC)。
⑵75%乙醇。
⑶稀释剂:灭菌生理盐水(0.85%)。
⑷革兰氏染色液。
②固体或半固体食品,以无菌操作取25克样品,放入装有225毫升稀释剂的灭菌均质杯内,于8000r/min均质1~2分钟,制成1:10的样品匀液。如样品均质时间超过2分钟,应在均质杯外加冰水冷却。
③稀释样品匀液根据对样品污染情况的估计,用稀释剂将样品匀液制成一系列十倍递增的样品稀释液,如10-2、10-3、10-4……。从制备样品匀液至稀释完毕,全过程不得超过15分钟。
3.样品制备
⑴以无菌操作采取有代表性的样品。如有包装,则用75%乙醇在开口处擦试后取样,如不能及时检测,应将冷冻品置于-15℃保存;非冷冻易腐的食品,应置于4℃冰箱保存。检验前冷冻样品可于2~5℃18小时解冻,或在45℃以下15分钟内解冻。
⑵不同食品样品匀液的制备:
①液体食品
以无菌吸管取样25毫升放入盛有225毫升稀释剂的灭菌玻璃瓶内,(瓶内预置适当数量的玻璃珠),以30cm幅度,于7秒内振摇25次(或以机械振荡器振摇),制成1:10的样品匀液。
⑶平板接种
①对于每一样品,选用合适的三个连续稀释度的样品液进行计数。
②分别用灭菌吸管吸取1毫升样品液放入作了适宜标志的灭菌平皿内。每个样品用两个平皿。
③分别加12~15毫升去氧胆酸盐琼脂(45±1℃)到各平皿内。立即将平皿内的样品液和琼脂培养基充分混合。混合方法是将平皿倾斜和旋转。要防止把混合物溅到平皿壁和盖上。凝固后于其表面再覆盖一薄层培养基,同时将去氧胆酸盐琼脂倾注到空白平皿作空白对照。
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大肠菌群检测方法
进入无菌室步骤
1.进入无菌室前应打开紫光灯进行灭菌,时间为0。

5—1小时。

2.关灯后0•5小时后放可进入。

3.进入更衣间更换衣服,佩带口罩、帽子、鞋套
实验步骤
1,进入无菌室后,先把酒精灯点燃,然后在用酒精棉进行手部消毒。

(酒精棉是用75%的酒精加入脱脂棉中制成)
2,准备双料管3根,单料管6根,培养皿7个。

3,直接从原液中吸取10ml放入双料管,(3根每根各10ml)
4,再吸取原液1ml放入单料管中(3根每根各1ml)
5,再吸取原液1ml放入培养皿中(2个培养皿各1ml)
6,再吸取原液1ml放入盐水管中制成-1梯度的样液
7,更换一根吸管,从-1梯度的样液吸取1ml样液放入单料管中(3根每根各1ml)
8,再吸取-1梯度样液1ml放入培养皿中(2个培养皿各1ml)
9,再把每个培养皿中到入营养琼脂平铺底部摇允(注另作3个培养皿:空气空白,把培养皿打开十分钟倒入营养琼脂平铺底部摇匀。

琼脂空白,把培养皿中倒入营养琼脂平铺底部摇匀。

盐水空白,吸1ml生理盐水放入培养皿中,倒入营养琼脂平铺底部摇匀。


10,把全部作好的放入培养箱中,温度36C+-1×C,大肠24H+-2H,菌落48H+-2H,(待培养皿中的琼脂凝固后反转过来放入培养箱中)
11,梯度:-1梯度为1ml原液加入9ml生理盐水配成
-2梯度为1ml-1梯度样液加入9ml生理盐水配成
-3梯度-4梯度配制方法和-1、-2梯度的配制方法一样
12,如果大肠初发酵产生气泡,用接种笔沾一个产气的液在伊红美兰平板上画之字形然后放入培养箱中36C,24H+-2H 。

(接种笔在每次使用前必须在酒精灯上消毒。

所画之形不能划破伊红美兰琼脂表面)
13,取出后在用接种笔在伊红美兰平板之字形上挑菌,放入乳糖复发酵管中,然后再培养36C+-1C,24H++-2H。

14,再在伊红美兰平板之字形上挑菌,放到载玻片上作镜检。

(方法见标准)
15,只有镜检成紫红色和乳糖复发酵管产气同时成立的情况下,才能断定这根管是不合格。

16,清洗消毒这根试管前必须进行消毒霉菌,121C,0。

5小时同时不能放气。

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