抑制消减杂交SSH步骤

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抑制性消减杂交(SSH)技术及其应用

抑制性消减杂交(SSH)技术及其应用

抑 制 性 消 减 杂 交 技 术
(up eso S pr s in
13 将 t s e D A分成 两组 ( 和 2 ,分 别于其 . etrcN 1 )
S b r c i e H b i i a i nS H 是 D a c e k u t a t v y r d z t o ,S ) i thn o

阳性率低 、 筛选效 率高 、 操作 简单等优 点 , 别适用 于 特 克 隆分析造成 某种特 殊表型 的 目相 同但 在
短链 ( 1 约 0余个核苷 酸 ) 组成 的双链 DA片 段 , N 长
同, 内侧序 列与第二次 P R引物序列 相 同。 外 , 而 C 此 在
[ 摘
要] 制性消减杂交技术 (S ) 抑 S H 是一种高效检测差异表达基 因的方法 。 详细论述了抑制性消减杂交的基本原理及过程,
并简要介绍了其在工业生产菌种改 良中的应用 。 [ 关键词] 抑制性消减 中 8 [ 文献 标 识 码 ] A [ 章编 号 ] 1 0 — 0 5 20 ) 70 3 - 3 文 0 3 5 9 (0 8 0 - 0 10
5 端接上 去磷酸 化 的接 头 1 接 头 2 (d po , 和 a atr 1
等于 19 依据 消减杂 交和 抑制 P R发 展起 来 的 96年 C

种 分 离差 异表 达 基 因的新 方 法 [3该 技术 具 有假 , 2
aa tr2。 dp o ) 两接头分别是具有一段反向末端重复序 列 的寡核苷 酸序 列 , 由一长链 ( 4 约 0余个 核苷酸 ) 和
含有 目的基 因的样 品称 为试验方 (e t r 。 T s e )
除接 头不 同外 是完 全同源 的, 然形成 abCd但第 仍 ,、、,

抑制性减法杂交技术

抑制性减法杂交技术

抑制性减法杂交技术1996年,L. Diatchebko在RDA的基础上建立了抑制性减法杂交(supression subtractive hybridization, SSH)技术,该技术是RDA技术的发展,能有效克服RDA或cDNA RDA技术难以解决的问题,如两者不能用于分离两组基因表达差异较小的基因,也不能用于研究存在上调表达的基因等。

(1) SSH的主要原理SSH的核心技术是抑制性PCR (suppression PCR ),它是一种将检测子cDNA单链标准化步骤和消减杂交步骤结合为一体的技术。

其中标准化步骤均等了检测子中的cDNA单链丰度,而消减杂交步骤去除了检测子和驱赶子之间的共同序列,使检测子和驱赶子之间不同的序列得到扩增。

因此SSH显著增加了获得低丰度表达差异cDNA的概率,简化了对消减文库的分析。

抑制PCR是利用链内复性优先于链间复性的原理,使非目标序列片段两端的长反向重复序列(long inverted repeats)在复性时产生“锅柄样”(panhandle-like)结构或“发夹结构”而无法与引物配对,从而选择性地抑制了非目标序列的扩增。

同时,根据杂交的二级动力学原理,丰度高的单链cDNA复性时产生同源杂交速度要快于丰度低的单链cDNA,从而使得丰度存在差异的cDNA相对含量趋于基本一致。

(2)SSH的基本过程如图所示,SSH的主要步骤包括:限制性核酸内切酶切割,产生大小适当的平头末端cDNA片段。

②将检测cDNA分成均等的两份,分别接上接头1或接头2,接头(adaptor)由一长链(40nt)和一短链(l0nt)组成的一端是平末端的双链cDNA分子。

长链3′端与cDNA5′端相连。

长链外侧序列(约20nt)与第一次PCR引物序列相同,内侧序列则与第二次PCR引物序列相同。

此外,接头上含有升启动子序列及内切酶识别位点(如Not I, Srf I, Sma I和Xba I等),为以后将该片段插入克隆载体和测序提供便利。

抑制消减杂交(SSH)技术的研究与应用

抑制消减杂交(SSH)技术的研究与应用
维普资讯
H i n j n nm l c n e e o gi gA i a S i c l a e
a d Veei ayMe iie n tr r dcn n № 2 20 08
近。 由于 V P 在 立 体 结 构 上 与 天 然 病 毒 相 同或 类 Ls 似, 因此 V P L s能激 发 体 液 免疫 、 细胞 免 疫 和黏 膜 免 疫, 具有 安全 、 高效 的特 点 , 是很 有发 展前 景 的候 选疫 苗 。但 是 , 目前 V P 主要 通 过基 因工 程 手 段从 酵母 Ls 或感染重 组杆状 病毒 的昆虫细 胞 中制备 , 这对操 作者 有 较高 的要求 和较复杂 的试验 操作 条件 。 3 利用 反 向遗传 操作 技术制 备的疫 苗
随着 人类 基 因组 计 划 的完 成 及后 基 因组 计划 的 启 动 , 异基 因表达就 成 了一 项热 门 的技 术 。由于分 差
工程疫 苗及 反 向遗 传疫苗 并存应 用 的局 面。
参 考文献 :
[ ] 丁壮 , 1 金宁一 , 王兴 龙 , 鸡 新城疫病毒 H 等. N基因亚单 位疫苗
诱导免疫保护 的试验 研究 [ ] J .动物 医学进 展 ,0 2 2 ( ) 20 ,3 1 :
4 —5 . 9 1
清学 方法 无 法 区 别 是疫 苗 株 还 是 野 毒 株 感 染 所 致 。 因此通过 改变免疫 原蛋 白的某 些 中和表 位 , 构建一 个 能用 合适 的血 清 学 方法 鉴 别 的疫 苗 是 十分 必 要 的 。 Pee etsBP等人 通过 反 向遗传 操作 构建 了 N V感 染 r D
3 1 卵内免疫 疫苗 .
其 表达外 源基 因 , 诱 发 对 载体 和表 达基 因的 免疫 。 来 葛金英 等人利 用反 向遗传 操作 技术 以 N V 的 LSt D ao a 疫 苗株 为载体 , 入 H AV 的 H N 插 PI 5 1株 H A基 因 . 研

抑制性消减杂交技术的应用[1]

抑制性消减杂交技术的应用[1]

・技术与方法・生物技术通报B I O TECHNOLOGY BULL ET I N2009年第5期抑制性消减杂交技术的应用李小庆 景志忠(中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室农业部兽医公共卫生重点实验室甘肃省动物寄生虫病重点实验室,兰州730046) 摘 要: 基因的差异表达是调控各种生命活动的核心分子机制,而分离、克隆并进一步研究差异表达基因已成为现代分子生物学研究的热点,也是功能基因组学研究的重要内容。

在研究差异表达基因的诸多项技术中,抑制性消减杂交(SSH )技术具有特异性强、假阳性率低、灵敏度高和快速简便等优点,被广泛地应用于生命科学和医学领域的基因差异表达的研究中。

近年来,抑制性消减杂交(SSH )技术得到了相应的改进和完善,而在许多研究领域,该技术在广度和深度上都有了一些新进展。

主要就抑制性消减杂交技术的产生背景、原理、技术流程、特点及其最新应用研究进展等方面作简要综述。

关键词: 抑制性消减杂交 差异表达 功能基因 DS N 均一化技术 c DNA 微阵列Suppressi on Subtracti ve Hybr i di zati on Techn i que andProgress i n the Appli cati onL i Xiaoqing Jing Zhizhong(Lanzhou Veterinary R esearch Institute CAAS,Key Laboratory of Ani m al Parasitology of Gansu P rovince,Key Laboratory of Veterinary PublicHealth of M inistry of Agriculture,S tate Key Laboratory of Veterinary E tiological B iology,Lanzhou 730046) Ab s trac t: D ifferential exp ressi on of genes is the centralmolecular mechanis m of regulating all kinds of life acti ons 1Among all thetechnol ogies of identifying differential exp ressed genes,supp ressi on subtractive hybridizati on (SSH )is considered t o be with high s peci 2ficity,l ow backgr ound,high sensitivity,convenient mani pulati on,and had been widely app lied in life science and medicine research fields 1I n this paper,the p rinci p le,method,characteristics and the research p r ogress of SSH technique were intr oduced 1Key wo rd s: Supp ressi on subtractive hybridizati on D ifferential exp ressi on Functi onal genes DS N (dup lex 2s pecific nuclease )2nor malizati on method c DNA m icr oarray收稿日期:2008211211基金项目:国家自然科学基金项目(30871884),国家高新技术“863”项目(2006AA10A203),甘肃省支撑计划项目(0804NKCA076)作者简介:李小庆(19832),男,硕士,专业方向:畜禽疫病的分子生物学与免疫学通讯作者:景志忠,博士,研究员,主要从事病原与宿主的分子生物学与免疫学研究;E 2mail:zhizhongj@yahoo 1com 1cn 上世纪90年代以来,随着分子生物学技术的快速发展以及多物种包括人类的基因组全序列测定计划的陆续完成,分子生物学的研究热点已经从结构基因组研究转向基因功能和表达调控的功能基因组研究,于是多种用于差异表达分析的基因克隆技术相继问世。

抑制性差减杂交技术_SSH_在植物学研究中的应用

抑制性差减杂交技术_SSH_在植物学研究中的应用
华 北 农 学 报 20 08 , 23 ( 增 刊 ) : 78- 8 3
抑制性差减杂交技术( SSH) 在植物学研究中的应用
阎爱华, 王冬梅
( 河北农业大学 生命科学学院, 河北 保定 071001)
摘要 : 抑制性差减杂交是一种基于转录水平的杂交技术, 能将差异表达 基因扩增 千倍后富集, 具有 高效、灵 敏、操 作简单, 假阳性率低等特点, 已经越来越多的被应用在植物学研究领域。就该 技术的原理、特点 及其在植物 学方面的 应用研究进展作一简要介绍。
DNA 微阵列技术 DNA microarray
巨克隆技术 M egaclone
将基因片段、寡聚核苷酸、cDNA 等固定 在硅质、塑料、玻 璃或尼龙膜 上, 用不 同组 织或 来源 的 mRNA 制 成探 针, 与芯片杂 交, 根 据信 号 查找 差 异 片段 并 进行 克 隆 和分 析。 cDNA 连上不 同的标签 ( tag ) , 与 带有 antitag 的 microbeads 杂交, 固定 cDNA, 并 且每 个 microbead 上 只与 一个 c。
基因差异表达分析方法
Methods of different gene expression techniques
基本原理
The basic principles of different gene expression techniques
优点 Advantage
缺点 Disadvantage
mRNA 差异显示 PCR mRNA differential display
收稿日期: 2008- 08- 11 基金项目: 国家自然科学基金资助项目( 30671244) ; 河北省应有基础研究计 划重点基础研究 项目资助( 08965505D) ; 河北省自然科 学基金

抑制差减杂交技术原理及常见操作结果分析

抑制差减杂交技术原理及常见操作结果分析

将RsaI酶切完全的cDNA用adapter1和adapter2R两 种接头连接。通过PCR扩增检测连接效率。 PCR的引物根据RsaI位点和adapter1、adapter2R 的序列设计。这一般要求扩增的片段中不含RsaI 位点序列。在扩增后琼脂糖胶电泳检测结果中, 如果用一个基因特异性引物和一个接头引物所得 到的带亮度与两个基因特异性引物所得到的带的 亮度一致,说明连接较好;如果用一个基因特异性 引物和一个接头引物所得到的带亮度只有两个基 因特异性引物所得到的带的亮度的25%,则说明连 接效率不到25%,应检查RsaI酶切效果并重新连接。
3 抑制差减杂交技术的优缺点
3.1 与其他几种方法相比,SSH技术具有较明显的优越性: (1)通过两步消减杂交和两次抑制PCR可DDRTPCR和cDNA-RDA法中,低丰度的 mRNA一般不易被检测到,SSH方法所做的均等化和目 标片段的富集,保证了低丰度mRNA 也可被检测出。 (3)速度快,效率高。一次SSH反应可 以同时分离几十或成百个差异表 达基因。
抑制差减杂交技术原理 及常见操作结果分析
摘要
抑制差减杂交 (SuppressionSubtractiveHybridization,SSH)是一种 高效鉴定和分离克隆差异表达基因的新技术。 目前,该技术在分子生物学研究的各个领域得 到了广泛的应用作了较全面的介绍,可为研究者们 提供参考。
2.4 第一次杂交、第二次杂交和PCR扩增
将经RsaI消化的drivercDNA和分别连接有adapter1、 adapter2R的testercDNA混合进行第一次杂交。再将第一次 杂交的两个样本混合在一起,同时加入新鲜的drivercDNA, 以进一步富集差异表达序列。在两端具不同接头的差异 表达的cDNA形成新的杂交分子。

SSH protocol

SSH protocol

1 PolyA+ mRNA的分离纯化PolyA+ mRNA的分离纯化采用Oligotex TM m RNA试剂盒(Qiagen公司),首先确定总RNA的数量(OD260×40 µg/mL×稀释倍数×v)在250~500 µg之间,加无RNase的水至总体积为500 µL,然后再加入500 µL的Bufer OBB和30 µL的Oligotex悬液,通过吹打或轻弹使其充分混合。

在基因扩增仪上,70℃温浴样品3 min,(此时洗脱缓冲液OEB可一起预热)然后从水浴中将样品取出,室温(20--30℃)放置10 m in。

最大转速(140 00g )离心2m in,使Oligotex:mR NA的复合物沉淀,然后仔细的除去上清液。

保存上清液直到得到满意的结果。

用400 µL的洗涤缓冲液OW2通过涡旋振荡或吹打重悬Oligotex:mRNA沉淀,将重悬的样品加入到Small spin column(置于1.5 mL的离心管上)中,140 00g 离心1m in,然后将small spin column转移到一新的1.5 mL的无RNase的微量离心管中,再加入400 µL的洗涤缓冲液OW2于small spin cloumn,混匀,140 00g 离心1m in。

转移small spin column到一新的无RNase的1.5 mL的微量离心管中;取15 µL洗脱缓冲液OEB重悬Oligotex,14 0 00g 离心1m in。

将甩下的洗脱缓冲液OEB再重悬Oligotex,最高速离心,然后将甩下的洗脱缓冲液OEB转移至0.5 mL的离心管(无RNase )中,体积约10 µL左右。

重复洗脱三次,共计回收4管mRNA,最后几管测吸光值,看是否洗脱干净。

测OD 值,取1 µL 样品,加99 µL无RNase的水稀释,将样品从稀到浓进行OD260和OD280的测定,计算出mRNA的量(mRNA的含量>1 µg/µL). mRNA在洗脱液中可以贮存在-20 ℃或-70 ℃。

抑制性消减杂交技术介绍

抑制性消减杂交技术介绍

M: ФX174-Hea Ⅲ消化。 1: 杂交骨骼肌肉tester二次PCR产物 2 : 未杂交的骨骼肌肉tester
18
G3PDH基因得到了极大的扣除
January 17, 2020

差异表达基因的富集与看家基因的扣除
以2ug/ml PHA和2ng/ml PMA处理72小时后的人类Jurkat T细胞的cDNA作 为Tester ,未处理的cDNA作为Driver。Tester cDNA、Driver cDNA及消减 后的cDNA扩增产物在1.5%的琼脂糖凝胶中进行电泳(每个孔上样量为 0.3ug)并转移到尼龙膜上,分别与已知活性的IL-2Rα基因和看家基因 G3PDH核酸探针进行杂交。

抑制后的应答基因 鉴定抗病毒相关基因 ......
6
January 17, 2020

抑制性消减杂交实验方法
正向消减
Tester
处理组
反向消减 Driver
Driver
7
非处理组
Tester
January 17, 2020
抑制性消减杂交
主要内容
1 抑制性差减杂交技术概 述
2 抑制性差减杂交原理
3 抑制性差减杂交流程
4
2
January 17, 2020

抑制差减杂交技术SSH
定义:抑制差减杂交(SSH)SSH 是一种基于抑制PCR和差减杂交 技术建立的,在转录水平上研究基 因表达的技术。
3
January 17, 2020
12
A, B, C, D
A B C
E
末端补齐
D
EE
January 17, 2020

实验流程
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一、cDNA第一链的合成
1、在0.5ml经DEPC处理过的离心管中分别加入tester和driver的mtRNA各2ug,然后加入1ul (10uM)随机引物(9mer),70℃温浴2min,然后迅速置于冰上放置2min,然后在每管中加入如下混合物:
2、42℃反应1.5hr,然后将离心管置于冰上,终止cDNA第一链的合成,然后马上进行第二链的合成。

二、cDNA第二链的合成
1、在已经合成好cDNA第一链的离心管中加入每管如下反应物,16℃反应2hr:
2、加入2ul(6U)T4 DNA Polymerase,16℃反应30min。

3、加入20×EDTA/Glycogen Mix 4ul,以终止反应。

4、加入100ul 苯酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)抽提,并沉淀出cDNA双链,溶解于50ul双蒸水中。

三、cDNA质量检测
根据一个油菜线粒体基因Ccl1(GI:1694628)的cDNA序列设计特异性引物(CF:5′-TGA CAC GAG ATG ATA AAG A-3′CR:5′-CGT AAC AAT AGA GCA GGA TAG-3′),目标片段大小为427 bp。

以反转录所得cDNA为模板,若PCR扩增能得到目标片段,说明线粒体mRNA已经成功反转录。

四、Rsa I酶切双链cDNA
1、tester和driver cDNA经37℃过夜酶切,酶切体系为:
2、每管用2.5ul EDTA/Glycogen混合物终止反应。

3、加入50ul 苯酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)抽提,并沉淀出酶切后的cDNA双链,溶解于5. 5ul双蒸水中。

五、接头连接
酶切消化的tester双链cDNA分为两份,一份与Adaptor1连接,另一份与Adaptor2连接,具体步骤如下:
1、取1ul酶切的tester ds cDNA用5ul ddH2O稀释;
2、连接反应液(Ligation Master Mix)的制备如下:
3、在两个EP管中分别加入如下试剂:
4、在另一离心管中混合1.5ul tester1-1和1.5ul tester1-2,连接反应完成后即为本实验所需要的u nsubtracted tester control 1-c;
5、轻微离心,16℃过夜连接;
6、加入1ul 20×EDTA/Glycogen Mix,终止反应;72℃温育5min使ligase失活;
7、取1ul unsubtracted tester control 1-c,用1ml ddH2O稀释,该样品将用来进行PCR检测;
8、所有样品放入-20℃保存。

六、第一次杂交
1、每个杂交反应的体系为:
2、每个反应管中加一滴矿物油覆盖,短暂离心;
3、98℃5min,使DNA充分变性;
4、68℃杂交10小时(杂交时间不少于6小时,也不能超过12小时),完成后立即进行第二次杂交。

七、第二次杂交
1、配制第二次杂交混合液
2、取1ul混合液加一滴矿物油覆盖后于PCR仪上98℃变性1.5min。

3、将移液器调到15ul,轻轻将枪头伸入Hybridzation sample 2中矿物油与液面交界出,小心将样品吸出,并吸入少许空气;用同样的方法吸入新鲜的变性driver,此时hybridzation sample 2和新鲜变性driver在枪头内由一段气体柱分开,将这一状态的混合物打入装有hybridzation sample 1的离心管中,用枪头混匀,短暂离心。

4、68℃过夜。

5、加入200ul的dilution buffer后68℃保温7min。

至此杂交完成,差减杂交完毕后将进行两轮PCR扩增。

八、两次PCR扩增
第一次扩增反应体系为:
第一次扩增程序为:
产物10倍稀释作为第二次PCR的模板。

第二次扩增反应体系为:
第二次扩增反应程序为:
反应结束后用1.2%琼脂糖凝胶电泳检测。

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