动物学实验报告格式
动物实验报告【范本模板】
实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验一：小鼠实验一、实验目的1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握小鼠的标记方法;4、掌握小鼠的基本采血技术；5、掌握小鼠的常用给药方法;6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置;二、实验材料1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠；2、实验器械及试剂:鼠笼;小鼠固定器和小鼠固定板;眼科剪;眼科镊；解剖刀；1ml 注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料;葡萄糖液；2％水合氯醛；三、实验内容及方法1、小鼠的抓取和固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中,把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。
幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌,远者为雄。
另外,雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。
3、小鼠的标记方法1）耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位.2）剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠；3）染色法用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位,注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血1）剪尾采血当所需血量很少时采用本法.固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。
将鼠尾擦干,再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。
取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。
也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血.这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检查.2)眼眶后静脉丛取血当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。
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一、实验名称实验名称：小鼠心肌梗死后心肌细胞凋亡检测二、实验目的1. 了解心肌梗死后心肌细胞凋亡的发生机制。
2. 掌握检测心肌细胞凋亡的方法。
3. 分析心肌梗死后心肌细胞凋亡与心肌损伤程度的关系。
三、实验时间2023年10月25日四、实验地点实验室动物中心五、实验材料1. 实验动物：雄性SD大鼠，体重200-220g，由实验室动物中心提供。
2. 试剂与仪器：- TUNEL试剂盒（Roche公司）- DAB显色试剂盒（Sigma公司）- 脱氧核糖核酸酶（DNase）处理液- 柠檬酸缓冲液- 胶体金染色液- 显微镜- 光学显微镜- 恒温培养箱- 电子天平六、实验方法1. 实验分组：- 正常组：正常SD大鼠10只。
- 模型组：SD大鼠10只，采用结扎冠状动脉左前降支的方法制作心肌梗死模型。
- 干预组：SD大鼠10只，在结扎冠状动脉左前降支的同时，给予心肌梗死后心肌保护药物。
2. 心肌细胞凋亡检测：- 取实验大鼠心肌组织，按照TUNEL试剂盒说明书进行操作。
- 采用DAB显色试剂盒进行染色。
- 光学显微镜观察心肌细胞凋亡情况。
3. 数据分析：- 计算心肌细胞凋亡指数（AI）。
- 比较各组AI差异。
七、实验结果1. 正常组心肌细胞形态正常，无凋亡细胞。
2. 模型组心肌细胞出现明显凋亡，AI显著高于正常组（P<0.01）。
3. 干预组心肌细胞凋亡情况较模型组明显减轻，AI显著低于模型组（P<0.05）。
八、实验讨论1. 心肌梗死后心肌细胞凋亡是心肌损伤的重要原因之一。
2. 心肌梗死后心肌保护药物可以减轻心肌细胞凋亡，从而减轻心肌损伤。
3. 本实验结果表明，心肌梗死后心肌细胞凋亡与心肌损伤程度密切相关。
九、实验结论1. 心肌梗死后心肌细胞凋亡是心肌损伤的重要原因。
2. 心肌梗死后心肌保护药物可以减轻心肌细胞凋亡，从而减轻心肌损伤。
十、实验注意事项1. 实验操作过程中应严格无菌操作。
2. 实验动物应定期观察，注意动物福利。
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宁波大学考核答题纸（20 10 —20 11 学年第 1 学期）课号： 147l01d03 课程名称：医学动物实验学改卷教师：李萍学号： 096080002 姓名：李琦得分：家兔实验一、实验目的：通过家兔、豚鼠的抓取固定、性别辨认、灌胃、注射、采血、麻醉、安乐死、动物剖检、脏器摘除与检查等实际操作，掌握家兔动物实验的基本操作技术。
二、实验动物及主要实验器材：动物：家兔、豚鼠；器材：兔固定器，兔开口器，兔导胃管，豚鼠固定器、常规手术器械、5ml注射器、l0ml 注射器、烧杯、75％酒精及酒精棉，干棉球。
三、实验内容：1、家兔的抓取固定：在兔安静下来后，用右手抓住颈部的被毛与皮肤，轻轻提起，用左手托住其臀部，兔身的重量大部分落在左手上，也可用兔盒固定或将兔固定在兔手术固定台。
2、家兔性别的鉴定：使兔下腹部朝向观察者，将生殖器周围的皮肤拨开，可见—圆孔，里面露出阴茎，则为雄性；反之为雌性。
3、经口灌胃给药法：先用特制张口器置于上下腭间，用布绳固定。
然后用左手抓住动物的嘴，右手由张口器中央小孔处将—适当粗细的导尿管插入，沿食管进入胃上部，最后将装有药液的注射器连接上导尿管，慢慢将药物灌入胃内。
注意：判别胃管插入气管或胃内，其方法：（1）观察反映；（2）感觉；（3）聞；（4）洗耳球法；（5）烧杯气泡法4、对家兔进行麻醉：用手抓住家兔的背部的被毛与皮肤，皮下注射20%乌拉坦，注意用量为5毫升/公斤体重。
5、利用空气栓塞法处死家兔：向家兔的静脉内注入一定量的空气，使之发生空气栓塞，形成严重的血液循环障碍而死亡。
6、解剖家兔：首先用手术刀打开腹腔，首先认识各个脏器的结构和位置。
然后摘除各个脏器。
摘除顺序如下：（1）胰腺；（2）脾脏；（2）胃肠；（4）肝脏；（5）泌尿系统；（6）生殖系统。
然后打开胸腔，认识各个脏器的结构和位置。
然后按顺序摘除各脏器。
摘除顺序如下：（1）胸腺；（2）心脏；（3）肺脏。
四、医学比较：家兔：家兔为脊椎动物、兔科动物，白天变现的十分安静，听觉灵敏，胆小怕惊，喜欢磨牙而且有啃木习惯。
实验动物学实验报告(共篇)(一)
实验动物学实验报告(共篇)（一）引言概述：实验动物学是研究动物行为、生理和遗传的学科，通过对动物进行实验来获取科学数据和知识。
本实验报告旨在总结一系列实验结果，探讨实验动物学领域的重要问题，并对其应用前景进行展望。
正文：1. 实验动物的选择：- 考虑实验目的和动物特征选择合适的实验动物；- 常用实验动物包括小鼠、大鼠、兔子等，每种动物具有独特的优势和限制；- 实验动物品种的选择需根据实验要求和研究领域确定。
2. 实验动物的饲养与环境：- 提供适宜的饲养环境，包括饲料、水源和温度控制等；- 动物饲养条件对实验结果有重要影响，需保证实验动物的健康和福利；- 定期进行环境监测和清洁，确保实验动物处于良好的生活环境。
3. 实验动物行为测试：- 利用行为学测试评估实验动物的认知和学习能力；- 常用的行为测试方法包括自由探索、空间记忆和条件反射等；- 结合行为学数据，分析实验动物的行为模式和特征，进一步探讨动物行为学的机制。
4. 实验动物遗传学研究：- 利用遗传学方法，研究实验动物的基因表达和突变；- 应用转基因技术构建基因改造的实验动物模型；- 分析实验动物遗传变异与行为学表现的相关性，深入了解动物行为与遗传之间的关系。
5. 实验动物生理研究：- 通过生理学指标评估实验动物的生物学状态和健康状况；- 分析实验动物的生理参数变化，揭示动物的生理机制；- 在药物研究和疾病模型中应用实验动物，探索潜在的治疗策略。
总结：实验动物学是研究动物行为、生理和遗传的重要学科，通过对实验动物进行一系列实验，我们可以深入了解动物的行为模式、生理机制和遗传特征。
通过合理选择实验动物、提供适宜的饲养环境、进行行为学测试以及遗传和生理研究，我们能够推动实验动物学的发展，为人类和动物健康领域的进展提供有力支持。
实验报告动物学
一、实验目的1. 了解动物学的基本概念和分类；2. 学习动物学实验的基本操作方法；3. 培养观察、记录和分析实验结果的能力；4. 增强对动物学知识的兴趣和认识。
二、实验时间2022年X月X日三、实验地点实验室四、实验器材1. 动物标本；2. 显微镜；3. 生理盐水；4. 吸管；5. 实验记录本；6. 画图工具。
五、实验内容1. 观察动物标本，了解动物的基本结构；2. 学习显微镜的使用方法，观察动物细胞结构；3. 分析实验结果，总结动物学知识。
六、实验步骤1. 实验前准备（1）了解实验目的和内容；（2）熟悉实验器材和操作方法；（3）准备好实验记录本。
2. 观察动物标本（1）观察动物整体结构，了解其分类和特点；（2）观察动物器官，了解其功能。
3. 显微镜观察（1）将动物标本放入生理盐水中，保持标本湿润；（2）用吸管吸取少量生理盐水，滴在显微镜载物台上；（3）将动物标本放置在载物台上，调整焦距，观察细胞结构；（4）记录观察到的细胞结构特点。
4. 实验结果分析（1）总结动物学知识，分析实验结果；（2）绘制实验观察图。
七、实验结果1. 观察到的动物标本具有明显的分类和特点，如节肢动物、软体动物、鱼类等；2. 通过显微镜观察，发现动物细胞具有细胞膜、细胞质、细胞核等结构；3. 分析实验结果，了解到动物细胞的基本结构和功能。
八、实验结论1. 动物学是研究动物形态、结构、生理、生态和进化等问题的学科；2. 动物细胞具有细胞膜、细胞质、细胞核等基本结构，具有生命活动的基本功能；3. 通过本次实验，掌握了动物学实验的基本操作方法，提高了观察、记录和分析实验结果的能力。
九、实验心得1. 动物学实验使我更加深入地了解了动物的结构和功能，激发了对动物学知识的兴趣；2. 实验过程中，我学会了使用显微镜观察细胞结构，提高了实验技能；3. 通过分析实验结果，我明白了动物学知识的重要性，为今后的学习奠定了基础。
实验动物学实验报告
实验动物学实验报告一、实验目的实验动物学是一门研究实验动物和动物实验的综合性学科，本次实验的主要目的是通过实际操作和观察，深入了解实验动物的生物学特性、饲养管理、实验操作技术以及动物实验中的伦理和法律问题，提高我们对实验动物学的理论知识的理解和应用能力。
二、实验动物本次实验所选用的实验动物为小鼠和大鼠。
小鼠品系为 C57BL/6，大鼠品系为 Wistar。
实验动物均由学校实验动物中心提供，动物健康状况良好，符合实验要求。
三、实验器材与药品1、实验器材手术器械：眼科剪、眼科镊、手术刀柄、手术刀片、止血钳等。
注射器：1ml、2ml、5ml 注射器。
灌胃针：小鼠灌胃针、大鼠灌胃针。
其他：天平、鼠笼、垫料、麻醉剂等。
2、实验药品麻醉剂：戊巴比妥钠。
生理盐水。
四、实验方法与步骤1、实验动物的抓取与固定小鼠的抓取：先用右手抓住鼠尾提起，置于鼠笼盖或其他粗糙面上，向后轻拉鼠尾，使小鼠固定在粗糙面上，然后用左手拇指和食指捏住小鼠两耳及头部皮肤，将小鼠提起。
大鼠的抓取：首先戴上防护手套，从大鼠笼中抓住大鼠尾巴根部，将大鼠提起，使其身体悬空。
然后用另一只手的拇指和食指抓住大鼠两耳后的项背部皮肤，其余三指抓住大鼠的背部皮肤，将大鼠固定。
2、实验动物的编号与标记染色法：用苦味酸或品红溶液在小鼠或大鼠的背部进行染色标记。
耳标法：使用专用的耳标钳在小鼠或大鼠的耳朵上打耳标进行标记。
3、实验动物的麻醉小鼠麻醉：腹腔注射戊巴比妥钠，剂量为 40mg/kg。
大鼠麻醉：腹腔注射戊巴比妥钠，剂量为 30mg/kg。
4、实验动物的采血尾尖采血：将小鼠或大鼠固定好，用酒精棉球擦拭尾部，然后用剪刀剪去尾尖约 2-3mm，让血液自然流出，用微量吸管吸取血液。
眼眶采血：用左手抓住小鼠或大鼠，使眼球突出，用毛细吸管或移液器从内眦刺入眼眶，吸取血液。
5、实验动物的给药灌胃：将小鼠或大鼠固定好，使其头部和颈部保持伸直，将灌胃针从口角插入口腔，沿咽后壁缓慢插入胃内，注入药液。
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一、实验名称实验动物的基本操作技术二、实验目的1. 掌握健康小鼠的外观检查方法、性别鉴定、捉拿和固定方法。
2. 熟悉小鼠灌胃给药与小鼠腹腔注射给药等技术。
3. 掌握小鼠颈椎脱臼法处死方法、小鼠脏器系数的概念及其测定方法。
4. 了解实验动物的被毛去除方法、实验动物粪、尿的收集、小鼠血液样本采集方法。
三、实验材料与器材1. 实验动物：健康小鼠若干2. 器材：鼠笼、天平、注射器、灌胃针、止血钳、手术剪、平皿、托盘、烧杯若干。
四、实验方法1. 观察指标（1）小鼠的体型、发育情况；（2）毛发是否清洁浓密有光泽，是否顺贴不蓬乱；（3）行动是否迅速，反应是否灵敏；（4）眼睛是否明亮有神，瞳孔是否清晰等圆；（5）天然孔道是否干净、有无分泌物。
2. 小鼠捉拿（1）右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。
（2）此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。
3. 小鼠性别鉴定（1）观察肛门与生殖器之间的距离。
雄性大鼠的距离较大，雌性的距离较小。
（2）成年雄鼠尾部可见睾丸，成年雌鼠可见乳头。
4. 小鼠称重（1）打开电子天平，待读数显示稳定后，将平皿置于天平上，去皮。
（2）将小鼠置于平皿中，待读数显示稳定。
5. 灌胃给药（1）将注射器装入药物溶液，装上灌胃针。
（2）将小鼠固定在实验台上，轻轻插入灌胃针，缓慢注入药物。
6. 腹腔注射给药（1）将小鼠固定在实验台上，选择注射部位。
（2）用注射器吸取药物，插入注射部位，缓慢注入药物。
7. 小鼠颈椎脱臼法处死（1）将小鼠固定在实验台上，选择颈椎部位。
（2）用左手握住小鼠头部，右手握住小鼠颈部，迅速将颈椎脱臼。
8. 脏器系数测定（1）取出小鼠脏器，用电子天平称重。
（2）计算脏器系数：脏器重量/体重。
9. 实验动物被毛去除（1）将实验动物固定在实验台上。
（2）用脱毛剂涂抹实验动物被毛。
（3）待脱毛剂起泡后，用刷子轻轻刷去被毛。
实验动物学实验报告鸡(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解鸡的生物学特性、生理功能及生长发育规律。
2. 掌握鸡的饲养管理技术，为实验动物学教学和科研提供基础。
二、实验材料1. 实验动物：鸡（品种、年龄、性别等）2. 实验器材：温度计、湿度计、饲料、饮水器、称重器、笼具等3. 实验试剂：消毒液、营养液等三、实验方法1. 观察鸡的外部形态结构，了解其生长发育规律。
（1）观察鸡的头部、颈部、胸部、腹部、尾部等部位，记录其形态、颜色、羽毛等特征。
（2）测量鸡的体长、体重、翼长等指标，了解其生长发育规律。
2. 观察鸡的生理功能。
（1）观察鸡的呼吸、心跳、排泄等生理现象。
（2）观察鸡的采食、饮水等行为。
3. 掌握鸡的饲养管理技术。
（1）了解鸡的饲料种类、营养成分、饲养方式等。
（2）观察鸡的饲养环境，包括温度、湿度、光照等。
（3）掌握鸡的消毒、防疫、疾病防治等技术。
四、实验结果与分析1. 鸡的形态结构（1）头部：鸡的头部呈椭圆形，有喙、眼、耳等器官。
（2）颈部：鸡的颈部细长，肌肉发达，有利于采食和呼吸。
（3）胸部：鸡的胸部宽大，有发达的胸肌，有利于飞行。
（4）腹部：鸡的腹部较宽，有利于消化和生殖。
（5）尾部：鸡的尾部较短，羽毛密实，有利于保温。
2. 鸡的生理功能（1）呼吸：鸡的呼吸以肺为主，气囊辅助呼吸。
（2）心跳：鸡的心脏四腔，心跳较快，有利于血液循环。
（3）排泄：鸡的排泄器官有肾脏、输尿管、泄殖腔等。
（4）采食：鸡的喙尖利，善于啄食。
（5）饮水：鸡的饮水需求较高，需保持充足的水源。
3. 鸡的饲养管理技术（1）饲料：鸡的饲料应富含蛋白质、碳水化合物、脂肪、维生素和矿物质等。
（2）饲养环境：鸡的饲养环境应保持适宜的温度、湿度、光照等，以利于其生长发育。
（3）消毒：定期对鸡舍、饲料、饮水等消毒，预防疾病传播。
（4）防疫：定期进行疫苗接种，预防疫病发生。
（5）疾病防治：发现病鸡应及时隔离治疗，防止疫情扩散。
五、实验总结本次实验通过对鸡的形态结构、生理功能及饲养管理技术的观察，使我们对鸡的生物学特性有了更深入的了解。