血培养标本采集
血培养的采集方法
血培养的采集方法血培养是一种常见的临床实验室检查方法，用于检测血液中是否存在细菌或真菌等微生物感染。
正确的血培养采集方法对于准确诊断和治疗感染病症非常重要。
本文将介绍血培养的采集方法，以帮助大家正确操作。
一、术前准备在进行血培养采集前，需要做好以下准备工作：1. 检查工具准备：血培养所需的材料包括无菌采血管、无菌抽血针头、消毒用品等，确保材料的无菌与完整性。
2. 患者准备：告知患者采血的目的和过程，并征得其同意。
了解患者的病史、症状和病情情况，以便在采血过程中做好相应的处理。
二、采血部位选择血培养采样主要选择下列部位之一：1. 静脉：常用的采血部位是肘窝静脉，因为该部位的血管较为直接且较粗，便于采血。
2. 动脉：对于疑似动脉感染的患者，采集动脉血进行培养以获取更准确的结果。
三、采血操作步骤1. 患者准备：让患者坐于床边或椅子上，保持舒适的姿势，并让其伸直手臂。
2. 术前消毒：选择采血部位后，将部位用酒精或碘酒进行消毒，确保无菌状态。
3. 采血操作：将无菌抽血针头插入血管内，一般角度为15-30度。
当看到鲜血进入采血管时，将其插入到一定深度，并用无菌手套换上采血管与针头。
4. 采血量：一般采集血量为10-20ml，分为两个或三个采血瓶中。
5. 采血完成：采血完毕后，将针头拔出，放入有抗菌剂的针头保护器中，并用无菌棉球按压采血部位，防止出血和感染。
6. 标本处理：将采集的血液标本送到实验室进行培养。
四、注意事项在进行血培养采集时需要注意以下事项：1. 采血部位：选择合适的采血部位，避免有感染或静脉曲张的部位。
2. 采血顺序：在进行其他检查之前，应先进行血培养采集，以避免其他操作引入细菌污染。
3. 采血时间：血培养采集应尽早进行，以避免细菌在体内繁殖和扩散。
4. 无菌操作：在采血过程中，要确保操作者和工具的无菌状态，避免细菌污染。
5. 采血量：采集血液时应控制好血液的量，避免过多或过少，以免影响培养结果。
血培养标本采集课件
采血过程中的无创检测技术
01
02
03
无创检测技术能够减少采血过 程中的创伤和痛苦，提高患者 的舒适度。
无创检测技术能够实时监测患 者的生理参数，为临床提供更 全面的诊断信息。
无创检测技术的发展将有助于 推动医疗技术的进步，提高医 疗水平。
THANKS
解决方案
选择合适的采血部位，避免在皮 肤破损、炎症、疤痕等处采集血 液，同时注意采血针的深度适中
。
采血时机不正确
01
总结词
采血时机不正确可能影响培养结果，如发热时采集可能增加污染菌的检
出率。
02
详细描述
发热时，体内白细胞增多，可能将污染菌误认为是病原菌；而使用抗菌
药物后，可能抑制病原菌生长，导致假阴性结果。
血培养标本采集过程中，需要注意采集时间、采血量、采血 部位以及防止污染等方面的要求，以保证培养结果的准确性 。
抗生素疗效的评估
在使用抗生素治疗血液感染的过程中，血培养可以用于评 估抗生素的疗效。通过定期采集血液样本进行培养，可以 观察病原体数量的变化情况，从而判断抗生素是否有效， 为调整治疗方案提供依据。
05
血培养标本采集的未来发展
自动化采血设备的研究和应用
01
自动化采血设备能够提高采血效率，减少人为 误差，是未来发展的趋势。
02
自动化设备能够实现快速、准确的血样采集， 减少患者等待时间。
03
自动化设备的应用将有助于提高采血质量，为 临床提供更可靠的诊断依据。
个性化采血方案的发展
根据患者的具体情况制定个性化的采血方案，能够更好地满足临床需求。 个性化采血方案能够提高采血效果，减少不必要的采血操作。 个性化采血方案的发展将有助于提高医疗质量和患者满意度。
采集血培养标本与运送流程
实验室接收标本后，需将标本放入自 动血培养仪进行培养，或按照手工培 养方法进行操作。
已接种的血培养瓶应在规定条件下保 存，避免阳光直射和高温环境。
异常情况处理与报告
01
02
03
04
如发现标本存在异常情况，如 溶血、凝血、污染等，应立即 通知临床科室并重新采集标本
。
对于培养结果为阳性的标本， 应立即进行涂片镜检和初步鉴 定，并及时报告临床科室。
有效期内。
采血针和注射器
应选择合适的采血针和 注射器，确保无菌、无
热原。
其他物品
包括棉签、纱布、止血 带、标签等。
患者准备
01
患者应处于安静状态， 避免剧烈运动和情绪波 动。
02
采集前应向患者解释采 集目的、方法和注意事 项，取得患者配合。
03
患者应洗净双手或使用 消毒剂进行手部消毒。
04
对于需要穿刺的部位， 患者应配合采集人员摆 好体位，方便穿刺。
对标本进行外观检查，观察是否有溶血、凝固、污染等现象。
按照实验室规定进行标本处理，如离心、分装等，确保后续检测的准确 性。
持续改进方向与措施
加强人员培训，提高操作人员的专业技能和质量控制 意识。
定期对采集、运送和接收处理过程进行质量评估，发 现问题及时改进。
采用先进的信息化管理系统，实现标本采集、运送、 接收处理全过程的实时监控和数据分析，为持续改进 提供有力支持。
03
血培养标本采集流程
消毒与穿刺部位选择
消毒
采用碘伏或70%酒精进行皮肤消 毒，消毒范围直径至少为5cm， 待消毒液干燥后进行穿刺。
穿刺部位选择
成人首选肘部静脉，新生儿和婴 幼儿可选颈外静脉或股静脉。避 免在静脉留置导管或静脉输液的 通路中采集标本。
2血培养采集操作
血培养标本采集操作规程一、目的明确血培养标本采集的操作方法，规范护理人员的操作流程。
二、使用范围适用于我院血培养标本采集的所有护理人员。
三、评估和观察要点1、评估病情、治疗、心理状态及配合程度。
2、了解寒颤或发热的高峰时间。
3、了解抗生素使用情况。
4、评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。
四、操作要点1、注射器直接穿刺采血法。
2、经血管通路采血法。
3、经外周穿刺的中心静脉导管取血法：取1支注射器抽取生理盐水20ml备用，另备2支注射器。
取下肝素帽。
连接1支空注射器，抽取5ml血液弃去；如正在静脉输液中，先停止输液20s，再抽取5ml血液弃去。
另接1支注射器抽取足量血标本。
然后以生理盐水20ml用注射器以脉冲式冲洗导管。
消毒导管接口，清除残留血迹。
连接肝素帽或三通管（或正压接头），如有静脉输液可打开输液通道。
4、成人每次采集5~10ml/瓶，婴儿和儿童1~2ml/瓶。
5、用75%乙醇消毒培养瓶瓶塞，待干，将血标本分别注入需氧瓶和厌氧瓶内，迅速轻摇，混合均匀。
五、指导要点告知患者检查目的、方法、注意事项和配合方法。
六、注意事项1、血培养瓶应在室温下避光保存。
2、根据是否使用过抗生素，准备合适的需氧瓶和厌氧瓶。
3、间歇性寒战患者应在寒战或体温高峰前取血；当预测寒战或高热时间有困难时，应在寒战或发热时尽快采集血培养标本。
4、已使用过抗生素治疗的患者，应在下次使用抗生素前采用血培养标本。
5、皮肤消毒的顺序：酒精（待干）→碘酒（待干）→酒精两遍（待干）6、血标本注入厌氧菌培养瓶时，避免空气注入瓶内。
7、2次培养标本采集时间至少间隔1小时。
8、已完成采血的血培养瓶在室温下放置，尽早送检。
血培养标本采集
血培养标本采集在临床医学中，血培养标本采集是一项非常重要的检查操作，能够帮助医生迅速准确地判断感染的病原体及其敏感性。
正确的采集方法和操作流程是确保检验结果准确可靠的关键之一。
本文将为您介绍血培养标本采集的步骤和注意事项。
一、准备工作在进行血培养标本采集之前，医务人员需要完成以下准备工作：1.检查所需材料：血培养瓶、采血针、无菌消毒棉球、无菌手套等。
2.确认患者的身份：核对患者的姓名、住院号等重要信息，确保采集的标本与患者对应。
3.告知患者：向患者解释采集血培养标本的目的和过程，并获得其同意。
二、采集步骤1.无菌操作：医务人员需戴上无菌手套，确保采集操作在无菌环境下进行。
同时，注意保持工作区的整洁和清洁。
2.选择合适的采血部位：一般常采用质感好、容易握持的静脉作为采血部位，如患者的前臂外侧静脉。
3.皮肤消毒：采血部位的皮肤需要进行消毒处理，以减少细菌污染。
常用的消毒剂有75%酒精和碘酒，根据患者对消毒剂的过敏情况选择适当的消毒剂。
4.穿刺采血：医务人员用无菌针头在经消毒处理的静脉部位插入静脉，待血液自由流出时开始采集。
5.采集血培养标本：将血培养瓶插入静脉针头上的连接器上，打开瓶盖，让血液自由流入瓶中。
一般情况下，每瓶血培养标本所需血量为8-10ml。
6.采血完成后，轻轻拧紧瓶盖，拔出连接器，用无菌棉球轻压在采血点上，帮助止血。
三、注意事项1.遵循严格的无菌操作：确保操作过程中的无菌环境，减少细菌污染的可能性。
2.插针时注意技巧：确保针头成功插入静脉并定位准确，避免因插针错误而导致血液外溢或组织损伤。
3.血液采集量的控制：不同的血培养瓶需要不同的血液量，医务人员需要根据实际情况确保采集到足够的血液。
4.采血时间和频率：最佳的血培养标本采集时间通常是在患者发热的早晨，此时细菌浓度较高，有助于提高阳性检出率。
同时，根据医生的嘱托，可适当增加血培养的采集频率。
5.采集后标本的处理：采集完成后，将血培养瓶标注患者信息，并尽快送往实验室进行培养和检验。
血培养标本的正确采集课件
血培养标本采集的方法和步骤
了解患者的病情、用药情况、过敏史等，以便选择合适的采集时机和培养基。
了解患者情况
采集前告知
采集前准备
向患者及家属解释血培养的目的、采集方法和注意事项，以消除其紧张情绪。
准备好所需的血培养瓶、消毒用品、采血器材等，确保采集过程的无菌操作。
03
02
01
选择合适的静脉
评估治疗效果
通过比较治疗前后血培养的结果，可以评估治疗效果，判断是否需要调整治疗方案。
适应症
发热、寒战、皮疹等疑似感染症状；疑似血液感染、败血症、脓毒血症等严重感染性疾病；免疫缺陷、长期使用抗生素、接受化疗等高危人群。
禁忌症
无明确感染症状或仅有轻微不适；近期接受过抗菌药物治疗；采血部位有感染等。
02
血培养的目的是检测血液中的病原微生物，帮助诊断感染性疾病，指导临床合理使用抗生素，评估治疗效果和预后。
目的
定义
指导抗生素使用
通过血培养可以明确病原菌的种类，从而指导临床医生选择敏感的抗生素进行治疗，提高治疗效果并减少耐药性的产生。
诊断感染性疾病
血培养是诊断血液感染性疾病的金标准，尤其对于败血症、脓毒血症等严重感染性疾病，血培养能够帮助快速确定病原菌，为早期治疗提供依据。
最小痛苦原则
血培养标本采集涉及患者的隐私信息，应采取必要的措施保护患者隐私，防止信息泄露。
保护患者隐私
采集血培养标本前，应向患者充分说明采集的目的、方法、风险和注意事项，确保患者知情同意。
知情同意
在采集血培养标本和处理过程中，应采取必要的措施保护患者隐私，防止信息泄露和不当使用。
隐私保护
确保患者的合法权益得到保障，如出现侵犯权益的情况，患者有权进行维权。
血培养标本的采集
血培养标本的采集
1.容器：根据不同血培养的目的，选用不同的培养液，另备酒精灯及火柴。
2.采血环境：要求室内清洁、无尘土飞扬，防污染。
3.采血时，应严格遵守无菌技术操作原则。
并嘱患者头偏向一侧。
4.严格消毒穿刺部位。
用2.5%碘酒消毒一遍待干后，再用75%酒精消毒二遍或用0.5%络合碘消毒二遍。
5.标本宜在患者寒颤、高热时（体温超过38.5℃以上）或使用抗生素前采集，以提高细菌培养的阳性率。
6.血培养取血量为5ml，感染心内膜炎患者，为提高培养阳性率采血量5—10ml。
7.血液注入培养液瓶前后用火焰消毒瓶口和及瓶塞。
8.如患者已用抗生素应在化验单上注明。
9.立即送检。
血培养标本的正确采集
采样时应该采用正确的采样方法，以避免破 坏血培养中的细胞或细菌，从而确保检测结 果的准确性。
运输和处理血培养标本时应该规范操作，以 避免污染或变质，从而确保检测结果的准确 性。
06
特殊情况下血培养标本的采集
发高烧时的血培养标本采集
总结词
高烧时采血要慎重
详细描述
高烧时，血液循环加快，白细胞数量增多，此时采集血培养标本容易被污染，影响检测结果。因此，一般情况 下不建议在患者发高烧时采集血培养标本，但如果必须采血，应尽可能在患者降温后或者使用抗生素治疗前进 行。
血培养标本的处理
分离培养
在实验室中，将血培养标本进行分离培养，以获得更纯的培养物。
检测分析
根据不同的检测目的，对培养物进行检测分析，如药敏试验、细菌鉴定等。
03
影响血培养标本采集质量的因素及控制 措施
患者因素对采集质量的影响及控制措施
患者因素
患者自身状态如病情、年龄、性别、饮食等均可能影响血培 养标本采集的质量。例如，病情养标本采集的注意事项
采集血培养标本前，需了解患 者的病史、用药情况等信息，
以避免干扰检测结果。
采集时需注意无菌操作，避免 污染标本。
采集后需及时将标本送至实验 室进行检测，以确保检测结果
的准确性。
02
正确的血培养标本采集流程
采集前的准备
核对患者信息
01
在采集血培养标本前，需核对患者身份信息，确保正确的患者
血培养标本是指从人体血液中采集的用于细菌培养和检测的 样本。
血培养标本是诊断血流感染的重要依据，有助于医生了解患 者感染的细菌种类和病情严重程度。
血培养标本的采集方法
1
采集血培养标本需在患者发热期间采集，通常 采集静脉血液样本。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程
1．目得
规范血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程，确保检验结果准确可靠。
2、范围
微生物实验室受理血培养瓶。
3、职责
3、1 医护人员正确采集血培养标本送检。
3、2 临床科室标本运输人员负责及时将血培养标本送至检验科微生物室。
2血培养指证
2、1患者出现寒战，发热（≥38℃）或低温（≤36℃）、
2、2白细胞增多（＞10×109/L，特别有“核左移”未成熟得或带状得白细胞增多）皮肤粘膜出血；血液病患者出现粒细胞减少（成熟得多形核白细胞<1×109/L），血小板减少等、
2、3怀疑血流感染时，医院内肺炎、
2、4留置中心静脉导管超过72h、
2、5感染性心内膜炎、骨髓炎、昏迷。
2、6有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状、多器官衰竭。
2、7临床医生怀疑有血流感染可能得其她情况、（血压降低，CRP升高及呼吸快）。
2、8新生儿菌血症，应同时做尿液与脑脊液培养。
3血培养采集
3、1采集血量：采血量以培养基得 1/10 为宜，成人每瓶采集：5～10ml,婴儿每瓶采集：1～2ml。
儿童每瓶采集：2～5 ml。
婴幼儿病人，一般只抽一瓶需氧瓶进行培养，无需常规做厌氧瓶。
3、2血培养份数与采血时间
3、2、1对怀疑菌血症得成人患者，推荐同时采集2-3套（不同部位）血培养标本。
婴幼儿患者，推荐同时采集2次（不同部位）血培养标本。
一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份培养或一套血培养。
多次采血不应在同一部位进行，应更换部位。
对
于间歇性寒颤或发热应在寒颤或体温高峰到来之前0、5-1小时采集血液。
对于某些全身性与局部感染患者采血培养得建议：（一瓶需氧瓶，一瓶厌氧瓶为一套，或者两套需氧瓶为一套）
3、2、2急性发热怀疑菌血症者，应尽量在抗菌药使用之前，在10分钟内于不同部位采集两套血培养标本。
3、2、3对于非急性感染，怀疑有菌血症者，应在24h内于不同部位采集2-3份血标本，每次采血得间隔不应小于3h，并应于抗菌给药前采血。
3、2、4急性细菌性心内膜炎患者，应在1-2小时内采集3份血标本，并尽量在抗菌药前采血；如果24小时培养阴性，可再采集3份以上得血标本。
入院前两周内接受抗菌药物治疗得患者，连续3天，每天采集2份。
可选用中与或吸附抗菌药物得培养瓶。
3、2、5亚急性细菌性心内膜炎患者，在24小时内不同部位采集血液标本2或3份，每次间隔大于1h；如果24小时培养阴性，可再采集2或3份以上得血标本进行培养。
3、2、6不明原因发热，可在24小时内不同部位采集血液标本2或3份，每次间隔大于1h；如果24~48小时培养阴性，可再采集2或3份以上得血标本。
3、2、7可疑菌血症或真菌菌血症，但血培养持续阴性，改变血培养条件与方法，以获得罕见得或苛养得微生物。
3、2、8儿童菌血症患者在24小时只需要采一次血标本进行培养，需特别注意穿刺部位得消毒，以区别感染菌与污染菌，由于儿童厌氧菌菌血症罕见，常规血培养不做厌氧培养。
3、3血培养瓶类型：
3、3、1蓝色：成人需氧血培养瓶。
3、3、2结红色: 成人厌氧血培养瓶。
3、3、3黄色：儿童需氧血培养瓶。
3、4采血操作流程
3、4、1、手卫生：七步洗手后手消毒。
3、4、2、血培养瓶消毒：根据检验申请单，选择合适得血培养瓶，检查血培养瓶有无破损、保质期等。
用75%酒精消毒血培养瓶塞，作用60s，待干。
3、4、3、皮肤消毒：按常规消毒穿刺部位皮肤(用70%酒精檫拭静脉穿刺点为中心向外螺旋式消毒穿刺部位皮肤作用60秒以上。
再用10%碘伏以穿刺点为中心向外螺旋式消毒穿刺部位皮肤作用60秒，同时旋转棉签，保证穿刺点及周围皮肤无菌状态，防止皮肤寄生菌或环境引起得污染)，消毒范围为8×10cm，待干。
3、4、4．持穿刺针按常规方法刺入静脉，另一头刺入相应血培养瓶内，利用瓶内真空抽取血标本，如用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头直接注入血培养瓶。
3、4、5．建议每套血培养同时接种至需氧瓶与厌氧瓶，有利于微需氧菌与厌氧菌得检出。
当厌氧菌感染不能除外得病人，如腹部手术合并感染得病人，必须同时做厌氧菌血培养。
3、4、6如果不能满足推荐得采血量时，应首先满足需氧瓶；3、4、7血液注入血培养瓶后轻摇瓶子以防血液凝固。
4运送要求
4、1所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2h内。
如果不能及时送检，宜置于室温环境。
血培养瓶送到检验科放入培养箱前，禁止暂存于冰箱内。
4、2送检标本应正确标注相关信息，注明采样时间与送检时间。
4、3安全防护：放标本得容器必须防漏，禁止将渗漏得标本送往实验室。
5拒收不合格血培养：
5、1检查培养瓶就是否有渗漏、破损或明显污染；注意采血量不足或过多情况。
5、2检查瓶子上得标签与申请单就是否相符；并在申请单上注明采血量，抗生素使用情况以及采血部位（如静脉、导管）
5、3对于延迟送检得血培养瓶应注意肉眼观察微生物生长可视信号，如发现可视信号提示有微生物生长，应该立即直接涂片镜检与划线转种。
6注意事项
6、1检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间与部位、临床诊断等患者信息。
6、2采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物得静脉处采血。
除非怀疑有导管相关得血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血
因为导管易被皮肤正常菌群污染。
6、3采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个部位分离到同样菌种才能确定时病原菌。
标本采集与运送均应在防止污染得原则一下认真进行。
6、4 当怀疑骨髓炎、脑膜炎、肺炎与肾盂肾炎合并菌血症时，在抗菌药物使用前从不同部位抽取2套血培养，两个来源得采血时间必须接近（建议≤5分钟），各自做好标记。
6、5对不明原因得发热、亚急性心内膜炎，由三个?同得部位抽取3套血培养，每套间隔时间≥1小时，当培养24～48h后若为阴性，则继续采集2套血培养。
6、6导管相关血流感染：
6、6、1希望保留深静脉导管者至少采集2套血培养，其中至少一套来自外周静脉，另一套从导管采集，两个来源得采血时间必须接近（建议≤5分钟），并各自做好标记。
6、6、2决定拔除深静脉导管者从独立得2个外周静脉部位，无菌采集2套血培养，同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室。