海棠的无糖暴露组织培养技术 无糖可乐
植物无糖培养快繁技术及其优点

传基因相同、生理一致、生长发育正常、无病无毒的 群体植株。 2. 要求植株有高的光合能力或光独立生长能力(能利用 空气中的CO2作主要的碳源)。
二、植物无糖培养快繁技术的优点
(一)缩短培养周期 通过人工控制,动态调整优化植物生长环境,为种苗繁殖
改一变、了 植碳物源无的糖供培给养途快径繁小,技即术植改变株培养表基成现分,为培养生基中长不再速含有度糖;慢、徒长、发育差、生理形态
以大豆、海棠、核桃、生姜、甘薯、香蕉等20多种植物为材料的植物无糖培养试验表明,无糖组培苗的移栽成活率可提高10%以上,培
异常、个体差异大、变异性增加、成活率降低。 养周期缩短了25%以上,生产成本降低了35%以上。
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因而可使植株长势良好,生物量较有糖培养的显著增加,污染率明显降低。 一是植物体靠光合作用进行自然生长(自养) 无糖组培工艺的简单化,流程缩短,技术和设备的集成度提高,降低了操作技术难度和劳动作业强度,更易于在工厂化生产上推广应 用。 植物无糖培养快繁技术,又称为光自养微繁殖技术,是指在植物组织培养中以CO2代替糖作为植物体的碳源,通过控制影响组培苗生长 发育的环境因子,促进植株光合作用,以更接近植物自然生长状态、成本相对较低的方式生产优质种苗的一种植物组织培养技术。 海棠无糖培养与常规培养的试验对照 二、植物无糖培养快繁技术的优点
主要内容
一 植物无糖培养快繁技术 二 植物无糖培养快繁技术的优点
一、植物无糖培养快繁技术
(一)提出
植物无糖培养快繁技 术是由 设施园艺与环 境控制专家古在丰树 教授在20世纪80年代 末提出的,是一种全 新的植物组织培养技 术。
无糖植物组织培养及应用

无糖植物组织培养及应用无糖植物组织培养是一种在无糖培养基上进行的植物组织培养技术。
它是通过将植物的组织或细胞分离培养在无糖培养基上,利用植物的自身代谢能力进行生长和分化,从而实现植物的无糖培养和繁殖。
无糖植物组织培养技术具有许多优点,如无糖培养基的成本低、操作简单、无糖培养基对植物生长和分化的影响小等。
因此,无糖植物组织培养技术在植物繁殖、基因转化、植物育种等方面具有广泛的应用前景。
无糖植物组织培养技术的应用主要包括以下几个方面:1. 植物繁殖:无糖植物组织培养技术可以实现植物的大规模繁殖。
通过将植物的组织或细胞分离培养在无糖培养基上,可以快速繁殖大量的植株。
这种无糖植物繁殖技术可以应用于植物的无性繁殖和有性繁殖,对于植物的种质资源保护和利用具有重要意义。
2. 基因转化:无糖植物组织培养技术可以用于植物的基因转化。
通过将外源基因导入植物的组织或细胞中,利用无糖培养基对植物的生长和分化进行调控,可以实现外源基因在植物中的表达和功能分析。
这种无糖植物基因转化技术可以用于植物的基因功能研究、抗病虫害基因的导入和植物的遗传改良等方面。
3. 植物育种:无糖植物组织培养技术可以用于植物的育种。
通过将植物的组织或细胞分离培养在无糖培养基上,可以实现植物的无性繁殖和有性繁殖,从而加速植物的育种进程。
这种无糖植物育种技术可以用于植物的新品种选育、抗逆性育种和优质高产育种等方面。
4. 植物生物工程:无糖植物组织培养技术可以用于植物的生物工程。
通过将植物的组织或细胞分离培养在无糖培养基上,可以实现植物的生物合成和代谢工程。
这种无糖植物生物工程技术可以用于植物的次生代谢产物的生产、植物的药用价值的提高和植物的抗逆性的改良等方面。
总之,无糖植物组织培养技术是一种重要的植物组织培养技术,具有广泛的应用前景。
通过无糖植物组织培养技术,可以实现植物的大规模繁殖、基因转化、育种和生物工程等方面的应用。
这些应用对于植物的种质资源保护和利用、植物的遗传改良和植物的药用价值的提高等具有重要意义。
无糖组培技术在我国的研究进展

无糖组培技术在我国的研究进展
周炜;曲英华
【期刊名称】《农业工程技术·温室园艺》
【年(卷),期】2005(000)007
【摘要】植物组织培养技术的优点在于快速繁殖、脱去病毒和种质资源保存,其
中应用最为广泛的是快速微繁殖。
但由于在传统的组培技术中使用的是含糖培养基,杂菌很容易侵入培养容器并在培养基中繁殖,造成培养植物的污染。
为了防止杂菌侵入,我们通常将培养容器完全密闭,这样一般培养植物生长缓慢,并且容易出现形态及生理异常,同时也大大提高了人工费用。
以上诸多不利因素都严重制约了组培技术的发展及推广。
【总页数】2页(P24-25)
【作者】周炜;曲英华
【作者单位】中国农业大学水利与土木工程学院,农业部设施农业生物环境工程重
点实验室,100083;中国农业大学水利与土木工程学院,农业部设施农业生物环境工
程重点实验室,100083
【正文语种】中文
【中图分类】S6
【相关文献】
1.无糖组培技术的应用及发展前景 [J], 屈云慧;熊丽;吴丽芳;张素芳
2.植物无糖组培技术研究进展 [J], 牟宁宁;高亦珂
3.铁皮石斛无糖组培技术初探 [J], 林小苹
4.现代月季组培技术育种研究进展 [J], 黄晓玲
5.火龙果组培技术研究进展 [J], 叶维雁;欧景莉;覃少麟;潘如军;苏展;徐有海;郑文武;覃剑峰
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植物无糖组织培养技术

植物无糖组织培养技术植物无糖组培快繁技术(Sugar-free micropropagation)又称为光自养微繁殖技术(Photoautotrophic micropropagation)是指在植物组织培养中改变碳源的种类,以CO2代替糖作为植物体的碳源,通过输入CO2气体作为碳源,并控制影响试管苗生长发育的环境因子,促进植株光合作用,使试管苗由兼养型转变为自养型,进而生产优质种苗的一种新的植物微繁殖技术。
这一技术概念是在1980年提出的,其技术发明人是日本千叶大学的古在丰树教授。
20世纪90年代以后,这一技术成为植物微繁殖研究的新领域,受到广泛的关注,无糖组织培养技术也在各国开始得到推广应用。
特别是近几年来,从事这一技术领域研究的科技人员越来越多,这一技术也逐渐成熟,并开始应用于植物微繁殖工厂化生产。
本文从植物无糖组织培养技术的特点、优势、限制因素、研究进展和应用前景等方面对这一技术进行了综述。
1.植物无糖组培快繁的技术特点(1)CO2代替了糖作为植物体的碳源在一般的有糖培养微繁殖中,小植物是以糖(如蔗糖、白砂糖、果糖等)作为主要碳源进行异养或兼养生长,糖被看作是植物组织培养中必不可少的物质添加到培养基中。
而无糖培养微繁殖是以CO2作为小植株的唯一碳源,通过自然或强制性换气系统供给小植株生长所需CO2,促进植物的光合作用进行自养生长。
(2)环境控制促进植株的光合速率在传统的组织培养中,很少对植株生长的微环境进行研究,研究的重点是放在培养基的配方以及激素的用量和有机物质的添加上;而无糖组织培养技术是建立在对培养容器内环境控制的基础上,根据容器中植株生长所需的最佳环境条件(如光照强度、CO2浓度、环境湿度、温度、培养基质等)来对植株生长的微环境进行控制,最大限度地提高小植株的光合速率,促进植株的生长。
(3)使用多功能大型培养容器在传统的组织培养中,由于培养基中糖的存在,为了防止污染,一般使用或者说只能使用小的培养容器。
海棠的无糖暴露组织培养技术

海棠的无糖暴露组织培养技术作者:肖平李克民杨其长李昆来源:《农业工程技术·温室园艺》2012年第07期海棠的植物学性状秋海棠类植物,为多年生的草本植物,均为秋海棠科,秋海棠属,根分为须根根茎和球茎。
须根类和球茎类海棠的茎都为地上茎,根茎类的海棠的茎已经退化到地下部分。
叶分为圆卵形三角形披针形等等。
叶的颜色有绿紫红两种颜色,叶面也有各色斑点,叶面也有绒毛,叶缘有锯齿和波状,花为腋生或顶生的聚伞花序或总状花序,而且在同一花序上有两性花。
花的颜色红白紫绿黄等等多种,花瓣有多瓣重瓣。
果实和种子,果实为蒴果,每个蒴果内有种子1300~65000粒。
海棠的种类科属秋海棠科求海棠属全世界有900多个自然种和3000多个栽培种,常见的栽培种有200多种左右,常分为3大类,即球根类海棠,根茎类海棠和须根类海棠。
海棠的药用价值可以药用,《本草纲目拾遗》、《陆川本草》、《药性考》中分别记载着“味酸、微寒”,“生肌、消肿、捣敷疮痈溃疡”,“味酸、性寒、无毒”,“捣汁治咽喉痛”。
海棠的观赏性秋海棠是著名的观赏花卉之一,品种繁多,栽培历史悠久,栽培地域广阔。
自古以来有多少文人墨客对它吟诗颂词,泼墨挥毫。
我国各个大小的不等的城市都有海棠的花圃和企业,广泛应用于城市景观的布置和居室环境的美化。
也是冬季观赏的主要花卉之一。
借花咏情,南宋大诗人陆游和唐婉的凄美爱情就是借海棠花来表达爱意。
海棠的无糖暴露组织培养与快繁此实验的实验材料为秋海棠,实验和甘薯一起在无糖暴露培养箱中进行。
实验目的在于:探讨无糖暴露组织培养技术在组织培养中的广泛应用。
培养基:(1)芽诱导培养基:BAl~2mg/L+NAAO.1~0.2mg/L的MS培养基(2)继代培养基:BAl~2mg/L+NAAO.2mg/L的MS培养基(3)根诱导培养基:IBA0.2~0.5mg/L的1/2MS培养基试验时间于2010年3月12日在中国农业科学院农业环境与可持续发展研究所环境工程实验室内进行。
植物无糖组织培养技术

1.4 无糖培养基内的CO2供给系统 ( CO2 浓度控制装置、混合配气装置、 消毒、干燥、强制性供气装置和供气管 道等构成)
• 2. 光独立培养
2.1 除去培养基中的糖,导入大型培 养容器 2.2 调节培养器内的 CO2浓度 2.3 提高光照度 2.4 调节培养器内的 相对湿度
• 3 驯化移栽
影响植物无糖培养的因素
意义 将整个培养环境看作是一个微型的生态系 统, 1·加强对微生态系统生态指标的研究 2·提高培养容器中小植株的光合能力, 3· 使其在光独立培养及无糖条件下,试 管苗的生理和能量代谢改善,生长速度加快。
植物无糖组织培养的概念 及意义
• 无糖组织培养←→传统的组织培养技术 • 优点:1·动态调整优化→植株生长发育, 种苗增殖快,品质优,生长周期短。 2·培养基中不含糖,降低污染,可 使用大型培养容器,提高快繁效率。 3·种苗质量提高。 4·节省投资,降低成本。 5·简化工艺,缩短流程,便于推广。
• 1.环境控制
1.1 无糖培养室的设计 满足培养植物 生长繁殖所需的温度、光照、湿度、和气 体条件。 1.2 无糖培养的容器 组织培养苗生 长的场所,综合提供温、光、水、气、肥 的微环境。 1.3 利用反光设施提高光能利用率 主要是光源 光照强度影响因素:光源放 置位置 、培养容器大小、 形状等, 采用 PVC透明软板、玻璃钢波纹板等—1
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植物无糖组织培养技术
植物无糖组织培养的概念及意义
概念 意义
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植物无糖组织培养技术
环境控制 光独立营养培养 驯化移栽
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植物无糖组织培养技术的研究进展及应用
植物无糖组织培养技术的研究进展及应用杨长友20111109035(生物化学与分子生物学,生命科学学院,重庆师范大学,重庆401331)摘要:植物无糖组织培养作为一种新型的组织培养模式可以有效地防止污染并能显著地促进组培苗的生长,尤其是增强组培苗的生根能力。
植物无糖组织培养目前的研究重点在于CO2浓度调节、培养基质的改进以及新型培养容器的研制等方面。
到目前为止,无糖组织培养技术已经成功地应用于多种植物的组织培养当中。
虽然现今无糖组织培养技术还存在前期投入较大、对设备的要求相对较高等问题,但随着研究的不断深入,无糖组织培养技术将在植物工厂化、规模化生产中发挥重要的作用,应用前景将会越来越广阔。
关键词:无糖组织培养;培养容器;培养基质;应用植物组织培养技术的优点在于快速繁殖、脱去病毒和种质资源保存,其中应用最为广泛的是快速微繁殖。
但由于在传统的组培技术中使用的是含糖培养基,杂菌很容易侵入培养容器并在培养基中繁殖,造成培养植物的污染。
为了防止杂菌侵入,我们通常采用密闭性很强的容器, 置于一定的光照条件下以一定的明暗周期恒温培养,组培苗依靠培养基中的糖进行异养生长。
但培养容器内通常气体流动性差,相对湿度高,CO2浓度不足,使培养植物生长缓慢,并且容易出现形态及生理异常,同时也大大提高了人工费用[1]。
以上诸多不利因素都严重制约了组培技术的发展及推广。
为了解决组培技术中存在的这些问题,20世纪80年代末,日本千叶大学古在丰树教授发明了一种全新的植物组织培养技术——无糖组织培养技术[2]。
他首先研究发现容器中的小植株也具有光合自养能力, 从而考虑改变植株的营养方式以CO2作为植株的碳源,同时改善植株的生理和能量代谢,使植株更好的发挥自身的光合能力,降低生产成本[3]。
无糖组织培养技术将环境控制技术和组培技术有机的结合起来,在环境因子的调节、培养基质以及培养容器等方面较传统组织培养有很大的改进,利用工程技术手段调控组培微环境的空气、光照、湿度等影响因子,使植株的生长环境更接近于自然状态,以达到促进植物体自养生长,提高幼苗的质量和产苗率,缩短培养周期的目的[4]。
植物无糖组培快繁技术
探索无糖组培快繁技术在更多植物种类和应用领域中的潜 力,如濒危植物保护、种质资源保存、药用植物繁育等, 促进其在实践中的广泛应用。
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快速扩繁
无糖组培技术可以在短时 间内扩繁出大量的优质果 树和林木苗木,提高造林 和栽培的效率。
农作物脱毒苗的繁育与应用
脱毒苗生产
利用无糖组培技术,可以生产出 无病毒、无病原菌的农作物脱毒 苗,提高农作物的产量和品质。
病虫害防治
农作物脱毒苗具有较强的抗病抗 虫能力,可以有效减少农药的使 用量和频率,降低对环境的负面
技术原理与基本流程
基本流程 1. 选择适宜的外植体(如种子、幼苗、叶片等),进行消毒处理。
2. 将外植体接种到无糖培养基上,添加适量的激素和营养物质。
技术原理与基本流程
3. 在恒温、光照充足的培养室 内进行培养,定期观察并记录生
长情况。
4. 当植株生长至一定大小时, 进行炼苗处理,提高其适应外部
不受范围
技术优点与应用范围
农业生产
用于繁殖优良作物品种,提高农业生产效率 。
医药产业
用于繁殖药用植物,提取药物成分。
园林绿化
繁殖花卉、树木等观赏植物,丰富城市绿化 。
科研实验
用于植物生理、生化、遗传等方面的研究。
技术原理与基本流程
• 技术原理:植物无糖组培快繁技术基于植物细胞的全能性,即 植物细胞具有发育成完整植株的潜能。通过提供适宜的培养条 件和激素配比,可以诱导植物细胞或组织进行分裂、生长和分 化,最终形成完整的植株。
保持品种特性
无糖组培技术可以确保观赏植物幼 苗保持原品种的优良特性,提高观 赏价值。
果树与林木的优质苗木繁育
植物的无糖组培技术
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细胞分化的概念
细胞分化是指在个体发育中,相同类型的细胞逐 渐产生在形态、结构和功能上稳定性差异的过程 。
细胞脱分化的概念
细胞脱分化是指分化成熟的细胞回复到未分化状 态的过程。
3
植物细胞分化与脱分化的调控
植物细胞分化与脱分化受到多种因素的影响,包 括植物激素、营养物质、外界环境等。
植物激素的作用
生长素的作用
生长素是促进植物生长的主要激素 之一,它能够刺激细胞的伸长生长
,促进根、茎和叶的发育。
细胞分裂素的作用
细胞分裂素能够促进细胞分裂和组 织分化,在根尖、芽尖和胚轴等部
位含量较高。
赤霉素的作用
赤霉素能够促进细胞的伸长生长和 细胞的分裂,还能够打破种子和芽 的休眠,促进萌发。
脱落酸的作用
脱落酸能够抑制植物的生长,促进 叶和果实的衰老和脱落。
随着技术的不断发展,科学家们逐渐发现 ,通过在培养基中添加适当的营养物质, 可以成功地诱导植物组织或细胞在体外生 长和发育。
经过几十年的研究和改进,无糖组培技术 已经变得相对成熟,并被广泛应用于植物 的快速繁殖、种质资源保存、作物改良等 方面。
应用领域与优势
• 应用领域:无糖组培技术广泛应用于植物的快速繁殖 、种质资源保存、作物改良等方面。例如,通过该技 术可以快速繁殖珍稀植物,拯救濒危物种;也可以在 短时间内获得大量的优质植物材料,为农业生产提供 支持。
作物新品种培育
高效育种
无糖组培技术可用于高效育种,通过对外植体进行诱导分化,筛 选优良变异株系,培育出具有优良性状的新品种。
缩短育种周期
相较于传统的育种方法,无糖组培技术可以大大缩短育种周期,提 高育种效率。
提高育种准确性
植物无糖组织培养技术
• 缺点:培养基水势高,组织培养苗易出现玻 璃化现象。→改善:用植物无糖组培快繁装 置。 • 用大型无糖组培快繁装置 • 优点:1· 透光性好 2· 便于气体交换 3· 减少生理异常和形态变异,利于培育 壮苗。 4· 驯化过程简单,简化程序,降低成本。 • 无糖组培的局限性无糖组织培养的局限性
植物无糖组织培养技术
• 1气体交换
培养容器内的气体成分影响培养材料的 生长和分化 、容器中的气体浓度随不同植 物基因型、培养基种类以及容器外的气体 浓度而变化。衡量指标:每小时空气换气 次数
• 2·CO2浓度与光照强度的相关性
CO2浓度与光照强度 植物进行光合作用 最重要的两个指标,在5000—6000lx的光 照条件下,C3植物的CO2 浓度以294mg/m3, 在5000—8000 lx的光照条件下,C4植物以 392—588mg/m3为宜。
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植物无糖组织培养技术
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概念 意义
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植物无糖组织培养技术
环境控制 光独立营养培养 驯化移栽
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• 3· 培养基质
最主要部分,直接影响培养材料的生 长发育。
• 4· 植物激素
关键物质,用量少,对外植体愈伤组 织的诱导和根、芽等器官分化起着重要调 节作用。在分化增殖阶段,加入细胞分裂 素促进植物细胞分裂。 在生根培养阶段, 生长素不重要.
小结 思考题
无糖组织培养的局限性
• 1· 需要闭锁性较好的培养室及专用的培 养装置,安装投资较高,前期投入较大。 • 2· 箱式培养容器相对密闭,不易调控温 度 # • 3· 培养容器的面积有限,难以适于产业 生产。室内培养空间有限,需进行移栽 • 4· 隔离操作规程繁琐。
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海棠的无糖暴露组织培养技术无糖可乐
海棠的植物学性状
秋海棠类植物,为多年生的草本植物,均为秋海棠科,秋海棠属,根分为须根根茎和球茎。
须根类和球茎类海棠的茎都为地上茎,根茎类的海棠的茎已经退化到地下部分。
叶分为圆卵形三角形披针形等等。
叶的颜色有绿紫红两种颜色,叶面也有各色斑点,叶面也有绒毛,叶缘有锯齿和波状,花为腋生或顶生的聚伞花序或总状花序,而且在同一花序上有两性花。
花的颜色红白紫绿黄等等多种,花瓣有多瓣重瓣。
果实和种子,果实为蒴果,每个蒴果内有种子1300~65000粒。
海棠的种类科属
秋海棠科求海棠属全世界有900多个自然种和3000多个栽培种,常见的栽培种有200多种左右,常分为3大类,即球根类海棠,根茎类海棠和须根类海棠。
海棠的药用价值
可以药用,《本草纲目拾遗》、《陆川本草》、《药性考》中分别记载着“味酸、微寒”,“生肌、消肿、捣敷疮痈溃疡”,“味酸、性寒、无毒”,“捣汁治咽喉痛”。
海棠的观赏性
秋海棠是著名的观赏花卉之一,品种繁多,栽培历史悠久,栽培地域广阔。
自古以来有多少文人墨客对它吟诗颂词,泼墨挥
毫。
我国各个大小的不等的城市都有海棠的花圃和企业,广泛应用于城市景观的布置和居室环境的美化。
也是冬季观赏的主要花卉之一。
借花咏情,南宋大诗人陆游和唐婉的凄美爱情就是借海棠花来表达爱意。
海棠的无糖暴露组织培养与快繁
此实验的实验材料为秋海棠,实验和甘薯一起在无糖暴露培养箱中进行。
实验目的在于:探讨无糖暴露组织培养技术在组织培养中的广泛应用。
培养基:
芽诱导培养基:BAl~2mg/L+~/L的MS培养基
继代培养基:BAl~2mg/L+/L的MS培养基
根诱导培养基:~/L的1/2MS培养基
试验时间于xx年3月12日在中国农业科学院农业环境与可持续发展研究所环境工程实验室内进行。
处理方法为:试验分四个处理,分别为有糖琼脂、无糖琼脂,有糖蛭石、无糖蛭石。
培养基为~/L的1/2MS,支撑物为琼脂和蛭石。
pH调整为~。
在无糖暴露培养箱中进行培养,温度25℃±℃,湿度80%±2%,CO2浓度μL/L,光照2000Lx。
整个无糖暴露培养系统的环境因子完全自动控制,整个系统配有485通信接口,可通过PC 机对控制监测显示的数据进行监控、采集、存储、分析。
生长和分化情况
无菌茎尖的切取与分化
在健壮无病毒虫害的母株上取幼嫩茎尖,去掉大叶,用自来水冲洗30min后,用70%的乙醇消毒15s,无菌水冲洗干净,再用%的升汞消毒6~8min后,用无菌水冲洗3~5次,切切取~叶原基茎尖组织,接到培养基中,培养4~5天后开始生长,继续培养15~20天后长成1~2个约2~3cm的嫩茎苗。
增殖与快繁
将丛生苗切成1cm左右的茎段,转入培养基中,20天后,长成1~3个3~4cm的嫩芽。
生根的诱导
取已经继代的长势整齐一致海棠试管苗,切取2~3cm茎尖保留2-3片叶转移到培养基中,放入无糖暴露培养箱中,通入补充CO2,至01500μL/L,7天后开始生根,培养到15~20天,100%生根,株高生长到7cm左右进行移栽。
试验表明,海棠苗的长势以无糖琼脂培养的明显好于有糖琼脂培养,而无糖蛭石培养好于有糖蛭石培养。
其中最优为无糖蛭石培养。
移栽
将洗净根部琼脂和蛭石后的海棠苗直接移栽到营养钵中。
基质配比为蛭石:草炭=1:1,移栽前浇透水,放在阴凉处,10天可以移栽到土壤中,成活率为98%以上。
意义与进展
海棠的栽培面积将不断扩大。
由于传统的繁殖方式易导致病毒蔓延,致使产量和品质降低,品种退化。
组织培养是提供脱毒苗的重要途径。
在传统的组织培养中,使用糖作为碳源,植株在小的培养容器中进行培养,这样培养基中的糖往往会加速微生物的繁殖,易引起污染。
同时容器内的空气湿度大,通风不畅,有害气体容易聚集,光透过覆盖物透光率极低。
在这种环境下,容易导致试管苗污染率高,植株生理形态紊乱,植株生长细弱,生长发育缓慢或死亡,驯化阶段死亡率高,从而造成生产成本高。
无糖组织暴露培养,改进了小容器的培养方法,用大培养箱进行培养,改善了植物生长环境。
将培养基中的糖去掉,用CO2气体施肥代替培养基中的糖源,实现了强制自主呼吸,植株通过自身光合作用生根与分化,提高了植株的株高,叶片数,根数及干鲜物重。
并对温度、湿度、CO2浓度、光照等环境因子进行自动控制,进行数据采集处理,通过采集的数据进行分析,及时对植物的生长进行调控。
植株植物组培暴露培养在植株生根的过程中进行了驯化,缩短了驯化时间,提高了成活率,易于操作,降低了成本。
植物组织暴露培养是今后组织培养的发展的趋势。