人牙周膜成纤维细胞的生物力学研究

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机械牵张人牙周膜成纤维细胞钙离子浓度的变化的开题报告

机械牵张人牙周膜成纤维细胞钙离子浓度的变化的开题报告

机械牵张人牙周膜成纤维细胞钙离子浓度的变化的开题报告一、研究背景牙周膜是连接牙齿与牙槽骨的重要组织,其功能不仅是维持牙齿的稳定,还可以通过自身内源性修复机制促进牙周组织的再生。

近年来的研究表明,机械牵张能够促进牙周膜的纤维化和组织修复过程。

而机械牵张作用下,牙周膜成纤维细胞受到一定的力学刺激,钙离子浓度会发生变化,进而影响细胞的生物学行为。

因此,研究机械牵张下牙周膜成纤维细胞钙离子浓度的变化,将有助于深入探究机械牵张对牙周组织再生的作用及其机制。

二、研究内容本研究将采用钙指示荧光探针技术(如Fluo-4,Fura-2等)对机械牵张作用下的牙周膜成纤维细胞的钙离子浓度进行检测。

具体研究内容如下:1. 建立机械牵张牙周膜成纤维细胞的体外模型通过体外培养牙周膜成纤维细胞,结合悬挂和拉伸装置等设备,建立机械牵张作用下的牙周膜成纤维细胞模型,并分别设置不同的牵张力度和时间进行处理,进而模拟牙周组织的理想状态。

2. 检测机械牵张后牙周膜成纤维细胞钙离子浓度的变化利用钙指示荧光探针技术,检测机械牵张处理前后牙周膜成纤维细胞的钙离子浓度变化。

借助荧光显微镜观察荧光信号强度,进一步分析机械牵张对钙离子水平调控的影响。

3. 研究机械牵张对牙周膜成纤维细胞生物学行为的影响在检测机械牵张后钙离子浓度变化的同时,还将综合考虑机械牵张对牙周膜成纤维细胞增殖、迁移、分化等生物学行为的影响,以进一步阐述机械牵张调节牙周膜成纤维细胞生物学行为的机制。

三、研究意义机械牵张是一种无创性的治疗手段,对于促进牙周组织再生具有重要作用。

本研究的开展,将有助于深入探究机械牵张下钙离子浓度变化对牙周组织再生的影响,为临床应用提供理论依据和实验基础。

同时,本研究的结果也可为机械牵张技术的优化和改进提供参考。

人牙周膜干细胞培养

人牙周膜干细胞培养

人牙周膜干细胞培养
上了研究生就开始养牙周膜干细胞,经历了小半年无数次的失败,可能有快100颗牙齿了吧,那些个无助和绝望的黑夜之后,最近终于摸到规律细胞大批量出来了,总结以下几点,个人觉得能较大幅度的提高成功率,希望对大家有帮助:
1.牙齿的来源当然是最重要的,越年轻的牙齿出来细胞越容易,成功率也越高,13岁以下的正畸牙和20岁以下的智齿都算是活性很好的,当然25岁以下的牙齿基本上都能出,这里只讨论相对较优的情况;
2.收牙的时候DMEM培养基+10%双抗,最好2小时以内就处理了,记得离心管盖子要封口膜封上,而且牙齿直接从牙钳放入准备好的离心管,尽量减少污染风险,毕竟口腔三大菌。

3.具体操作分别有酶消化和组织块翻瓶酶消化这两种,就我的结果来说,翻瓶的成功率相对高些。

0.2ml血清铺瓶后尽量将组织块分的十分小,且组织块与组织块之间离得近些,这样万一其中某个出来了,其他的也会受它影响。

加入4ml20%培养基后,3.5-4小时翻瓶,翻了瓶之后就不要动它了,这点很重要,千万千万不要因为关心经常去看,5天后(也就是隔4天)再拿出来看,一般就能看到奇迹啦img(中间可以远远看看培养液干没,没干就等着)。

细胞出来之后每3天换一次液。

切记,一开始一定不要动它,让小宝宝自己好好的发挥,这点超级重要;
4.消化的时候1颗牙0.5ml I型胶原酶+0.5ml中性酶,记得是根中1/3的牙周膜,不要太使劲刮下来牙骨质啦,刮的太靠根颈部和根尖则有可能导致其他细胞污染(牙龈上皮细胞、牙髓干细胞)。

5.牙周膜干细胞成功率本来就比较低,文献上说大概是30%,如果出不来也不要着急,你用心的话小细胞一定不会辜负你的。

来源于丁香园论坛nadiaa。

人牙周膜干细胞的初步鉴定及体外成骨诱导

人牙周膜干细胞的初步鉴定及体外成骨诱导

万方数据甄蕾,等.人牙周膜干细胞的初步鉴定及体外成骨诱导ZHENLei.etaLHu眦nPeriodontalLigamentStemCellsDifferentiationintoOsteoblasts/nv/tro・319・RNA提取试剂盒、一步法RT.PCR试剂盒(Tiangen公司。

北京)。

1.2方法1.2.1牙周膜细胞原代培养收集临床12一18岁因正畸需要而拔除的牙周健康、无龋的新鲜前磨牙,PBS洗3次,刮取根中l,3牙周膜组织,采用酶解组织块法培养,每隔3d换液.直至细胞从组织块周围游出。

细胞生长达80%汇合时传代。

1.2.2有限稀释法克隆化培养纯化PDLSCs取对数生长期的第1代细胞。

以1~2个/孔的密度接种于96孔板,常规培养7。

14d,至出现细胞克隆(细胞数≥50为判定标准)后扩大培养。

1.2.3PDLSCs的初步鉴定分别取第2代克隆形成细胞进行爬片。

采用SP法检测波形蛋白和角蛋白的表达。

同时利用兀TC荧光标记二抗检测STRO..1和CDl46的表达。

1.2.4体外诱导分化取第2代对数生长期的克隆形成细胞。

按5xllY个/mL接种于24孔板中,待细胞进入对数生长期后弃去原培养液。

PBS洗3遍,换诱导液(10mmol/LB.甘油磷酸钠、10{mol/L地塞米松、50I.Lg/mL维生素C)培养21d。

对照组细胞常规培养。

1.2.5成骨性能的鉴定1.2.5.1茜素红S染色观察钙结节形成人PDLSCs诱导培养21d后弃去培养液,4%多聚甲醛固定30min后饱和茜素红S溶液染色10min,观察钙结节形成情况。

1.2.5.2定性的细胞ALP活性检测人PDLSCs诱导培养21d后弃去培养液。

按ALP检测试剂盒说明书规范操作。

光学显微镜下观察染色情况。

1-2.5.3免疫细胞化学检测BSP、I型胶原表达人PDLSCs诱导培养21d后常规SP法检测BSP、I型胶原蛋白表达情况。

1.2.5.4RT-PCR检测ALP、BSPmRNA表达收集诱导培养21d后的人PDLSCs.。

补骨脂素对人牙周膜干细胞增殖、成骨分化的促进作用及其机制

补骨脂素对人牙周膜干细胞增殖、成骨分化的促进作用及其机制

补骨脂素对人牙周膜干细胞增殖、成骨分化的促进作用及其机制韩敏,张韶君,席迅山东第一医科大学第一附属医院(山东省千佛山医院)口腔科,济南 250014摘要:目的 观察补骨脂素对人牙周膜干细胞(hPDLSCs )增殖、成骨分化的促进作用,并探讨其机制。

方法 将第三代hPDLSCs 分为6组,5、10、25、50、100 μmol /L 补骨脂素组加入5、10、25、50、100 μmol /L 补骨脂素,对照组正常培养,采用CCK -8法检测细胞增殖能力,比色法检测碱性磷酸酶(ALP )活性,茜素红染色检测成骨诱导矿化结节。

另取第三代hPDLSCs 并分为两组,25 μmol /L 补骨脂素组加入25 μmol /L 补骨脂素,对照组正常培养,采用RT -PCR 法检测转录因子2(Runx2)、骨桥蛋白(OPN )mRNA 。

结果 与对照组比较,5、10、25、50、100 μmol /L 补骨脂素组细胞增殖能力和ALP 活性增加,25 μmol /L 补骨脂素组细胞成骨矿化结节增加(P 均<0.05);与5 μmol /L 补骨脂素组比较,25、50、100 μmol /L 补骨脂素组细胞增殖能力及10、25 μmol /L 补骨脂素组细胞ALP 活性和25 μmol /L 补骨脂素组细胞成骨矿化结节增加(P 均<0.05);与10 μmol /L 补骨脂素组比较,25、50、100 μmol /L 补骨脂素组细胞增殖能力增加(P 均<0.05);与25 μmol /L 补骨脂素组比较,50、100 μmol /L 补骨脂素组细胞ALP 活性降低(P 均<0.05)。

与对照组比较,25 μmol /L 补骨脂素组Runx2、OPN mRNA 相对表达量增加(P 均<0.05)。

结论 5~100 μmol /L 补骨脂素均能促进hPDLSCs 的增殖和成骨分化,在5~25 μmol /L 呈剂量依赖性增强,在50~100 μmol /L 变化不明显;补骨脂素促进hPDLSCs 的增殖和成骨分化的机制可能与调节Runx2信号通路有关。

成纤维细胞的生物学特性及其成骨作用的研究进展

成纤维细胞的生物学特性及其成骨作用的研究进展

成纤维细胞的生物学特性及其成骨作用的研究进展骨缺损(尤其是大型骨缺损)的治疗,由局部伤情简单和缺乏抱负的修复材料,始终是困扰临床医生和基础医学工的一大难题,而查找一种尽可能达到或接近自体骨移植效果的抱负的骨替代材料更是很多学者热切探究、孜孜以求的目标。

近年来日趋活跃的骨组织工程(bone tissue engineering)技术为这一课题的讨论带来了新的亮点和盼望。

目前动物试验已能从骨膜、骨髓等定向性骨祖细胞(determined osteogenic precursor cells, DOPC)密集处分别培育出成骨细胞,经体外扩增并与载体结合,回植体内骨缺损处取得骨缺损修复的胜利[1]。

与此同时,基于对患者易接受性、可操作性和更简洁易行性等方面的考虑,讨论者又开头把目光投向诱导性骨祖细胞(inducible osteogenic precursor cells, IOPC)。

其中,在体内分布广泛、数量巨大、部位表浅、取材便利、培育传代易行、分裂增殖快速的成纤维细胞首先成为了讨论的焦点。

由于目前很多相关讨论尚处于试验阶段,为此,本文着重就成纤维细胞的生物学特性及其成骨作用等作一综述。

1成纤维细胞的来源及其生物学特性成纤维细胞(fibroblast)是结缔组织中最常见的细胞,由胚胎时期的间充质细胞(mesenchymal cell)分化而来。

在结缔组织中,成纤维细胞还以其成熟状态—纤维细胞(fibrocyte)的形式存在,二者在肯定条件下可以相互转变。

不同类型的结缔组织含成纤维细胞的数量不同。

通常,疏松结缔组织中成纤维细胞的数量比同样体积的致密结缔组织中所含成纤维细胞的数量要少,故分别培育成纤维细胞多以真皮等致密结缔组织为取材部位[2,3]。

成纤维细胞形态多样,常见的有梭形、大多角形和扁平星形等,其形态尚可依细胞的功能变化及其附着处的物理性状不同而发生转变。

成纤维细胞胞体较大,胞质弱嗜碱性,胞核较大呈椭圆形,染色质疏松着色浅,核仁明显。

人牙龈成纤维细胞的体外培养及生长曲线测定

人牙龈成纤维细胞的体外培养及生长曲线测定

人牙龈成纤维细胞的体外培养及生长曲线测定作者:王文瑜闫福华姚丽艳陈小玲来源:《海峡科学》2007年第08期【摘要】目的:体外培养正常人牙龈成纤维细胞并测定其生长曲线,初步了解该细胞生物学特性。

方法:用改良组织块法培养人牙龈成纤维细胞,通过MTT比色法研究细胞的生长曲线。

结果:改良组织块法原代培养细胞成活率达80%,培养细胞呈梭形,从第3天呈对数生长,第4-5天进入平台期。

结论:改良组织块法能简便快速地获得人牙龈成纤维细胞,初步了解其生物学特性。

【关键词】人牙龈成纤维细胞组织培养生长曲线人牙龈成纤维细胞(human gingival fibroblasts, HGFs)是牙龈固有层结缔组织的主要组成细胞,不仅具有活跃的自身更新能力,而且具有合成和降解胶原、弹力纤维、糖蛋白等细胞外基质的功能[1]。

本实验采用改良组织块培养法进行人GFs的原代培养,研究其生物学特性,为进一步研究做好准备。

1 材料和方法1.1主要试剂和仪器DMEM培养液(Gibco,美国),胰蛋白酶(Gibco,美国),胎牛血清FBS(天津灏洋生物公司),超净工作台(上海力申科学仪器有限公司),CO2孵箱( Heraeus,德国),倒置相差显微镜(广州光学仪器厂),MTT (Sigma,美国),酶联免疫检测仪(Human 德国)1.2方法1.2.1 原代培养选取本院需行阻生牙拔除的患者,在征得患者同意后在术中切取小块牙龈组织。

要求患者没有牙龈增生、炎症及使用过导致牙龈增生的药物。

术前将拔牙器械及术区周围消毒灭菌,无菌条件下获取小块牙龈组织(约3mm×3mm)[2],立即放入装有无血清DMEM培养液的小瓶中,在超净工作台内用含有抗生素(青霉素100u/ml,链霉素100μg/ml)的PBS反复冲洗,用锐利小剪刀尽量去除牙龈上皮,在玻璃皿上剪成1mm3左右的碎块,均匀铺于六孔培养板底面,其上覆盖20×20mm盖玻片。

沿盖玻片边缘缓慢加入含10%FBS的DMEM培养液4m1,在饱和湿度、5%CO2、37℃标准环境下孵育。

牙周组织生物力学

牙周组织生物力学

• 来源于造血系统的单核细胞---局部信号—融合;
• 成牙骨质细胞:
• 成纤维细胞的鉴别:①光镜下CB的形态不规 则而成纤维细胞一般呈纺锤形,就分泌胶原 的功能而言,CB不如成纤维细胞活跃。② CB能分泌矿化相关蛋白如OPN、 BSP、 OCN等,能形成矿化结节,成纤维细胞在一 般条件下无上述特性。
Байду номын сангаас
Substrate Stretch System
Loading Modes
Uniaxial Elongation
Four-Point Bending
Longitudinal Substrate Stretch
牙周膜的生物学特性
从结构和功能上看,牙周膜可以说是“牙骨 质和固有牙槽骨的骨膜”。 其中的成纤维细胞对牙周膜胶原纤维的生成和 更新起着重要作用; 同时,成骨细胞产生新骨,使新生的牙周膜纤 维得以重新附着,保持牙齿和牙周的正常联系; 成牙骨质细细胞可形成牙骨质,维持牙骨质的 完整健康。
胶原
多种胶原,目前已知Ⅰ、Ⅲ、Ⅴ、Ⅵ、Ⅻ型等。
Ⅰ型胶原是形成坚固的纤维附着、使牙周膜具备 弹性,抵抗咬合力的组织学基础; Ⅴ型胶原覆盖在Ⅰ、Ⅲ型胶原的表面,加强细胞 的附着; Ⅵ型为很短的纤维原,联结于Ⅰ、Ⅲ型胶原之间; Ⅻ型胶原:胶原与细胞外基质联结的桥梁作用。
2.基质
在牙周膜中,细胞、纤维、血管及神经 之间的空隙中均为基质和体液所充满。 基质主要由酸性粘多糖和糖蛋白组成。 基质及体液成分可减少纤维间的摩擦,与 牙支持功能密切相关。
质组成。另有血管、淋巴管和神经。
1.牙周纤维 主要为胶原纤维,少量弹性纤维只见于血管壁; 主纤维束的一端埋在牙骨质内,另一端埋入牙槽 骨,或分布在牙龈中。 正常的主纤维束稍呈波纹状,弯曲值约占牙周膜 长度的7.5%,故咀嚼时牙齿可有轻微的活动。 分组:

联合培养法进行人牙周膜细胞的比较培养与鉴定

联合培养法进行人牙周膜细胞的比较培养与鉴定
来源鉴定情况.方法 刮取 因正畸需要而拔牙的牙周膜 ,分别进行组织块法和消化法与组织块法联合培养进行人
牙周膜细胞的原代培养 ,并 进行 波形 丝蛋 白 、角蛋 白和碱性磷酸酶 ( P AL )的检测 ,以鉴定细胞来源 .结果

织块 法在 1 ~2周 内有原代细胞游 出.在第 2或第 3天 ,联合 培养法消化游离 出来 的细胞开始贴壁 ,消化 后的疏 松状牙周膜亦可贴壁 ,且有 细胞爬 出.组织块法 的成功率为 2 %,联合培养法成功率 为 7%.A C免异组化法及 7 0 B AP L 鉴定其为非牙龈来 源的中胚层细胞.结论
Cu t e a d I e t fc t o fH u a r o n a g e t Ce l l ur n d n i a i n o m n Pe i do t lLi m n ls i by Co b ne e ho m i dM t d
Z N i un ”,J S u—y ”,X h n ,Z E G G n— in ,Y e” H NGF —qa g HO GWe —g a g Ih u UC u H N e j ” a U L i ,Z A u i n
h we e e l atc me t c u r d atr2 3 d y o i e t o . T e S c e sr t f is e b o k meh d a d o v rc l t h n c re e — a si c mb n d me h d s a o f n h u c s ae o s u l c t o n t c mb n d meh d wa 7 a d 7 % . r s e t ey T e c l u t r d w r n e t i d a o — i gv ld r e o ie to s2 % n 0 e p ci l. h el c l e e e i d n i e sn n g n i a e i d v s u f v
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人牙周膜成纤维细胞的生物力学研究人牙周膜成纤维细胞是牙周膜中的主要细胞,参与调节牙周组织的改建和再生。

临床上咬合创伤、正畸治疗及各种修复体行使功能时,各种作用力通过牙体传递到牙周,引起牙周膜的一系列生物学改变。

因而作为牙周膜的主要功能细胞—牙周膜成纤维细胞(Human Periodontal liqament Fibroblasts,hPDLFs)的体外生物力学研究,对临床治疗起着重要的指导意义。

该研究从hpDLFs 的生长特征、蛋白质合成、标志性酶及细胞因子、信号转导方面对目前的hpDLfs的生物力学研究做一综述。

标签:牙周膜成纤维细胞;生物力学;研究人牙周膜成纤维细胞是牙周膜中的主要细胞,该细胞具有合成降解胶原,受诱导多向分化的能力,而且还通过合成分泌多种因子与酶,参与调节牙周组织的改建和再生。

临床上咬合创伤、正畸治疗及各种修复体行使功能时,各种作用力通过牙体传递到牙周,引起牙周膜的一系列生物学改变。

因而作为牙周膜的主要功能细胞—牙周膜成纤维细胞(Human Periodontal liqament Fibroblasts,hPDLFs)的体外生物力学研究,对临床治疗起着重要的指导意义。

该研究从hpDLFs 的生长特征、蛋白质合成、标志性酶及细胞因子、信号转导方面对目前的hpDLfs的生物力学研究做一综述。

1 hPDLFs的生长增值加载装置的不同、应用大小、应力频率的不同,hPDLFs增殖活性的改变也不尽相同。

王永等[1]对hPDLFs施加机械牵张力,结果发现一定力值范围的机械张力能促进hPDLFs增殖活性,过大力值的牵张力反而抑制细胞增殖。

周继祥等[2]利用自行设计的膜式动态张应力-体外细胞研究体系对hPDLFs分别进行静张应力及不同频动范围动态张应力加载,结果发现不同张应力对hPDLFs的增值活性影响明显不同,静张应力有明显的促hPDLFs增值作用而动态张应力有一定的抑制作用。

体外加力时间的不同[3],同样也影响到细胞的增殖,在一定时间范围内,周期性张应力可促进hPDLFs的增殖,但随着时间的延长,增殖会受到抑制。

在众多研究中,加力方式、加力大小、加力时间的不同,均会引起hPDLFs 增殖或抑制等不同的变化,牙周膜受力的复杂性决定了体外模拟实验的多样性。

2 hPDLFs胶原纤维及蛋白质合成人牙周膜成纤维细胞具有合成、分泌胶原蛋白功能,其胶原纤维合成情况可以反映牙周膜细胞外基质的新陈代谢。

Howard等[4]研究发现5%的拉伸应变条件下,I型胶原合成增加而10%应变则无明显影响,说明hPDLFs对不同的机械力刺激产生不同的反应,从而影响了细胞外基质的合成,以适应外力的刺激。

同样赵志河[5]研究发现不同频动范围的动态张应力对hPDLFs胶原纤维合成的影响截然不同,适当频动范围的动态张应力更有效的促进胶原纤维的合成而静态张应力作用并不能增加hPDLFs的胶原纤维合成。

2种作用力对胶原纤维合成影响差异可能是导致细胞形变的不同引起的[6]。

对体外培养的hPDLFs施以动态张应力,较小的张应力使hPDLFs纤连蛋白mRNA表达随加力时间延长逐渐增加,较大张应力使hPDLFs纤连蛋白表达先增加后减少[7]。

体内环境下胶原纤维和蛋白是细胞外基质的重要组成部分,hPDLFs受力时,细胞外基质会产生相应的破坏和改建,并通过膜蛋白传导到细胞内。

3 hPDLFs的细胞因子及酶碱性磷酸酶(alkalline phosphates,ALP)是参与骨组织钙化过程中关键性蛋白酶。

Alp活性较高则表示该组织具有较强的钙化及成骨功能。

PDLFs具有较高水平的ALP活性,其碱性磷酸酶活性是牙龈成纤维的10倍。

Yamaguchi M[8]等研究发现人牙周膜细胞在在同期性外力的作用下(24%elongation),ALP活动显著降低,并且发现ALP活性的降低主要靠PGE2和IL-1调节的。

张宇[9]等利用液压加载系统对hPDLFs施加压力发现,hPDLFs对压力具有一定的耐受性,但当压力增加到一定程度时,随着作用时间延长造成ALP活性降低,压力较大会短时间内造成ALP活性降低运以说明过大的咬合力或矫治力,将会影响ALP 活性降低,影响牙周组织钙化,并导致牙周组织的一系列病变。

牙周膜细胞是具有异质性的细胞群,受到刺激或加入某些诱导条件下,细胞会分化成具有成骨特性的细胞,从而引起牙槽骨的吸收和形成。

hPDLFs是正畸牙移动过程中受力的直接效应细胞,因而在牙槽骨改建中起着关键的作用。

骨桥蛋白(osteopontin,OPN)是基质矿化的调节基因,OPNmRNA在成骨细胞分化的早期即开始表达,可以作为成骨样细胞分化的早期标志。

骨钙素(osteocalcin,OC)是细胞外基质蛋白,它是成骨细胞成熟的标志。

研究发现,hPDLFs在受到机械牵张力刺激作用下,OPN和OC均增殖,提示hPDLFs在机械力诱导下向成骨样细胞分化,从而在机械力介导的牙槽骨改建中发挥重要的作用[10-11]。

基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMP)是一类水解基底膜和细胞外基质的蛋白水解酶家族。

MMP通过降解胶原而参与牙周组织的力学改建。

彭庭莉[12]等对hPDLFs施加动态张应力,观察其MMP的分泌情况,结果发现hPDLFs受到动态张应力作用后MMP-9表达有不同程度的增加,当细胞受到5KpaN-0-N5Kpa动态作用力后表达明显增加。

该结果提示,恰当的张应力作用可以明显促进MMP-9生成,从而加速牙周膜的改进,这对临床选择最适矫治力提供了可靠的依据。

MMP-2能降解IV型胶原纤维,该纤维是基底细胞膜的主要成分。

正畸过程中,牙周组织吸收和重建,MMP-2起着重要的作用。

对hPDLFs 施加持续机械张应力可诱导MMP-2表达的增加,从而影响牙周细胞外基质的代谢[13]。

在机械力刺激下,hPDLFs能够合成并分泌多种细胞因子,从而调节参与了牙周组织的改建和修复。

TGF-β1作为损伤修复过程中的重要生物介质,对牙周软硬组织再生修复都有重要作用。

TGF-β1能促进hPDLFs的增殖,能促进蛋白质和RNA的合成[14],还能促进hPDLFs产生细胞外基质,因而研究外力作用对hPDLFs的TGF-β1表达的影响,具有极其重要的意义。

汤楚华等[15]采用液压细胞加载装置对hPDLFs施加不同等级的压力,结果发现,hPDLFs合成TGF-β1受到机械压力的调控,在一定载荷范围内,hPDLFs合成TGF-β1量随着压力增大而降低。

该研究提示机械压力可能通过对hPDLFs 的TGF-β1表达的影响,调节细胞的增殖、细胞外基质的降解过程,从而引起牙周组织的改建。

Kimoto S[16]等应用Flexercell细胞拉伸装置,对hPDLFs施加5%的拉伸应变,每分钟3次,结果发现恒牙来源的hPDLFs的TGF-β1合成显著增多hPDLFs,表明hPDLFs 在外力作用下通过合成分泌细胞因子的参与了牙周组织的改建。

4信号转导途径无论在临床正畸过程中还是咬合创伤时,外力的刺激传导到牙周膜的hPDLFs,引起牙周膜的一系列改建。

力学信号是如何传导致效应细胞呢?这就涉及到机械力学信号传导路径的问题。

多种生物化学信号参与了正畸力下牙槽骨改建。

丝裂原活化蛋白激酶级联(mitogen actirated protein Kinase,MAPK)是细胞内主要的传导系统。

MAPK信号传导系统有多条信号通道,p38MAPK是比较经典的一条。

当受到外界刺激时,细胞内p38MAPK由非磷酸化转为磷酸化状态而活化,它可促进下游底物的磷酸化来快速实现信号的传递,也可以通过转位入胞核活化转录因子调控特殊基因的表达,从而将信号从胞外传导到胞核。

党平等[17]应用可控压力细胞加载装置,观察压力作用下hPDLFs内p38MAPK激活的强度变化,结果发现当压力值为200 Kpa时,细胞内p38MAPK磷酸化程度明显增强,约60 min后磷酸化水平降至刺激前水平,初步证明机械力信号可通过跨膜转导激活p38MAPK,引起牙周膜细胞功能改变,导致牙周组织改建。

对hPDLFs施加周期性张应力时发现,加入p38MAPK特异性抑制剂可抑制hPDLFs细胞增殖,并能抑制周期性张应力引起的增殖细胞核抗原mRNA的表达,证明p38MAPK 信号通道在周期性张应力介导的hPDLFs增殖中发挥重要的作用[4]。

细胞外信号调节激酶ERK(extracellular sigal-regulated kinase)信号通路是另一条重要的MAPK信号转导途径。

Kook SH等研究发现机械力通过促进骨保护素的产生而抑制hPDLFs向破骨细胞的转化,ERK信号通路参与其中[18]。

ERK1/2是ERK的活性形式,可进入细胞核,通过磷酸化活化转录因子,调控细胞增殖和分化。

有研究发现,ERK1/2信号通路介导机械力作用下hPDLFs的增殖调控及促进BMP-2的表达[19]。

RAS同源基因(Ras homologgene,Rho)是细胞骨架的主要组成成分,可以调节肌动蛋白应力纤维,通过激活Rho相关螺旋卷曲蛋白激酶等一系列反应,在应力介导hPDLFs细胞骨架重排中发挥作用。

hPDLFs受到正畸力的作用后,会发生细胞骨架的重排和转移,从而对应力产生反应。

Rock是Rho家族的下游信号分子,研究发现[20],周期性张应力作用下ROCK蛋白的表达增强,Rock 的特异性抑制剂可以降低其表达和细胞骨架的重排,从而推断周期性张应力促进细胞骨架的重排中Rho信号通路参与了此过程。

磷脂酰肌醇3激酶(PI3K)/蛋白激酶B(PKB或Akt)信号通路是调控细胞增殖、凋亡的重要信号转导通路之一。

PI3K与相应的配体(如生长因子)结合后能发生自身酪氨酸残基的磷酸化,能磷酸化细胞膜上的PKB,激活Akt ,调控许多细胞与细胞代谢、凋亡、增殖有关的蛋白,从而发挥抗细胞凋亡的作用。

研究发现[21]PI3K/Akt信号通路参与了张应力介导的hPDLFs细胞的凋亡。

总之,hPDLFs的体外生物力学研究虽有大量的报道,但由于多方面的原因,出现的结果不尽相同。

比如,在细胞的来源方面,有利用组织块法培养的牙周膜细胞,有的是酶消化法培养的,还有的利用传代的牙周膜成纤维细胞珠。

细胞加载装置也不尽相同,所以施力的标准不同,施力的方式不同,研究结果自然有一定的差异。

该研究认为应选用最具有代表性的细胞株来研究,选用与临床上合力或正畸力最接近的力学加载装置,研究的结果才更有利用价值。

[参考文献][1] Wang Y,Jia Y,Zhao ZH,et al.Effects of mechanical stress on the proliferation kinetics of the human periodontal fibroblast cells in vitro[J].Hua Xi Kou Qiang Yi Xue Za Zhi,2005,23(4):332-334.[2] 周继祥,赵志河,谭理军,等.体外不同张应力对人牙周膜成纤维细胞增殖活性的影响[J].四川大学学报:医学版,2003,34(4):638-640.[3] 曹海萌,张广耘,袁晓,等.p38丝裂素活化蛋白激酶与周期性张应力介导牙周膜成纤维细胞的增殖[J].中国组织工程研究,2012,16(28):5241-5245.[4] Howard PS,Kucich U,Talwal R,et al.Mechanical forces alter extracellularmatrix synthesis by human periontal ligament fibroblasts[J].J Periodontal Res,1998,33(8):500-508.[5] 赵志河,周继祥,江凌勇,等.体外不同张力对人牙周膜成纤维细胞胶原纤维合成的影响[J].四川大学学报:医学版,2003,34(4):635-637.[6] MacKenna D,Summerour SR,Villarreal F.Role of mechanical factors in modulating cardiac fibrollast function and extracellularmatrix synthesis[J].Cardiovas Res,2000,46(2):257-263.[7] 朱庆党,刘丽,杨艳丽,等.张应力刺激下人牙周膜成纤维细胞纤连蛋白、整合素、细胞骨架的变化[J].上海口腔医学,2010,19(6):601-606.[8] Yamaguchi M,shimizu N,shibata Y,et al.Effect of different magnitudes of tension force on alkaline phosphatase activity in periodont ligment cell[J]. J Dent Res,1996,75(3):889-894.[9] 张宇,施生根,张慧.压力环境对人牙周膜成纤维细胞碱性磷酸酶活性的影响[J].第一军医大学学报,2001,21(10):767-769.[10] Li X,Zhang D,Fu M,et al.Effects of mechanical stretching force on osteoblast-like function of human periodontal ligament cells in vitro[J].Zhonghua Kou Qiang Yi Xue Za Zhi,2002,37(2):135-138.[11] Yang YQ,Li XT,Rabie AB,et al.Human periodontal ligament cells express osteoblastic phenotypes under intermittent force loading in vitro[J].Front Biosci,2006(11):776-781.[12] 彭庭莉,周继祥,杨军.动态张应力作用下人牙周膜成纤维细胞分泌MMP-9的实验研究[J].重庆医学,2005,34(12):1810-1814.。

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