植物组织中淀粉含量的测定
植物组织中淀粉含量的测定_
植物组织中淀粉含量的测定_Ⅰ蒽酮硫酸法一、原理淀粉是由葡萄糖残基构成的多糖，在酸性条件下加热使其水解成葡萄糖，然后在浓硫酸的作用下，使单糖脱水生成糠醛类化合物，利用蒽酮试剂与糠醛化合物的显色反应，即可进行比色测定。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料任何植物材料。
（二）试剂o浓硫酸（比重1.84）。
o9.2mol/lhclo4。
o蒽酮试剂，同实验24。
（三）仪器设备电子天平，容量瓶。
100ml4个、50ml2个，漏斗，小试管若干支，电炉，刻度吸管0.5ml1支、2.0ml3支、5ml4支，分光光度计，记号笔。
三、实验步骤1.标准曲线制作同实验24恩酮法。
2.样品提取称取50～100mg粉碎过100目筛的烘干样品，置于15ml刻度试管中，加入6～7ml80％乙醇，在80℃水浴中提取30min，取出离心（3000rpm）5min，收集上清液。
重复提取两次（各10min）同样离心，收集三次上清液合并于烧杯，置于85℃恒温水浴，使乙醇蒸发至2～3ml，转移至50ml容量瓶，以蒸馏水定容，供可溶性糖的测定。
向沉淀中加蒸馏水3ml，搅拌均匀，放入沸水浴中糊化15min。
冷却后，加入2ml冷的9.2mol/l高氯酸，不时搅拌，提取15min 后加蒸馏水至10ml，混匀，离心10min，上清液倾入50ml容量瓶。
再向沉淀中加入2ml4.6mol/l高氯酸，搅拌提取15min后加水至10ml，混匀后离心10min，收集上清于容量瓶。
然后用水洗沉淀1～2次，离心，合并离心液于50ml容量瓶用蒸馏水定容供测淀粉用。
3.测定取待测样品提取液 1.0ml于试管中，再加蒽酮试剂5ml，快速摇匀，然后在沸水浴中煮10min，取出冷却，在620nm 波长下，用空白调零测定光密度，从标准曲线查出糖含量（μg）。
四、结果计算式中。
c——从标准曲线查得葡萄糖量，μg。
vt——样品提取液总体积，ml。
v1——显色时取样品液量，ml。
植物生物学果实实验报告
一、实验目的1. 了解果实的基本结构和功能。
2. 观察不同植物果实的形态和结构特点。
3. 探讨果实成熟过程中的生理变化。
二、实验材料1. 水果：苹果、梨、香蕉、草莓、葡萄等。
2. 工具：解剖刀、放大镜、显微镜、载玻片、盖玻片、酒精、碘液等。
三、实验方法1. 果实结构观察- 分别选取苹果、梨、香蕉、草莓、葡萄等水果，观察其外观形态、颜色、大小等。
- 使用解剖刀将果实切开，观察其内部结构，包括果皮、果肉、种子等。
2. 果实成熟度观察- 分别选取不同成熟度的苹果、梨、香蕉、草莓、葡萄等水果，观察其外观和内部结构的变化。
- 使用碘液检测果实中淀粉的含量，观察成熟过程中淀粉的降解情况。
3. 果实生理变化观察- 分别选取不同品种的苹果、梨、香蕉、草莓、葡萄等水果，观察其成熟过程中呼吸速率、乙烯释放量等生理指标的变化。
四、实验步骤1. 果实结构观察- 将水果洗净，观察其外观形态、颜色、大小等。
- 使用解剖刀将果实切开，观察其内部结构，包括果皮、果肉、种子等。
- 使用放大镜和显微镜观察果实内部结构的细微变化。
2. 果实成熟度观察- 分别选取不同成熟度的水果，观察其外观和内部结构的变化。
- 使用碘液检测果实中淀粉的含量，观察成熟过程中淀粉的降解情况。
- 记录不同成熟度水果的碘液反应结果。
3. 果实生理变化观察- 分别选取不同品种的水果，观察其成熟过程中呼吸速率、乙烯释放量等生理指标的变化。
- 使用呼吸速率测定仪和乙烯分析仪进行检测。
- 记录不同品种水果的生理指标变化。
五、实验结果1. 果实结构观察- 苹果：果皮光滑，果肉白色，含有多汁的细胞，种子位于果心。
- 梨：果皮光滑，果肉白色，含有多汁的细胞，种子位于果心。
- 香蕉：果皮有条纹，果肉黄色，含有多汁的细胞，种子位于果心。
- 草莓：果皮有突起，果肉红色，含有多汁的细胞，种子位于果心。
- 葡萄：果皮有棱，果肉紫色，含有多汁的细胞，种子位于果心。
2. 果实成熟度观察- 随着果实成熟度的提高，果实颜色逐渐变深，果肉变软，淀粉含量逐渐降低。
碘比色法测定淀粉含量
碘比色法测定淀粉含量
碘比色法是一种常用的测定淀粉含量的方法。
淀粉与碘形成复合物时，会呈现深蓝色的颜色，根据颜色的深浅可以推测淀粉的含量。
测定步骤如下：
1. 准备样品：将待测的样品（如食物、植物组织等）制成适当的浓度，使其能够被较为准确地测定。
2. 提取淀粉：采用热酸提取法或酶解法将样品中的淀粉提取出来。
其中热酸提取法是将样品加入盐酸或硫酸中，加热至淀粉糊状后进行提取。
酶解法则是使用淀粉酶将样品中的淀粉分解为葡萄糖后进行提取。
3. 碘溶液制备：制备适量的碘溶液，一般是用碘酸钾和碘化钾制备。
4. 反应：将提取的淀粉溶液与碘溶液混合，等反应一段时间后，观察溶液的颜色变化。
颜色越深，说明淀粉含量越高。
5. 分光光度计测定：使用分光光度计，将混合溶液置于光管中，通过比较混合溶液的吸光度与已知浓度淀粉溶液的吸光度，可以得出待测样品中淀粉的含量。
需要注意的是，测定淀粉含量时需保证操作准确，并根据测定
的样品选择适当的提取方法。
此外，测定时要排除其他物质对测定结果的干扰，如物质的颜色、光散射等。
大米淀粉含量范围
大米淀粉含量范围大米淀粉含量范围是指大米中所含淀粉的含量的范围。
淀粉是植物的主要储能物质，也是人类主要的能量来源之一。
而大米作为全球主要的粮食作物之一，其淀粉含量对于人们的日常饮食和健康非常重要。
本文将从大米淀粉的定义、作用、测定方法以及影响因素等方面进行探讨。
一、大米淀粉的定义大米淀粉是指大米中所含的淀粉物质，是一种多聚糖，由α-葡聚糖分子组成。
淀粉分子由两种不同的多聚糖组成，即支链淀粉和直链淀粉。
支链淀粉是由α-1,6-葡聚糖键连接的分支结构，而直链淀粉则是由α-1,4-葡聚糖键连接的线性结构。
二、大米淀粉的作用1. 能量供应：淀粉是人体主要的能量来源之一。
人体消化吸收淀粉后，会分解为葡萄糖，供给身体各个组织和器官使用。
2. 营养均衡：淀粉还是人体膳食纤维的重要来源之一，能够促进肠道蠕动，帮助消化和排便，维持肠道健康。
3. 调节血糖：由于淀粉分解为葡萄糖的速度较慢，能够持续稳定地提供血糖，有助于控制血糖水平的波动。
三、大米淀粉的测定方法常用的大米淀粉测定方法主要有以下几种：1. 碘液染色法：利用碘液与淀粉形成蓝色或紫色复合物的反应，通过测定复合物的吸光度或颜色深浅来定量淀粉的含量。
2. 酶解法：将大米样品中的淀粉通过酶的作用分解为葡萄糖，再利用化学方法对葡萄糖进行测定，从而间接测定淀粉的含量。
3. 高效液相色谱法：利用高效液相色谱仪对大米样品中的淀粉进行分离和定量，具有准确性高、重复性好的特点。
四、影响大米淀粉含量的因素1. 大米品种：不同品种的大米淀粉含量存在差异，一般来说，粳稻的淀粉含量较高，而籼稻的淀粉含量较低。
2. 大米加工方式：大米经过糙米加工后，外层的麸皮和胚乳部分被去除，淀粉含量相对较高。
3. 环境因素：种植地区的气候、土壤和水分等环境因素也会对大米淀粉的含量产生一定影响。
总结起来，大米淀粉含量范围是指大米中所含淀粉的含量的范围。
淀粉作为大米的重要成分之一，对人体健康有着重要的作用。
淀粉的鉴定目的
淀粉的鉴定目的淀粉是一种常见的碳水化合物，广泛存在于植物中。
它在食品工业、医药领域以及科学研究中有着重要的应用价值。
淀粉的鉴定是为了确认所研究的样品中是否存在淀粉，并确定其含量。
下面将详细介绍淀粉的鉴定方法和意义。
一、外观特征通过观察样品的外观特征可以初步判断其是否含有淀粉。
淀粉呈现白色或微黄色的颗粒状或粉末状，质地较为均匀。
在显微镜下观察，淀粉颗粒呈现不同的形态，如圆球形、椭圆形、多角形等。
这些特征可以用来初步判断样品中是否含有淀粉。
二、碘滴定法碘滴定法是常用的淀粉鉴定方法之一。
淀粉与碘反应会形成紫蓝色复合物，根据其颜色的深浅可以判断淀粉的含量。
具体操作方法为：将样品与适量的水混合搅拌，加入几滴碘溶液，观察溶液颜色的变化。
如果溶液变为紫蓝色，说明样品中含有淀粉；如果颜色变化不明显或没有变化，则说明样品中不含淀粉。
三、糖酶法糖酶法是一种利用酶的作用将淀粉分解为糖的方法。
通过测定淀粉分解产生的糖的含量，可以间接判断样品中是否含有淀粉。
常用的糖酶法包括淀粉酶法和淀粉酶-葡萄糖氧化酶法。
淀粉酶法是将样品与适量的淀粉酶反应，然后使用比色法或滴定法测定产生的糖的含量。
淀粉酶-葡萄糖氧化酶法在淀粉酶法的基础上加入了葡萄糖氧化酶，可以更准确地测定样品中的糖含量。
四、红外光谱法红外光谱法是一种无损的淀粉鉴定方法，通过测定样品在红外光谱范围内的吸收谱线，可以判断样品中是否含有淀粉。
淀粉在红外光谱图上有明显的特征峰，可以根据这些特征峰的出现来判断样品中是否含有淀粉。
淀粉的鉴定目的是为了确认样品中是否含有淀粉，并确定其含量。
淀粉作为一种重要的生物大分子，具有多种生物学功能和应用价值。
在食品工业中，淀粉是常见的食品添加剂，用于增加食品的粘稠度、改善食品的质地和口感。
在医药领域，淀粉被用作药丸、片剂等药物的主要成分，起到增加药物稳定性和容易服用的作用。
此外，淀粉还被用于纺织、造纸、胶粘剂等工业领域。
淀粉的鉴定是确定样品中是否含有淀粉的重要方法。
总糖和还原糖的测定
总糖和还原糖的测定──3,5－二硝基水杨酸法目的要求：掌握还原糖和总糖的测定原理，学习用比色法测定还原糖的方法。
实验原理:在NaOH和丙三醇存在下，3,5－二硝基水杨酸（DNS）与还原糖共热后被还原生成氨基化合物。
在过量的NaOH碱性溶液中此化合物呈桔红色，在540nm波长处有最大吸收，在一定的浓度范围内，还原糖的量与光吸收值呈线性关系，利用比色法可测定样品中的含糖量。
黄色桔红色试剂和器材一、试剂3,5－二硝基水杨酸（DNS）试剂：称取6.5g DNS溶于少量热蒸馏水中，溶解后移入1000ml容量瓶中，加入2mol/L氢氧化钠溶液325ml，再加入45g丙三醇，摇匀，冷却后定容至1000ml。
葡萄糖标准溶液：准确称取干燥恒重的葡萄糖200mg，加少量蒸馏水溶解后，以蒸馏水定容至100ml，即含葡萄糖为2.0mg/ml。
6mol/L HCl：取250ml浓HCl（35%～38%）用蒸馏水稀释到500ml。
碘－碘化钾溶液：称取5g碘，10g碘化钾溶于100ml蒸馏水中。
6N NaOH：称取120g NaOH溶于500ml蒸馏水中。
0.1% 酚酞指示剂。
二、材料藕粉，小麦淀粉或玉米淀粉。
三、器材723PC、S22型分光光度计，天平，水浴锅，电炉，试管若干等。
一、葡萄糖标准曲线制作取5支15mm×180mm试管，按下表加入2.0mg/ml葡萄糖标准液和蒸馏水。
管号葡萄糖标准液蒸馏水葡萄糖含量OD540 /ml /ml /mg0 1 00.210.80.42 0.4 0.6 0.83 0.6 0.4 1.24 0.8 0.2 1.65 1 0 2操作方法在上述试管中分别加入DNS试剂2.0ml，于沸水浴中加热2min进行显色，取出后用流动水迅速冷却，各加入蒸馏水9.0ml，摇匀，在540nm波长处测定光吸收值。
以1.0ml蒸馏水代替葡萄糖标准液按同样显色操作为空白调零点。
以葡萄糖含量（mg）为横坐标，光吸收值为纵坐标，绘制标准曲线。
植物组织中可溶性糖、淀粉、氨基酸及蛋白质的系列测定
实验四植物组织中可溶性糖、淀粉、氨基酸及蛋白质的系列测定一、目的从一份植物样品中系统分离和测定可溶性糖、淀粉、氨基酸及蛋白质等多种成分，不仅对研究植物体内碳、氮代谢，了解植物的生长发育状况有重要意义，亦可以作为鉴定其品质的重要指标，而且也有助于训练基本操作技能。
二、原理（一）分离提取原理在80-85%的乙醇中，植物组织中的还原糖、蔗糖以及游离氨基酸和叶绿素等溶解，而淀粉及蛋白质沉淀，再用9.2 mol/L高氯酸溶解淀粉（蛋白质沉淀），最后用0.1 mol/L氢氧化钠溶解蛋白质，然后选用适当的方法测定各个提取液中相应物质的含量。
（二）测定原理1.蒽酮比色法——可溶性糖含量测定碳水化合物及其衍生物经浓硫酸处理，生成糠醛，再与蒽酮脱水缩合而生成蓝绿色化合物，在一定范围内其颜色深浅与碳水化合物含量成线性关系。
蒽酮反应的颜色深浅，随温度条件和加热时间而变化，葡萄糖显色高峰在100℃时，加热10 min后出现，而核糖在相同温度下，加热3 min后出现。
此法灵敏度高，糖含量达30 μg即可测定。
2.茚三酮比色法——氨基酸含量测定氨基酸的游离氨基与水合茚三酮作用后，产生二酮茚胺的取代盐等蓝紫色化合物，在570 nm下有最大光吸收。
在一定范围内，其颜色深浅与氨基酸的含量呈正比。
3.考马斯亮蓝G-250结合法——蛋白质含量测定考马斯亮蓝在游离状态时呈红色，当与蛋白质结合后变为蓝色，后者最大光吸收在595 nm，在一定范围内（0-1000 μg /mL），其颜色深浅与蛋白质的含量呈正比。
此法快速灵敏，反应在2 min内即达到平衡，室温1h内颜色稳定，而且干扰物也少。
三、实验用品（一）实验材料：植物样品。
（二）器皿：1. 25 mL刻度试管⨯8 ，15 mL试管⨯20；2. 10 mL离心管⨯2；3. 容量瓶：50 mL⨯1 ，25 mL⨯1；4. 移液管：5 mL⨯2，2 mL⨯4，1 mL⨯2，0.1 mL⨯2；5. 恒温水浴锅；6. 离心机；7. 电子天平；8. 分光光度计。
马铃薯中淀粉含量测定
马铃薯中淀粉含量测定（酸水解法）一、实验目的1、了解植物组织中淀粉的提取步骤。
2、掌握植物组织中淀粉含量测定的原理和酸水解法测定淀粉的方法。
3、熟悉722分光光度计的主要用途、工作原理及使用流程。
4、巩固容量瓶、移液管等仪器的使用。
二、实验原理1、淀粉提取，也称为浆渣分离或分离，是淀粉加工中的关键环节，直接影响到淀粉提取率和淀粉质量。
粉碎后的物料是细小的纤维，体积大于淀粉颗粒，膨胀系数也大于淀粉颗粒，比重又轻于淀粉颗粒, 将粉碎后的物料，以水为介质，使淀粉和纤维分离开来。
2、淀粉是食品中主要的组成部分，也是植物种子中重要的贮藏性多糖。
它广泛存在于植物的根、茎、叶、种子等组织中，是人类食物的重要组成部分，也是供给人体热能的主要来源。
淀粉跟稀硫酸在加热的条件下能够完全水解成葡萄糖、麦芽糖等还原糖。
还原糖的测定是糖定量测定的基本方法。
还原糖在NaOH 和丙三醇存在条件下会被氧化成糖酸及其他产物，3,5-二硝基水杨酸则被还原成桔红色的3-氨基-5-硝基水杨酸。
NO 2OH HOOCNO 2+还原糖NH 2OH HOOCNO 2黄色桔红色该物质在540 nm 波长处有最大吸收，在一定范围内，还原糖的量与桔红色物质的吸收值成正比关系，利用比色法可测定样品中的含糖量。
由于淀粉完全水解成还原糖的量是成正比的，所以，也与桔红色物质的深浅成正比关系。
三、实验仪器与材料、试剂1、仪器3、试剂四、实验内容1、溶液的配制（1）、6 mol/L NaOH 溶液：准确称取12 g NaOH固体，溶于15 mL蒸馏水中，并倒入50 mL 容量瓶中，用蒸馏水分几次清洗烧杯并将清洗的溶液倒入容量瓶中，用蒸馏水定容至刻度线。
（2）、3,5-二硝基水杨酸（DNS）试剂：准确称取0.63 g DNS，2.1 gNaOH固体充分溶解于50 mL蒸馏水，再加入18.2 g酒石酸钾钠，0.5 g苯酚，0.5 g偏重亚硫酸钠，搅拌溶解，冷却后加蒸馏水定容至100 mL，贮于棕色瓶中备用。
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植物组织中淀粉含量的测定植物组织中淀粉含量的测定
植物是地球上最重要的生命体之一，它们是光能的主要捕获者并将其转化为化学能。
在光合作用中，植物通过将二氧化碳和水转化为葡萄糖等有机分子，来实现自身的生长和维持。
植物在进行光合作用时，会将多余的葡萄糖转化为淀粉，以储存起来。
因此，淀粉在植物中有着重要的生理功能，它不仅可以供给植物在营养不足情况下的能量需求，还可以调控植物的产物分配和生长发育等方面的生理过程。
因此，淀粉含量的测定对于研究植物的生长、代谢调节、环境适应等方面具有非常重要的意义。
1. 淀粉含量测定的原理
淀粉是由葡萄糖分子组成的多聚体，可以通过碘化反应测定其含量。
碘化反应是一种特殊的化学反应，使用碘化钾与淀粉反应后形成蓝黑色的化合物，其反应机理如下：碘分子进入淀粉的分子链中，与淀粉分子链中的亚硫酸盐基团结合形成碘化物，形成了生物质和无定型复合物，从而导致总合成化合物的颜色变化。
因此，这种方法可以通过测定淀粉含量所导致的颜色变化来进行测定。
此外，由于淀粉含量测定通常需要提取和清洁样品，所以在测定过程中也可以根据需要进行其他生物化学分析。
2. 淀粉含量测定方法
2.1. 淀粉含量测定前的样品处理
首先要对植物组织进行样品处理，将挖取的组织粉碎成细粉，然后通过冷醇法沉淀并清洗样品。
然后，将样品在60℃的烘箱中干燥至恒定重。
其中，冷醇法即使用80%酒精进行沉淀，可以将其他碳水化合物等杂质去除。
2.2. 碘化反应法测定淀粉含量
将干燥的样品称取1克，加入10毫升水，并加入1毫升1%碘化钾溶液，并震荡均匀。
然后加入50毫升的蒸馏水，继续震荡均匀，静置5分钟。
最后，使用吸光光度计在620nm波长下读取吸光度，并根据标准曲线计算出淀粉含量。
需要注意的是，标准曲线通常是使用淀粉标准品制作，强烈建议使用生物化学检测试剂盒进行测定，以保证结果的准确性和可靠性。
2.3. 比色法测定淀粉含量
将样品粉末称取1克，加入10毫升水，并加入1毫升1%碘化钾溶液，并震荡均匀。
然后加入5毫升0.2N氢氧化钾，并加入50毫升蒸馏水，继续震荡均匀，静置5分钟后，加入10毫升1%硝酸，继续在沸水中加热10分钟。
然后用蒸馏水稀释至体积为100毫升，使用比色计在630nm波长下读取吸光度，并根据标准曲线计算出淀粉含量。
3. 结论
植物组织中淀粉含量的测定是研究植物生命活动和代谢过程的重要方法之一。
由于植物淀粉的生物合成和代谢调节是非常复杂的过程，因此淀粉含量的测定方法也需要非常准确和精细。
目前，比较常用的测定方法有碘化反应法和比色法，通过
这些方法可以得到可靠和准确的结果。
对于使用者而言，在进行淀粉含量测定时，应注意样品处理和实验操作的规范，以保证得到正确的实验结果。