研究蛋白质与蛋白质相互作用方法总结-实验步骤
蛋白质-蛋白质相互作用,常用的原理及操作
蛋白质-蛋白质相互作用,常用的原理及操作1 蛋白质-蛋白质相互作用的重要性蛋白质-蛋白质相互作用指的是蛋白质之间的相互作用，是细胞内部调节机制中至关重要的一环。
生物体内的大多数的生物化学反应均由多种蛋白质之间的相互作用协同完成。
因此，了解蛋白质-蛋白质相互作用对于揭示生物体内的调节机制和疾病治疗具有重要的意义。
2 蛋白质-蛋白质相互作用的原理蛋白质-蛋白质相互作用有以下几种原理：1.互补性原理：蛋白质相互作用是通过其氨基酸残基间的相互作用实现的，只有当它们的结构互为补充时，分子间才能存在一定的吸引力。
2.疏水作用原理：即亲水性的氨基酸残基排列在分子的一侧，而疏水性的氨基酸残基则尽可能地向分子的另一侧聚集，这些疏水性残基之间形成的水合层会导致疏水性残基之间相互吸引。
3.电荷作用原理：氨基酸残基的电性质对蛋白质的相互作用也有很大的影响，具有相反电荷的残基之间通常会发生静电吸引，而具有相同电荷的残基之间则发生静电排斥。
4.氢键作用原理：分子内部的氢键作用可以稳定分子结构，而分子间的氢键作用可以影响到分子之间的相互作用。
3 常见的研究方法研究蛋白质-蛋白质相互作用的方法有很多种，以下列出一些常用的方法：1.免疫共沉淀法：免疫共沉淀法是一种用于检测蛋白质复合物的好方法，该技术利用抗体与其特异性蛋白质结合，然后沉淀下来，在沉淀的过程中，能够被共沉淀下来的蛋白质就是与该蛋白质复合成分的蛋白质。
2.双杂交法：双杂交法通过蛋白质生物学里的两性体蛋白质（Y2H）或细胞外膜蛋白两性体蛋白质（M2H）来检测蛋白质相互作用。
3.表面等离子体共振（SPR）技术：SPR技术是目前应用最广泛的表征生物分子间相互作用的技术，它结合了光学和生物学等多种科学的优点。
4.荧光共振能量转移（FRET）技术：FRET技术是一种检测蛋白质相互作用的不错方法，其原理是可以监测到两个不同的荧光染料之间的能量转移过程，从而确定蛋白质复合物的形成。
蛋白质相互作用的研究
蛋白质相互作用的研究蛋白质是大分子生物化学中的重要组成部分。
它们主要由氨基酸组成，并且在生物体系中发挥着重要的功能。
在细胞内部，蛋白质相互作用是维持细胞生命周期稳定性的关键因素。
因此，蛋白质相互作用的研究，在生物化学、生物物理学和分子生物学等多个领域中都是一个重要的研究方向。
本文将从蛋白质相互作用的定义开始，逐步探讨蛋白质相互作用的分类、特点以及相关的实验技术和研究方法，以期为读者提供系统而又全面的知识储备。
一、蛋白质相互作用的定义蛋白质相互作用是指两个或多个蛋白质之间在生物体系中的结合和相互作用过程。
这种相互作用可以使两个蛋白质之间形成复合体，从而发挥一定的生物功能。
相互作用的结果可能是稳定性增加、功能的调节或协同作用，也可能是抵消性和竞争性作用等不同结果。
二、蛋白质相互作用的分类按参与蛋白质数量，蛋白质相互作用可分为二元、三元、多元相互作用。
其中二元相互作用是指两个蛋白质共同形成复合体，三元相互作用是指三个蛋白质之间形成复合体，而多元相互作用则指多个蛋白质一起结合形成复合体的过程。
按作用原理和机制的不同，蛋白质相互作用可分为静态相互作用和动态相互作用。
静态相互作用的结构相对稳定，很难被破坏或改变，并且其功能一般比较固定。
而动态相互作用则是动态的，随着生理条件的不同呈现出多样的结构和功能特征。
例如，蛋白酶的底物结合就属于动态相互作用的范畴。
三、蛋白质相互作用的特点蛋白质相互作用具有多种特征，最为突出的是其特殊的结构、不确定性和多样性。
其一，蛋白质相互作用形式多样，可以是氢键、离子键、范德华力、疏水作用等多种作用方式。
例如，氢键是通过氢原子与质子和δ-带有部位的非氢原子之间的相互作用而形成的共价化学键，是一种常见的相互作用方式。
其二，蛋白质相互作用具有不确定性。
与单独的蛋白质分子相比，蛋白质相互作用更加难以准确预测。
因为它不仅取决于相互作用双方的结构和性质，还取决于周围环境的作用和影响。
波动的温度、离子浓度和pH值等环境因素都会对蛋白质相互作用的过程和结构产生较大影响。
体外蛋白结合实验报告
一、实验背景蛋白质与蛋白质之间的相互作用在生物体内发挥着至关重要的作用，包括信号传导、基因表达调控、细胞骨架组织等。
体外蛋白结合实验是研究蛋白质相互作用的重要手段之一。
本实验旨在研究两种蛋白质A和B之间的相互作用，并通过一系列实验验证其结合能力。
二、实验目的1. 验证蛋白质A和B在体外是否具有结合能力。
2. 确定蛋白质A和B结合的最适条件。
3. 分析影响蛋白质A和B结合的因素。
三、实验材料1. 蛋白质A和B：分别从细胞培养液中纯化获得。
2. 蛋白质标记物：荧光素标记的蛋白质A和B。
3. 试剂：缓冲液、透析袋、SDS-PAGE凝胶、电泳缓冲液、Western blot试剂等。
4. 仪器：蛋白纯化系统、紫外分光光度计、电泳仪、Western blot系统等。
四、实验方法1. 蛋白质纯化：分别从细胞培养液中纯化蛋白质A和B，并鉴定其纯度。
2. 标记蛋白质：将蛋白质A和B分别用荧光素进行标记，获得荧光标记的蛋白质A（F-A）和荧光标记的蛋白质B（F-B）。
3. 蛋白质结合实验：a. 将F-A和F-B按照一定比例混合，在不同温度和pH条件下进行反应。
b. 反应结束后，通过SDS-PAGE和Western blot检测F-A和F-B的结合情况。
4. 影响结合因素分析：a. 研究温度、pH、离子强度等因素对蛋白质A和B结合的影响。
b. 通过改变反应体系中蛋白质A和B的浓度，研究其结合能力的变化。
五、实验结果1. 蛋白质纯化：蛋白质A和B的纯度均达到95%以上。
2. 蛋白质标记：荧光标记的蛋白质A和B的标记效率分别为85%和90%。
3. 蛋白质结合实验：a. 在一定范围内，蛋白质A和B在体外可以发生结合。
b. 在不同温度和pH条件下，蛋白质A和B的结合能力有所差异。
4. 影响结合因素分析：a. 温度对蛋白质A和B的结合有一定影响，最适温度为37℃。
b. pH对蛋白质A和B的结合也有一定影响，最适pH为7.4。
c. 离子强度对蛋白质A和B的结合有显著影响，高离子强度有利于蛋白质A和B的结合。
蛋白质的相互作用研究方法
Sergey A. Lukyanov 在珊瑚中发现了类似GFP的蛋白。 他还发现了红色荧光蛋白。
Roger Tsien
对GFP的机理作
出了贡献。制造
了很多GFP突变
体。
2008年诺贝尔化学奖
GFP主要应用:
• 对活细胞中的蛋白质进行准确定位及动态观察 可实时原位跟踪特定蛋白在细胞生长、分裂、分化过 程中或外界刺激因子的作用下的时空表达, 如某种转录因 子的核转位、蛋白激酶C的膜转位等。 GFP基因与分泌蛋白基因连接后转染细胞, 可动态观察 该分泌蛋白分泌到细胞外的过程
3.注意事项 1）细胞裂解 采用温和的裂解条件，不能破坏细胞内存 在的蛋白质－蛋白质相互作用，多采用非离子 变性剂（NP40或Triton X-100)。每种细胞的裂 解条件是不一样的，通过经验确定。 不能用高浓度的变性剂（0.2％SDS)，细胞裂 解液中要加各种蛋白酶酶抑制剂，如商品化的 cocktailer。 2）使用明确的抗体，有的抗体不适宜做免疫共 沉淀。 3) 对照实验的设计。
Osamu Shimomura
Osamu Shimomura in the lab in the basement of his home. He is holding a sample of “real” GFP isolated from Aequorea victorea, not produced by bacteria. In order to do his research Shimomura estimates that he collected over a million Aequorea specimens。 （One Aequorea weigh about 50g）
2 方法： 1） GST融合蛋白先与下列蛋白溶液之一孵育（a, 单一明 确的重组蛋白；b，细胞裂解蛋白混合液；c, 体外翻译 cDNA表达得到的未知蛋白）
检测蛋白质与蛋白质之间相互作用的实验技术
检测蛋白质与蛋白质之间相互作用的实验技术蛋白质之间的相互作用对于生物体的正常功能和生理进程至关重要。
因此，了解和研究蛋白质与蛋白质之间的相互作用对于疾病研究和新药发现具有重要意义。
本文将介绍常见的用于检测蛋白质与蛋白质之间相互作用的实验技术。
1. 免疫沉淀（Immunoprecipitation，IP）免疫沉淀是一种常用的方法，用于鉴定和分离与特定抗原相互作用的蛋白质。
该方法利用特异性抗体结合特定蛋白质并沉淀出来，然后通过电泳、质谱或免疫印迹等分析方法进行检测。
这种方法不仅可以用于识别特定的蛋白质-蛋白质相互作用，还可以捕获整个蛋白质复合物。
2. 酵母双杂交（Yeast Two-Hybrid，Y2H）酵母双杂交是一种广泛应用于蛋白质-蛋白质相互作用的实验技术。
该方法利用了转录因子的两个功能域的相互作用来检测蛋白质-蛋白质相互作用。
这种方法包括构建两个融合蛋白质：一个与DNA结合域融合的结构域和一个与激活域融合的结构域。
当两个融合蛋白质相互结合时，它们能够重新组装转录因子并激活报告基因的表达。
3. 质谱（Mass Spectrometry，MS）质谱是一种常用于分析蛋白质-蛋白质相互作用的技术。
图谱可以通过分析蛋白质混合物的质量和荷质比来确定蛋白质相互作用的可能性。
质谱技术包括多肽和蛋白质质量指纹图谱（Peptide and protein mass fingerprinting），包括基于基质辅助激光脱附电离（Matrix-assisted laser desorption/ionization，MALDI）和电喷雾（Electrospray Ionization，ESI）的方法。
4. X射线晶体学（X-ray crystallography）X射线晶体学是一种用于解析蛋白质-蛋白质相互作用的高分辨率结构的技术。
该方法涉及到将蛋白质复合物结晶成晶体，然后通过测量和分析这些晶体所产生的X射线散射模式来确定蛋白质的结构及相互作用。
研究蛋白质与蛋白质相互作用方法总结实验步骤
研究蛋白质与蛋白质相互作用方法总结实验步骤蛋白质与蛋白质相互作用是生物学领域中的一个重要研究方向，可以揭示生命活动的基本机理以及药物设计和治疗疾病的潜在靶点。
本文将总结蛋白质与蛋白质相互作用的研究方法以及实验步骤。
一、蛋白质与蛋白质相互作用研究方法总结：1.蛋白质-蛋白质亲和层析法：该方法通过利用蛋白质与目标蛋白质之间的亲和力，将目标蛋白质与其他非特异结合的蛋白质分离，可用于筛选靶向蛋白质的抑制剂或开发特定结合位点。
2.酵母双杂交方法：该方法是通过融合目标蛋白质与一组已知蛋白质相互作用的底物，通过检测底物报告基因（比如启动子）的表达来确定两个蛋白质相互作用的情况。
3.免疫共沉淀法：该方法通过利用抗体的特异性，将目标蛋白质和与其相互作用的蛋白质一同从细胞裂解液中沉淀下来，以证明它们之间存在相互作用关系。
4.光学双光子显微镜或荧光共振能量转移法：这些方法可以利用荧光染料标记的蛋白质，通过观察它们之间的相互作用情况来研究蛋白质与蛋白质之间的相互作用。
5.表面等离子体共振（SPR）：该方法通过在金属表面固定一个蛋白质，然后观察黄金膜表面等离子体共振信号的变化来研究蛋白质与蛋白质之间的相互作用过程。
6.核磁共振（NMR）：该方法利用蛋白质中的^1H、^13C和^15N原子的自旋，通过一系列的波形解析来确定蛋白质与蛋白质之间的相互作用，可以提供高分辨率的结构和动力学信息。
7.体外重组蛋白质表达和结合实验：利用大肠杆菌或霞赤红热单核细胞感染表达载体后表达目标蛋白质，以及通过重组技术制备的其他蛋白质，通过混合这些重组蛋白质来研究它们之间的相互作用。
二、蛋白质与蛋白质相互作用实验步骤：1.实验前准备：根据研究目的选择适当的实验方法和方法，准备相应的试剂和材料。
2.原料处理：获得目标蛋白质样品后，进行必要的纯化或浓缩处理，以去除其他污染物，并保持蛋白质的活性。
3.实验设计：根据研究目的设计实验方案，比如确定实验条件、控制实验和重复实验。
蛋白互作实验方法
蛋白互作实验方法蛋白互作是指蛋白质之间通过物理或化学相互作用形成复合物的过程。
了解蛋白互作的机制对于揭示细胞内不同蛋白之间的功能关系和信号传递网络具有重要意义。
本文将介绍几种常用的蛋白互作实验方法。
1. 免疫共沉淀法（Co-Immunoprecipitation, Co-IP）免疫共沉淀法是一种常用的检测蛋白互作的方法。
其基本步骤为首先选择目标蛋白A，通过特异性抗体结合于固相支持上（如Protein A/G琼脂糖），形成免疫寡聚体；然后用该寡聚体与细胞提取物混合，使抗体与目标蛋白A结合；接下来通过离心将复合物沉淀下来，洗脱杂质，最后将沉淀复合物进行热解、电泳分离和Western blot进行检测。
如结果显示目标蛋白B出现在沉淀物中，则可以判定蛋白A与蛋白B存在互作关系。
2. 酵母双杂交实验（Yeast Two-Hybrid, Y2H）酵母双杂交实验是一种常用的高通量筛选蛋白互作的方法。
其基本原理是将目标蛋白A与一个转录因子的DNA结合域（DBD）融合，形成A-DNA融合蛋白；同时将潜在互作蛋白B与一个激活因子的激活域（AD）融合，形成B-AD融合蛋白。
当A-DNA与B-AD融合蛋白发生互作后，激活域和DNA结合域相互接触，促使报告基因的表达，从而在选择培养基上形成特定的生长。
通过这种方式，可以大规模筛选蛋白互作。
3. 荧光共定位实验荧光共定位实验是一种直观、快速的检测蛋白互作的方法。
通过融合兴趣蛋白A 与绿色荧光蛋白（GFP）或红色荧光蛋白（mCherry）等荧光标记蛋白，将其表达于细胞中。
如果蛋白A与蛋白B发生互作，并且它们定位于细胞的相同或相邻位置，那么在显微镜下观察到的荧光信号将重叠出现。
通过这种方法，可以直观地观察蛋白互作的情况。
4. 基于亲和柱的互作分析基于亲和柱的互作分析是一种高效的检测蛋白互作的方法。
亲和柱是一种包含特定亲和配体（如金属离子、抗原-抗体、蛋白A/G等）的柱状介质。
首先将一个潜在的互作蛋白A融合到亲和配体上，使其固定在亲和柱上；然后将细胞提取物加载到亲和柱上，使蛋白A能与目标蛋白B结合；接下来通过洗脱步骤将非特异性结合的蛋白去除，最后用适当的方法检测目标蛋白B的存在。
蛋白相互作用Pull-Down实验
蛋⽩相互作⽤Pull-Down实验蛋⽩相互作⽤Pull-Down实验蛋⽩相互作⽤Pull-Down实验实验原理：Pull-Down技术是通过蛋⽩相互作⽤来研究细胞通路的有⼒⼯具。
是确定两种或更多蛋⽩之间相互作⽤的体外⽅法。
Pull-Down实验可⽤来检测已知的蛋⽩相互作⽤条件，并且可⽤来筛选未知的蛋⽩相互作⽤。
⽤作诱饵的蛋⽩是重组蛋⽩，会含有⼀个⽤于纯化的亲和标签。
这个融合标签就是⽤于Pull-Down实验的基础。
最常见的标签为⾕胱⽢肽S-转移酶（GST）和多组氨酸（6×His）。
其分别使⽤固相化的⾕胱⽢肽和固相化的⾦属螯合物亲和配体（如Ni2+和Co2+）。
重复洗三次。
加⼊50ul 20mmol/L的还原型⾕胱⽢肽到球珠中，洗脱GST融合蛋⽩及任何与其结合的蛋⽩质。
在离⼼机上最⼤速度离⼼2min。
将洗脱蛋⽩质与等体积的2×SDS-PAGE上样buffer混合。
3、检测相互作⽤蛋⽩质将样品煮沸4min，进⾏SDS-PAGE凝胶电泳分析。
⽅法⼆：1、5ug⽬的GST融合探针蛋⽩和GST蛋⽩分别和⾕胱⽢肽琼脂糖凝胶球珠在4℃孵育结合30min。
2、结合GST融合探针蛋⽩的⾕胱⽢肽琼脂糖凝胶球珠与100ul细胞裂解液结合在4℃作⽤4h。
3、3000rpm在4℃离⼼5min，除去上清。
4、⽤洗涤缓冲液重悬⾕胱⽢肽琼脂糖凝胶球珠，3000rpm在4℃离⼼5min，除去上清，重复5次。
5、取⾕胱⽢肽琼脂糖凝胶球珠进⾏SDS-PAGE电泳分析。
⽅法三：实验试剂：PBS（140mM NaCl、2.7mM KCl、10mM Na2HPO4、1.8mM KH2PO4）Elution Buffer: 50mM Tris-Cl(pH8.0)、10mM还原型⾕胱⽢肽0.154g溶解到50ml 50mM Tris-Cl(pH8.0)中配制ElutionBuffer。
1、细胞裂解取1ml细菌培养液离⼼去上清，加200ul细胞裂解液到菌丸，在室温下重悬并轻柔的混匀。
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研究蛋白质与蛋白质相互作用方法总结-实验步骤蛋白质与蛋白质之间相互作用构成了细胞生化反应网络的一个主要组成部分，蛋白-蛋白互作网络与转录调控网络对调控细胞及其信号有重要意义。
把原来spaces空间上的一篇蛋白质与蛋白质间相互作用研究方法转来，算是实验技巧分类目录的首篇。
(另补充2：检测两种蛋白质之间相互作用的实验方法比较)一、酵母双杂交系统酵母双杂交系统是当前广泛用于蛋白质相互作用组学研究的一种重要方法。
其原理是当靶蛋白和诱饵蛋白特异结合后，诱饵蛋白结合于报道基因的启动子，启动报道基因在酵母细胞内的表达，如果检测到报道基因的表达产物，则说明两者之间有相互作用，反之则两者之间没有相互作用。
将这种技术微量化、阵列化后则可用于大规模蛋白质之间相互作用的研究。
在实际工作中，人们根据需要发展了单杂交系统、三杂交系统和反向杂交系统等。
Angermayr等设计了一个SOS蛋白介导的双杂交系统。
可以研究膜蛋白的功能，丰富了酵母双杂交系统的功能。
此外，酵母双杂交系统的作用也已扩展至对蛋白质的鉴定。
二、噬茵体展示技术在编码噬菌体外壳蛋白基因上连接一单克隆抗体的DNA序列，当噬菌体生长时，表面就表达出相应的单抗，再将噬菌体过柱，柱上若含目的蛋白，就会与相应抗体特异性结合，这被称为噬菌体展示技术。
此技术也主要用于研究蛋白质之间的相互作用，不仅有高通量及简便的特点，还具有直接得到基因、高选择性的筛选复杂混合物、在筛选过程中通过适当改变条件可以直接评价相互结合的特异性等优点。
目前，用优化的噬菌体展示技术，已经展示了人和鼠的两种特殊细胞系的cDNA文库，并分离出了人上皮生长因子信号传导途径中的信号分子。
三、等离子共振技术表面等离子共振技术(Surface Plasmon Resonance，SPR)已成为蛋白质相互作用研究中的新手段。
它的原理是利用一种纳米级的薄膜吸附上“诱饵蛋白”，当待测蛋白与诱饵蛋白结合后，薄膜的共振性质会发生改变，通过检测便可知这两种蛋白的结合情况。
SPR技术的优点是不需标记物或染料，反应过程可实时监控。
测定快速且安全，还可用于检测蛋白一核酸及其它生物大分子之间的相互作用。
四、荧光能量转移技术荧光共振能量转移（FRET ）广泛用于研究分子间的距离及其相互作用; 与荧光显微镜结合，可定量获取有关生物活体内蛋白质、脂类、DNA 和RNA 的时空信息。
随着绿色荧光蛋白（GFP）的发展，FRET 荧光显微镜有可能实时测量活体细胞内分子的动态性质。
提出了一种定量测量FRET效率以及供体与受体间距离的简单方法，仅需使用一组滤光片和测量一个比值，利用供体和受体的发射谱消除光谱间的串扰。
该方法简单快速，可实时定量测量FRET 的效率和供体与受体间的距离，尤其适用于基于GFP 的供体受体对。
五、抗体与蛋白质阵列技术蛋白芯片技术的出现给蛋白质组学研究带来新的思路。
蛋白质组学研究中一个主要的内容就是研究在不同生理状态下蛋白水平的量变，微型化，集成化，高通量化的抗体芯片就是一个非常好的研究工具，他也是芯片中发展最快的芯片，而且在技术上已经日益成熟。
这些抗体芯片有的已经在向临床应用上发展，比如肿瘤标志物抗体芯片等，还有很多已经应用再眼就的各个领域里。
六、免疫共沉淀技术免疫共沉淀主要是用来研究蛋白质与蛋白质相互作用的一种技术，其基本原理是，在细胞裂解液中加入抗兴趣蛋白的抗体，孵育后再加入与抗体特异结合的结合于Pansobin珠上的金黄色葡萄球菌蛋白A(SPA)，若细胞中有正与兴趣蛋白结合的目的蛋白，就可以形成这样一种复合物：“目的蛋白—兴趣蛋白—抗兴趣蛋白抗体—SPA\|Pansobin”，因为SPA\|Pansobin比较大，这样复合物在离心时就被分离出来。
经变性聚丙烯酰胺凝胶电泳，复合物四组分又被分开。
然后经Western blotting法，用抗体检测目的蛋白是什么，是否为预测蛋白。
这种方法得到的目的蛋白是在细胞内天然与兴趣蛋白结合的，符合体内实际情况，得到的蛋白可信度高。
但这种方法有两个缺陷：一是两种蛋白质的结合可能不是直接结合，而可能有第三者在中间起桥梁作用；二是必须在实验前预测目的蛋白是什么，以选择最后检测的抗体，所以，若预测不正确，实验就得不到结果，方法本身具有冒险性。
七、pull-down技术蛋白质相互作用的类型有牢固型相互作用和暂时型相互作用两种。
牢固型相互作用以多亚基蛋白复合体常见，最好通过免疫共沉淀（Co-IP）、Pull-down技术或Far-western法研究。
Pull-down 技术用固相化的、已标记的饵蛋白或标签蛋白（生物素-、PolyHis-或GST-），从细胞裂解液中钓出与之相互作用的蛋白。
通过Pull-down技术可以确定已知的蛋白与钓出蛋白或已纯化的相关蛋白间的相互作用关系，从体外传路或翻译体系中检测出蛋白相互作用关系。
检测两种蛋白质之间相互作用的实验方法比较研究蛋白-蛋白相互作用是理解生命活动的基础。
蛋白质—蛋白质互作网络是生物信息调控的主要实现方式，是决定细胞命运的关键因素。
检测蛋白质间相互作用的实验方法有哪些？(补充：研究蛋白质与蛋白质相互作用方法总结1)这些检测方法各有什么优缺点？总结如下。
1. 生化方法●共纯化、共沉淀，在不同基质上进行色谱层析（需要补充）●蛋白质亲和色谱基本原理是将一种蛋白质固定于某种基质上（如Sepharose），当细胞抽提液经过改基质时，可与改固定蛋白相互作用的配体蛋白被吸附，而没有吸附的非目标蛋白则随洗脱液流出。
被吸附的蛋白可以通过改变洗脱液或者洗脱条件而回收下来。
GST pull down技术：为了更有效的利用蛋白质亲和色谱，可以将待纯话的蛋白以融合蛋白的形式表达，即将”诱饵“蛋白与一种易于纯化的配体蛋白融合。
例如与GST融合的蛋白再经过GSH 的色谱柱时，就可以通过GST和GSH的相互作用而被吸附。
当载有细胞抽提物经过柱时，就可以得到能够与“诱饵”蛋白相互作用的目标蛋白了。
Epitope-tag技术：表位附加标记技术就是将附加的抗原融合到目的蛋白以检测目的蛋白的表达，同时还可以通过亲和层析法来纯化目的蛋白。
缺点：表位附加标记可能会使融合蛋白不稳定，改变或使融合蛋白功能丧失。
以上两种方法都要共同的缺点：假阳性。
实验所检测到的相互作用可能时由蛋白质所带电荷引起的，并不是生理性的相互作用；蛋白的相互作用可能并不是直接的，可是由第三者作为中介的；有时会检测到两种在细胞中不可能相遇却有极强亲和力的蛋白。
因此实验结果还应经其他方法验证。
●免疫共沉淀免疫共沉淀是以抗体和抗原之间的专一性作用为基础的用于研究蛋白质相互作用的经典方法。
改法的优点是蛋白处于天然状态，蛋白的相互作用可以在天然状态下进行，可以避免认为影响；可以分离得到天然状态下相互作用的蛋白复合体。
缺点：免疫共沉淀同样不能保证沉淀的蛋白复合物时候为直接相互作用的两种蛋白。
另外灵敏度不如亲和色谱高。
●Far-Western 又叫做亲和印记。
将PAGE胶上分离好的凡百样品转移到硝酸纤维膜上，然后检测哪种蛋白能与标记了同位素的诱饵蛋白发生作用，最后显影。
缺点是转膜前需要将蛋白复性。
2. 等离子表面共振技术（Surface plasmon resonance）该技术是将诱饵蛋白结合于葡聚糖表面，葡聚糖层固定于几十纳米厚的技术膜表面。
当有蛋白质混合物经过时，如果有蛋白质同“诱饵”蛋白发生相互作用，那么两者的结合将使金属膜表面的折射绿上升，从而导致共振角度的改变。
而共振角度的改变与该处的蛋白质浓度成线性关系，由此可以检测蛋白质之间的相互作用。
该技术不需要标记物和染料，安全灵敏快速，还可定量分析。
缺点：需要专门的等离子表面共振检测仪器。
3. 遗传学方法使某处发生缺损，检测对其他地方的影响。
●基因外抑制子。
基因外抑制子是通过一个基因的突变来弥补原有基因的突变。
比如相互作用的蛋白A和B，如果A发生了突变使两者不再相互作用，此时B如果再发生弥补性突变就可以使两者的相互作用恢复，那么B就是A的基因外抑制子。
缺点：需要知道基因，要有表型，筛选抑制子比较费时。
●合成致死筛选指两个基因同时发生突变会产生致死效应，而当每个基因单独发生突变时则无致死效应。
用于分析两个具有相同重要蛋白之间的相互作用。
4. 双杂交技术原理基于真核细胞转录因子的结构特殊性，这些转录因子通常需要两个或以上相互独立的结构域组成。
分别使结合域和激活域同诱饵蛋白和猎物蛋白形成融合蛋白，在真核细胞中表达，如果两种蛋白可以发生相互作用，则可使结合域和激活域在空间上充分接近，从而激活报告基因。
缺点：自身有转录功能的蛋白会造成假阳性。
融合蛋白会影响蛋白的真实结构和功能。
不利于核外蛋白研究，会导致假隐性。
5. 荧光共振能量转移技术指两个荧光法色基团在足够近（<100埃）时，它们之间可发生能量转移的现象。
荧光共振能量转移技术可以研究分子内部对某些刺激发生的构象变化，也能研究分子间的相互作用。
它可以在活体中检测，非常灵敏，分辩率高，能够检测大分子的构象变化，能够定性定量的检测相互作用的强度。
缺点此项技术要求发色基团的距离小于100埃。
另外设备昂贵，还需要融合GFP给蛋白标记。
此外还有交联技术（cross－linKing），蛋白质探针技术，噬菌体展示技术（Phage display）以及生物信息学的方法来检测蛋白质之间相互作用Western杂交是将蛋白质电泳、印迹、免疫测定融为一体的特异性蛋白质的检测方法。
其原理是：生物中含有一定量的目的蛋白。
先从生物细胞中提取总蛋白或目的蛋白，将蛋白质样品溶解于含有去污剂和还原剂的溶液中，经SDS-PAGE电泳将蛋白质按分子量大小分离，再把分离的各蛋白质条带原位转移到固相膜（硝酸纤维素膜或尼龙膜）上，接着将膜浸泡在高浓度的蛋白质溶液中温育，以封闭其非特异性位点。
然后加入特异抗性体（一抗），膜上的目的蛋白（抗原）与一抗结合后，再加入能与一抗专一性结合的带标记的二抗（通常一抗用兔来源的抗体时，二抗常用羊抗兔免疫球蛋白抗体），最后通过二抗上带标记化合物（一般为辣根过氧化物酶或碱性磷酸酶）的特异性反应进行检测。
根据检测结果，从而可得知被检生物（植物）细胞内目的蛋白的表达与否、表达量及分子量等情况。
Western杂交方法灵敏度高，通常可从植物总蛋白中检测出50ng的特异性的目的蛋白。