实验动物生物材料采集和制备
安徽高等院校动物学类生物玻片采集方法
安徽高等院校动物学类生物玻片采集方法以安徽高等院校动物学类生物玻片采集方法为标题一、引言生物玻片是动物学类实验室中常用的工具，用于观察和研究动物组织和细胞的结构。
正确的采集方法对于制作高质量的生物玻片至关重要。
本文将介绍一种适用于安徽高等院校动物学类的生物玻片采集方法。
二、材料准备1. 动物组织样本：选择合适的动物组织样本，如昆虫的触角、鳞翅目昆虫的鳞片等。
2. 生理盐水：用于保存和处理组织样本的缓冲液。
3. 玻片：选择适当大小和厚度的玻片作为载玻片。
三、采集步骤1. 准备工作台：在无菌条件下，准备一个干净的工作台。
2. 处理样本：将动物组织样本放入生理盐水中，使其保持湿润。
3. 制备载玻片：取一个干净的玻片，在玻片中央滴上一滴生理盐水。
4. 放置样本：用镊子将处理好的动物组织样本小心地放置在滴有生理盐水的玻片上。
5. 压平样本：用镊子或者玻片压片器轻轻地压平样本，使其均匀分布在玻片上。
6. 加盖玻片：将另一片玻片垂直地放在样本上，并轻轻地按压，使样本均匀分布在两片玻片之间。
7. 定位样本：用手指或镊子轻轻地调整玻片，使样本位于玻片中央。
8. 清理玻片：用纸巾轻轻擦拭玻片周围的液体，使其干燥。
9. 封口：将封口胶带固定在两片玻片的边缘，以防止样本干燥和移动。
四、注意事项1. 采集过程中要保持工作台的清洁和无菌。
2. 选择合适的动物组织样本，根据实验需求进行选择。
3. 在制备载玻片时要确保滴在玻片上的生理盐水量适中。
4. 压片时要轻柔而均匀，以避免样本破裂或移位。
5. 封口胶带要牢固，以防止玻片的松动和样本的脱落。
五、结论通过本文介绍的方法，可以有效地采集动物组织样本并制备生物玻片。
在进行实验或研究时，可以使用这种方法来观察和研究动物的组织结构和细胞形态，为动物学类相关研究提供有力的支持。
希望本文的内容能对安徽高等院校的动物学类学生有所帮助。
喉部微生物实验报告
一、实验目的1. 了解喉部微生物的组成及分布；2. 掌握喉部微生物分离和鉴定的方法；3. 分析喉部微生物与呼吸道感染的关系。
二、实验原理喉部是呼吸道的重要组成部分，是空气进入肺部的必经之路。
喉部微生物的组成和数量与呼吸道感染的发生密切相关。
本实验通过分离和鉴定喉部微生物，了解其组成及分布，为临床诊断和治疗呼吸道感染提供依据。
三、实验材料1. 实验动物：健康成年豚鼠；2. 试剂与仪器：生理盐水、营养琼脂、血琼脂、麦康凯琼脂、革兰氏染色液、生化鉴定试剂、显微镜、培养箱等。
四、实验方法1. 样本采集：取豚鼠喉部组织，用生理盐水清洗，无菌操作下取少量组织液。
2. 培养基制备：将营养琼脂、血琼脂、麦康凯琼脂分别融化，待冷却至50℃左右时，加入适量的无菌生理盐水，混匀。
3. 分离培养：将喉部组织液分别接种于营养琼脂、血琼脂、麦康凯琼脂平板上，置于37℃培养箱中培养24小时。
4. 鉴定：观察菌落特征，对疑似菌落进行革兰氏染色，根据革兰氏染色结果和生化反应进行鉴定。
5. 数据统计：统计各类菌落的数量，分析喉部微生物的组成及分布。
五、实验结果1. 菌落观察：在营养琼脂平板上，观察到白色、黄色、绿色等不同颜色的菌落；在血琼脂平板上，观察到透明、红色、黄色等不同颜色的菌落；在麦康凯琼脂平板上，观察到红色、黄色、绿色等不同颜色的菌落。
2. 革兰氏染色：革兰氏染色结果显示，部分菌落为革兰氏阳性菌，部分菌落为革兰氏阴性菌。
3. 生化鉴定：根据生化反应结果，鉴定出以下微生物：金黄色葡萄球菌、大肠杆菌、肺炎克雷伯菌、铜绿假单胞菌、表皮葡萄球菌等。
4. 数据统计：喉部微生物组成及分布如下：（1）革兰氏阳性菌：金黄色葡萄球菌、表皮葡萄球菌等，占总菌落数的30%；（2）革兰氏阴性菌：大肠杆菌、肺炎克雷伯菌、铜绿假单胞菌等，占总菌落数的70%。
六、实验讨论1. 本实验通过分离和鉴定喉部微生物，发现喉部微生物种类繁多，主要包括革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌。
动物生物学实验实验十昆虫标本采集与制作PPT教案
昆虫等标本定型及放置
昆虫标本制作工具
制作昆虫标本的工具：昆虫 针、三级板、展翅板、标签、 记录本。
昆虫针主要是对虫体和标签 起支持和固定作用。用优质 不锈钢丝制成。针的顶端以 铜丝制成的小针帽，便于手 摇移动标本。昆虫针按照粗 细可分为：00、0、1、2、3、 4、5 号共7 种，其中0号直 径 0.3mm，每增加一号，直 径增加0.1mm，可根据虫体 大小分别选用。
采集昆虫的方法
介绍几种昆虫的采集方法：
(1)昆虫在空中挥动捕虫网，待 昆虫入网后，将网底向上甩， 连同昆虫倒翻到上面来。
(2)昆虫在花上先靠近昆虫，再 惊动它，待它飞起后，猛挥虫 网，在花朵上方将昆虫捕入网 内。这样可以避免将花朵一同 挥进网里。
(3)昆虫在地上靠近昆虫，用盖 压的方法，将昆虫罩入网，再
浸有乙醚的圆形棉花块，
上放一张圆形滤纸，这样
毒瓶就做成了，注意：及
时关闭瓶塞、以免乙醚挥
发致人危害。
采集工具
三角袋：是专门用来装蛾、 蝶等鳞翅目昆虫的，因为这 些昆虫的翅膀上有着五颜六 色的鳞片，在碰撞，摩擦的 过程中极易脱落，以三角袋 装的昆虫则很容易完整保存。 捕到这样的昆虫后，先用注 射器向其腹部注入乙醚，致 其迅速死亡，然后再平放入 三角袋中保存，再将三角袋 整齐平地放到采集包中。
昆虫标本制作步骤
1.还软
从野外采集的昆虫，在制成干燥标本以前，常存放 了一段时间，其虫体已干硬发脆，在制成标本前必 须经过还软，才不致折断破碎。
2 .整姿
昆虫死后足会蜷缩，需要整姿，整姿前先把昆虫利 用三级台刺好，再移到整姿板上，虫针伸入小孔， 使虫体务必保持自然姿势。然后放置干燥，最后放 入昆虫盒中保存。
田野里的昆虫更多了。 稻田里有螟虫、叶蝉、飞 虱。棉田里有棉铃虫，菜 园里有菜青虫，柑桔上有
小鼠脾细胞的制备实验报告
小鼠脾细胞的制备实验报告一、实验目的本实验旨在掌握从小鼠体内分离和制备脾细胞的方法，为后续的免疫学实验和细胞生物学研究提供材料。
二、实验原理脾脏是机体重要的免疫器官，富含各类免疫细胞，如淋巴细胞、巨噬细胞等。
通过机械破碎和细胞筛过滤的方法，可以将脾组织分散成单细胞悬液，再经过离心、洗涤等步骤，去除杂质和红细胞，从而获得较为纯净的脾细胞。
三、实验材料与设备1、实验动物：健康成年小鼠2、主要试剂：无菌 PBS 缓冲液、红细胞裂解液、胎牛血清、培养基3、实验器材：手术器械（剪刀、镊子）、无菌培养皿、细胞筛、离心机、移液器、显微镜等四、实验步骤1、小鼠的处理提前将小鼠禁食不禁水 12 小时。
采用颈椎脱臼法处死小鼠，将其仰卧固定在解剖板上。
用 75%的酒精消毒小鼠腹部皮肤。
2、脾脏的获取在无菌条件下，沿腹部中线剪开皮肤和腹膜，暴露腹腔。
小心地分离出脾脏，避免损伤周围组织和血管。
将脾脏放入盛有少量无菌 PBS 缓冲液的培养皿中。
3、脾细胞的制备用镊子和剪刀将脾脏剪成小块，置于细胞筛上。
用注射器活塞轻轻研磨脾脏组织，使细胞通过筛网进入下方的离心管中。
加入适量 PBS 缓冲液冲洗细胞筛，收集全部细胞悬液。
4、离心和洗涤将细胞悬液离心（1500rpm，5 分钟），弃上清。
加入红细胞裂解液，轻轻吹打混匀，室温静置 5 分钟，以裂解红细胞。
再次离心（1500rpm，5 分钟），弃上清。
用 PBS 缓冲液洗涤细胞 2-3 次，每次离心后弃上清。
5、细胞计数和培养用适量含血清的培养基重悬细胞。
取少量细胞悬液，加入台盼蓝染液，在显微镜下计数活细胞数量。
根据实验需要，将细胞调整至合适的浓度，接种于培养板或培养瓶中，置于培养箱中培养。
五、实验结果1、细胞形态观察在显微镜下观察制备的脾细胞，可见多数细胞呈圆形，大小不一，有细胞核。
细胞形态完整，无明显的破碎和损伤。
2、细胞计数结果经台盼蓝染色后，计数活细胞比例，通常应在 90%以上。
动物生物材料采集准备实验报告思考题
动物生物材料采集准备实验报告思考题
动物生物材料采集准备实验报告思考题
引言：
动物生物材料的采集是生物学研究中不可或缺的一环。
通过采集、处理和保存动物生物材料，可以获得有关动物生理、生态、遗传等方面的重要信息。
本实验报告将探讨动物生物材料采集的准备工作，包括选定目标动物、采集设备的准备和技术操作的培训等。
第一章选定目标动物
1. 为什么需要在采集动物生物材料之前选定目标动物
2. 选择目标动物时需要考虑哪些因素
3. 如何确定采集的动物数量以及采集地点
第二章采集设备的准备
1. 采集动物生物材料需要哪些基本设备
2. 在采集设备选择时，应该考虑哪些因素
3. 是否可以使用可重复使用的设备为什么
第三章技术操作的培训
1. 为什么需要对实验人员进行技术操作的培训
2. 哪些技术操作需要进行培训
3. 培训的内容应该包括哪些方面
第四章采集过程的注意事项
1. 在采集动物生物材料时，应该注意哪些事项
2. 如何确保采集过程对动物的伤害最小化
3. 采集之后，应该如何处理和保存生物材料
结论：
动物生物材料的采集准备工作对于研究的顺利进行至关重要。
通过选定目标动物、准备合适的采集设备以及进行技术操作的培训，可以提高采集效率并确保采集过程的科学性和可靠性。
同时，在采集过程中应该严格遵守伦理规范，尽量减少对动物的伤害，并采取适当的方法进行生物材料的处理和保存。
注：以上章节仅供参考，具体内容可根据实际情况进行调整。
培养草履虫实验报告
一、实验目的1. 掌握草履虫的采集、培养和观察方法。
2. 了解草履虫的生长发育规律及其在生态环境中的作用。
3. 提高实验操作技能，培养观察能力和分析问题的能力。
二、实验原理草履虫是一种单细胞生物，隶属于原生动物门。
它们生活在水中，以细菌、藻类等有机物为食。
草履虫的采集、培养和观察是生物学实验中常见的实验内容，通过实验可以了解草履虫的形态特征、生活习性以及生长发育规律。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：水样、稻草、大米、大麦、鸡蛋黄、牛肉汁、显微镜、载玻片、盖玻片、滴管、微吸管、解剖针、烧杯、培养皿、凹玻璃片、纱布、吸水纸、大头针、琼胶、质量分数为3％的甲基纤维素溶液、碘液、葡萄糖、氯化钠、质量分数为％的洋红溶液、质量分数为01％的中性红溶液。
2. 实验仪器：恒温培养箱、显微镜、放大镜、电炉、烧杯、培养皿、滴管、微吸管、解剖针等。
四、实验步骤1. 采集水样：在有机物含量丰富的污水、池塘、水沟等地方采集水样，用网捞取水样，过滤后备用。
2. 培养草履虫：将稻草、大米、大麦、鸡蛋黄等有机物煮沸后过滤，制成培养液。
将过滤后的培养液倒入烧杯中，加入适量牛肉汁，搅拌均匀。
将烧杯放置在恒温培养箱中，温度控制在20℃左右，培养3-5天。
3. 分离草履虫：取载玻片，用滴管吸取少量培养液，滴在玻片上，盖上盖玻片。
用解剖针轻轻搅拌培养液，使草履虫聚集在玻片的一侧。
用微吸管吸取培养液，将草履虫移至另一载玻片上，重复操作，直至得到较为纯净的草履虫培养液。
4. 观察草履虫：将载玻片放在显微镜下，观察草履虫的形态特征、运动方式、摄食等生活习性。
记录观察结果。
5. 分析草履虫的生长发育规律：观察不同时期的草履虫，记录其形态特征、生长速度等，分析草履虫的生长发育规律。
五、实验结果与分析1. 草履虫形态特征：草履虫呈圆筒形，长0.1-0.2mm，直径0.02-0.03mm。
细胞表面有纤毛，运动方式为摆动。
细胞内含有食物泡、伸缩泡、眼点等细胞器。
实验动物生物材料采集及解剖实验报告
实验动物生物材料采集及解剖实验报告家兔实验一、实验目的：通过家兔、豚鼠的抓取固定、性别辨认、灌胃、注射、采血、麻醉、安乐死、动物剖检、脏器摘除与检查等实际操作，掌握家兔动物实验的基本操作技术。
二、实验动物及主要实验器材：动物：家兔、豚鼠；器材：兔固定器，兔开口器，兔导胃管，豚鼠固定器、常规手术器械、5ml注射器、l0ml注射器、烧杯、75％酒精及酒精棉，干棉球。
三、实验内容：1、家兔的抓取固定：在兔安静下来后，用右手抓住颈部的被毛与皮肤，轻轻提起，用左手托住其臀部，兔身的重量大部分落在左手上，也可用兔盒固定或将兔固定在兔手术固定台。
2、家兔性别的鉴定：使兔下腹部朝向观察者，将腿部周围的皮肤拨开，可见—圆孔，里面露出生殖器官。
3、经口灌胃给药法：先用特制张口器置于上下腭间，用布绳固定。
然后用左手抓住动物的嘴，右手由张口器中央小孔处将—适当粗细的导尿管插入，沿食管进入胃上部，最后将装有药液的注射器连接上导尿管，慢慢将药物灌入胃内。
注意：判别胃管插入气管或胃内，其方法：（1）观察反映；（2）感觉；（3）聞；（4）洗耳球法；（5）烧杯气泡法4、对家兔进行麻醉：用手抓住家兔的背部的被毛与皮肤，皮下注射百分之20乌拉坦，注意用量为5毫升比公斤体重。
5、利用空气栓塞法处死家兔：向家兔的静脉内注入一定量的空气，使之发生空气栓塞，形成严重的血液循环障碍而死亡。
6、解剖家兔：首先用手术刀打开腹腔，首先认识各个脏器的结构和位置。
然后摘除各个脏器。
摘除顺序如下：（1）胰腺；（2）脾脏；（2）胃肠；（4）肝脏；（5）泌尿系统；（6）生殖系统。
然后打开胸腔，认识各个脏器的结构和位置。
然后按顺序摘除各脏器。
摘除顺序如下：（1）胸腺；（2）心脏；（3）肺脏。
四、医学比较：家兔：家兔为脊椎动物、兔科动物，白天变现的十分安静，听觉灵敏，胆小怕惊，喜欢磨牙而且有啃木习惯。
解剖学特点：1、齿式：门齿2/1，犬齿0/0前臼齿3/2臼齿3/3，共有28个，门齿外露。
实验动物取血,尿液,其他体液的采集,实验动物的剖检方法
名称：生物样品的采集及实验动物的解剖和脏器系数测定标准操作规程(SOP)关键词：生物样品的采集实验动物解剖脏器系数测定目的：在药物毒理学研究中，常常需要收集实验动物的血液、尿液或其它体液进行常规检查或生化分析，因此，正确采集实验动物的生物材料是药物毒理学最基本和最重要的操作技术。
对实验动物进行大体解剖检查是药物毒理实验的常规观察项目，简便易行并能提供重要资料。
测定动物死后器官湿重和含水量是常用的指标之一，可以从大体标本大概地估计内脏器官病变的程度，特别适用于某些可致内脏水肿、实质细胞肿胀、间质纤维组织增生或脏器萎缩等药物的研究。
组织匀浆的制备以及在匀浆技术的基础上发展起来的亚细胞结构分离技术，也是药物毒理实验的重要技术之一。
学习和掌握药物毒理学试验中常用的生物材料的采集方法；实验动物的处死方法、大体解剖检查、脏器系数和含水量的测定以及组织匀浆的制备；了解病理切片常规收集样本的部位和方法。
主体内容（一）血液的采集1、大鼠与小鼠的采血方法：①鼠尾采血：当所需血量很少时采用本法。
固定动物并露出鼠尾，将尾部浸入45~50℃温水中数分钟，使尾静脉充血，擦干，再用酒精棉球擦试消毒。
剪掉尾尖（约0.2~0.3cm），拭去第一滴血。
然后用血色素吸管定量吸取尾血，或将尾血直接滴入容器内。
采血完毕用干棉球压迫止血。
亦可不剪尾，用7~8号注射针头连上注射器直接刺破尾静脉采血。
②眼眶静脉丛采血：当需用中等量的血液，而又避免动物死亡时采用本法。
左手拇指及食指紧紧握住大鼠或小鼠颈部，压迫颈部两侧使眶后静脉丛充血，但用力要恰当，防止动物窒息死亡。
右手持玻璃毛细管从右眼或左眼内眦部以45°角刺入，刺入深度小鼠约2～3mm, 大鼠4～5mm。
若遇阻力稍后退调整角度后再刺入，如穿刺适当，血液能自然流入毛细管内。
得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，拔出毛细管，用干棉球压迫止血。
③断头采血：当需用较大量的血液，而又不需继续保存动物生命时采用本法。
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实验内容
1. 动物常用采血方法
(1) 大、小鼠鼠尾采血方法：适用于需血量少的实验。方法：将动物固定 后，把鼠尾浸入到45-50度得温水中使尾静脉充血，擦干皮肤后，再用酒 精棉球擦拭消毒。剪去鼠尾（约0.2-0.3厘米），拭去第一滴血，吸取一 定量尾血，然后用棉球压迫止血。
实验一：实验动物生物材料采集和制备
指导教师：冯斐斐
Email：feifeifeng@ 卫生毒理学教研室
实验意义
在卫生毒理学实验中，为研究实验动物接触毒物的毒效应，经 常需要测定血液、尿液、组织匀浆等实验动物生物材料中受试化合 物的浓度，确定其代谢产物的性质和含量，分析外来化合物质对组 织脏器的影响，实验动物生物材料采集和制备是卫生毒理学的重要 基础技术。
实验注意事项
1.抓取动物时应规范小心，避免被动物抓伤或咬伤。 2.应根据具体实验的用血量而决定采用何种采血方式。 3.实验动物每次采血量不能过多。
4.撰写实验报告。
需要采集的生物样品主要是血液和尿液及组织脏器，它是反映 受试物的生物学效应及物质在体内代谢情况的最为重要的途径。
实验目的
掌握常用的实验动物生物材料采集和制备方法。
仪器和器械
实验动物：大鼠、小鼠 器材：大小鼠固定板 实验剪刀 实验镊子 匀浆仪器 玻璃毛细管 大鼠代谢笼 试剂： 生理盐水 乙醚
实验内容住大鼠或小鼠颈部压 迫颈部两侧使眶后静脉丛充血（注意用力要恰当，以防止动物窒息死 亡），右手持玻璃毛细管从一侧眼内呲部以45度角刺入，捻转前进。如 无阻力继续刺入，直到出血为止。右手持容器收集血液后，拔出毛细管， 用干棉球压迫止血。
（3）断头采血法：该法可用于大、小鼠。左手握住动物，右手持剪刀，快速 剪断头颈部，倒立动物将血液滴入容器。注意防止剪断的毛发掉入接血的容 器中。也可用大鼠断头器断头后，倒立动物接血。
实验内容
（4）腹主动脉或股动（静）脉采血法： 为一次性采血方法。大小鼠麻醉后，仰卧位固定动物，剪开腹腔，剥离暴露 腹主动脉或股动（静）脉，用注射器刺入采血。
（5）家兔耳缘静脉采血法： 家兔在兔盒中固定，拔掉一侧耳缘部细毛，轻轻以手指弹耳，使耳缘静脉充 血，酒精消毒。左手压迫耳根，右手持阵刺破静脉收集血液；或直接用注射 器进针，耳缘静脉采血。
（6）心脏采血法: 将动物以仰卧位固定，于肋部近胸骨左缘出，手触心搏最强部位进针，采血。 采血毕迅速拔针，用酒精棉球压迫止血。
实验内容
2. 动物尿液的收集： 收集大动物与小动物的尿液，一般使用不同的代谢笼。代谢笼主要由备有动 物饮水和装饲料的笼体、粪尿分离器和收集尿液容器组成。一般笼体为金属 和铁丝制成，如实验要求防止金属污染时，则代谢笼应用玻璃或有机玻璃制 作。 兔、狗等大动物也可用导尿法收集尿液。 为了使收集的实验动物尿液满足实验需要，可在收集尿前给动物一定量的水， 如大鼠可先行灌胃1-5毫升的水。
实验内容
3.血浆制品的制配： （1）红细胞、白细胞制备 （2）血清制备 （3）全血，即抗凝血 （4）血浆制备
实验内容
4.匀浆制备技术： 1 小鼠断颈放血处死,迅速取其肝脏, 2 置冰冷的生理盐水中反复冲洗,剔除脂肪及结缔组织, 3 滤纸吸干表面水分后称重1克,（根据你需要来）。 4 放在平皿中加入适量的冷生理盐水（肝：生理盐水为 1:4）, 剪碎，然后转移到匀浆器中，匀浆。