猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)
猪繁殖与呼吸综合征病毒
• 1、病性：猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）是由PRRSV引 起的以怀孕母猪流产、早产和死胎等繁殖障碍及仔猪呼吸 道症状等为主要症候群的高度接触传染性疾病。 • 2、发生历史:
1987 1991 1992 1996 2006
• 3、流行病学 本病主要发生于繁殖母猪和仔猪，肥育猪发病温和（ 近来有报道其症状加重）。 病猪和带毒猪是主要的传染源。 主要经呼吸道感染，其传播迅速。 怀孕中后期母猪和胎儿对本病毒高度易感。
病毒形态与结构
• PRRSV为有囊膜、单股、线状，正链RNA病毒，长约 15kb，直径大约为50～65nm，外绕一个脂质双层膜。在 电镜下病毒粒子呈现为球形，表面相对平滑，内有一个呈 二十面体对称的具有电子致密性的核衣壳，其核心直径为 25～35nm，表面有明显的突起。细胞外病毒粒子负染时 ，偶尔可在样品表面观察到短的颗粒状突起。
PRRSV发病机理
• 病毒进入机体后，首先侵入巨噬细胞，各种组织的巨噬细 胞对PRRSV均易感。肺泡巨噬细胞是病毒的靶细胞，尤其 是肺泡的巨噬细胞，造成严重的间质性肺炎。 • 病毒侵入细胞后，在细胞内增殖，使巨噬细胞破裂，溶解 崩溃造成巨噬细胞数量减少，肺泡壁增厚，淋巴组织呈衰 竭状态，同时降低了肺泡、巨噬细胞对其他细菌和病毒的 免疫力。 • 本病属于免疫抑制性疾病，很容易继发其他病原菌感染， 是死亡率大幅上升的根本原因。
• 在使用疫苗的问题上，许多人认为，弱毒疫苗和灭活疫苗相比，弱毒苗更为 有效，灭活疫苗多用来制作自场疫苗。一般认为，使用弱毒疫苗在预防和控 制PRRS中是有价值的。
在使用疫苗的问题上，许多人认为，弱毒疫苗和灭活疫苗相比，弱毒苗更为有效，灭活疫苗多用来 制作自场疫苗。一般认为，使用弱毒疫苗在预防和控制PRRS中是有价值的。
猪的病毒性传染病——猪繁殖和呼吸障碍综合征
猪的病毒性传染病——猪繁殖和呼吸障碍综合征概述猪繁殖和呼吸障碍综合征(Porcine reproductive and respiratorysyndrome, PRRS)是由猪繁殖与呼吸障碍综合征病毒(PRRSV)引起的猪的一种高度传染性疾病，又称“猪蓝耳病”，本病以妊娠母猪的繁殖障碍(流产、死胎、木乃伊胎)及各种年龄猪特别是仔猪的呼吸道疾病为特征。
本病是20世纪80年代末发生于养猪业发达国家的一种病毒性疾病，在世界各国引发了空前的“流产风暴”，给世界养猪业造成巨大的经济损失，现已成为规模化猪场繁殖障碍和呼吸道疾病的主要疫病之一。
本病于1987年在美国首先发生，随后加拿大也报道了本病， 90年代初欧洲开始流行，在我国，本病首先于1995年底在华北地区规模化猪场发生，其后短短几年时问在我国大部分养猪地区流行。
本病曾称为“神秘猪病”、“新猪病”、“猪流行性流产和呼吸综合征”、“猪生殖与呼吸综合征”、“蓝耳病”、“猪瘟疫”等。
1991年，欧洲学者提出将本病命名为“猪繁殖与呼吸综合征”，1992年在美国的明尼苏达州召开的第一届国际研讨会正式采用该命名，也是世界动物卫生组织(OIE)正式定名。
OIE将该病列为B类传染病，我国也将其列为二类传染病。
病原猪繁殖与呼吸综合征病毒为单股正链RNA病毒，属套式病毒目、动脉炎病毒科(Arterividdae)、动脉炎病毒属(Arterivirus)。
呈球形，有囊膜，直径在40～60nm之间，表面有约5nm大小的突起。
核衣壳呈二十面体对称，直径为25～30nm。
无血凝活性，不凝集哺乳动物或禽类红细胞。
有严格的宿主专一性，对巨噬细胞有专嗜性。
病毒的增殖具有抗体依赖性增强作用，即在亚中和抗体水平存在的情况下，在细胞上的复制能力反而得到增强。
病毒在氯化铯中的浮密度为1.13～1.19g/mL，在蔗糖梯度中的浮密度为1.18～1.23g/mL。
病毒的稳定性受pH和温度的影响比较大。
猪繁殖与呼吸综合征
猪繁殖与呼吸综合征猪繁殖与呼吸综合征（英文PRRS）是由猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）引起的一种猪的高度接触性传染病，又称猪蓝耳病。
不同年龄、品种和性别的猪均可发生，但以妊娠母猪和仔猪是为常见。
该病以母猪发生流产，产死胎、弱胎、木乃伊胎以及仔猪呼吸困难、高死亡率等为主要特征，严重危害全球养猪业生产。
在2006年夏季，由猪繁殖与呼吸综合征病毒变异毒株引起的“高热综合征”在我国暴发，呈现高发病率和高病死率的特点，成为危害我国养猪业的新疫病之一，我国将其列为“高致病性猪蓝耳病”，列入一类动物疫病。
[流行病学]1．易感动物猪是唯一感染本病并出现症状的自然宿主，不同年龄的猪均可感染。
2．传染源感染猪和康复猪是本病的主要传染源。
感染猪常可导致长期的病毒血症/持续感染而排毒；即使在临诊症状消失后8周还可向外排毒，导致病毒在猪群中反复传播而难以根除。
3．传播途径本病主要经呼吸道、精液水平传播和生殖道垂直传播。
隐性感染猪引入猪群时，在应激状态下，会排出病毒，并通过多种途径如口、鼻、眼、粪便等感染其他易感猪只。
公猪通过精液在同猪群间水平传播PRRSV，怀孕母猪感染病毒后，经胎盘感染胎儿，造成繁殖障碍。
此外，某些禽（鸟）类带毒也是重要的传播媒介。
4．季节性本病的发生多呈明显的季节性，尤以寒冷季节多发。
[症状及病理变化]1．临诊症状本病潜伏期可因地域、季节的不同而长短不一。
本病的病程通常为3~4周，最长可达6~12周。
临诊症状在不同的感染猪群中有很大的差异。
（1）母猪发病初期，出现食欲不振，发热等，尤其妊娠后期较为严重。
少数母猪可见耳朵、腹部、腿部发绀。
母猪出现早产，产奶量了降，少部分早产猪四肢末端、尾、乳头、阴户和耳尖发绀。
其中以耳尖发绀最为常见。
妊娠晚期发生流产、产弱仔、死胎、木乃伊胎。
配种前感染的母猪产仔率降低、推迟发情、屡配不孕或不发情等。
（2）仔猪如在28日龄前感染，体温达40~41度，表现为严重呼吸道症状，如呼吸迫促、咳嗽、腹式呼吸及眼睑水肿，腹泻，耳尖至耳根皮肤发绀；病猪也可出现神经症状，如肌肉震颤、呆立、前肢呈八字脚，或运动失调、后躯麻痹。
猪繁殖与呼吸综合征的诊断技术
04
诊断技术的应用范围与限制
免疫学检测的应用范围与限制
应用范围
免疫学检测方法适用于检测猪繁殖与呼吸综合征病毒的 抗体，能够快速、大批量地检测样品，适用于猪群普查 和筛选。
限制
免疫学检测方法无法检测出隐性感染和潜伏期感染，且 不同毒株的抗体可能存在交叉反应，影响结果的准确性 。
病毒分离鉴定的应用范围与限制
优点
分子生物学检测方法具有高灵敏度、高特异 性和快速性等特点，可以检测出极低浓度的 病毒核酸；通过基因测序等技术，可以快速 获得病毒的基因组序列，有助于病毒的溯源 和变异研究。
缺点
分子生物学检测方法需要使用昂贵的仪器设 备和专业技术人员，检测成本较高；同时， 由于病毒基因组序列存在变异和重组等情况 ，需要设计针对不同变异株的检测引物和探
03
诊断技术的优缺点
免疫学检测的优缺点
优点
免疫学检测方法相对简单、快速，易于批量 检测；可以检测出病毒的特异性抗体，有助 于评估疫苗接种效果。
缺点
免疫学检测方法通常只能检测出病毒抗体， 无法直接检测病毒，存在一定的假阳性率； 同时，由于免疫系统存在个体差异，不同猪 只的抗体水平可能存在差异。
病毒分离鉴定的优缺点
THANKSHale Waihona Puke 感谢观看血清学诊断
01
通过检测猪血清中的抗体，评估猪群的感染状况和免疫应答情
况。
病原学诊断
02
通过分离培养病毒、检测病毒抗原等方法，确定猪繁殖与呼吸
综合征病毒的存在。
分子生物学诊断
03
应用PCR、RT-PCR等分子生物学方法，检测病毒核酸，判断病
毒的感染情况。
06
案例分析与应用
案例分析与应用
猪繁殖与呼吸综合征的临床症状及治疗措施 - 养猪技术
猪繁殖与呼吸综合征的临床症状及治疗措施-养猪技术猪繁殖与呼吸综合征是由猪繁殖与呼吸综合征病毒引起猪的一种急性、高度传染性疫病，呈地方流行性。
猪繁殖与呼吸综合征病毒只感染猪，各种品种、不同年龄和用途的猪均可感染，但以妊娠母猪和1月龄以内的仔猪最易感。
患病猪和带毒猪是本病的重要传染源。
猪繁殖与呼吸综合征病毒的主要传播途径是接触感染、空气传播和精液传播，也可通过胎盘垂直传播。
下面我们就一起来看看猪繁殖与呼吸综合征的临床症状及治疗措施。
1、临床症状急性型。
①母猪：是主要的受害猪群。
表现为精神不振、厌食、发热（40~41℃）、咳嗽，并有程度不同的呼吸困难。
部分母猪双耳、腹部及其外阴部皮肤出现一过性青紫色血斑，所以有人称该病为蓝耳病。
还有部分母猪出现肢体麻痹性神经症状。
妊娠后期发生早产、流产（流产率可达50%~70%）、死胎（可达35%）、木乃伊胎（可达25%）和产出弱仔猪。
流产胎儿多发生在妊娠后期，而后出现重复发情、受胎率低（受胎率可降低5%）。
②仔猪：以1月龄内的仔猪最易感，感染后症状明显。
早产的仔猪，在出生后当时或几天内死亡。
大多数初生仔猪表现为体温升高达40℃以上，精神不振，呼吸困难，眼睑水肿，肌肉震颤，共济失调，后肢麻痹，打喷嚏，嗜睡。
有的仔猪耳尖、耳边、四肢末端和腹侧皮肤发绀，死亡率高达80%~100%，而耐过的仔猪生长缓慢，易继发其他疾病。
③生长猪和肥育猪：对该病的易感性较低，感染后仅表现轻度的临床症状。
④种公猪：发病率较低，一般为2%~5%。
公猪感染后，主要表现为一般性临床症状，但公猪精液品质下降、精子活力降低，配种受胎率下降，精液可带毒，4周后才能逐渐恢复。
慢性型。
此为该病的主要形式。
主要表现为猪群的免疫功能下降，易继发感染其他细菌性和病毒性疾病；猪群的生产性能降低，生长缓慢；母猪群的繁殖性能下降。
猪群的呼吸道疾病（如传染性胸膜肺炎、附红细胞体病、支原体肺炎链球菌病等）发病率明显上升。
亚临床型。
猪蓝耳病症状
猪蓝耳病又称猪的繁殖与呼吸综合征(PRRS)，是由动脉炎病毒科中的猪繁殖与呼吸综合征病毒引起的，由外国传入我国、严重影响养猪业的传染病，以繁殖障碍、呼吸困难、耳朵蓝紫、并发其他传染病为主要特征。
由于春季温差大、气候异常，极易引发本病，加之目前尚无特效治疗药物，因此，做好本病的预防十分必要。
1 临床特征①母猪：发热、厌食，沉郁、昏睡，不同程度呼吸困难，咳嗽。
妊娠晚期流产、死胎、弱仔或早产。
产后无乳，少数病猪耳部发紫、皮下出现血斑。
个别母猪可见神经麻痹等症状。
②育成猪：双眼肿胀、结膜炎，有眼屎或脓性分泌物，并出现呼吸困难，耳尖发紫、沉郁昏睡等症状。
公猪感染后表现咳嗽、精神沉郁、食欲不振、呼吸急促，暂时性精液减少和活力下降。
③仔猪：以一月龄内仔猪最易感染。
体温可达40%以上，呼吸困难，有时腹式呼吸，食欲减退或废绝，后肢麻痹，共济失调，眼睑水肿，死亡率高达80%。
④猪蓝耳病常继发猪瘟、附红细胞体等病，如果治疗不及时，猪只死亡率较高。
2 临床症状猪蓝耳病主要侵袭繁殖和呼吸系统，主要表现为母猪繁殖障碍、仔猪断奶前高死亡率、育成猪的呼吸道疾病三大症状。
经产和初产母猪多表现为高热(40-41℃)、精神沉郁、厌食、呼吸困难，少数母猪(1-5%)耳朵、乳头、外阴、腹部、尾部发绀，以耳尖最为常见。
出现这些症状后，大量怀孕母猪流产或早产，产下木乃伊、死胎和病弱仔猪，死产率可达80-100%。
早产母猪分娩不顺，少奶或无奶。
仔猪特别是吃奶猪，死亡率很高，可达80%以上。
临床症状与日龄有关，早产的仔猪出生时或数天内死亡。
大多数新生仔猪出现呼吸困难(腹式呼吸)、肌肉震颤、后躯麻痹、共济失调、打喷嚏、嗜睡、精神沉郁、食欲不振。
断奶仔猪感染后大多出现呼吸困难、咳嗽、肺炎症状，有些下痢、关节炎、皮肤有斑点。
育肥猪体温可升高至41℃左右，食欲明显减少或废绝，多数全身发红，呼吸加快，咳嗽明显，个别病猪流少量黏鼻液。
无继发感染的病猪死亡率较低。
猪繁殖与呼吸综合征检测技术与疫苗研发进展
猪繁殖与呼吸综合征检测技术与疫苗研发进展猪繁殖与呼吸综合征（PRRS），俗称“猪蓝耳病”，由猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）引起，主要表现为不同年龄段猪只的呼吸道综合征、发热、出血，以及母猪流产和产弱仔、死胎或木乃伊胎为特征的繁殖障碍。
PRRS 在美国已流行30 多年，在我国已流行20 多年，长期以来一直是一种经济意义重大的流行疾病。
PRRSV 基因组长约15 kb，包含11 个开放阅读框（ORF），至少有14 种非结构蛋白（NSP）。
NSP2 区30 个氨基酸的不连续缺失被认为是我国高致病性PRRSV（HP-PRRSV）毒株的分子特征。
目前PRRSV 普遍存在于国内猪场。
Peng 等的调查结果显示，2012—2015 年我国29 个省PRRSV 检出率分别为45.67%、55.99%、56.91% 和59.07%。
Xie 等于2017—2018 年在我国27 个省2 428 个猪场的流行病学调查显示，不同地区的PRRSV 检测阳性率为8.12%～29.33%。
Guo 等从分子流行病学角度，系统分析了我国PRRSV 流行状况，发现PRRSV-1和PRRSV-2 都在传播，约80%以上的猪场存在PRRSV 血清阳性。
其中PRRSV-2 有4 个谱系（谱系1、3、5、8）在田间循环。
PRRS 检测和疫苗免疫在其临床防控中起着重要作用。
PRRS 检测技术有很多，其中最主要的是血清抗体ELISA 以及各种类型的PCR 检测技术。
每种检测技术的目的有所不同，涉及调查疫苗免疫效率、野毒感染情况、野毒类型以及诊断病例等，市场上的疫苗也有不同类型的单苗及联苗可供选择，因此如何选择合适的检测技术以及合适的疫苗进行PRRS 综合防控具有现实意义。
本文就PRRS 检测技术和疫苗研发进展进行综述，以期为临床PRRS 综合防控提供依据。
1 实验室检测技术近年来，PRRS 疫苗免疫以及PRRSV 感染十分普遍。
诊断PRRS 首先要看流行病学特点和临床症状。
猪蓝耳病简介
猪蓝耳病简介核心提示：猪繁殖与呼吸综合征（PRRS），又称蓝耳病，是一种原发病。
猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）与多种病毒混合感染，并常常伴有细菌继发感染，可以说直接给病原体打开了大门，给猪场造成非常大的经济损失，今天开始我们将对PRRS相关知识进行一系列介绍，首先简单了解一下PRRS。
1 简介猪繁殖与呼吸综合征（Porcine Reproductive＆Respiratory Syndrome，PRRS）早期刚被发现时部份猪只耳朵出现瘀青色，因此被称为蓝耳病（Blue Ear Disease）。
PRRS是病毒引起的疾病，于1991年分离并确认其病原为动脉炎病毒属病毒（arterivirus）。
人们最初了解到有这种疾病是1980年代的中期，当时该病被称为神秘病（mystery swine disease）。
这种病毒对于肺部巨噬细胞有特殊的结合力。
巨噬细胞是免疫系统的一部分，位于肺部的巨噬细胞，称为肺泡巨噬细胞（alveolar macrophages）。
这些巨噬细胞的功能是吞噬并且清除侵入肺部的细菌与病毒，但PRRS病毒却会感并在肺泡巨噬细胞中增生。
当这种病原入侵某个畜群，病毒将会持续的存在、并不定时地伺机而动（activate）。
随着病毒在肺泡巨噬细胞的中增生，受感染猪只将损失约40%巨噬细胞，如此导致身体防御屏障出现漏洞，紧接着细菌及其它病毒开始增生。
本病以妊娠母猪的繁殖障碍（流产、死胎、木乃伊）及各种年龄猪特别是仔猪的呼吸道疾病为特征，现已经成为规模化猪场的主要疫病之一，我国将其列为二类传染病。
不同猪场感染该病毒后，猪群的临床表现会有极大差异：有的猪场，猪只的临床症状可能非常轻微，有的却非常严重，这个现象可能与病毒增生期间的变异有关。
PRRS可感染所有阶段的猪。
2 流行病学本病是一种高度接触性传染病，呈地方流行性。
PRRSV只感染猪，各种品种、不同年龄和用途的猪均可感染，但以妊娠母猪和1月龄以内的仔猪最易感。
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猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）PRRS，又称猪繁殖与呼吸综合征，猪蓝耳病，猪流行性流产----呼吸综合征，是近年来发现的一种病毒性传染病，给养猪业造成很大的经济损失。
本病主要引起母猪繁殖障碍，仔猪肺炎和断奶前后仔猪的死亡率增高，自1987年在美国，1990年在欧洲被发现后传播蔓延速度十分惊人，病毒分离和血清检查表明，PRRS现已传遍世界主要养猪国家。
1995年，我国在北京郊区首次暴发了PRRS，1996年以来，国内一些单位进行的流行病学和血清学调查证明，我国大部分省市都已有此病，且血清阳性率都很高，但呈地方性流行特征。
特别是2002年大有全国一片蓝的趋势。
针对PRRS的现状，各国都已引起高度重视，近年来在流行病学，免疫学及致病机理，实验室诊断技术，综合防制等方面开展了大量的调查研究工作，PRRS的诊断与防制尤其成为当前兽医研究的一个热点。
（--）病原PRRSV为一有囊膜的病毒，直径50---65nm,表面相对平滑，立方形核衣壳，核心直径25—35nm。
PRRSV对热敏感，这种敏感性提示用于病毒分离的血清和组织样品应保存在-20C下或4C条件下，以保护样品的感染性，用脂溶剂氯仿和乙醚处理以后，PRRSV失去活性。
北美和欧洲PRRSV分离株虽然不能凝集进行实验的各种红细胞，但最近的研究发现，部分毒株及用去污剂预处理的毒株可以表现出对一定动物红细胞的凝集性。
PRRSV具有严格的宿主特异性，最初是用猪肺泡巨噬细胞（PAM）及其它组织的巨噬细胞进行病毒的分离与鉴定的，在体外培养中，PRRSV可以在猪肺泡巨噬细胞（PAM）和非洲绿猴肾细胞（vero）及其衍生的细胞系如MARC—145，CL——2621中生长。
在肺泡巨噬细胞的培养物种加入PRRSV抗体后，可使病毒的复制增强，同样在病毒中加入PRRSV抗体后，其在妊娠期胎儿体内的复制也大为增强，这种现象称为抗体依赖性增强作用（ADE）其原因可能是病毒与抗体形成免疫复合物后借助细胞表面Fc受体与PAM结合，从而促进了病毒进入细胞。
ADE在PRRS的发病机理及免疫学上具有重要意义。
通过母原抗体获得被动免疫的仔猪，一旦母源抗体水平降至保护水平以下PRRSV就会表现出ADE，从而增强了仔猪的易感性。
这种作用对本病的防制带来困难，因为疫苗诱导的抗体可能会增强野毒株在体内的复制，而野毒株产生的抗体也可能会增强疫苗毒的复制。
2 流行病学最初多呈急性暴发，以后转为慢性和地方性流行。
传染源为病猪和带毒猪，病毒感染后157天内可以从扁桃体上分离到病毒，在妊娠后90天易感染，且成为持续性感染猪向外界排毒7—16周。
传染途径主要通过消化道，呼吸道传播，也可通过胎盘，乳汁母婴传播，可经精液传播。
本病的发生率与传播距离很难确定，常呈跳跃式的远距离传播。
易感动物为猪，不分年龄，品种，性别都可感染，鸟类可机械带毒，其它动物尚未见到感染的报道。
本病传播力强，一旦感染可迅速传播，环境恶化，饲养密度过大，管理不当可成为本病的诱因。
大流行后隐性感染病例增多，临床病例明显减少，症状减轻，是病毒毒力变弱或猪免疫力上升，使猪的易感性降低的结果。
3 临床症状北美和欧洲猪群中PRRS的临床症状都类似。
PRRS 的临床症状变化很大，且受病毒株，猪群免疫状态以及管理因素的影响，猪群的临床疾病首先是个体出现急性病毒血症。
随后是经胎盘从有病毒血症的母猪传播到胎儿的，这一过程常发生于怀孕的后三分之一期。
PRRS病毒株毒力变化很大。
低毒株可以引起猪群无临床症状的流行或者地方性流行，所有年龄猪都敏感，其急性感染的主要症状为食欲减退，发热，呼吸困难。
在随后的1—4个月，很多母猪早产，常发生于妊娠100天以后。
少数在怀孕115—118天后产仔。
早产，足月或推后产出的感染胎儿有下列一种或所有的情况；死胎木乃伊胎，后期死胎，不同大小的弱仔猪以及不同大小外表正常的仔猪。
空怀母猪出现流感的症状，不久痊愈。
但配种率，受精率下降，公猪的精液减少，活力降低。
哺乳母猪表现厌食，沉郁，发热的一过性反应，但日后的泌乳量减少或无乳。
哺乳仔猪整窝感染，短暂发热，既而腹泻，气喘，打堆，消瘦衰竭死亡。
保育仔猪见于本病流行的后期往往断奶一周后出现厌食，呼吸困难腹泻，打堆，消瘦，发病率高达百分之三十，病死率很高，幸存者成僵猪，持续时间长短与环境和管理有关。
4 病理变化以急性型病典型，但个体间有差异。
外观尸僵不全，皮肤色淡似蜡黄，鼻孔有泡沫，皮下脂肪较黄，稍有水肿。
肺有大理石样病变，肝样病变较多，形态有萎缩，水肿，气管，支气管充满泡沫，胸腹腔积水，肺门淋巴结充血，出血。
心肌变软，心内膜出血，心耳出血坏死。
肝肿大，个别有灰白色坏死点，胃出血，水肿。
肾包膜易剥离，表面布满针尖大小出血点，肠管气胀。
剖检病变：哺乳仔猪淋巴结肿大，肾有小点出血类似猪瘟，保育猪的肺炎呈橡皮样变。
流产仔猪，部分仔猪脑膜血管充血，表面湿润，渗出多量液体，肺有不同程度的充血，淤血，间质性肺炎，肾包膜混浊，膜下出现紫红色斑点，切面可见肾盂和肾乳头积存多量粘稠乳白色物质。
其它组织器官可见不同程度的充血，淤血，肌肉营养不良。
5 诊断（1）临床诊断：猪繁殖与呼吸综合症的主要特征是各种年龄猪都可感染发病，病猪表现为发热，嗜睡，厌食；繁殖母猪受精率下降，妊娠母猪发生流产，死产，产木乃伊胎及弱仔猪，种公猪感染后精液质量和精子活力受到影响，仔猪和育肥猪出现咳嗽，喷嚏，呼吸急促和呼吸困难，耳部及肢体皮肤发绀。
猪繁殖与呼吸综合症（PRRS）病毒毒株间的毒力变化差异很大，从而在不同地方及不同猪群中的症状表现不一。
这些年来，本病的临诊表现及流行病学也出现了新的变化，如隐型感染及慢性感染病例显著上升，持续性感染在猪群中较为普遍。
由于本病同其它引起猪繁殖障碍性的疾病（如细小病毒病，伪狂犬病，猪瘟，日本乙型脑炎，布鲁氏菌病等）表现出极为相似的症状，并伴随混合感染和继发感染，综合考虑流行病学及临床表现来对PRRS进行初步诊断，已显得越来越困难。
因此，仅仅根据流行病学及临床表现的特点已很难对本病作出诊断。
（2）病毒分离与鉴定病毒分离与鉴定是诊断该病最确切，可靠的一种方法，病毒分离时最好采用死胎或活产仔猪的肺，心，脑，肾，脾，肝，淋巴结等组织的匀浆混合物，然后接种于适当的细胞培养物。
尽管可以从许多组织中分离到PRRSV，但血清和肺组织分离成功率最高，尤其血清采样方法方便可靠，因感染PRRSV后12—24小时即可在感染猪的血液中发现较高滴度的PRRSV。
分离物接种PAM细胞后1—4天即出现CPE，细胞呈现灶状变圆，膨大，随后皱缩，脱落形成空洞。
不同分离株在细胞培养上生长增殖情况各不相同，有些毒株在每一代细胞培养3—4天即可出现CPE，但有些毒株则在第三代才出现CPE，这对结果的判定造成一定的影响。
（3）抗原检测3.1 免疫过氧化物酶（IP）技术这是诊断本病最广泛最可靠的方法之一，可用于检测PRRSV抗原的总体分布。
Patrick等于1994年报道了检测病猪肺脏内的PRRSV抗原的链酶亲和素—生物素---免疫过氧化物酶方法。
并于1995年应用此技术检测未采食初乳经人工接种PRRSV的仔猪，分别于接种后地4，9天扑杀，检测结果显示肺，心，扁桃体，脾，淋巴结，胸腺为抗原阳性。
3.2 免疫胶体金技术Mager等用特异性单抗MabDoW-17建立了检测PRRSV抗原的免疫金银染色方法（IGSS），他们用10TCID50LHTA—92—1和10CID50LHTA—92—2PRRSV 毒株内分别人工接种3周龄的仔猪，接种后第6或8天扑杀，结果在酒精固定，福尔马林固定及冷冻保存的肺脏组织中检测到PRRSV抗原，接种后第4，6，8天从用酒精固定的扁桃体，胸腺，淋巴结，肾脏等组织中检测到抗原。
3 .3免疫荧光抗体技术Benfield等（1992）制备了针对PRRSV N蛋白的单克隆抗体，这株单抗能与北美和45株分离株反应。
应用异硫氰酸荧光素标记，建立了棉衣荧光抗体染色技术用于直接检测仔猪肺组织中的抗原。
还可对猪的肺泡巨噬细胞的培养物用病毒特异性荧光抗体进行检测，也有较高的检出率。
3 .4 血凝和血凝抑制试验PRRSV不凝集多种动物的红细胞，但可以凝集BALB/C 小鼠红细胞，病毒材料经土温80和乙醚处理后血凝活性增强，效价增加4-8倍，可达1：128。
用MARC-145细胞培养的PRRSV，经乙醚和土温处理后，在4C和37C均棵凝集小鼠红细胞并且这种凝集反应能被PRRSV特异性抗体所抑制。
但对牛，羊，马，猪，豚鼠，鹅和鸡的红细胞却没有凝集作用。
此法简单，但能否直接检测组织中的PRRSV还需探索。
由于本方法处理病毒还存在一些尚未解决的问题，所以在我国还未广泛应用。
（4）血清学试验4. 1免疫过氧化物酶单层试验（IPMA）该法敏感性，特异性都较好。
可用于PRRSV的抗抗体原检测，病毒鉴定及血清抗体检测。
实验主要在PAM，C12621，MA104，MARC，145细胞上进行，能在感染后6日血清中检测到PRRSV抗体，具有较高特异性，缺点是实验判定主观性较强，不利于自动化操作不适于大规模检测。
4. 2间接荧光抗体试验（IFA）YOON等首次报道了应用该方法检测PRRSV抗体，与IPMA具有相同的特异性和敏感性，能从感染后6天的动物体内检测出PRRS抗体。
也可用PAM ，CL2621，MARC-145培养物进行IFA。
但由于该方法需要细胞培养和借助荧光显微镜的观察，检测结果不能自动显示，结果判定也有一定的主观性，使得大量检测样品和广泛应用受到限制。
4. 3血清中和试验（SN）本方法检测抗体虽具有良好的特异性，但PRRS的中和抗体出现的较晚，对急性感染的敏感性较差，因此SN法不适于早期诊断。
4. 4酶联免疫吸附实验（ELISA）常用Dot—ELISA，阻断ELISA，该法易操作，适用短期内大批量血清样品检测，且敏感性高，经济，快速。
（5）分子生物学诊断技术5. 1核酸探针杂交技术Sur等（1996）以PRRSV的RNA为模板，通过RT—PCR 扩增，ORF7片段，利用地高辛标记方法制备PRRSV特异性cDNA探针，建立了检测PRRSVRNA的原位杂交技术。
5. 2反转录—集合酶链式反应（RT—PCR）技术这是诊断该病的最为可靠和确实的一种方法。
也是近年来研究最多，发展最快的一种分子生物诊断技术。
现已研究出常规RT—PCR，套式PCR，RT—PCR微量比色法和RT—PCR—RFLP等多种方法。
6 防制措施本病的灭活疫苗和弱毒疫苗已在一些国家推广应用，重组亚单位苗也正在研制中。
我国目前对此病无特效疗法，目前疫苗也尚未普遍推广，在发病猪场可参照南京农业大学蔡宝祥教授提出的方案采取综合性防制措施：(1)口岸动物检疫部门应对进口种猪进行严格检疫。