HPV基因分型检测试剂盒常见问题
hpv样本不合格的原因
hpv样本不合格的原因
1. 样本采集不规范呀，就好比做菜盐放多了，那味道能对吗？比如说采集的时候没有选对合适的部位，那能采集到合格的样本吗？这可不行啊！
2. 样本保存出问题啦，这不就像把珍贵的东西随手一扔，能不坏吗？像有的人随便把样本一放，温度湿度都不合适，那还能合格吗？
3. 运输过程太糟糕咯，就像护送宝贝却不小心磕了碰了。
比如运输途中剧烈摇晃，样本不就被破坏了，还怎么合格呀？
4. 采集者操作不当呀，这就跟开车不熟练一样。
要是采集者手法生疏，能取到好样本才怪呢！
5. 被污染了可咋整，就像干净的水里被滴进了脏东西。
比如采集过程中不小心碰到了其他污染物，样本不就废了吗？
6. 患者自身原因也不能忽视呀，难道不是吗？像患者近期使用了一些药物，可能就会影响样本，这多关键呀！
7. 样本量不足啊，就像做饭米都不够。
如果采集的样本量太少，那怎么能准确检测呢，肯定不合格呀！
8. 时间过长也不行呀，好比牛奶放久了会变质。
样本采集后放置时间太长，还能是合格的吗？
9. 标记错误可太要命了，这就跟寄快递写错地址一样。
要是把样本标记错了，那检测结果能对吗？
10. 有人为干扰因素呢，这多可恶啊！比如有人故意破坏样本，那还能有合格的希望吗？
我的观点结论：HPV 样本不合格的原因有很多，每一个环节都要严格把控，稍有疏忽就可能导致样本不合格，一定要重视起来啊！。
人乳头瘤病毒(HPV)基因分型检测标准操作规程(PCR-反向斑点杂交法)
人乳头瘤病毒（HPV）基因分型检测标准操作规程1.目的：规范人乳头瘤病毒（HPV）反向点杂交（RDB）基因分型检测操作流程，保证检测结果的准确性。
2.应用范围: PCR实验室。
3.职责:3.1 文件编写：实验室技术员。
3.2 文件审核：实验室主管。
3.3 文件审批：实验室主任。
3.4 执行：PCR实验室所有工作人员。
4. 参考文献:4.1《中山大学达安基因股份有限公司乙型肝炎病毒基因分型检测试剂盒说明书》4.2 中山大学达安基因股份有限公司核酸扩增荧光检测系统DA7600型使用说明书5. 内容：5.1 检测方法：PCR-反向斑点杂交法。
5.2 实验原理：选取人乳头瘤病毒（HPV）基因组保守序列为扩增靶序列，设计通用引物和特异型别探针（包括16种中高危型和3种低危型HPV）,将RNA逆转录为cDNA后，利用生物素标记的通用引物对cDNA进行PCR 扩增，得到的产物与固定在膜上的特异型别探针按照碱基互补配对的原理杂交。
若PCR产物和探针完全配对，则膜条上相应探针位置捕获到标有生物素的PCR产物，并和亲和素–辣根过氧化物酶偶联，再与四甲基联苯胺（TMB）反应呈现较强的深蓝色，若与探针不完全配对，则经严格杂交和洗涤后膜条上相应探针位置不能捕获到标有生物素的PCR产物，结果无显色反应或显很淡的背景色。
5.3 标本采集：由合作单位按照以下要求进行采集。
5.3.1 标本类型：尿道分泌物、宫颈脱落细胞、疣体细胞等。
5.3.2 标本采集：5.3.2.1 道分泌物：在无菌条件下，用棉拭子伸入尿道内,旋转数周并停留片刻后取出。
5.3.2.2 宫颈脱落细胞:在无菌条件下，用宫颈刷伸入宫颈管内2cm,旋转数周并停留片刻后取出。
5.3.2.3 疣体细胞: 用无菌棉拭子在疣体部位刮取上皮细胞。
5.3.3 标本保存：采集的标本置于盛有1ml生理盐水的小试管中，2～8℃保存。
5.3.4 运送条件：标本长途运送时采用冰壶。
5.3.5 标本拒收标准：污染标本。
三家国产试剂盒HPV分型检测结果一致性比较分析
三家国产试剂盒HPV分型检测结果一致性比较分析余红;陆其兵【摘要】目的比较分析三家国产试剂盒HPV分型检测结果的一致性.方法收集近2个月来由之江检测的阳性标本82份,阴性标本10份,分别用3家国产试剂进行HPV基因分型检测2次,并进行比较.结果三家试剂结果重复性分别是之江95.6％,凯普96.7％,安普利95.6％.三家试剂检测结果完全一致率为51.1％(47/92),部分一致率为24.9％(22/92),不一致率为25.0％(23/92).单一型感染的一致率86.4％(32/37),多重感染完全一致率为22.2％(10/45),部分一致率为48.9％(22/45).结论三家国产试剂检测结果一致性不理想.建议患者进行前后治疗的效果对比,最好选在同一家医院进行检测,这样才具有可比性.【期刊名称】《临床输血与检验》【年(卷),期】2019(021)003【总页数】3页(P320-322)【关键词】人乳头瘤病毒;国产试剂盒;结果一致性【作者】余红;陆其兵【作者单位】224400 江苏省阜宁县人民医院检验科;224400 江苏省阜宁县人民医院检验科【正文语种】中文【中图分类】R373.9;R446.11人乳头瘤病毒（HPV）是常见的一种性传播疾病的病原体，分为高危型和低危型，其中高危型HPV感染已被证实与宫颈癌的发生密切相关，HPV检测在宫颈癌筛查中越来越受到重视[1]。
目前HPV检测主要采用分子生物学方法，我国注册的HPV检测试剂盒大部分检测L1基因序列，也有检测全基因组或HPV E6/7序列，但分子生物学方法检测技术也并不完美，这些设计无法顾全到HPV型别全覆盖和型别特异等问题。
本文选用了三家国产试剂进行HPV分型检测并进行比较，发现三家国产试剂检测结果的一致性很不理想。
材料与方法1 仪器与试剂仪器为上海复星SLAN-96S实时荧光扩增仪，三家国产试剂分别是上海之江生产的HPV分型试剂：6+11、16、18、31、33、35、39、45、51、52、56、58、59、66、68、82，其中两个低危不分型。
硕世hpv21分型说明书
硕世hpv21分型说明书
摘要：
硕世HPV21分型检测试剂盒说明书
正文：
硕世HPV21分型检测试剂盒是一种用于检测女性宫颈脱落细胞样本中的HPV病毒（人乳头瘤病毒）的检测产品。
该产品适用于临床实验室、卫生防疫部门等场所进行HPV病毒的检测。
产品由试剂盒和仪器设备两部分组成，操作步骤包括样本采集、试剂准备、样本处理和酶标检测。
首先，使用样本收集器获取女性宫颈脱落细胞样本，然后将样本放入病毒保存液中，震荡混匀后静置5分钟。
接着，吸取上层液体并放入离心机离心5分钟，吸取上清液后弃去样本。
然后将酶标抗体、阴性对照和阳性对照分别加入相应的孔中，再将样本处理液加入样本孔中，轻轻摇匀后放入37℃恒温箱中静置1小时。
最后，用洗板机将孔内液体洗去，放入酶标仪中进行检测，并记录检测结果。
结果判读分为阴性和阳性。
阴性表示未感染HPV病毒，阳性表示感染了HPV病毒，需进一步进行分型检测。
在操作过程中，应严格遵循操作规程，避免样本污染或试剂失效。
试剂盒应存放在2-8℃冰箱中，酶标抗体有效期为12个月。
体外诊断试剂申报资料常见问题汇总及解答
通告（2014年第16号）
涉及法规
1.关于实施《医疗器械注册管理办法》和《体外诊 断试剂注册管理办法》有关事项的通知 （食药监械 管〔2014〕144号 ）
2.关于印发境内第三类和进口医疗器械注册审批操 作规范的通知 （食药监械管〔2014〕208号）
3.关于执行医疗器械和体外诊断试剂注册管理办法 有关问题的通知 （食药监械管〔2015〕247号）
总结思路
01
法规问题
共性问题解决
04
分级讨论
讨论申报资料问题
02
收集数据
收集通知单相关问题 收集常见咨询问题
03
问题分类
明确问题所属资料 区分问题的性质
解决共性法规问题 资料问题以发补通知单 及咨询常见问题为主 常见问题讨论分析
242号
新研制产品分类途径：
同三类申报 分类界定 关注：分类调整品种
一、常见共性问题汇总—产品分类
第一类
• 1.微生物培养 基（不用于微 生物鉴别和药 敏试验）；
• 2.样本处理用 产品，如溶血 剂、稀释液、 染色液等。
第二类
• 1.用于蛋白质检测的
2.用于糖类检测的； 3.用于激素检测的； 4.用于酶类检测的； 5.用于酯类检测的； 6.用于维生素检测的； 7.用于无机离子检测的； 8.用于药物及药物代谢物检 测的； 9.用于自身抗体检测的； 10.用于微生物鉴别或者药 敏试验的； 11.用于其他生理、生化或 者免疫功能指标检测的
一、常见共性问题汇总—产品命名
被测物+用途+方法 特殊：根据用途命名 举例 • 甲胎蛋白检测试剂盒（化学发光法） • 乙型肝炎病毒核酸检测试剂盒（荧光定量PCR法） • 甲胎蛋白校准品
人乳头瘤病毒(HPV)核酸检测及基因分型、试剂技术审查指导原则
的筛查方法，可发现早期病变。但宫颈细胞学检查存在其固有的 局限性。高危型HPV检测用于宫颈细胞学检查异常患者的分流及 宫颈癌筛查，可有效地增加宫颈病变检出率，提高细胞学检查敏 感性，并降低筛查频率。
一、范围 人乳头瘤病毒（Human Papillomavirus, HPV）属于乳头瘤病 毒科，是一种小分子的、无被膜包被的 1、环状双链 DNA 病毒， 基因组长约 8000 碱基对（bp），分为 3 个功能区，即早期转录区 （E 区）、晚期转录区（L 区）和非转录区（长控制区，LCR）。 HPV 通过直接或间接接触污染物品或性传播感染人类。该病毒 不但具有宿主特异性，而且具有组织特异性，只能感染人的皮肤
由于宫颈癌筛查涉及面广，故由假阴性和假阳性 HPV 检测 结果引起的潜在公共卫生损害风险较为显著。假阴性结果可能导 致宫颈癌诊断和治疗不及时，假阳性结果可能导致不必要的频繁 筛查和侵袭性处置。因此，确立良好的性能指标并充分理解 HPV 检测的临床意义，对于此类产品的安全有效性评价至关重要。产 品性能如不符合临床需求，可能导致对患者所作的决策错误。总 体来说，此类试剂分析及临床性能的评价应有严格的控制，同时 亦应重点关注临床的合理应用和检测结果的科学解释。
本指导原则是供申请人和审查人员使用的指导性文件，不涉 及注册审批等行政事项，亦不作为法规强制执行，如有能够满足 法规要求的其他方法，也可以采用，但应提供详细的研究资料和 验证资料。应在遵循相关法规的前提下使用本指导原则。
本指导原则是在现行法规、标准体系及当前认知水平下制定 的，随着法规、标准的不断完善和科学技术的不断发展，本指导 原则相关内容也将适时进行调整。
《人乳头瘤病毒(HPV)核酸检测及基因分型试剂技术审查指导原则》(征求意见稿)
人乳头瘤病毒（HPV）核酸检测及基因分型试剂技术审查指导原则（征求意见稿）一、前言本指导原则旨在指导注册申请人对人乳头瘤病毒（HPV）核酸检测及基因分型试剂注册申报资料的准备及撰写，同时也为技术审评部门对注册申报资料的技术审评提供参考。
本指导原则是针对人乳头瘤病毒（HPV）核酸检测及基因分型试剂的一般要求，申请人应依据产品的具体特性确定其中内容是否适用，若不适用，需具体阐述理由及相应的科学依据，并依据产品的具体特性对注册申报资料的内容进行充实和细化。
本指导原则是对申请人和审查人员的指导性文件，不包括注册审批所涉及的行政事项，亦不作为法规强制执行，如果有能够满足相关法规要求的其他方法，也可以采用，但需要详细阐明理由，并对其科学合理性进行验证，提供详细的研究资料和验证资料，相关人员应在遵循相关法规的前提下使用本指导原则。
本指导原则是在现行法规和标准体系以及当前认知水平下制定的，随着法规和标准的不断完善，以及科学技术的不断发展，本指导原则相关内容也将适时进行调整。
二、适用范围人乳头瘤病毒（human papillomavirus, HPV）属于乳多空病毒科的乳头瘤病毒属，是一种小分子的、无被膜包被的、环状双链DNA病毒，基因组长约8000碱基对（bp），分为3个功能区，即早期转录区（E区）、晚期转录区（L区）和非转录区（长控制区，LCR）。
HPV通过直接或间接接触污染物品或性传播感染人类。
该病毒只能感染人的皮肤和粘膜上皮细胞，能引起人类皮肤的多种乳头状瘤或疣及粘膜生殖道上皮增生性损伤。
HPV广泛存在于自然界，据统计70%～80%的女性在其一生中会有至少一次的HPV感染。
但大多数感染为自限性，超过90％的感染的女性会出现一种有效的免疫应答，在没有任何长期的健康干预时在6到24个月之间可以清除感染。
而持续性的高危型HPV感染则是导致宫颈癌及宫颈上皮内瘤变的主要原因。
根据HPV各型别致病力大小或致癌危险性大小不同可将感染生殖道和肛门的HPV分为低危型和高危型两大类。
hpv 基因分型检测项目介绍(检验科)
HPV检测在治疗后的随访过程中可提示治疗效果
HPV检测灵敏度明显高于细胞学检查
对经组织学诊断为CIN2 及以上病变检测的灵敏度： 细胞学检查仅为55%， HPV检测的高达96%。
HPV检测——ASCUS的分流处理首选
2006 consensus guidelines for management of women with abnormal cervical cancer screening tests European guidelines for quality assurance in cervical cancer screening: recommendations for clinical management of abnormal cervical cytology, part 1. Cytopathology 2008, 19, 342–354
有效避免假阴性带来的漏检
单次检测标本量可达96份
效率高
所需仪器设备简单、通用性好 技术平台通用
投入低，各级实验室均适宜
该技术平台除了可以开展HPV基因分 型外，还可以开展HBV分型与耐药检 测，结核分枝杆菌耐药检测等分子诊 断项目，提供医院整体诊断水平
业界肯定
No Image
问题？
No Image
HPV 基因分型检测流程
结果判读
单一感染 多重感染 阴性样本
HPV18 HPV35,59,66
No Image
HPV 基因分型检测主要仪器设备
试剂准备区 标本制备区 PCR扩增区
冰箱
冰箱 离心机 微量加样器 生物安全柜 （或超净工作台） 电磁炉（水浴锅 或干式恒温器） 旋涡混合器
PCR仪
HPV分型试剂准备 (3)
HPV分型试剂准备标准操作规程
1.目的
规范人乳头瘤病毒(HPV)基因型别试剂准备操作。
2.范围
HPV 分型的PCR 反应液配制。
3.操作人员
基因扩增室在岗工作人员。
4.操作步骤
4.1 HPV 扩增试剂准备：
4.1.1 试剂解冻：从一20 ℃冰箱中取出HPV 扩增试剂盒Ι，然后从试剂盒中取出PCR反应管、HPV-DNA提取液及阴、阳性质控品，室温复融，复融后的试剂震荡混匀并瞬时离心5 秒。
4.1.2 准备PCR 管：HPV反应液管试剂盒已经配制并分装好，每次根据实际反应数量取出相应反应液后传至到样本处理区的传递窗内。
4.1.3 从4℃冰箱取出HPV 扩增试剂盒Ⅱ，和HPV-DNA提取液及阴、阳性对照一起转移到样品处理区的传递窗内。
HPV基因诊断试剂盒
HPV基因分型快速诊断试剂操作流程
采集样本
提取DNA
杂交
显色
PCR扩增
结果判断
检测结果：HPV16、HPV43 检测结果：HPV33、HPV35
HPV检测的临床意义
• （一）宫颈病变的筛查
•1、HPV检测的最大优势之一在于发现高危型HPV阳性而细胞学涂片正 常的妇女，因为这一人群中10％会在四年内发展成CINⅢ。 •2、筛查并浓缩高风险人群，便于进行有效监控，早期发现宫颈癌。 •3、HPV检测的阴性预测值为99％，可将筛查间隔延长至3年一次，大 大地降低了检查成本。
最常见的高危型
53%
HPV16
（HPV16、18、31、
33、45、58 ）
宫颈癌患者中高危型HPV感染率(欧州2000年资料)
深 圳 不 同 HPV 亚 型 的 检 出 频 率 统 计 （WHO项目）
注：1.本表统计样本数为1153例，其中阳性样本数为119例； 由于检测样本中存在复合感染，故亚型的检出频率＝（该亚型的检出次数 / 所有亚型的检出次数）×100
质的损伤可能已经产生。
病毒学检测：HPV DNA检测（PCR方法），常见方法有：基因芯 片分型检测、HC-2、荧光PCR等
特异性强、灵敏度高，操作简便快捷 (98%)
宫颈分泌物HPV结果
HPV HC2 亚能 凯谱
检测例数 1137 1137 250
阳性例数 159
阳性率（%） 14
111
9.8
98
子宫颈癌的危险因素：
• 行为危险因素：如性生活过早、多个性伴侣、多孕多产、社会经济地位低下、 营养不良及性混乱等； • 生物学因素：如细菌、病毒和衣原体等各种微生物的感染。 • 目前仅有少量研究表明宫颈癌可能存在着家族聚集现象。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
“十六字方针”
精品课件
进入各个工作区必须遵循严格 的单一方向顺序!
精品课件
PCR后区域
工作流 向
PCR前区域
临床 样本 收集 与 储存
出
精品课件
入口
➢ 每间房间必须有其专用的工作服及一次性手套； ➢ 每个工作区都应有独立的一套仪器设备及耗材； ➢ 不同区域的仪器设备及耗材不能混用;
临床样本 (原始容器中)
HPV基因分型检测项目 临床试验实际问题
精品课件
➢ 试验开展实验室要求 ➢ HPV临床样本的采集方法及注意事项 ➢ 临床试验操作注意事项 ➢ 临床试验结果分析及常见问题
精品课件
HPV基因分型检测试验项目
——试验开展实验室要求
精品课件
临床基因扩增实验室设置的一般原则
➢ 各区独立 ➢ 注意风向 ➢ 因地制宜 ➢ 方便工作
强烈责任感 工作态度 认真细心
严格规章制度 并遵守
严格遵守 HPV基因分型 各项工作的 标准操作规程
精品课件
实验所需仪器
水浴锅
离心机
超净工作台 PCR扩增仪
旋 涡 混 合 仪
微 量 移 液 器
精品课件
HybirMax®医用核酸 分子快速杂交仪
HPV基因分型检测试验项目
——HPV临床样本的采集方法及注意
精品课件
➢ 工作区域必须始终保持清洁整齐； ➢ 所有实验台面及地面均应保持清洁； ➢ 所有实验废料及垃圾使用专用垃圾带装好后，封口处理； ➢ 在每次工作前后对工作台面进行消毒液（次氯酸溶液）擦洗、消毒
酒精擦洗工作，并在完成工作后开启紫外灯进行灭菌；
精品课件
有效的临床结果
操作人员具有
专业技术知识 和经验
验室
污染。
精品课件
（三）PCR操作中存在问题分析 1.阳性变阴性 2.阴性变阳性 3.PCR结果不稳定
精品课件
(1) 有些阳性病人，经过PCR检测后为阴性， 可能有两种情况：
一是采集标本方法或部位不正确， 二是如果病人取样部位病原体消失，需 根据病人的病理情况采样。
精品课件
(2) 标本保存不当，可引起PCR失败。 收集的标本乱放（未放冰箱），病原体的
✓ DNA提取 ✓ PCR扩增 ✓ 导流杂交 (详见各项操作的SOP）
精品课件
一、实验室分独立房间操作:
样本储存区（与试剂储存分开）
PCR前区域 (试剂贮存及准备区, 样本处理区)
PCR后区域 (PCR扩增产物分析区)
仪器及耗材独立使用，切忌前后区域交叉！试验工作服及手套独立
二、单一工作流程: PCR前区域
事项
精品课件
➢ 标本收集 ➢ 标本保存
精品课件
检查前告知病人注意事项：
➢ 月经正常妇女，在月经来潮后10～18天为最佳检查时间。 ➢ 检查前48小时内不要作阴道冲洗，不要用避孕药膏等阴道内用药物。 ➢ 检查前48小时最好不要行性生活。 ➢ 检查前不进行醋酸或碘液涂抹。
精品课件
步骤－ 先脱掉裤子，然后按医
PCR后区域
三、实验室环境
（防止污染、保持清洁整齐、严格制定及执行各项规章）
四、试剂管理及标本管理
试剂按要求温度贮存、注意有效期，使用过的试剂拧紧归类放好；
样本清楚标记好样本号、与试剂分开贮存，使用过的样本归类放好
五、以谨慎的态度对待，并清楚记录实验結果及一些突发性问題；
精品课件
正确使用移液 器
防止造成样本交叉污染
生指示仰卧于一张检查床上。
步骤二 由医生以窥阴器或阴道张开
器暴露宫颈。 然后使用专用的HPV 采样刷置于宫颈口采集标本。（最 好在取样前先用棉签擦去宫颈分泌 物）
精品课件
步骤三
将专用宫颈刷置于宫颈口，轻 轻搓动宫颈刷使其顺时针旋转5圈。
步骤四
慢慢取出宫颈刷，将其放 入标有病人编号的取样管中，取 样管内已加有专用细胞保存液， 折断其刷头入管中，拧紧瓶盖。
精品课件
➢ 样本一经采集，则应尽可能快的送至检测 实验室。
➢ 如若不能马上送检样本，请于4℃保存， 请在2个星期之内进行检测。
精品课件
标准收集中注意事项： ➢ 使用凯普专用取样器及保存液，可抑制细菌生长，保持DNA完整性。 ➢ 样本收集中为保留足够的宫颈细胞标本，注意切勿将宫颈刷头丢弃。 ➢ 宫颈保存系统包装打开后，必须立即进行采样，并连同刷头置于取样
管中。 ➢ 如果同时进行细胞学检查，应先采细胞学样品。 ➢ 宫颈刷头折断、试验取样时，请小心操作，切忌大力震荡取样管，造
成试剂及样本溅出影响检测结果或造成污染。 ➢ 取样管上标示的名称须与患者一一对应。 ➢ 取样后，切记拧紧取样管管盖。
精品课件
HPV基因分型检测试验项目
——临床试验操作注意事项
精品课件
因操作欠规范导致的问题分析
精品课件
精品课件
1、样品处理不进行隔离，样品中各种核酸片 段均会通过空气进行传播。
2、PCR结果检测实验室和其它实验室在一 起，会出现严重的扩增子污染。
3、仪器设备及工作服等（尤其是加样器）公 用，也会造成严重污染。
4、实验室操作垃圾（吸头、离心管、样品杯 等）乱 放，飘散在源自气中的核酸片段、病原微生物可造成实
DNA 提取
样本制备区 超净工作台
PCR 扩增区
导流 杂交区
试剂准备区
精品课件
结果通知患者
临床样本 (原始容器中)
样本制备区
DNA 提取
PCR区域 超净工作台
导流 杂交区
结果通知患者
精品课件
➢ 每个区域必须有其专用的工作服及一次性手套；每次操作必 须更换；
➢ 涉及到公用仪器使用，必须注意防止交叉污染，定时使用次 氯酸钠溶液擦洗；
③ 操作时手套引起的交叉污染 （拿过模板DNA管后应更换手套）
精品课件
④ 不明原因引起公用试剂污染 （ 必 须 设 置 一 个 不 含 模 板 DNA 但 含
PCR系统中所有其他成分的对照反应。这一 对照管须在准备好所有其他PCR以后才进行 吸加）。 ⑤ 实验室污染
精品课件
➢ 实验室建设方面 ➢ HPV分型检测试验操作方面
防止造成试剂被污染
使用移液器吸取临床样本时，避免移 液枪头碰到样本管壁。所用移液枪头 均为一次性用品，切忌重复使用；
破裂，检测的核酸降解，失去了PCR检测的 模板或造成标本污染。
精品课件
精品课件
① 加样器通道易形成气溶胶，造成加样器 通道污染，可通过使用有滤筛的吸头避 免污染 （将模板DNA加入PCR系统时， 注意切勿形成喷雾，后者有可能污染别 的反应，所有并非即用管都应盖严）。
精品课件
② 打开标本管盖引起样品飞溅 （打开前须瞬间离心）