HPV基因诊断试剂盒

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04-HPV 人乳头瘤病毒核酸检测试剂盒-产品介绍13-12-17

04-HPV 人乳头瘤病毒核酸检测试剂盒-产品介绍13-12-17

14
形态学筛查存在的问题
1、假阴性结果(10-30%)面临医疗纠纷;
2、重复性不好;
3、经验性:需要富有经验的专家; 4、增加筛查成本:复诊率过高; 5、在等待复查中承受焦虑和精神压力;
2014年11月2日星期日
15
宫颈癌临床主要检测方法(二)
HPV DNA分型检测方法
---荧光PCR法(默乐生物) ---杂交信号放大法 (HC2)
1、竞争性内标技术:
监测整个核酸抽提和检测过程是 否有误,有利于消除反应出现的 假阴性,结果更可靠。
2014年11月2日星期日
20
产品特点——独特探针引物设计
高保守
无交叉 阴阳性
无漏检
基于HPV分型原理: 根据HPV L1区基因保守序列设计一系列扩增引物富集24种型别的HPV
PCR产物,再针对不同亚型设计不同探针,进行荧光PCR反应,通过荧光信
2014年11月2日星期日
10
宫颈癌前病变各期及宫颈癌的病理模式图
正常宫颈
轻度不典型增生 中度不典型增生 CIN I CIN II
重度不典型增生 CIN III/CIS
浸润癌 Invasive CA
2014年11月2日星期日
11
宫颈癌筛查方案
• 权威组织一致推荐:采用细胞学检 查和HPV DNA联检进行宫颈癌筛查。
2014年11月2日星期日 31
产品市场容量分析
HPV检测试剂 盒未来的市场 规模达222亿元
我们默乐 HPV产品市 场占有率

2014年11月2日星期日 32
2014年11月2日星期日
33
CIN1、CIN2、CIN3:子宫颈上皮内瘤变
ASC-US:意义不明确的非典型鳞状细胞

凯普21种基因型HPV分型与其它比较

凯普21种基因型HPV分型与其它比较

交叉污染
多次开关管盖,完 全手工操作,需要 向外倾倒液体,易 污染;有同一容器 内洗涤过程,容易 交叉污染
无效复性

杂交效率

导流杂交法 10分钟
目的DNA可与杂交膜 表面及孔径中的探针 进行杂交反应,立体 式杂交
低(浅)
实验全过程在隔离的 反应室内完成,通过 外部负压吸引,分子 不易向外扩散,不易 交叉污染。
• 在HC-II的说明书中有提及高危型探针可能会与细 菌的PBR322质粒发生交叉反应(24)。
来源:内部研究资料198例HC-2阳性样本的研究 &. limitations of the procedure DIGENE high-risk HPV DNA Test hybrid capture-II,P24
来源:limitations of the procedure DIGENE high-risk HPV DNA Test hybrid captureII,P24 &. Mario Poljak, Irena J. Marin, Katja Seme, Hybrid Capture II HPV Test detects at least 15 human papillomavirus genotypes not included in its current high-risk probe cocktail. Adriana Vince Journal of Clinical Virology 25 (2002) 89--97
98.48%
特异性
95.74%
87.61%
来源:临床考核报告
HC-II的交叉 反应
• 在HC-II检测为阳性的198例样本,有18例样本不 能用其他方法(PCR-测序)证实存在其检测的13 种高危型HPV。 其中有8例样本检出13种高危型之外的其他 HPV基因型,分别为3例HPV66,1例HPV53,1 例HPV53/66,1例CP8304 ,1例HPV82 ,1例 55型。

硕世hpv21分型说明书

硕世hpv21分型说明书

硕世hpv21分型说明书
摘要:
硕世HPV21分型检测试剂盒说明书
正文:
硕世HPV21分型检测试剂盒是一种用于检测女性宫颈脱落细胞样本中的HPV病毒(人乳头瘤病毒)的检测产品。

该产品适用于临床实验室、卫生防疫部门等场所进行HPV病毒的检测。

产品由试剂盒和仪器设备两部分组成,操作步骤包括样本采集、试剂准备、样本处理和酶标检测。

首先,使用样本收集器获取女性宫颈脱落细胞样本,然后将样本放入病毒保存液中,震荡混匀后静置5分钟。

接着,吸取上层液体并放入离心机离心5分钟,吸取上清液后弃去样本。

然后将酶标抗体、阴性对照和阳性对照分别加入相应的孔中,再将样本处理液加入样本孔中,轻轻摇匀后放入37℃恒温箱中静置1小时。

最后,用洗板机将孔内液体洗去,放入酶标仪中进行检测,并记录检测结果。

结果判读分为阴性和阳性。

阴性表示未感染HPV病毒,阳性表示感染了HPV病毒,需进一步进行分型检测。

在操作过程中,应严格遵循操作规程,避免样本污染或试剂失效。

试剂盒应存放在2-8℃冰箱中,酶标抗体有效期为12个月。

HPV SOP - 不带提取

HPV SOP - 不带提取

人乳头瘤病毒核酸分型检测试剂盒(荧光PCR 法)标准操作流程一、目的:规范实验室操作,正确使用PCR扩增仪进行HPV-DNA扩增分析,以保证实验结果的准确性。

二、适用范围:人乳头状瘤病毒(HPV)基因分型检测试剂盒在扩增仪上进行扩增以及分析。

三、职责:由临床分子生物实验室专业技术人员制定程序文件,实验室负责人审核,科室主任批准实施。

四、程序:【检验方法】1. 试剂准备(试剂准备区)a) 从-20℃取出试剂盒,将各试剂融化混匀并短暂离心后备用。

计算需要进行的反应份数n (n=待测样本数+空白对照1份+阳性对照1份)。

b) 取出8个离心管分别标记1#、2#、3#、4#、5#、6#、7#和8#,分别加入n×10μl 核酸扩增反应液,然后对应每个编号离心管分别加入n×8μl A反应液(1#)、n×8μl B反应液(2#)、n×8μl C反应液(3#)、n×8μl D反应液(4#)、n×8μl E反应液(5#)、n×8μl F反应液(6#)、n×8μl G反应液(7#)、n×8μl H反应液(8#)。

c) 混匀并短暂离心后,依次分装至对应编号PCR八联管中,每管18μl,总共分装n排PCR 反应八联管,1排PCR八联管为1人份。

2. 加样(1)小心打开PCR八联管盖,每份待测样本核酸溶液、空白对照按照2μl/管依次加入对应编号含有A-H反应体系的PCR八联管中,1排PCR八联管为1人份,阳性对照(A-H组)同样按照2μl/管分别加入对应的A-H反应体系的PCR八联管中,总体积为20μl/管。

(2)盖紧PCR八联管盖,低速短暂离心。

3. PCR扩增检测(核酸扩增区)3.1 将反应管放入荧光PCR 扩增仪进行扩增检测。

4. 结果分析4.1 杭州博日Linegene 9600荧光定量PCR仪:反应结束保存结果,根据分析后图像调节基线的起始循环、终止循环(可以根据实际情况自行调整,起始循环可以在3~15、终止循环可设在5~20,调整空白对照的扩增曲线平直或低于阈值线;也可由仪器进行自动判读,起始循环为3、终止循环为15),点击确定自动获得分析结果,在同一界面的显示区察看结果。

HPV基因诊断试剂盒

HPV基因诊断试剂盒
高度的灵敏性和准确性 快速简便 同时检测多种疾病
HPV基因分型快速诊断试剂操作流程
采集样本
提取DNA
杂交
显色
PCR扩增
结果判断
检测结果:HPV16、HPV43 检测结果:HPV33、HPV35
HPV检测的临床意义
• (一)宫颈病变的筛查
•1、HPV检测的最大优势之一在于发现高危型HPV阳性而细胞学涂片正 常的妇女,因为这一人群中10%会在四年内发展成CINⅢ。 •2、筛查并浓缩高风险人群,便于进行有效监控,早期发现宫颈癌。 •3、HPV检测的阴性预测值为99%,可将筛查间隔延长至3年一次,大 大地降低了检查成本。
最常见的高危型
53%
HPV16
(HPV16、18、31、
33、45、58 )
宫颈癌患者中高危型HPV感染率(欧州2000年资料)
深 圳 不 同 HPV 亚 型 的 检 出 频 率 统 计 (WHO项目)
注:1.本表统计样本数为1153例,其中阳性样本数为119例; 由于检测样本中存在复合感染,故亚型的检出频率=(该亚型的检出次数 / 所有亚型的检出次数)×100
质的损伤可能已经产生。
病毒学检测:HPV DNA检测(PCR方法),常见方法有:基因芯 片分型检测、HC-2、荧光PCR等
特异性强、灵敏度高,操作简便快捷 (98%)
宫颈分泌物HPV结果
HPV HC2 亚能 凯谱
检测例数 1137 1137 250
阳性例数 159
阳性率(%) 14
111
9.8
98
子宫颈癌的危险因素:
• 行为危险因素:如性生活过早、多个性伴侣、多孕多产、社会经济地位低下、 营养不良及性混乱等; • 生物学因素:如细菌、病毒和衣原体等各种微生物的感染。 • 目前仅有少量研究表明宫颈癌可能存在着家族聚集现象。

HPV分型试剂盒及市场各产品比较

HPV分型试剂盒及市场各产品比较

HPV分型试剂盒1、HPV目前市场上主要产品:杂交法(达安19、凯普21、亚能23、透景26);实时荧光PCR(之江13种高危分型、港龙凯普亚能13种高危不分型、达安8个型定量);第二代杂交捕获法(HC2)等2、操作方法::①HPV②HPV实验:A、杂交法:首先加样上PCR仪做扩增,上机时间大约一个半小时左右。

PCR 完成后做杂交,目前市场上有手工杂交和使用杂交仪杂交。

操作时间2-4个小时。

B、第二代杂交捕获法(HC2):原理是利用对抗体捕获信号的放大和化学发光信号的检测,C、荧光定量PCR:直接上机通过荧光信号累积实时监测整个PCR进程,之江生物是用多重PCR对标本进行准确的13个高危型的具体分型,其他不具体分型。

举例之江产品:之江八管双通道仪器(双色荧光PCR仪器都可以用):1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12A Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1B Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2C Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3D Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4E Mix5 Mix5 Mix5 Mix5 Mix5 Mix5 Mix5 Mix5 Mix5 Mix5 Mix5 Mix5F Mix6 Mix6 Mix6 Mix6 Mix6 Mix6 Mix6 Mix6 Mix6 Mix6 Mix6 Mix6G Mix7 Mix7 Mix7 Mix7 Mix7 Mix7 Mix7 Mix7 Mix7 Mix7 Mix7 Mix7H Mix8 Mix8 Mix8 Mix8 Mix8 Mix8 Mix8 Mix8 Mix8 Mix8 Mix8 Mix8一排八管做一个标本即可具体分型!HPV核酸荧光PCR检测混合液若FAM通道Ct值≤35,结果判断为若VIC通道Ct值≤35,结果判断为Mix1 16+56 HPV16 HPV56Mix2 18+45 HPV18 HPV45Mix3 35+59 HPV35 HPV59Mix4 39+51 HPV39 HPV51Mix5 58+52 HPV58 HPV52Mix6 31 HPV31Mix7 33 HPV33Mix8 68 HPV68②四管四通道仪器(ABI7500、罗氏480、伯乐CFX96、SLAN96孔等四色荧光PCR仪器):A Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1 Mix1B Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2 Mix2C Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3 Mix3D Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4 Mix4结果判断:3、产品分析比较:4、上海之江HPV优劣势:•优点:①闭管PCR操作,避免扩增污染②能够对13个高危型精确分型③灵敏度高,操作简单,减少了杂交的操作程序,一个实验大约2个小时内完成④针对开放荧光PCR检测系统,无需额外增加设备,有人员培训基础。

HPV基因分型检测试剂盒常见问题

HPV基因分型检测试剂盒常见问题

方便工作
基因扩增检验实验室工作流程
进入各个工作区必须遵循严格 的单一方向顺序!
最佳的HPV基因分型实验室布局
工作流 向
PCR后区域
PCR前区域
临床 样本 收集 与 储存
出口
入口
最佳的HPV基因分型实验室布局

每间房间必须有其专用的工作服及一次性手套; 每个工作区都应有独立的一套仪器设备及耗材; 不同区域的仪器设备及耗材不能混用;
临床试验结果分析及常见问题
九、封阻液抽不动 可能原因: ①仔细观察封阻液是否有絮状微 生物或澄淀,如果有则证明封阻 液有发霉迹象,是由于操作中没 有使用灭菌枪头而造成的。 重新购买封阻液,同时确保试验中使用已灭菌 的移液枪头
临床试验结果分析及常见问题
HPV基因分型检测项目 临床试验实际问题
目 录

试验开展实验室要求 HPV临床样本的采集方法及注意事项 临床试验操作注意事项 临床试验结果分析及常见问题
HPV基因分型检测试验项目
——试验开展实验室要求
临床基因扩增实验室设置的一般原则

各区独立 注意风向 因地制宜


“十六字方针”

临床试验结果分析及常见问题
402721 403022 403040 403078
稀释 1:10 DNA模板重复PCR
HPV 58
HPV 18
IC (+) HPV 51
弱 IC, HPV 52
临床试验结果分析及常见问题
三、杂交结果中IC点没有,同时阳性点淡或不清楚; 可能原因:① 样本中含有抑制PCR反应的物质; ② 样本中HPV DNA浓度较低,同样本中 含有抑制PCR反应的物质; ③ 病人样本不符合凯普分型试验要求,样本本身 为阴性结果,但因为样本中有抑制PCR反应的物 质,同时操作人员对杂交温度又控制不当,出 现非特异性杂交点; 建议增加用于扩增DNA浓度,重新PCR扩增及杂交反应。

HPV DNA检测标准操作程序

HPV DNA检测标准操作程序

入空白对照、阳性质控、阳性DNA对照,建议加样编号顺序如下:首先依次是不同的样本编号,最后为阳性质控、阳性DNA对照、与空白对照管(蒸馏水)。

6.2.3 从冰箱中取出PCR试剂盒,将PCR Premix融化后,与Taq酶管一起放入离心机中点动离心。

6.2.4 将试剂放入生物安全柜内,将已点动离心了的PCR premix管、Taq酶管插在冰块上保持在低温条件下。

6.1.6 按照反应数计算所需的PCR各个组份的数量来准备PCR Mastermix(可参照PCR MIX与酶混合比例如下表)。

6.2.7 在生物安全柜内,按已计算好的PCR premix用量,从冰中取出相应的PCR premix管吸取准确量后加入对应的1.5ml离心管中,将PCR premix管放回冰块中。

6.2.8 垂直将枪头小心打入废液缸中,确保移液枪前臂没有碰到废液缸口。

6.2.9 从冰中取出Taq酶管,按计算好的用量(可参照PCR MIX与酶混合比例附表),吸取准确量后分别加入对应的1.5ml离心管中。

6.2.10 盖紧1.5ml离心管盖,同时将PCR premix管及Taq酶管从超净台中取出放回-20℃冰箱的原包装中,标注已使用数量。

6.2.11 将已加入PCR premix和Taq酶的1.5ml离心管在涡旋器上振荡5sec,放入离心机点动离心。

6.2.12 在生物安全柜中,将6种PCR混合液分装入对应的0.2ml PCR扩增管中,每管加入混合液18ul,加完后将所有PCR管盖盖上。

6.3 DNA提取6.3.1将临床样本及阴性对照品置室温下解冻,把标本编号,取出相应数量的样本管,对应编号。

6.3.2 将临床样本振荡混匀,伸入采集管底部吸取临床样本0.8ml 至管底,。

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分型情况:16型占26%左右,其他依次 为58、33、52、45、18。与其他地区的 统计有明显差异。 高危人群阳性率在30%左右,普通人群 在11%左右。 温州地区丽水地区阳性率明显高于省内 其他地区。 进一步的研究正在进行中。
HPV基因结构
按功能可分为早期区(E区)、晚期区 (L区)和非编码区 ( LCR)三个区域。
正常妇女
主要是性传播
HPV
年龄>30岁
感染几率:>40%
CIN II/III(组织学) 平均8~24个月
8-10年
潜伏感染期 亚临床感染期 临床症状期 HPV相关肿瘤期
图 HPV感染与宫颈病变的自然过程
筛查是早诊早治关键
临床提示,从HPV的持续感染到一般的宫颈癌前病变并
最终发展为宫颈癌大约需要 8-10年。因此,必须采取适当
三、宫颈癌的早期筛查
2001年版TBS(The Bethesda System)报告分类中 常见的细胞学诊断宫颈癌前病变的几个术语解释:
未见上皮内病变--鳞状上皮细胞异常--腺上皮细胞异常
ASC(Atypical Squamous Cells):非典型鳞状上皮细胞
ASC-US(ASC of Undetermined Signification):意义不明确的非典型鳞状上皮细胞
宫颈分泌物HPV结果
HPV HC2 亚能 检测例数 1137 1137 阳性例数 159 111 阳性率( % ) 14 9.8
凯谱
250
98
39.2
注:亚能和凯普均以13种高危型别统计
若以23种型别计算,亚能HPV阳性129例,阳性率为11.3% 。 共剔除18例13种型别以外的型别
HPV基因分型快速诊断试剂
注:1.本表统计样本数为1153例,其中阳性样本数为119例; 由于检测样本中存在复合感染,故亚型的检出频率=(该亚型的检出次数 / 所有亚型的检出次数)×100 %, 所有亚型检出次数为226。 2. 本表统计数据由WHO深圳项目提供,HPV分型基因检测试剂由亚能生物技术(深圳)有限公司提供。
浙江12000例HPV检测初步结果
HPV感染途径及危险因素
感染途径:
•主要为性传播和直接皮肤接触 •特别案例:母亲分娩过程中传播至婴儿的口腔
危险因素:
1、年龄因素:30岁以后HPV感染率下降,但危险性提高。 2、性行为的影响:初次性交年龄越小,性伴侣数量越多,感染率越高;
3、避孕方法:尚无一致意见;
4、免疫抑制状态使HPV感染的危险性增加:如HIV感染后、肾移植等。
表:不同的筛查频率,可以降低的宫颈癌的累积发病率
筛查频率 每年筛查一次 每两年筛查一次 每三年筛查一次 一生筛查5次 一生筛查3次 一生筛查2次 一生筛查一次 累积发病率的降低(%) 90-93 86-91 75-88 61-74 35-55 29-42 17-32
摘自:Goldie SJ, et al. 2001.13 ;筛查策略所应用方法包括:1-VIA检查,2-HPV检测,3-巴氏涂片。
任何病变,或引起良性病变和低度病变,如尖锐湿疣或轻度不典型 增生等。而癌变则与病毒DNA整合入宿主染色体密切相关。
高危型HPV DNA链通常在E1或E2的开放读码框内断裂,使HPV DNA
整合入染色体脆弱区。E6和E7具有促进和维持整合状态的功能。 HPV E6蛋白间接抑制 p53活性,阻碍细胞对DNA损伤的反应。(负
的预防和筛查措施,才能够阻止宫颈癌的发生并有望最终 消灭宫颈癌。在现代医学技术的支持下,妇科医生应该大 有作为。
表:筛查间隔时间与阳性病变风险系数表
1 2 3 3~5 5~10 >10
筛查间隔时间 (年)
阳性病变风险 系数
1
2
2.5
3
4
9
备注:1~3年筛查间隔比较安全,随着筛查间隔的增加,风险大幅度增加。
HPV病毒电镜图
型别与分布
型别:已发现100多种不同的亚型(如果DNA序列同源性小于90%,则定为新的亚
型)。其中超过35种可以感染人类的生殖器官,约30种与肿瘤有关。
1)低危型:宫颈上皮内低度病变,引起外生殖器湿疣等良性性病(HPV 6、11、42) ; 2)高危型: 宫颈上皮内高度病变,与宫颈癌的发生有关(HPV 16、 18、 31、 33、35、 39 、45、 51、 52、 53、56、 58、59、 66及 68);
ASC-H(ASC cannot clude HSIL):意义不明确的非典型鳞状上皮细胞不除外高度鳞状上皮内病变 L-SIL(Low-grade Squamous Intraepithelial Lesion):低度鳞状上皮内病变---HPV感染、CIN I H-SIL(High-grade SIL):高度鳞状上皮内病变---与CIN II、CIN III或原位癌含义一致 SCC(Squamous Cell Carcinoma):鳞状细胞癌 AGC( Atypical Glandular Cells):非典型腺上皮细胞 AIS(Adenocarcinoma In Situ):腺原位癌 ACA( Adenocarcinoma):腺癌
HPV基因分型快速诊断试剂操作流程
采集样本
提取DNA
杂交
显色
PCR扩增
结果判断
检测结果:HPV16、HPV43
检测结果:HPV33、HPV35
HPV检测的临床意义
(一)宫颈病变的筛查
1、HPV检测的最大优势之一在于发现高危型HPV阳性而细胞学涂片正 常的妇女,因为这一人群中10%会在四年内发展成CINⅢ。 2、筛查并浓缩高风险人群,便于进行有效监控,早期发现宫颈癌。 3、HPV检测的阴性预测值为99%,可将筛查间隔延长至3年一次,大 大地降低了检查成本。
1)长期宫颈糜烂可导致宫颈上皮细胞形态变异,但非HPV引起的细胞形态异
常与宫颈癌病变没有直接联系。 2)在感染早期,细胞往往不会出现形态变化,但此时HPV对细胞内遗传物 质的损伤可能已经产生。
病毒学检测:HPV DNA检测(PCR方法),常见方法有:基因芯 片分型检测、HC-2、荧光PCR等
特异性强、灵敏度高,操作简便快捷 (98%)
1、月经来潮后10~18天为最佳检查时间
2、检查前48h内不要做阴道冲洗,不用使用阴道内用药物 3、检查前48h内不要行性生活
宫颈癌的常规临床检测方法
临床检查:如肉眼观察、阴道镜等
操作简便,但准确率和特异性有待提高(50-70%)
细胞学检测:观察宫颈上皮细胞的变异,常见方法有:巴氏涂 片、LCT、 TCT等(70%以上)
16
18 30,40,58,69 31,33,35,39 45,51,52,56 42,43,44 53 54 55
CIN,
CIN CIN CIN CIN I CIN I 正常宫颈上皮 尖锐湿疣 鲍温样丘疹病
59
61,62,64,67 66 70
VIN
VaIN 鳞癌 外阴乳头状瘤
HPV在欧洲的常见分型和感染率
*1995年IARC专题讨论会:高危型HPV持续感染是宫颈癌的主要病因。
--- 99.7%的宫颈癌患者都能发现高危型HPV感染。
二、HPV的生物学研究
人乳头瘤病毒(Human Papillomaviruses, HPV)
双链DNA无包膜病毒
环状DNA,约8Kb; 病毒颗粒直径为50~55nm; 依靠宿主细胞进行复制、转录和 翻译。
分布:有些亚型和地区、宫颈癌的病理类型有关。
HPV45在非洲西部很常见,HPV39和59在美洲中部和南部常见,HPV52,58在中国常见。
在宫颈鳞状上皮细胞癌中以HPV16(占51%),在腺癌和腺鳞癌中HPV18分别占56%和39%。

6,11
HPV型别与宫颈病变
宫颈病变 湿疣,CIN I
常见HPV型别
最常见的低危型
HPV33
3%
14% Other
(HPV6、11)
6%
HPV31
最常见的高危型
53% 15%
HPV18
HPV16
9%
HPV45
(HPV16、18、31、 33、45、58 )
宫颈癌患者中高危型HPV感染率(欧州2000年资料)
深 圳 不 同 HPV 亚 型 的 检 出 频 率 统 计 (WHO项目)
组织学检查的分类:
CIN(Cervical Intraepithelial Neoplasm):宫颈上皮内瘤变 CIN I:轻度不典型增生 CIN II:中度不典型增生 CINIII:重度不典型增生、原位癌
一过性,80%
平均8个月
年龄<30岁 HPV暴露
无细胞学改变/HPV消除 机体免疫机制 CIN I(组织学) 辅助致癌因素 子宫颈浸润癌
E区分为E1~E7开放阅读框架,主要编码与 病毒复制、转录、调控和细胞转化有关的蛋 白( HPV无E3)。 L区分L1和L2,分别编码主要衣壳蛋白和次 要衣壳蛋白。 LCR是E区与L区间-6.4~1.0Kb的DNA片段, 可负责转录和复制的调控
HPV的致癌机理
HPV以游离态感染上皮细胞后,可以持续存在于染色体外,不引起
中国癌症研究基金会(CCRF)
宫颈癌筛查及早诊早治指南
筛查方案:基本方案:肉眼观察+冰醋酸试验(碘液试验)(农村普查) 一般方案:HPV+pap smear检测(二级及以上医院) 最佳方案:HPV+TCT检测(发达地区)
检查后随访对象:细胞学低度病变、CIN I以上者、“特殊职业”妇女人
群、年龄 >30 岁以上的高危HPV感染者,每年定期随访检查。 注意事项:
子宫颈癌与人乳头瘤病毒
(HPV)的研究进展
一、宫颈癌的概述及其病因学研究进展 二、HPV的生物学研究 三、宫颈癌的早期筛查 四、宫颈病变的治疗
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