微生物活菌数影响因素与计算方法
实验五、酵母的活菌观察及活细胞计数
实验五、酵母的活菌观察及活细胞计数一、实验目的1、认识酿酒酵母的形态特征。
2、了解微生物细胞活体染色的原理，能辨别酿酒酵母的死活。
3、学校血细胞计数法的原理和方法。
二、实验原理1、血细胞计数板计数的原理：将经过适当稀释的微生物细胞或孢子悬液，加至血细胞计数板的技数室中，在显微镜下逐格计数。
由于计数室的容积是固定的（0.1mm3），故可将在显微镜下计得的菌体细胞数（或孢子数）换算成单位体积试样中的含菌量。
此法计得的数值为样品中的死菌数和活菌数的总和，故称其为总菌计数法。
2、血细胞计数板：是一块特制的精密载玻片，在载玻片上有四条长槽，将玻片中央区域分隔成3个平台，中间平台比两边的平台低0.1mm，此平台中间又有一条短槽将其分隔成2个短平台，在2个平台上各有一个相同的方格网。
它被划分为9个大格，其中央大格即为计数室。
该计数室又被精密地划分为400个小格，但计数室还有25个中格（为16小格/每中格）或16个中格（为25小格/每中格）两种，每中格的四周均有双线界限标志，以便在显微镜下区分。
因此两种中格类型计数室的总体积是一样的。
即计数室大方格的边长为1mm，故面积为1mm2,j计数室与盖玻片间的深度为0.1mm，所以计数室的体积为0.1mm3。
计数时，先计得若干中格（一般为5个）中格内的含菌数，再求得每中格菌数的平均值，然后乘上中格数（16或25），就可得出1大方格（0.1mm3）计数室中的总菌数，若再乘上104（换算成每mL的含菌量）及菌液的稀释倍数，即可算出每mL原菌液中的总菌数值。
算术计算法：菌数（个/mL）=(x1+x2+x3+x4+x5)/5 ×25(或16)×104×稀释倍数3、活体染色法：活体染色法就是用对微生物无毒性的染料（如美兰、刚果红、中性红等染料）配成一定的浓度，，再与一定量的菌液混合，经一段时间后死菌和活菌会呈现不同的颜色，这样便可以在显微镜下区分活菌数和死菌数。
微生物活菌计数方法
第十一页，共43页。
平板计数法
（一）检测前的准备 （二） 操作过程（母液制备、系列稀释、
加样、涂布、培养、菌落识别、计数） （三） 计算
第十二页，共43页。
（一）检测前的准备
➢ 根据菌种的特性选择方法 ➢ 天平，摇床，酒精灯，培养箱，染色液，
微生物计数方法种类
➢ 直接计数法 ➢ 核酸计数法 ➢ 活菌计数法（培养法）
1. MPN（Most-Probable-Number ）最大可能数法 2. 混菌法
3. 平板技术法
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直接计数法
1. 显微镜直接计数 2. 比浊法 3. 电子计数器计数法
第二页，共43页。
1. 显微镜直接计数
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重复
1 2 3 菌落 平均数
稀释倍数
（霉菌在马丁培养基 上）
103
104 105
6
/
/
7
/
/
8
/
/
7.0
/
/
/
霉菌数 个/g
0.69×106
霉菌 /g ） 7 .0 （ 13 0 个 10 0 0 .6 1 9 60 1.1 0 0 .1
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稀释倍数
杂% 菌 ） 0 .1 率 0 9 .0 0 （ 0 .0 60 9 1 3 0 1 0 .2 0 4 1 .2 0 0 .1 0 9 .0 0 0 .0 60 930
当只有一个稀释度，其平均菌落数在20～300之间时，则以 平均菌落数计算。
若有两个稀释度，其平均菌落数均在20～300之间时， 应按两者菌落总数之比值决定：
益生菌产品活菌数要求标准
益生菌产品活菌数要求标准
益生菌产品的活菌数要求标准是根据不同的国家和地区的法规和标准进行确定的。
一般来说，活菌数是指每克或每毫升产品中所含的活菌数量。
在中国，益生菌产品的活菌数要求按照《食品安全国家标准食品微生物学检验》(GB 4789.2-2016) 进行评估。
根据该标准，不同类型的益生菌产品有不同的活菌数要求，例如：乳酸菌制品的要求为每克大于等于10^6CFU (菌落形成单位)，其他类型的益生菌产品可能有不同的要求。
除了中国的标准外，其他国家和地区也有各自的益生菌产品活菌数要求标准。
例如，欧洲联盟对于益生菌产品的活菌数的最低要求是每克大于等于10^7CFU。
而在** ，益生菌产品一般被视为膳食补充剂，在该国没有具体的法定活菌数要求。
因此，具体的益生菌产品活菌数要求标准应根据所在国家或地区的法规和标准来确定。
建议消费者在购买益生菌产品时，注意查看产品包装上的标示，并根据自身的需求及相关专业建议进行选择。
高中生物第1章微生物技术第3课时微生物数量的测定同步备课教学案北师大版选修
⾼中⽣物第1章微⽣物技术第3课时微⽣物数量的测定同步备课教学案北师⼤版选修第3课时微⽣物数量的测定[学习导航] 1.阅读教材P17内容，概述测定某种微⽣物数量的⽅法和步骤。
2.结合教材P15～17“测定⼟壤中微⽣物的数量”实验，掌握使⽤平板菌落计数法测定⼟壤中微⽣物的数量。
[重难点击] 1.掌握测定某种微⽣物数量的⽅法和步骤。
2.学会使⽤平板菌落计数法测定⼟壤中微⽣物的数量。
⼀、微⽣物数量测定的⽅法和原理微⽣物数量的测定也是重要的微⽣物技术之⼀，平板菌落计数法是⼀种应⽤⼴泛的微⽣物数量测定⽅法。
1.平板菌落计数法的原理：根据微⽣物在⾼度稀释的条件下，固体培养基上所形成的单个菌落，是由⼀个单细胞繁殖⽽成的，即⼀个菌落代表⼀个单细胞。
2.计算⽅法：从平板上的菌落数推测出每克样品中的菌落数的计算⽅法是：同⼀稀释度的菌落平均数÷0.2÷稀释度×10。
3.优缺点(1)优点：能测出样品的活菌数，可⽤于微⽣物的选种与育种、分离纯化及其他⽅⾯的测定。
(2)缺点：操作烦琐、时间较长、测定值常受各种因素的影响。
4.该⽅法统计的菌落数⽐活菌的实际数⽬低，这是因为当两个或多个细胞在⼀起时，平板上观察到的只是⼀个菌落。
1.为什么分离不同的微⽣物要采⽤不同的稀释度？答案⼟壤中各种微⽣物的数量是不同的，为获得不同类型的微⽣物，就需要按不同的稀释度进⾏分离。
2.平板菌落计数法(1)平板菌落计数法根据操作步骤的不同可分为哪两种？答案①涂布平板法：⽤灭过菌的涂布器将⼀定量(⼀般为0.1 mL)的适当稀释过的菌液涂布在琼脂培养基的表⾯，然后保温培养直到菌落的出现。
记录菌落的数⽬并换算成每毫升样品中的活细胞的数量。
②倒平板法：将已知体积(0.1～1 mL)的适当稀释过的菌液加到灭过菌的培养⽫内，然后倒⼊溶化后冷却⾄45 ℃的琼脂培养基，⽔平晃动混匀，待凝固后保温培养到出现菌落，然后与涂布平板法同样计数。
(2)平板菌落计数法中换算样品的含菌数依据什么数据换算？答案依据稀释倍数、取样接种量和菌落数。
8 第五章 第1~2节 微生物的生长及其影响因素
应用意义： 发酵生产形成的重要时期（抗生素、氨基酸 等），生产上应尽量延长此期，提高产量，措 施如下： • 补充营养物质（补料） • 调pH • 调整温度
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④. 衰亡期（decline phase）
特点： ① 细胞死亡数增加，死亡数大大超过新增殖的细胞数，群体 中的活菌数目急剧下降，出现“负生长”。 ② 细胞进行内源性呼吸（因为营养缺乏），出现多形态、畸 形或衰退形，芽孢开始释放。
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原理：将1mm2×0.02mm的薄层空间划分为400小格，
从中均匀分布地选取80小格，计数其中的细胞数目， 换算成单位体积中的细胞数。
适用范围：个体较大细胞或颗粒，如血球、酵母菌
等。不适用于细菌等个体较小的细胞，因为（1）细 菌细胞太小，不易沉降；（2）在油镜下看不清网格 线，超出油镜工作距离。不适用于运动细菌计数
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恒化器Chemostat 或bactogen
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恒浊连续培养
概念：调节培养基流速，使培 养液浊度保持恒定的连续培养 方法。 原理：通过调节新鲜培养基流 入的速度和培养物流出的速度 来维持菌浓度不变,即浊度不变。 主要采用恒浊器，当浊度高时， 使新鲜培养基的流速加快，浊 度降低，则减慢培养基的流速。 特点：基质过量，微生物始终 以最高速率进行生长，并可在 使用范围：用于生产大量菌 允许范围内控制不同的菌体密 体、生产与菌体生长相平行 度；但工艺复杂，烦琐。 的某些代谢产物，如乳酸、 32 乙醇等。
★误差：多次稀释造成的误差是主要来源，其次还有由于
样品内菌体分布不均匀、以及不当操作
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（二）血球计数板法
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（a）计数室为一个大方格，面积为1mm2，深度为 0.01mm，因此计数室容积为0.1mm3.常见的计数 板，一个大方格分为25个中格，每个中格分为16个 小格，故计数室共有400个小格。 (c) 数对角线上5个中格(80个小格）的 细胞总数，A； 稀释倍数：B 细胞个数=50000A*B（mL-1） (A*400/80)*B/(0.1*10-3)
活菌培养计数方法
活菌培养计数方法1.2 它也是衡量很多工作效果的一把尺子。
比如说在环境治理中，想要知道治理措施对微生物群落的影响，活菌计数能给我们答案。
这就如同在农田里，农民伯伯要知道地里有多少害虫，才能判断防治措施有没有用，活菌计数就是这样一个判断微生物相关工作成效的关键手段。
二、活菌培养计数的常见方法2.1 平板菌落计数法。
这是个经典的方法，就像老祖宗传下来的手艺一样靠谱。
把样品稀释后，接种到琼脂平板上，让细菌们在平板上“安营扎寨”，一个细菌经过繁殖就会形成一个菌落。
然后我们就像数星星一样去数这些菌落，再根据稀释倍数算出原来样品中的活菌数量。
不过这个方法也有点小麻烦，就像绣花一样，得小心操作，不然容易出错。
比如说稀释的时候手抖了一下，那结果可能就差之毫厘谬以千里了。
2.2 液体稀释法。
这个方法有点像玩猜数字的游戏。
把菌液进行一系列的稀释，然后接种到液体培养基中。
观察哪个稀释度的培养基最后有细菌生长，哪个没有。
通过这种方式来推算出原来菌液中的活菌数量。
但是这个方法有时候就像雾里看花，不是那么直观，得有一定的经验才能准确判断结果。
2.3 膜过滤计数法。
这个方法就像是用筛子筛东西一样。
把样品通过特定的滤膜，细菌就被留在滤膜上了，然后把滤膜放到培养基上培养，最后数菌落。
这个方法对于那些菌量比较少的样品特别适用，就像大海捞针的时候，这个方法能让你更容易找到那根针。
3.1 操作过程要严格无菌。
这是重中之重，就像士兵上战场要带好武器一样。
一旦有杂菌混入，那就会像一颗老鼠屎坏了一锅粥，结果就完全不可信了。
所以在操作的时候，要像做手术的医生一样小心翼翼，从培养基的制备到接种的每一个环节，都不能马虎。
3.2 培养条件要合适。
不同的细菌就像不同的植物，有的喜欢阳光，有的喜欢阴凉。
细菌对温度、湿度、氧气等条件都有要求。
如果培养条件不合适，就像把热带植物种到寒带一样，细菌可能长不好或者干脆不长，那计数结果肯定也是不准确的。
2021届高三一轮复习生物-例析菌落等微生物数目统计计数方法的几个常见问题
高中生物复习-例析菌落等微生物数目统计计数方法的几个常见问题1、从方法上分析菌落数目例 1 ：若要测定培养液中微生物B的菌体数，可在显微镜下用直接计数;若要测定其活菌数量，可选用法进行计数。
例2 ：Ⅱl号培养基加入琼脂后可以制成固体培养基，若要以该固体培养基培养目标菌并对菌落进行计数，接种时，应采用的方法是。
(参考答案:血细胞计数板稀释涂布平板法稀释涂布平板法)显微镜直接计数法是利用显微镜、血细胞计数板等工具对纯培养悬浮液直接计数来检测样本中的细胞数目。
该方法能直观、快速地检测出单细胞状态下的微生物或丝状微生物所产生的孢子的数目，但是不能区分死细胞和活细胞，不适合细胞密度低的样品。
稀释涂布平板法常常需要先将样品进行一系列的稀释，然后吸取适量稀释样品涂布在平板上，在稀释度适宜的情况下一个菌落是由一个活细胞繁殖形成的，从而通过统计平板上的菌落数来推算活菌数。
该方法能灵敏地检测出样品中的活菌数，但实验过程手续繁、耗时长、影响因素较多。
显微镜直接计数法由于不能区分死菌和活菌，因此计数结果往往比实际活菌数偏高。
为避免把死菌计数在内，可用台盼蓝染色:被染成蓝色的为死菌，反之为活菌。
稀释涂布平板法测定活菌数目的时候，由于相邻两个或多个细胞连在一起，可能形成一个菌落，因此测定值比实际值小。
2、从对照原则上分析菌落数目例3：若在某次调查中，某一实验组平板上菌落平均数为36个/平板，而空白对照组的一个平板上出现了6个菌落，这种结果说明在此次调查中出现了现象。
若将30(即36-6)个/平板作为本组菌落数的平均值，该做法(填“正确”或“不正确”)。
(参考答案∶污染不正确)设置不接种的空白培养基作为空白对照组，证明培养基制备过程中没有被杂菌污染，增强实验的说服力，保证实验结果的准确性。
若该培养基上出现了菌落则说明实验过程出现污染现象，应舍弃数据，查找原因，重做实验。
若为了证明选择培养基有选择作用，对照组往往是完全培养基。
有效微生物活菌总数检测技术研究
重要 的意 义 。 目前 国内外 尚无 针对 Ｅ Ｍ 制剂 活菌 总 数 的有效 检 测 方法 与 标准 ． 实际 操 作 中多 采 用 Ｇ Ｂ
４ ７ ８ ９ ． ２系列 《 食 品微 生物 学检 验 菌 落 总数 测 定 》 的
以Ｇ Ｂ ４ ７ ８ ９ ． ２ ～ ２ ０ １ ０的计 数 培养 基及 培 养条 件
方法 。而 Ｅ Ｍ 制剂 菌群 组成 复杂 ， 各种 微生 物生 长 所 需营养 与环 境条 件及 其生 长速度 差 异较大 。 国标 法在 Ｅ Ｍ 制 剂活菌 总数 检测 中 的适 用 性有 待考 察
本文在 Ｇ Ｂ ４ ７ ８ ９ ． ２ — ２ ０ １ ０的 基 础 上 设 计 和 优 化 了
干枯 ． 每 块 平 板 加 入培 养基 ２ ５ — ３ ０ ｍ１ ． 培 养 时 间超 过７ ２ ｈ的平板 以保鲜 膜 密封 ． 防 止水分 过度 蒸发 ３ ． 检测 效果 的评 价
以按 照 Ｇ Ｂ ４ ７ ８ ９ ． ２ — ２ ０ １ ０方法 检 测 出的 活菌 总
数为 １ ， 各 因素不 同水 平 下检 出的 活菌 总 数相 对 于
有效微 生物活菌总数
检 测 技 术研 究
肖玉 娟 何少贵 林 慧霞
有 效 微生 物 ， 英 文名 Ｅ ｆ ｅ ｃ ｉ ｆ ｖ ｅ Ｍｉ ｃ ｒ ｏ ｏ ｒ ｇ ａ ｎ ｉ ｓ ｉ ｎ ｓ ．
常 缩写 为 Ｅ Ｍ． 是 日本琉 球大 学比 嘉照 夫教 授 在 ２ ０ ２ ． 样品检 测
Ｅ Ｍ 制 剂 中活 菌 总 数 是 影 响 产 品 质 量 的 主 要
因素 ， 因此 ． 对Ｅ Ｍ 菌 中活 菌 总数 进 行 准确 检 测 有
国标 法检测 出 的活菌 总数 的比 值为报 告 率 ． 即报 告 率高低 为检 测效 果 的评价标 准
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微生物活菌数影响因素与计算方法Abstract：The factors affecting the number of live bacteria were obtained by analyzing the counting methods of microecological agents in recent years, which provided the theoretical basis for the fermentation process of microecological agents in the future.By analyzing the influence of different conditions and fermentation technology on the number of living bacteria, the main factors which can affect the number of living bacteria were obtained.Results showed that fermentation temperature, fermentation time and culture medium were the main factors affecting the number of live bacteriahe fermentation temperature and fermentation time were controlled in the process of optimization of microecological preparation process.Keyword：viable count; microecologics; preparation process;微生态制剂源自于微生态学原理学, 其具有保护或调节微生态平衡的功能, 通过对宿主产生益生菌或者通过促进有益物质生成而制备成的制剂, 主要起到预防、调节和治疗疾病的作用。
平板菌落计数法是将待测样品经过适当稀释, 将稀释后的样品在一定条件下进行培养, 培养后得到的样品中所含菌落的数量, 在一般情况下认为将一个肉眼直观可以看见的菌落代表一个单细胞。
选择一个合适的稀释度并乘以相应的稀释倍数就可以比较准确地获得样品中微生物的具体数量。
平板菌落计数法以其具有良好的重复性, 并可以相对准确地体现样品中活菌数量的优点, 成为了如今我国卫生标准规定所认定可行的方法, 并且在食品药品研究领域得到了广泛的应用。
1、微生物活菌计数方法分析1.1、比浊法在进行微生物液体培养时, 活菌的增加导致培养液浑浊度的增加, 该方法能够简单、快速、直观地观察活菌的生长趋势并且可以运用分光光度计测定其含量, 但在测定时未能判断微生物的死活, 所以该测定方法不太准确。
1.2、含氮量测定法大多数微生物的含氮量比例较一致, 根据含氮量再乘以一定的数值即可测得其粗蛋白的含量, 从而大致可以得到活菌的生长情况, 传统方法常用凯氏定氮法进行测定, 该方法具有广泛的适应性、操作简单易行、试剂消耗少等优点, 但是其只能测得有机氮的含量, 所以其测定结果不太准确。
1.3、血球计数板法此法是在显微镜下直接进行测定, 方便快捷并且仪器损耗较小, 但在一定的容积中微生物的个体数目包括死活细胞均被计算在内, 还有微小杂物也被计算在内, 这样得出结果往往偏高, 因此适用于对形态个体较大的菌体计数。
1.4、液体稀释法对活菌进行连续的10倍系列稀释, 经过培养后, 记录每个稀释度出现生长的试管数, 然后查MPN表(最大可能数表) , 再根据样品的稀释倍数就可计算其中的活菌含量, 该方法可较准确计算活菌数, 但操作过程比较繁琐。
1.5、平板菌落计数法取一定体积的稀释菌液涂布在合适的固体培养基, 经培养后由每个单细胞生长繁殖而形成肉眼可见的菌落, 即一个单菌落应代表原样品中的一个单细胞;统计菌落数, 根据其稀释倍数和取样接种量即可换算出样品中的含菌数, 但其操作繁琐, 需要培养一定时间才能获得, 而且测定结果受多种试验因素(如培养温度、培养时间、培养基等) 的影响, 但是该方法能够相对准确地获得活菌数量的信息, 所以被广泛应用。
2、影响微生物活菌数的因素2.1、培养基对活菌的影响不同培养基中所含的成分与含量都不尽相同, 例如最简单的基础培养基, 其主要成分就是牛肉浸液和蛋白胨, 其主要功能是用于细菌的增菌、检验;再在此基础上会有营养培养基, 可加入葡萄糖、血液、生长因子等特殊成分, 供营养要求较高的细菌和需要特殊生长因子的细菌生长, 所添加的成分不同, 对活菌的影响就会不同;除此之外, 鉴别培养基在培养基中加入抑制剂, 去抑制标本中的杂菌生长, 有助于对所选择的细菌种类的生长, 主要用于区分目标菌, 不同培养基的用途不同, 其中不论是碳源或是氮源的含量均会对活菌数形成产生影响。
严佩峰等人研究脱脂乳、脱脂乳酶解液和MRS 3种基础培养基对乳酸菌进行发酵培养, 得到脱脂乳酶解液是保加利亚乳杆菌和嗜热链球菌混合菌种较好的基础培养基, 保加利亚乳杆菌在该培养基进行培养时活菌数最高。
张红艳等人【2】研究发现对碳源和氮源是影响地衣芽孢杆菌活菌数的主要因素, 其中玉米粉对地衣芽孢杆菌的活菌数影响最大。
2.2、培养时间对活菌的影响根据活菌生长繁殖速率的不同, 可将生长曲线大致分为迟缓期、对数期、稳定期和衰亡期, 所以活菌在不同时间之下进行培养都会对活菌的数量造成影响, 其中, 细菌在对数期生长迅速, 活菌数以恒定的几何级数增长, 生长曲线图上细菌数的对数呈直线上升, 达到顶峰状态, 期间细菌的形态、染色性、生物活性等都较典型, 对外界环境因素的作用敏感, 所以常会选取对数期的活菌作为研究对象进行试验。
高业成将嗜酸乳杆菌采用倾注的接种方式于36℃分别在24, 48, 72 h进行培养, 结果得到嗜酸乳杆菌在培养到72 h时, 可以更加容易观察菌斑, 所以嗜酸乳杆菌的最佳观测期为72 h。
闫亚梅研究发现在选用保加利亚乳杆菌进行验证时, 当将其培养至48 h时, 活菌数最高且容易观察。
2.3、培养温度对活菌的影响温度是通过影响微生物膜的液晶结构、酶和蛋白质的合成与活性, 以及RNA的结构和转录等影响微生物的生命活动, 具体表现在2个方面:一方面, 随着微生物所处环境温度升高, 微生物细胞中的蛋白质和酶活性增强, 生物化学反应加快, 生长速率提高;另一方面, 随温度上升, 微生物细胞中对温度较敏感的组成成分(如蛋白质、核酸等) 会受到不可逆的破坏。
超过最适温度以后, 生长速率随温度升高而迅速下降。
易文芝对益生菌发酵技术进行研究, 发现菌株在37℃进行培养时, 可以得到较高活菌数。
张岩等人研究发现乳酸乳杆菌在4℃的条件下进行保存可以得到最佳活菌数, 对延长乳酸乳杆菌活力提供了有力的支持。
李志成等人研究发现不同发酵温度下所制得的冻干发酵剂活菌数均有很大不同, 其中于30℃条件下进行发酵所制得的冻干发酵剂的活菌数最高。
2.4、接种方式对活菌的影响常见的微生物接种方法有平板涂布法与液体倾倒法, 平板涂布法不仅可以用于计算活菌数, 还可以利用其在平板表面生长形成菌苔的特点用于检测化学因素对微生物的抑杀效应, 其可以计数, 可以观察菌落特征, 还可以进行菌种的分离, 但接种前需梯度稀释, 吸收量较少, 较麻烦, 平板不干燥效果不好, 容易蔓延;液体倾倒法相较平板涂布法简单, 将液体迅速直接倾注于平皿, 防止污染即可。
曾理等人研究发现在采用平板涂布法测定乳酸菌活菌数时, 该法操作较为简便, 且经培养后发现乳酸菌的生长状况良好, 同时能够更加容易观察到乳酸菌的菌斑状态, 对乳酸菌的活菌计数非常适合。
高业成通过对嗜酸乳杆菌和鼠李糖乳杆菌分别进行平板涂布法和液体倾倒法进行培养, 结果显示以上2种方法对活菌数的影响并没有显着差异。
2.5、微生物发酵工艺优化对活菌的影响不同发酵工艺会对活菌的活力产生影响, 在不同发酵条件下所得到的活菌存活率均有所不同, 如果想要得到最高活菌数, 必须控制其发酵条件, 其中对发酵温度与发酵时间的控制尤为重要。
陈庆彩等人研究发现以鼠李糖乳杆菌和瑞士乳杆菌二者进行共培养和发酵, 在初始酸碱度值6.8, 接种量6%, 发酵温度37℃, 鼠李糖乳杆菌与瑞士乳杆菌的接种比例2℃1, 除此之外, 瑞士乳杆菌提前接种3 h, 在这个条件下, 得到乳酸菌的活菌数最高。
吴楠等人研究发现影响德氏乳杆菌活菌数的主要因素是发酵温度、发酵时间与接种量, 其中发酵时间为最重要的影响因素。
2.6、其他因素对活菌的影响除了以上所论述的一些常规影响条件外, 还有其他因素, 如水分含量、其他添加物质等会对活菌数产生影响。
刘秀清等人研究发现不同益生元对鼠李糖乳杆菌的生长发酵产生影响, 其中低聚异麦芽糖对鼠李糖乳杆菌的生长促进作用效果最佳。
郭羽等人研究发现黄芪多糖对鼠李糖乳杆菌的生长具有促进的作用, 除此之外, 还可以改善鼠李糖乳杆菌的稳定性。
鲍志宁等人研究水分对干酪乳杆菌的影响, 发现在添加了保护剂聚葡萄糖的时候会使活菌变得更加稳定, 对活菌数的影响不大。
杨郁等人研究发现, 低聚糖对植物乳杆菌的影响较大, 相较葡萄糖而言, 可以运用低聚糖对其进行发酵。
3、结语活菌数作为一种能够考查微生态制剂安全性的质量控制指标, 提高微生态制剂的活菌数能够极大地保持制剂的稳定性, 发酵温度与发酵时间作为影响活菌数的重要因素, 通过试验优化得到其最适发酵温度与发酵时间, 对活菌数的提高有益处。
另一方面, 平板活菌计数法也可应用于检测微生态制剂类的活菌数量, 活菌数作为能够指示微生态制剂品质好坏与保存时间长短的最直观指标, 一直以来都是研究的热点。
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