活菌计数法
活菌数的测定方法
活菌数的测定方法
一、直接计数法：
1.显微镜计数法：将样品通过适当稀释后涂布在平板上，然后在显微
镜下直接观察，将显示出的活菌数量进行计数。
2.罗氏计数室法：将适当稀释后的样品放在罗氏计数室中，通过显微
镜下观察菌落数并计数，然后根据稀释倍数计算活菌数。
3.涂布法：将稀释后的样品均匀涂布在琼脂平板上，在适宜温度下培
养一段时间，然后观察并计算菌落的数量。
二、间接计数法：
1.白细胞计数法：用白细胞计数板进行白细胞计数，由于白细胞数与
活菌数有一定的相关性，可以通过白细胞计数的结果进行推算。
2.生物标志物法：通过检测样品中特定的生物标志物，如ATP、葡萄
糖等，间接反映出活菌的数量。
3.代谢产物测定法：通过测定样品中的代谢产物（如氧气消耗量、二
氧化碳产生量等），间接推测出活菌的数量。
以上是常见的活菌数测定方法，不同的方法适用于不同的实际应用场景。
在选择测定方法时，需要考虑样品类型、检测目的、测定时间和精确
度等因素。
另外，为了提高测定结果的准确性，还需要严格控制实验条件，如温度、湿度、培养时间等。
最后，需要注意的是，活菌数的测定方法只能提供大致数量，无法直
接得到准确的数值。
因此，在进行活菌数测定时，需要结合其他的检测方
法和数据进行综合分析。
微生物活菌计数方法
杂菌数 亿/g
细菌杂菌 (亿 / g ) 10 8 19 .3 10 4
100 0.19 10 .10 0.1
重复 1 2 3 菌落 平均数
稀释倍数 （霉菌在马丁培养基 上） 103 104 105 6 / / 7 / / 8 / / 7.0 /
3
/
霉菌数 个/g 0.69×106
两个稀 释倍数 度菌落 数之比 / / / 1.1 2.5 / /
菌数 亿 /g,mL 25.3 3.2 0.38 0.30 / 0.032 0.015
无法数 无法数 无法数 313 289 无法数 32 15 315 38 32 136 5 3
3.2 标准差
标准差(Standard Deviation) ：各数据偏离平均数的距离 （离均差）的平均数，它是离差平方和平均后的方根。用δ表 示。标准差体现随机变量取值与其期望值的偏差。 标准 NY411-2000 固氮菌肥料的7.2.6.2。
浮液的浓度在一定范围内与透光度成反比，与光密度成正 比，所以，可用光电比色计测定菌液，用光密度(OD值)表 示样品菌液浓度。根据浊度计算出细菌的数量。该方法一 般可以估计出细菌的数量级。
经常用于一些特殊的微生物的快速计数，如光合细菌和
藻类的测数。但是由于该方法仅能估测菌数，不能准确定 量，而且由于一些颗粒和添加剂的作用，不能正确反映该 样品的质量，所以在质检过程中不予采用。
微生物活菌平板计数方法和技术
微生物肥料和食用菌菌种质检中心 曹凤明
微生物计数方法种类
1. 2. 3.
直接计数法 核酸计数法 活菌计数法（培养法）
MPN（Most-Probable-Number ）最大可能数法 混菌法 平板技术法
活菌计数实验报告稀释蜂蜜
活菌计数实验报告稀释蜂蜜
1、直接计数法：
这是一种非常简单的检测方法，我们可以利用计数板或计数仪直接得出活菌数目。
2、活菌稀释蜂蜜计数板：
首先制备活菌悬液，蜂蜜取一定体积的样品活菌悬液置于活菌计数板的计数池内，用显微镜观察计数。
根据计数室刻度内的活菌数，计算样品中的含菌数。
特点：所需设备简单，测定结果较准确，可迅速得到结果，而且在计数的同时能观察到所研究微生物的形态特征。
不能区分是否为活菌，不能区分活活菌和死活菌。
单位：个/mL计算方法：
（1）25×16的计数板：
每毫升活菌数量=（100小格内的细胞数/100）×400×1000×稀释倍数。
（2）16×25的计数板：
每毫升活菌数量=（80小格内的细胞数/80）×400×1000×稀释倍数。
3、电子计数器计数法：
电子计数器也属于直接计数法，其工作原理类似于血细胞分析仪，测定小孔中液体的电阻变化，小孔仅能通过一个活菌，当一个活菌通过这个小孔时，电阻明显增加，形成一个脉冲，自动记录在
电子记录装置上。
计数单位：x个/mL。
特点：该法测定结果较准确，但它只识别颗粒大小，而不能区分是否为活菌。
因此，要求菌悬液中不含任何碎片。
活菌计数操作方法
活菌计数操作方法
活菌计数是一种用于确定样品中活着的微生物数量的技术。
下面是一种常见的活菌计数操作方法：
1. 准备培养基：选择适当的培养基，根据需要添加适当的营养物质和抑制微生物生长的物质。
2. 取样：从样品中取一定量的液体或固体样品。
对于液体样品，可以直接取样；对于固体样品，需要将其加入适量的缓冲液中进行均匀分散。
3. 稀释：将取样的液体稀释为一系列不同浓度的溶液。
这样做是为了确保培养基中的微生物数量处于可计数范围内。
4. 接种：将已稀释的样品溶液分别加入培养皿或培养瓶中，然后将培养皿或培养瓶密封。
5. 培养：将密封的培养皿或培养瓶放置在适当的温度和湿度下进行培养。
不同的微生物需要不同的温度和环境条件。
6. 计数：在培养一定时间后，使用显微镜或其他计数装置进行活菌的观察和计数。
活菌通常会产生可见的生长。
7. 计算：根据每个培养皿或培养瓶中观察到的活菌数量，结合稀释倍数和取样量，计算出原始样品中的活菌数量。
注意事项：
- 操作过程需要做好无菌操作，以防止细菌的交叉感染。
- 操作要求精确和细致，避免误差的出现。
- 需要根据需要选择适当的物品和仪器来进行实验。
- 操作过程中应注意安全，避免对自身和他人造成伤害。
活菌计数法
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平板法
上述平皿法还可以将稀释的菌液取 0.2ml 加到已制备好的平板上，然后用无菌涂棒将 菌液涂布整个平板表面，放入适宜温度下培 养，计算菌落数，再按上公式计算出每毫升 原菌液的所含活菌总数。
薄膜过滤法
原理：将供试液通过已灭菌的膜过滤器。然后将滤 膜置于适宜培养基上培养，计算长出的菌落数。
操作：取相当于每张滤膜含1g、1ml 或10cm2 供试 品的供试液，加至适量的稀释剂中，混匀，过滤； 若供试品所含的菌数较多时，可取适宜稀释级的供 试液1ml 进行试验。用pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓 冲液或其他适宜的冲洗液冲洗滤膜。冲洗后取出滤 膜，菌面朝上贴于适宜培养基平板上培养。
每毫升原菌液活菌数＝同一稀释度三个以上重复平皿
菌落平均数×稀释倍数× 5
❖ 注意： 此法可因操作不熟练造成污染，或因 培养基温度过高损伤细胞等原因造成结果不 稳定。但由于该方法能测出样品中微量的菌 数，仍是常用的一种测定细菌数的有效方法。 细菌、酵母、芽孢与孢子等的数量均可用此 法测定。但不适于测定样品中丝状体微生物。
活菌计数法
活菌计数的方法
❖ 平皿法 ❖ 平板法 ❖ 薄膜过滤法 ❖ 比浊法
平皿法
原理：每个活细菌在适宜的培养基和良好的生长条 件下可以通过生长形成菌落。
操作：将待测样品经一系列 10 倍稀释，然后选择 三个稀释度的菌液，分别取 0.2ml 放入无菌平皿， 再倒入适量的已熔化并冷至 45℃ 左右的培养基， 与菌液混匀，冷却、待凝固后，放入适宜温度的培 养箱或温室培养，长出菌落后，计数，按下面公式 计算出原菌液的含菌数：
枯草芽孢杆菌活菌计数方法
枯草芽孢杆菌活菌计数法
1．实验器材
培养箱，超净台，灭菌锅
90mm培养皿，玻璃涂布棒，三角瓶，5ml、1ml、100µl移液枪及枪头，试管架，试管，无菌水（器具耗材均需提前高温高压灭菌）。
2．实验方法
1）配制牛肉膏蛋白胨琼脂培养基
蛋白胨1%
牛肉膏0.3%
氯化钠0.5%
葡萄糖1%
琼脂2%
121℃高压灭菌20分钟。
2）接种
a）将已灭菌的营养琼脂培养基倒入已干灭好的培养皿中，约25mL/90mm培养皿，待凝固后备用。
b）以准确称取检样0.1g（或1.00mL）放入含有100mL无菌水的玻璃三角瓶中，充分溶解，即配制成1：1000的稀释液。
c）取0.1mL 1：1000的稀释液注入含有9.9mL无菌水离心管中，涡旋混匀，此为10-5的稀释液。
d）按上述操作顺序做10倍递增稀释液，每稀释一次，换用一个1mL无菌吸头，根据对样品菌落生长情况的预实验，选择合适的稀释
度，最终选择10-7，10-8，10-9 三个稀释梯度。
e）吸取0.25mL稀释液于营养琼脂平板上，用涂布器将菌液涂布均匀，每个稀释度做3个平皿，倒置于30℃恒温培养箱中，培养24h 后取出，计算平板内枯草芽孢杆菌总数目，乘以稀释倍数，即得每克试样所含枯草芽孢杆菌总数。
3 计数
计算平板内枯草芽孢杆菌总数目，乘以稀释倍数，即得每克试样所含枯草芽孢杆菌总数。
平板分离技术与活菌计数
实验六平板分离技术与活菌计数实验报告一．实验目的1.掌握倒平板的方法和几种常用的分离纯化徽生物的基本操作技术。
2．初步观察来自土壤中的三大类群微生物的菌落形态特征。
3．学习平板菌落计数的基本原理和方法,并掌握其基本技能。
二．实验原理值得指出的是从微生物群体中经分离、生长在平板上的单个菌落并不一定保证是纯培养。
因此，纯培养的确定除观察其菌落特征外，还要结合显徼镜检测个体形态特征等综合考虑。
有些微生物的纯培养要经过一系列的分离与纯化过程和多种特征鉴定方能得到。
从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程称为微生物的分离与纯化。
平板分离法主要有：①平板划线分离法，②稀释涂布平板法。
后者除能有效分离纯化微生物外，还可用于测定样品中活菌数量。
平板菌落计数法是将待测菌液经适当稀释，涂布在平板上；经过培养后在平板上形成肉眼可见的菌落。
统计菌落数，根据稀释倍数和取样量计算出样品中细胞密度。
由于待测样品往往不易完全分散成单个细胞，平板上形成的每个菌落不一定是单个细胞生长繁殖面成，有的可能来自2个或多个细胞。
因此，平板菌落计数的结果往往比样品中实际细胞数低，这就是现在使用菌落形成单位（colony-forming unit, CFU）取代以前用绝对菌落数来表示样品活菌含量的原因。
平板菌落计数法虽然操作较繁琐，结果需要培养一段时间才能获得，而且测定结果易受多种因素的影响，但是，由于该方法能直接反映样品中活细胞数量，所以被广泛用于生物制品(如活菌制剂)、食品、饮料、水（包括水源水）以及多类产品等质量检测与控制的标准方法。
快速细菌自动稀释仪和自动菌落计数仪则提供快速准确的结果。
土壤是微生物生存的大本营，所含徼生物无论是数量还是种类都是极其丰富的。
因此，土壤是微生物多样性的重要场所，是发掘微生物资源的重要基地，人们可以从中分离﹑纯化获得许多有价值的菌株。
本实验将采用3种不同的培养基从土壤中分离不同类型的徽生物。
活菌培养计数方法
活菌培养计数方法1.2 它也是衡量很多工作效果的一把尺子。
比如说在环境治理中，想要知道治理措施对微生物群落的影响，活菌计数能给我们答案。
这就如同在农田里，农民伯伯要知道地里有多少害虫，才能判断防治措施有没有用，活菌计数就是这样一个判断微生物相关工作成效的关键手段。
二、活菌培养计数的常见方法2.1 平板菌落计数法。
这是个经典的方法，就像老祖宗传下来的手艺一样靠谱。
把样品稀释后，接种到琼脂平板上，让细菌们在平板上“安营扎寨”，一个细菌经过繁殖就会形成一个菌落。
然后我们就像数星星一样去数这些菌落，再根据稀释倍数算出原来样品中的活菌数量。
不过这个方法也有点小麻烦，就像绣花一样，得小心操作，不然容易出错。
比如说稀释的时候手抖了一下，那结果可能就差之毫厘谬以千里了。
2.2 液体稀释法。
这个方法有点像玩猜数字的游戏。
把菌液进行一系列的稀释，然后接种到液体培养基中。
观察哪个稀释度的培养基最后有细菌生长，哪个没有。
通过这种方式来推算出原来菌液中的活菌数量。
但是这个方法有时候就像雾里看花，不是那么直观，得有一定的经验才能准确判断结果。
2.3 膜过滤计数法。
这个方法就像是用筛子筛东西一样。
把样品通过特定的滤膜，细菌就被留在滤膜上了，然后把滤膜放到培养基上培养，最后数菌落。
这个方法对于那些菌量比较少的样品特别适用，就像大海捞针的时候，这个方法能让你更容易找到那根针。
3.1 操作过程要严格无菌。
这是重中之重，就像士兵上战场要带好武器一样。
一旦有杂菌混入，那就会像一颗老鼠屎坏了一锅粥，结果就完全不可信了。
所以在操作的时候，要像做手术的医生一样小心翼翼，从培养基的制备到接种的每一个环节，都不能马虎。
3.2 培养条件要合适。
不同的细菌就像不同的植物，有的喜欢阳光，有的喜欢阴凉。
细菌对温度、湿度、氧气等条件都有要求。
如果培养条件不合适，就像把热带植物种到寒带一样，细菌可能长不好或者干脆不长，那计数结果肯定也是不准确的。
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分析：一是由于土样不同，二是由于培养基污染或操作失误 (或者是混入了其 他的含氮物质)。 究竟是哪个原因，可以通过实验来证明。实验方案有两种。 一种方案是可以由其他同学用与A同学一样的土样进行实验，如果结果与A同 学一致，则证明A无误；如果结果不同，则证明A同学存在操作失误或培养基 的配制有问题。 另一种方案是将A同学配制的培养基在不加土样的情况下进行培养，作为空白 对照，以证明培养基是否受到污染。
1个菌落→1个活菌
（3）统计结果：统计的菌落数往往比活菌的实
际数目低，因此统计结果一般用菌落数表示。
每克样品中的菌株数=（C/V)* M
其中C:某一稀释度下平板上生长的平均菌落数；
V:所用稀释液的体积；
M:稀释倍数。
例：两位同学用稀释涂布平板法测定同一土壤样品中的细菌数。 从对应稀释倍数为106的培养基中，得到以下两种统计结果。
（2）缺点 不能区分死菌与活菌； 不适于对运动细菌的计数； 需要相对高的细菌浓度； 个体小的细菌在显微镜下难以观察；
（四）统计菌落数目
1、显微镜直接计数：
2、活菌计数法（间接计数法) （1）操作方法：
稀释涂布平板→统计菌落数 （2）原理：
当样品的稀释度 足够高时，固体培养 基表面生长的一个菌 落，来源于样品稀释 液中的一个活菌。
↓
培养观察 将培养基平 板倒置于30～37℃温室 中培养1～2天，每隔 24h统计一次菌落数目， 选取菌落数目稳定时的 记录作为结果。
↓ 菌落计数 常用稀释涂 布平板法，设计如下表 格记录并计数
稀释 度
104
105
106
123
平 均12 3
值
平均 值
平均 123 值
菌落 数
/平板
菌数/
克土 壤
1、甲同学在该浓度下涂布了一个平板，统计的菌落数为230。 2、乙同学在该浓度下涂布了A、B、C三个平板，统计的菌落数 分别为21、212、256，该同学以这三个平板上菌落数的平均值163 作为统计结果。
你认为这两位同学的作法正确吗？ 如果有问题，错在哪？
甲：没有重复实验（至少涂布3个平板） 乙：A组结果误差过大，不应用于计算平均值
—高温淘汰其他菌，选出耐高温细菌，耐高温菌种提取耐高温酶。
启示：寻找目的菌种时要根据它对生存环境的
要求，到相应的环境中去寻找。
（二）实验室中微生物的筛选原理：
人为提供有利于目的菌株生长的条件(包括营养、 温度、pH等)，同时抑制或阻止其他微生物生长。
:要分离某种微生物，必须根据该微生物的特 点，包括营养、生理、生长条件等方法：
在做本课题实验时，利用选择培养基进行尿素分解菌的分离过程中，从对应稀释倍 数为106的培养基中，A、B两同学分别得到以下两种统计结果。
1、A同学筛选出150个菌落。 2、B同学筛选出50个菌落。 B认为A的培养基被杂菌污染了，或培养基中混入了其他含氮物质，因而导致不能分 解尿素的细菌也能在该培养基中生长。A确认自己的操作无误，只是自己所用的土壤样品 不同，但此时也拿不出能令人信服的证据。
（四）统计菌落数目
2、活体计数法（间接计数法)
①为了保证结果准确，一般选择菌落数在30——300的平板 上进行计数。
②为使结果接近真实值可将同一稀释度加到三个或三个以上 的平皿中，经涂布，培养计算出菌落平均数。 ③统计的菌落往往比活菌的实际数目低。 ④涂布平板法所选择的稀释度很重要，一般以三个稀释度中 的第二个稀释度所出现的平均菌落数在50个左右为最好。
（四）统计菌落数目
计数法
显微镜直接计数 活菌计数法 比浊法 膜过滤法
• 土壤中分解尿素的细菌的分离 与计数过程
• 土壤取样 从肥沃、湿润的土壤中，用无菌 小铁铲铲去表层土，迅速取土壤并装入无菌 信封密封
•↓ • 制备培养基 准备选择培养基，以尿素为唯
一氮源制备9个平板培养基 •↓
样品的稀释 在火焰旁称取土壤10g，放入 盛有90mL无菌水的三角烧瓶中，振摇使土 样与水充分混合，将菌分散。制成101倍土 壤稀释液，用一支1mL无菌吸管从中吸取 1mL土壤悬液注入盛有9mL无菌水试管中， 吹吸三次，使充分混匀，制成102倍土壤稀 释液，以此类推制成103、104、105、106 倍土壤稀释液
氮源：尿素 （2）此配方能否筛选出产生脲酶的 细菌？为什么？
能。只有产生脲酶的 细菌能利用尿素作为氮源而生 存。
缺乏脲酶的微生物由于不能分解尿素，缺乏氮源而不能生长繁 殖，而受到抑制，所以用此培养基能够选择出分解尿பைடு நூலகம்的微生物。
（四）统计菌落数目
1、显微镜直接计数： （1）方法：利用血球计数板，在显微镜下计算一定容积里样 品中微生物的数量。
通过这个事例可以看出，实验结果要有说服力，对照的设置 是必不可少的。
3、常见的分解尿素的微生物 芽孢杆菌、小球菌、假单胞杆菌、克氏杆菌、棒
状杆菌、梭状芽孢杆菌，某些真菌和放线菌也能分 解尿素。
1.怎样才能从土壤中分离出分解尿素的细菌呢？
二、研究思路
（一）筛选菌株
a.提出的问题
—如何寻找耐高温的酶？
b.解决问题的思路
—寻找耐高温环境；
c.原理
水生耐热细菌Taq ( Thermus aquaticus ) 耐高温的Taq DNA聚合酶 美国微生物学科布鲁克（T.Brock) 1966年发现耐热细菌
（三）土壤中分解尿素的细菌的分离与计数所需 培养基
KH2PO4 NaHPO4 MgSO4 H2O 葡萄糖
1.4g 2.1g 0.2g 10.0g
尿素
1.0g
琼脂
15.0g
将上述物质溶解后， 用蒸馏水定容到 1000mL。
（1）该培养基的配方中，为微生物 的生长提供碳源和氮源的分别是什么 物质？
碳源：葡萄糖、尿素
⑴抑制大多数微生物不能生长， ⑵造成有利于该菌生长的环境。
结果：培养一定时间后，该菌数量上升，再通过平板 稀释等方法对它进行纯化培养分离。
概念：选择培养基 在微生物学中，将允许特定种类的微生物生长，
同时抑制或阻止其他种类微生物生长的培养基。
加入青霉素的培养基:分离酵母菌、霉菌等真菌 加入高浓度食盐的培养基:分离金黄色葡萄球菌 不加氮源的无氮培养基:分离自生固氮菌 不加含碳有机物的无碳培养基:分离自养型微生物 加入青霉素等抗生素的培养基:分离导入了目的基因的受体细胞