贴壁细胞和悬浮细胞传代方法上有什么不同
细胞实验的基本操作
细胞实验的基本操作【细胞培养】一、细胞的复苏：非原代培养的细胞一般冻存于液氮之中，需要培养时要先从液氮中取出使之复苏。
细胞复苏的原则——快速融化：必须将冻存在－196℃液氮中的细胞快速融化至37℃，使细胞外冻存时的冰晶迅速融化，避免冰晶缓慢融化时进入细胞形成再结晶，对细胞造成损害。
具体操作如下：1、实验前准备：1.1、将水浴锅预热至37℃，并将含10%FBS的培养液置于其中预热；。
1.2、用75％酒精擦拭紫外线照射30min的超净工作台台面。
1.3、在超净工作台中按次序摆放好消过毒的离心管、吸管、培养瓶等等。
2、取出冻存管及迅速解冻：2.1、根据细胞冻存记录按标签找到所需细胞的编号。
2.2、从液氮罐中取出细胞盒，取出所需的细胞，同时核对管外的编号。
2.3、迅速将冻存管投入到已经预热的水浴锅中迅速解冻，并要不断的摇动，使管中的液体迅速融化，约1-2min后冻存管内液体完全溶解，取出用酒精棉球擦拭冻存管的外壁，再拿入超净台内。
3、平衡离心将细胞悬液吸到离心管中，1000～1500rpm离心3分钟；4、制备细胞悬液吸去上清液，加入10 ml培养液，用吸管轻轻吹打均匀，使细胞悬浮；5、细胞计数细胞浓度以5×105/ml为宜。
6、培养细胞将复合细胞计数要求的细胞悬液吸到培养瓶中，将培养瓶放入37℃和5％CO2的培养箱内培养（略微拧松培养瓶盖），换液的时间由细胞情况而定。
通常，除少数特别注明对DMSO 敏感的细胞外，绝大部分细胞株（包括悬浮性细胞），在解冻之后，可直接放入含有10-15ml（5－10倍）新鲜培养基的培养角瓶中，待隔天再置换新鲜培养基以去除DMSO 即可，如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附的问题。
二、细胞的传代：培养的细胞生长至一定密度之后，由于培养液中营养逐渐消耗、代谢物逐步积累（可见到培养液变黄），而且细胞的生长空间也受到限制，就会影响到细胞的继续生存。
这时就需要分离出一部分细胞和更新培养液，这一过程就叫做传代。
12.13细胞的传代培养冻存和复苏
冻存和复苏的原则：慢冻快融
当细胞冷到零度以下，可以产生以下变化：细胞器脱水，细胞
中可溶性物质浓度升高，并在细胞内形成冰晶，冰晶导致细胞损
伤甚至死亡。 甘油或二甲基亚砜可使冰点降低，在缓慢冻结条件下，可使 细胞内水分逐步透出，避免大的冰晶；相反，结晶就大，大结晶 会造成细胞膜、细胞器的损伤和破裂。
复苏过程应快融，目的是防止小冰晶形成大冰晶，即冰晶的
纱布袋系以线绳，通过线绳将纱布袋固定
于液氮罐罐口，按每分钟温度下降1～2 ℃ 的速度，在40分钟内降至液氮表面，停30 分钟后，直接投入液氮中（无声音为准）。
解冻冷冻保存细胞的离心方法
1、从液氮中取出冻存的细胞，立即放入37℃水 浴中快速解冻 2、将1－2ml 冻存细胞液加入到25ml 新鲜完全 细胞生长培养液中，轻轻混匀 3、离心5-10 分钟，弃上清液 4、用完全生长培养液轻轻悬浮细胞团，并计数 细胞 5、接种细胞到培养瓶中，起始密度为3×105/ml。
注意事项
1．传代培养时要注意无菌操作并防止细胞之间 的交叉污染。所有操作要尽量靠近酒精灯火焰。 每次最好只进行一种细胞的操作。每一种细胞使
用一套器材。培养用液应严格分开。
2．传代时间的掌握：每天观察细胞形态，掌握
好细胞是否健康的标准：健康细胞的形态饱满，
折光性好，生长致密时即可传代。 3、消化时间的掌握
细胞培养中污染的常见类型
微生物污染（最常见）：细菌、真菌、支
原体、病毒
化学物质污染：影响细胞生存非生长所需
的化学成分
细胞污染（非同种细胞）
污染途径
空气 器材 操作 血清 组织样本
细胞培养液被洋葱佰克霍尔德菌污染了。 洋葱佰克霍尔德菌（Burkholderiacepacia）原属假单 胞菌属，是植物病原菌。
叙述悬浮细胞、半贴壁细胞和贴壁细胞的传代方法。
6叙述悬浮细胞、半贴壁细胞和贴壁细胞的传代方法。
答：（一）悬浮生长细胞的传代：有以下两种方法：
1、直接传代法：①悬浮细胞自然沉淀瓶底；②用吸管吸去上清1/2～2/3；③轻轻吹打成细胞悬液；④等分装入数个培养瓶（皿）
2、离心传代法：①将细胞悬液转移到离心管内；②800～1000r/min离心5min，弃上清；③加新的培养液到离心管内；④吸管吹打成为细胞悬液；⑤分瓶（皿）培养。
（二）半贴壁细胞和贴壁细胞的传代：采用消化法。
消化液是：0.25%胰蛋白酶、0.02%EDTA、二者混合液、最好在37℃或室温（25℃以上）环境进行。
其操作步骤（以25ml培养瓶为例）: （1）弃去旧培养液；（2）漂洗：加入2mll 无Ca2+、Mg2+的PBS，漂洗1次后倒掉；（3）消化：加入消化液，使之铺满细胞表面（待肉眼可观察到“薄膜”现象时，倒掉消化液，残液继续作用2~3min，轻轻摇动，细胞层可随残液呈片状脱落下来，显微镜下发现细胞回缩变圆，细胞间隙增大，此时立即终止消化）；（4）吹打：加入完全培养基5mll，用吸管按顺序进行反复吹打瓶壁，吹打时不要用力过大。
（5）调整至合适细胞浓度，分瓶培养。
贴壁细胞和悬浮细胞传代方法上有什么不同培训
贴壁细胞和悬浮细胞传代方法上有什么不同培训
首先，在细胞生长形态上，贴壁细胞通常呈现典型的单层或多层附着
细胞的形态，细胞扩张生长速度较慢，细胞形态变化较小。
而悬浮细胞则
以单个细胞或细胞集合体的形式存在于液体培养基中，生长速度较快，细
胞形态较为多样化。
其次，在培养条件上，贴壁细胞需要在培养基中添加黏附分子或包袋
来增加其附着能力，以保持细胞在培养皿底部的黏附和生长。
而悬浮细胞
则需要在培养基中添加抗聚集剂或搅拌设备来避免细胞结块，以保持细胞
的均匀悬浮和生长。
再次，在传代方法上，贴壁细胞传代通常采用单层脱离法或酶消化法。
单层脱离法利用细胞与培养皿表面的非共价键结合进行脱离，可通过物理
刮擦或液体冲击等方法将细胞从培养皿上收集下来。
酶消化法则通过加入
蛋白酶等酶类物质分解黏附细胞与基质之间的胶原纤维等结构，使细胞能
够从培养皿表面脱离。
而悬浮细胞传代则更为简单，通常只需要将培养基
中的细胞离心沉淀后，将上清液中的细胞重新悬浮于新的培养基中即可。
此外，在培养基的选择上，贴壁细胞通常需要使用固体培养基，例如
含有胶原蛋白、明胶或滤纸等的培养基。
而悬浮细胞则需要使用液体培养基，例如含有血清或植物基因表达培养基等。
最后，在细胞应用方面，贴壁细胞通常用于细胞粘附、增殖和分化等
研究领域，如肿瘤细胞、成纤维细胞和内皮细胞等。
而悬浮细胞则常用于
细胞悬浮培养、蛋白质表达和病毒培养等研究领域，如白细胞、骨髓细胞
和病毒感染细胞等。
细胞传代培养实验
实验步骤
注意事项
1. 吹打制悬：用吸管将已经消化细胞吹打成细胞悬液。 2. 吸细胞悬液入离心管：将细胞悬液吸入 10 ml 离心管中。 3. 平衡离心：平衡后将离心管放入台式离心机中，以 1 000 转/分钟离心 5 分钟。 4. 弃上清液，加入新培养液：弃去上清液，加入 2 ml 培养液，用滴管轻轻吹打细胞制成细胞悬 液。 四、分装稀释细胞 1. 分装：将细胞悬液吸出分装至 2~3 个培养瓶中，加入适量培养基旋紧瓶盖。 2. 显微镜下观察细胞：倒置显微镜下观察细胞量，必要是计数。注意密度过小会影响传代细胞的 5 生长，传代细胞的密度应该不低于 5×10 /ml，最后要做好标记。 五、传代培养 用酒精棉球擦拭培养瓶，适当旋松瓶盖，放入 CO2 培养箱中继续培养。传代细胞 2 小时后开始贴附 在瓶壁上。当生长细胞铺展面积占培养瓶底面积 25%时为一个+，占 50%为++，占 75%时为+++。
（细胞培养技 术）实验方法 原理
培养细胞传代根据不同细胞采取不同的方法。 贴壁生长的细胞用消化法传代； 部分贴壁生长的细胞 用直接吹打可传代； 悬浮生长的细胞可以采用直接吹打或离心分离后传代， 或用自然沉降法吸除上 清后，再吹打传代。
实验材料
细胞
试剂、试剂盒
D-Hanks 液小牛血清 RPMI1640 双抗胰蛋白酶 EDTANHClNaHCO3
收起
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
注意事项
1. 严格的无菌操作 2. 适度消化：消化的时间受消化液的种类、配制时间、加入培养瓶中的量等诸多因素的影响，消 化过程中应该注意培养细胞形态的变化，一旦胞质回缩，连接变松散，或有成片浮起的迹象就要立 即终止消化。 附：0.25% 胰酶（胰蛋白酶，Trypsin） 配方：100 ml PBS，0.25 g 胰酶。 步骤：先配 100 ml PBS。 称胰酶 0.25 g。加入 PBS 中，低速搅拌。调 pH7.4。过滤，分装，-20℃ 保存，4℃短期内用完。 注意：低速很重要，机械搅拌对酶是一种冲击，如果起沫，酶就变性了。低温，防止酶失活；对难 消化的细胞，在上述配方中，加入 0.02 g 的 EDTA（0.02%） 根据细胞生长的恃点，传代方法有 3 种：悬浮生长细胞传代、半悬浮生长细胞传代（Hela 细胞） 、贴壁生长细胞传代。
分子生物学与细胞生物学实验基本技术
分子生物学与细胞生物学实验基本技术2005-02实验一组织块培养法一、目的学习原代培养方法，从供体取得组织细胞后在体外进行的首次培养。
二、概述组织块培养法是常用的、简便易行和成功率较高的原代培养方法。
可以采用剪切法，即将组织块剪切成小块后，接种于培养瓶，组织小块贴壁24h或更长时间后，细胞就从组织四周游出。
但由于在反复剪切和接种过程中对组织块的损伤，并不是每个小块都能长出细胞。
用于组织块培养的培养瓶可根据不同细胞生长的需要作适当处理，如预先涂以胶原薄层，以利于上皮样细胞等的生长。
（本节以新生牛主动脉平滑肌培养为例）三、材料（一）仪器1.净化工作台2.恒温水浴箱3.冰箱（4℃、-20℃）4.倒臵相差显微镜5.培养箱（二）玻璃器皿1.培养皿（Φ100mm）2.吸管（弯头）3.烧杯（500ml、200ml、10ml）4.广口试剂瓶（500ml）5.玻璃瓶（250ml、100ml）6.培养瓶7.废液缸（三）塑料器皿1.吸头2.枪头3.胶塞4.EP管（四）其他物品1.微量加样枪2.眼科组织剪（直尖、弯）3.眼科组织镊（直、弯）4.12.5cm组织镊（无钩、1×2钩）5.25cm敷料镊（无钩）6.止血钳（18cm直纹式、12.5cm直纹式、弯纹式）7.解剖剪（五）试剂1.D-Hanks液2.小牛血清3.RPMI16404.双抗（青霉素、链霉素）5.1N HCl6.7.4%NaHCO3四、操作步骤1.取材：打开胸腔，无菌操作下取出主动脉胸段，浸到预先配制好的含双抗（500u/ml青、链酶素）的D-Hanks液中漂洗。
2.组织的冲洗、修剪：取出主动脉，用锋利的剪刀修剪除去周围组织，再用D-Hanks冲洗主动脉3次，除去血块及杂组织等。
3.平滑肌组织分离：纵向剖开主动脉，撕下主动脉内层，取主动脉中层的平滑肌组织，无血清RPMI1640漂洗3次。
4.剪切：将平滑肌组织用锋利的眼科剪反复剪切至剪成1mm3小块，在剪切过程中，可以适当向组织中滴加1～2滴培养液，以保持湿润。
LO2细胞争议
LO2细胞争议形态特征：L - 02细胞建系鉴定于190年（叶秀珍等，190)。
该细胞是一株正常肝细胞系，具有典型的肝细胞形态学特征，可用于多种实验研究。
2）细胞传代：如果细胞密度达0%-90%，即可进行传代培养。
1、对于贴壁细胞，传代可参考以下方法：1. 弃去培养上清，用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
2. 加1-2ml消化液（0.25%Trypsin-0.53mM EDTA）于培养瓶中，置于37℃培养箱中消化1-2min，然后在显微镜下观察细胞消化情况，若细胞大部分变圆并脱落，迅速拿回操作台，轻敲几下培养瓶后加5ml以上含10%血清的*培养基终止消化。
3.轻轻吹打细胞，*脱落后吸出，在1000RPM条件下离心-10分钟，弃去上清液，补加1-2mL培养液后吹匀。
4. 按5-6ml/瓶补加培养液，将细胞悬液按1：2到1：5的比例分到新的含5-6 ml培养液的新皿中或者瓶中。
PS：若收到2ml小管细胞，收到细胞后，用75%酒精喷洒整个管子消毒后放到超净台或安全柜内，严格无菌操作；将小管细胞转移至T25培养瓶或6cm培养皿，加入5ml左右*培养基混匀，放入培养箱过夜培养后查看细胞密度：若密度未超过0%，换液继续培养，视情况传代或者冻存。
若密度超过0%，可直接进行传代（方法同上）。
2、对于悬浮细胞，传代可参考以下方法：方法一：收集细胞，1000RPM条件下离心-10分钟，弃去上清液，补加1-2mL培养液后吹匀，将细胞悬液按1：2到1：5的比例分到新的含ml培养基的新皿中或者瓶中。
方法二：可选择半数换液方式，弃去半数培养基后，将剩余细胞悬起，将细胞悬液按1：2到1：3的比例分到新的含ml培养基的新皿中或者瓶中。
3）细胞冻存：待细胞生长状态良好时，可进行细胞冻存。
贴壁细胞冻存时，弃去培养基后加入少量胰酶，细胞变圆脱落后，进行离心收集，1000RPM条件下离心-10分钟，去除上清，按冻存数量加入血清及DMSO，冻存比例为90%FBS+10%DMSO。
细胞传代
贴壁细胞：弃去培养液，加胰酶消化，加培养液终止胰酶作用，吹打成悬液，分装传代。
由于贴壁细胞贴壁生长，接触抑制，长满一瓶后贴壁较紧，不易取出。
这时必须用胰蛋白酶或者胶原蛋白酶处理，使其分散开后取出，然后在放入新的培养瓶中培养。
悬浮细胞：离心，弃上清液，加新鲜培养基，分装传代。
悬浮细胞其实也有贴壁现象，只是贴壁不牢。
可以直接用吹打发是细胞掉落下来，进行传代。
传代培养中的细胞传代培养（subculture），当原代培养成功以后，随着培养时间的延长和细胞不断分裂，一则细胞之间相互接触而发生接触性抑制，生长速度减慢甚至停止；另一方面也会因营养物不足和代谢物积累而不利于生长或发生中毒。
此时就需要将培养物分割成小的部分，重新接种到另外的培养器皿（瓶）内，再进行培养。
这个过程就称为传代（passage）或者再培养（subculture）。
对单层培养而言，80%汇合或刚汇合的细胞是较理想的传代阶段。
传代方法1．悬浮生长细胞传代传代培养中的细胞离心法传代：离心（1000转/分）去上清，沉淀物加新培养液后再混匀传代。
2．半悬浮生长细胞传代（Hela细胞）此类细胞部分呈现贴壁生长现象，但贴壁不牢，可用直接吹打法使细胞从瓶壁脱落下来，进行传代。
3．贴壁生长细胞传代采用酶消化法传代。
常用的消化液有0.25%的胰蛋白酶液。
培养材料1、无菌磷酸生理缓冲液(Dulbecco’sphosphate-bufferedsaline,Ca++/Mg++free,D-PBS,GibcoBRL21600-010)传代培养中的细胞2、trypsin-EDTAsolution(0.05%trypsin-0.53mMEDTA-4Na,GibcoBRL25300-062)：以10ml分装于15ml无菌离心管中，保存于–20℃，使用前放在37℃水槽回温。
3、新鲜培养基4、无菌吸管/离心管/培养瓶编辑本段培养步骤1、附着型胞(adherentcell)（1）吸掉旧培养液。
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13. 加两滴管（约1.8-2mL）冻存液既全面吹打细胞瓶 壁,吹打均匀，细胞浓度宜大，3×106个/mL左右。
14.将细胞悬液吸至冻存管中，拧好盖，封好胶布，并 标记好细胞种类，冻存时间，保存条件以及冻存者 姓名等（悬浮细胞冻存将细胞离心后再加冻存液）
15.在培养瓶(残余少量细胞）中加入5mL完全培养及， 盖好瓶盖（拧紧后并旋回半圈）。做好记录，倒置 相差显微镜下观察细胞的形态，放入CO2培养箱培 养。
1.细胞培养中为什么添加血清？ 2.使用血清需注意哪些方面？ 3.消化液胰酶的浓度是多少？ 4.使用小滤器过滤要注意哪些？
针头滤器使用应注意的问题
1.拧紧滤器 2.注射器吸液体 3.注射器插好滤器 4.对着烧杯慢推压针芯看是否漏 5.如不漏对小瓶过滤。 6.滤器放在小瓶瓶口上，取下针头再吸液体， 反复多次，滤完。 7.检查滤器滤膜是否完好。
16.冻存管在4度以下存放30min，转放到－20度 1.5－ 2h，再转到－70度4－12h后即可转移到液氮内， 注意做好冻存记录。
注意事项
把握好传代时机，80-90%汇合度阶段最好，过 早细胞产量少，过晚细胞健康状态不佳
消化时间要适度，过短细胞不易脱落，过长细胞 可脱落流失。
消化液浓度要适宜，过浓时消化作用强烈，细胞 反应快，所需消化时间短，掌握不好，细胞易流失。 不同细胞对消化反应不同。
4.正确摆放超净台内的实验用品：酒精灯、酒精棉 球、新洁尔灭纱布、试管架、滴管筒（头）、吸管 筒（头）、废液缸等。点燃酒精灯，准备好实验试 剂：DMEM培养基（其中血清含量10%）、 血清、 胰酶等。
5.点燃酒精灯；取出无菌试管，巴士德吸管和刻度吸 管；安上橡皮头；过酒精灯火焰略烧后插在无菌试 管内。
2. 试剂 胰酶、DMEM培养基、血清、DMSO、抗生素
3. 仪器 超净工作台、CO2培养箱、倒置相差显微镜
4.其它用品： 培养瓶，试管，移液管，巴斯德吸管，废液缸， 75％酒精棉球，酒精灯
四、实验步骤
1.准备：超净工作台紫外线处理30分钟, 用肥皂洗手, 穿鞋套，用新洁尔灭溶液拭擦双手消毒。 2. 倒置显微镜下观察细胞形态，确定细胞是否需要 传代及细胞需要稀释的倍数。将培养用液置室温下 预热。 3．关闭超净台紫外灯, 打开可见光灯开关,打开抽风 机清洁空气，除去臭氧。用75%酒精擦双手消毒 。
10.细胞瓶口靠近火焰打开瓶盖并在酒精灯上烧口消 毒，倒掉或吸出培养基（对于小口的培养瓶可采用 倾倒方法,对于培养皿,必须用吸管吸出） 11.加一滴管胰酶轻轻漂洗一下细胞，弃胰酶，再加 入一滴管或两滴管胰酶（以盖住细胞量为准，转动 培养瓶，使其湿润整个细胞层，盖好瓶盖。 12.显微镜下观察细胞的消化状态，待细胞大部分收 缩、突起、一半变圆，细胞边界清晰时，即可立起 或翻转培养瓶停止消化，在超净台内靠近火焰处弃 胰酶
贴壁不牢—直接吹下—细胞损伤
思考题
1.试述传代培养的步骤和注意事项，并指出哪些是 关键步骤?
2.细胞胞传代培养的目的是什么? 3.贴壁细胞和悬浮细胞传代方法上有什么不同? 4.如何估计是否传代和传代的方式? 5.细胞冻存应注意的问题。
一、实验原理
细胞贴壁过程
培养细胞一代生长过程
什么时候传代？
细胞消化的最佳程度
要求 冻存条件 操作要点
细胞冻存
二、实验目的
掌握无菌操作技术。 掌握传代细胞的培养的一般方法与步骤。 掌握培养细胞的消化方法。 了解在倒置相差显微镜下观察培养细胞的形态和 生长状况。
三、实验材料及设备
1. 细胞 人宫颈癌HeLa 细胞 人胃癌BGC-823细胞
6.将培养用液（90mL) 瓶口用75%酒精消毒，过酒精 灯火焰后斜置于酒精灯旁的架子上。
7. 打开血清（10.5mL) 瓶，瓶口过酒精灯火焰后斜置 于酒精灯旁的架子上。
8. 无菌吸取10mL血清加入到培养液（90mL)中，用 微量移液器加入双抗100μL轻轻混匀，配置完全培 养基。
9. 在血清中（剩余0.5mL) 加入4mL完全培养基轻轻 混匀，加入0.5mL DMSO（冻存保护剂），轻轻混 匀即为冻存液 。