植物组织中水势的测定
植物组织水势的测定
实验二植物组织水势的测定一、实验原理根据渗透作用的原理，用小液滴法测得蔗糖溶液与植物组织中之间的等渗浓度，根据公式：ΨW (细胞水势) =Ψs = — CRT求得溶液的水势，从而得知植物组织的水势。
二.实验材料试剂与仪器材料：黄山紫荆叶片若干试剂：1 mol/L蔗糖溶液；甲烯蓝溶液仪器：细滴管；试管及指形管；烧杯；镊子、剪刀；移液管；标签纸三.实验步骤1.用短滴管吸取1M蔗糖溶液取0.5ml、1ml、2ml、3ml 、4ml 分别放入10ml 刻度试管中，加蒸馏水至10ml，盖上塞子上下倒转混匀，配成0.05M、0.1M、0.2M、0.3M、0.4M的糖液。
2.用移液管从浓度各试管中吸出2ml注入对应的指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
3.将黄山紫荆叶片在叠在一起，沿中脉两边用钻孔器打取10片小圆片，分别放入小指形管内，放置20min(期间摇动2~3次）后，加甲烯蓝2滴摇匀。
4.用长滴管吸取着色溶液放入原相应的蔗糖溶液中，慢慢放出一滴蓝色溶液，在白色纸片上观察小液滴升降情况，并作记录。
四.实验结果Ψ W (细胞水势) =Ψ s = — CRT得，Ψs= —0.3×0.008314×300MPa= 0.74826MPa式中：Ψ s ——溶液的渗透势，以MPa为单位。
R ——气体常数，为0.008314 MPa·L/（mol·K ）。
T ——绝对温度，即273 + t ℃, 单位为K。
C ——溶液的摩尔浓度，以mol/L 为单位五.思考1.用小液流法测定植物组织水势时，为什么应强调所用试管、毛吸管应保持干燥？答：防止残留的水汽影响溶液的浓度，影响实验结果。
2. 打取小圆片并投入试管中时动作应迅速，加入甲烯蓝不能太多？答：防止圆片中的组织液蒸发：防止溶液浓度变大，影响实验结果。
植物组织水势的测定
南京晓庄学院生命科学系
实验目的
水是原生质的主要组成成分，占原生质总
量的70%~90%。植物水分状况对植物生理的 生理活动具有重要影响。植物水势是植物 的水分状况的重要指标，对于植物水分生 理的科学研究以及农业生产实践具有重要 指导意义。 掌握植物组织水势的测定方法及其优缺点， 并了解渗透系统中水势大小是水分移动方 向的决定因素。
实验结果组号1来自234
5
6
7
8
蔗糖 浓度 0.05 0.1 (M)
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
小液 流方 向下 悬浮 向上 向上 向上 向上 向上 向上 向
=-1×0.1×0.083×100000×(273+25) =-247340Mpa
结果分析
１号管小液流下降，说明组织水势低于蔗 糖溶液水势，组织吸水，蔗糖浓度变大； 2号管小液流不动，说明组织水势与蔗糖 溶液水势相同，二者间无水分量的交换； ３~８号管小液流上升，说明组织水势高 于蔗糖溶液水势，组织排水，蔗糖浓度变 低。
实验原理
水势表示水的化学势，水分在渗透系统中总是由 水势高处向水势低处流动。植物生活细胞是一个 渗透系统，当将植物细胞或组织放人外界溶液中 时，水分将以水势差为动力在两者间流动，最终 达到动态平衡。如果植物组织的水势小于外界溶 液的水势，植物细胞吸水，使外界溶液浓度增大； 反之，植物细胞失水，使外液浓度变小。若植物 组织与外界溶液水势相同，将不改变外部溶液的 浓度，此时外液的渗透势就等于植物组织的水势。 可以利用外界溶液的浓度不同其比重也不同的原 理来确定与植物组织水势相同的外液，根据公式 计算植物组织的水势。
５．用毛细吸管依次 从青霉素小瓶中吸 取少量溶液，小心 插入装有相同浓度 蔗糖的中试管的中 部，轻轻挤出吸管 中的蓝色液体，观 察记录小液流的方 向。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告引言：植物的水势是指植物体内水分与纯水之间的差异，是植物水分状态的重要指标之一。
测定植物组织水势可以帮助我们了解植物的水分吸收与运输情况，进而探索植物的适应机制和生理生态学特征。
本实验旨在通过测定植物组织水势的方法，探究植物水分状态的变化以及影响因素。
材料与方法：1. 实验材料：鲜嫩的植物叶片、离心管、注射器、测水势仪器（如压力室或压力台秤）等。
2. 实验步骤：a. 收集鲜嫩的植物叶片，并将其快速放入离心管中，避免水分流失。
b. 将离心管中的叶片放入注射器中，并用注射器吸取一定量的水分，使叶片完全浸没在水中。
c. 将注射器与测水势仪器连接，并记录初始读数。
d. 通过改变注射器的压力，使水分进入或退出植物叶片，记录每次读数。
e. 根据测得的数据，计算植物组织的水势值。
结果与讨论：通过实验测定，我们获得了植物组织的水势值。
根据实验结果，我们可以得出以下结论和讨论。
1. 植物组织水势的变化：在实验过程中，我们发现随着水分进入植物叶片，测水势仪器的读数逐渐增加，表示植物组织的水势值降低。
相反，当水分从植物叶片流失时，测水势仪器的读数减少，表示植物组织的水势值增加。
这说明植物组织的水势与水分的流动方向密切相关。
2. 影响植物组织水势的因素：植物组织的水势受多种因素的影响，包括温度、湿度、光照强度、气孔开闭等。
在实验中，我们可以通过改变这些因素来观察植物组织水势的变化情况。
例如，当提高环境温度时，植物组织的水势值通常会下降，因为高温会增加水分的蒸发速率。
而在湿度较低的环境中，植物组织的水势值也会下降，因为湿度低会导致植物体内水分的流失加剧。
3. 植物的适应机制：植物通过调节水势来适应不同的环境条件。
在干旱环境中，植物会通过调节气孔的开闭来减少水分流失，从而提高植物组织的水势值。
此外，一些植物还会通过根系的生长和分泌物质的合成来增加水分吸收，以维持植物组织的水势平衡。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验名称：植物组织水势的测定实验目的：了解各种植物组织中的水势变化规律，学习测定水势的实验操作方法。
实验原理：植物体内水势是维持植物生命活动的重要因素之一，水势可以影响水分的吸收和输送。
本实验采用“压延法”来测定不同植物组织（根、茎、叶）的水势大小。
实验步骤：1. 将需要测定水势的植物材料用钳子夹住，轻轻挥动，然后用手指指甲将其切断，割端要尽量平齐，不要碰到虫眼等杂质。
2. 将切口快速放入水中，利用吸水作用使水分上升，排除空气。
3. 将切口快速从水中取出，然后将其放到压延仪内，尽可能保持植物细胞的原有形态。
4. 向下轻压压延仪的拉杆，停留一段时间几秒钟，等到细胞的状况稳定后，读取示数，记录下此时的长度和标尺读数。
5. 再稍微压紧，停2~3秒左右，再读取示数，再记录下此时的长度和标尺读数。
6. 将杆恢复到原位，并将植物组织切口处擦干净。
7. 分别测定不同植物组织的水势。
根据水势的特点，以水分势值为y轴，切口位移长度为x轴，绘制出水势变化的曲线。
实验结果：我们分别测定了菜花根、豌豆茎、玉米叶片的水势变化曲线，图中可以看出，三种不同的植物组织他们的水势大小不同，玉米叶片水势最高，豌豆茎次之，而菜花根的水势最低。
这说明植物的吸收生长需要水分的支持，不同器官的水势不同。
实验结论：本实验内容重点在于掌握测水势的方法和水势的变化规律，同时还有机会深入了解植物的生长过程。
测定出不同植物组织的水势差异信息，说明不同的植物器官在吸水输液中扮演着不同的角色。
实验有效地理论与实践相结合，深化了我们对植物体内水分代谢的认识。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定小液流法一、实验目的了解织物组织水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法及优缺点。
二、实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的水势．可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液浓度的变化，然后根据公式计算渗透势．三、实验器材及试剂试管、毛细滴管、烧杯、移液管、刀片、打孔器、镊子、甲烯蓝、蔗糖溶液(1mol/L)四、实验步骤1. 配制一系列不同浓度的蔗糖溶液：0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5mol/l 各10ml，注入9支试管，并编号，按编号顺序在试管架上排成一列，作为对照组。
2. 另取9支试管，编好号，按顺序放在试管架上，作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管中。
3. 用打孔器在马铃薯上打孔，然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。
向试验组的每一试管中加1０片马铃薯小块，放置３０分钟，在这段时间内摇动数次，到时间后，向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许，并振荡，此时溶液变成蓝色。
4. 用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动，说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了；如果有色液滴向下移动，则说明细胞从溶液中吸了水，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动。
则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
测定植物组织水势的方法及其原理
测定植物组织水势的方法及其原理测定植物组织水势是研究植物生理学中的重要课题之一。
水势是指植物细胞内外水分的自由能差，是植物体内水分运输和调节的关键指标。
本文将介绍几种常用的测定植物组织水势的方法及其原理。
一、压力室法压力室法是一种直接测定植物组织水势的方法。
其原理基于植物细胞内外水势的平衡关系。
在实验中，将待测组织样品放入一个密封的压力室中，通过增加压力，使压力室内外的水势达到平衡。
通过测量加入压力之前和之后的压力差，可以计算出组织的水势值。
二、渗透势法渗透势法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于渗透压对水势的影响。
在实验中，将待测组织样品放入含有不同浓度溶液的渗透槽中，使组织与外界形成渗透平衡。
通过测量组织与溶液之间的渗透压差，可以计算出组织的水势值。
三、压力-容积曲线法压力-容积曲线法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于植物细胞的压力-容积关系。
在实验中，将待测组织样品置于不同的外界压力下，测量组织的容积变化。
通过绘制压力-容积曲线，可以确定组织的压力势和水势值。
四、气体法气体法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于气体扩散对水势的影响。
在实验中，将待测组织样品置于密闭的容器中，通过测量容器内气体的湿度变化，可以计算出组织的水势值。
以上所述的方法各有优缺点，选择合适的方法取决于实验目的、样品特性和实验条件等因素。
此外，还可以结合其他生理指标的测定结果，综合分析植物组织的水势状况。
测定植物组织水势的方法包括压力室法、渗透势法、压力-容积曲线法和气体法等。
这些方法基于不同的原理，通过测量不同的参数来间接或直接地确定植物组织的水势值。
在实际应用中，需要根据具体情况选择合适的方法，并结合其他指标进行综合分析，以全面了解植物的水分状况。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一。
水势是指植物细胞内水分与外界水分之间的压力差，是植物水分平衡的重要指标。
水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
植物组织水势的测定方法有很多种，其中比较常用的是压膜法和压力室法。
压膜法是将植物组织放在一块半透膜上，然后在膜的一侧施加一定的压力，使水分从组织中流出，从而测定组织的水势。
压力室法则是将植物组织放在一个密闭的压力室中，通过改变室内的压力来测定组织的水势。
在进行植物组织水势的测定时，需要注意以下几点。
首先，要选择新鲜的、健康的植物组织进行测定，以保证测定结果的准确性。
其次，要在测定前将植物组织放在水中浸泡一段时间，使其达到水分平衡状态。
最后，在进行测定时要注意操作的精细和准确，以避免误差的产生。
植物组织水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
例如，在干旱地区，可以通过测定植物组织的水势来判断植物是否缺水，从而采取相应的措施，如增加灌溉量、改善土壤水分状况等，以保证植物的正常生长和发育。
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一，可以帮
助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
在进行测定时，需要注意操作的精细和准确，以保证测定结果的准确性。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
一、实验原理
植物组织水势的测定是指在化学反应体系中，利用植物组织自主有形成电位差的能力，来检测植物组织中的一种物质的含量。
植物组织水势的测定原理是：将植物组织与溶液中的电解液混合，当植物组织中的物质与电解质发生电化学反应时，会产生电位差，这一电位差就可以用来测量植物组织中物质的含量。
二、实验材料
1、植物组织：取适当数量的植物组织，去除多余水分，石膏伤及部位，研磨后可用于实验。
2、酸度标准液：可以根据实验要求，称取一定量的水泥砂、HCl 和NaOH，溶解后加入去离子水，稀释至一定量，即可作为酸度标准液。
3、电解质溶液：可以根据实验要求，取一定的NaCl和KCl，溶解后，加入去离子水，稀释至一定量，即可作为电解质溶液。
4、电位仪：将电位仪接在实验管中，便可记录出电位变化。
三、实验步骤
1、将植物组织研磨成细末，取0.8g，放入实验管中，加入10ml 酸度标准液，搅拌均匀，待混和液中的物质完全溶解后，取出实验管中的混和液，用滤纸筛去残渣，再放回实验管中，再加入15ml电解质溶液，用电位仪记录电位值。
2、重复上述步骤，每次加入的电解质溶液量不同，当电位值趋于稳定时，说明存在的物质在电解质溶液中完全溶解，可以得到植物组织的水势值。
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溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
液滴移动方向
结果是否正确，为什么？
溶液的浓度偏大
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加样器的使用
正确使用：
注意事项：吸取溶液后不能倒置
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注意事项：
1. 所取材料在植株上的部位要一致，打 取叶圆片要避开主脉和伤口。
2. 取材以及打取叶圆片的过程操作要迅 速，以免失水。到实验材料生长处操作。
植物组织水势的测定
目的要求: 1、了解测定植物组织水势的方法及其优缺点; 2、学习用小液流法测定植物组织水势的方法; 3、掌握露点法测定植物组织水势的原理与方法。
特别注意（小液流法）：
1、使用干燥试管；实验结束后试管一定要洗刷干净。
2、试管上附着的甲烯兰，用铬酸洗液浸泡，自来水冲洗干 净后交给老师，检查合格，老师统一用蒸馏水冲洗后烘干。
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1
水势：
水势表示水分的化学势； 水从水势高处流向低处； 植物体细胞之间，组织之间以 及植物和环境之间的水分移动 方向由水势差决定（流速和方 向）。
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植物组织水势（和渗透势）的测定方法：
水势测定：平衡法
液相平衡法－小液流法、重量法；质壁分离法。 所需仪器设备简单，但手续繁琐、效率低，难以自动记录。
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7. 观察液滴升降： 用毛细管取甲组试管有色液 乙组试管中部 液滴位置？观察液滴升降并记录。
观察一个浓度后用吸水纸将毛细管 内的溶液吸净，再进行下一个测定。
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液滴
植物
液滴
材料
ψw > ψS 溶液浓度变小
ψw < ψS 溶液浓度变大
ψw = ψS 溶液浓度不变
静止 不动
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溶液渗透势的计算：
ψS=﹣iCRT
式中 ψS—溶液的渗透势，以MPa为单位； R＝0.008314MPa·L·mol﹣1·K﹣1 T—绝对温度，即273+t℃； C—溶液的质量摩尔浓度，以mol·kg －1 H2O为单位 i－溶液的等渗系数，CaCl2可用2.6。
CaCl2 溶液粘度大，容易形成液滴，便于观察。
压力平衡法－压力室法。 适于测定枝条或整个叶片的水势，对于小型样品叶圆片等 则无能为力。
气相平衡法－热电耦湿度计法、露点法。 能广泛用于各种植物叶片水势和渗透势的测定，所需样品 量极少、测量精度高，是近年来发展起来的一类较好的植 物水势及其组分的测定技术。
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一、液体交换法测定植物组织水势 （小液流法）
小液流法测定植物组织水势的原理 ？
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（一）原理
1、当植物组织与外液接触时发生水分交换：
★ 植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势）： 组织吸水，外液浓度变大；ψw植物<ψS
★ 植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势） ：
组织失水，外液浓度变小；ψw植物> ψS ★植物组织的水势与外液的渗透势相等，则水分 交换保持动态平衡：
3. 甲烯蓝易吸附在试管壁上，先用水洗 刷，再用铬酸洗液浸泡。，
铬酸洗液回收，可以重复使用。
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小液流法植物组织水势的测定
思考题: • 小液流法测定植物组织水势的实验中，
甲组试管中叶园片的多少对测定结果有无 影响？为什么？ • 如果蓝色小液滴在乙组试管中均下降， 能否求出组织水势？
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外液浓度保持不变； ψw植物＝ψS
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2、同一种物质浓度不同时其比重不一样， 浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放 到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。
3、根据外液浓度的变化情况即可确定与植 物组织相同水势的溶液浓度。
根据以下公式计算出溶液的渗透势，即为植 物组织的水势。
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溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
液滴移动方向
无平衡浓度结果
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溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
液滴移动方向
错误结果
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溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
液滴移动方向
结果是否正确，为什么？
溶液的浓度偏小
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（二）实验材料
大叶黄杨叶片（取叶片8－10个，随去随用，不要带枝条？）
纸擦干叶片， 勿水洗！
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（二）实验用品
用具：
特制试管架1个； 10ml试管12支（具橡皮塞） （为什么使用特制的试管架？）
试剂：
CaCl2溶液：
0.05，0.1，0.2，0.3，0.4，0.5 mol·kg-
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毛细管放置稳定
挤出小液滴
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ整理ppt
取出毛细管 观察液滴升降
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8. 分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出 与组织水分势相当的浓度，根据原理公式计 算出组织的水势。
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溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
液滴移动方向
具有平衡浓度结果
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1H2O
甲烯蓝粉末
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（三）操作步骤
1. 取干燥洁净的试管12支，分成甲、乙两组。 2. 甲组试管中分别加0.05～0.5 六种浓度的溶液之一
各0.5ml（量准确？）。用一只移液器 低 高。 3. 乙组试管加入6种浓度的CaCl2溶液各4ml，用一只
移液器 低 高。4ml需要很准确吗？ 4. 甲、乙两组试管分别塞上相应的橡皮塞备用。
既：气体的水势（也是蒸气压）＝叶片的水势 （或组织汁液的渗透势）
测出样品室内空气的蒸气压，便可得知植物组织 的水势。
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二、露点法测定植物组织水势
测定动物材料、植物材料、愈伤组织、根尖、 土壤的水势以及各种液体的渗透势及活体叶片的水 势 ， 并 可 以 兼 做 渗 透 压 计 使 用 。 到 目 前 为 止 ， HR33-T-R型露点微伏压计是测定范围最广、性能最完 善的水势仪
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测定原理：
将叶片或组织汁液（测渗透势）密闭在体积很小 的样品室内，经一定时间后，样品室内的空气和 植物样品将达到温度和水势的平衡状态。
为什么盖橡皮塞？
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5. 选取均匀一致的植物叶片8～10片（勿水洗！）， 打取叶圆片60余片，甲组试管内各加入叶圆片10个， 使叶片浸入溶液，盖上橡皮塞，平衡20min以上。期 间多次摇动试管，以加速水分平衡。
6. 染色：在甲组每一试管中用解剖针放入微量甲烯蓝 粉末，摇匀，溶液变蓝。（干燥针头先用蒸馏水湿 润，加入的甲烯蓝量一定少）