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植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定（小液流法）实验目的：1. 了解测定植物组织水势的方法及其优缺点2. 学习用小液流法测定植物组织水势的方法实验原理：实验原理1、当植物组织与外液接触时发生水分交换：植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水，外液浓度变大；ψ植物<ψS植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势），组织失水，外液浓度变小；ψ植物> ψS若两者相等，则水分交换保持动态平衡，外液浓度保持不变；ψ植物＝ψS2、同一种物质浓度不同时其比重不一样，浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。
3、根据外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度实验仪器与试剂试管架试管打孔器毛细管镊子青霉素瓶蔗糖溶液甲烯蓝粉末操作步骤1. 配制不同浓度的蔗糖溶液2.用打孔器在绣球花的不同部位打100-200片，混匀，每个青霉素瓶各放入15-20片，（打孔要迅速，避开叶脉，选边缘整齐无破损的叶片）3.从配制好的试管中各取2ml（量准确？）到相应的青霉素瓶或称量瓶中（用一只移液管由低高，不要润洗）。
放置20—30min，期间摇动数次，以加速水分平衡。
4. 染色：用接种针沾入微量甲烯蓝粉末加入青霉素瓶中，摇匀，溶液变蓝。
（干燥针头先用蒸馏水湿润，加入的甲烯蓝量一定少，使各瓶中颜色基本一致）5.观察液滴升降：用毛细吸管取青霉素瓶有色液插入相应试管中部缓慢从毛细吸管尖端横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色液滴的移动方向并记录。
（用白纸划一直线置于试管背面，方便观察）6.分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出与组织水分势相当的浓度，根据原理公式计算出组织的水势。
实验结果测定植物组织的水势实验记录水势计算ψs=-iCRT实验讨论如果小液流滴在对照溶液中全部上升或下降说明什么问题，应如何改变试验溶液浓度？答：“全部上升”说明实验溶液的浓度都高于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度降低再做；“全部下降”说明实验溶液的浓度都低于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度调高再做。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
一、目的
学会用小液流法测定植物组织的水势
二、材料用具及仪器药品
花生叶片、试管、移液管（10ml，0.1ml）、洗耳球、镊子、小方块、钻孔器、牙签、玻璃棒、蔗糖、次甲基蓝
三、方法步骤
1、将1mol/L蔗糖溶液的母液分别配成0.1、0.
2、0.
3、0.
4、0.
5、0.6mol/L的蔗糖溶液各10ml分别注入6支大试管中，摇匀
2、从上述的大试管中各取2ml溶液，分别放到另6支小试管中，各试管塞上软木塞
3、用钻孔器钻取叶圆片（花生叶、菠菜均可），依次分别在小试管的蔗糖溶液中各放入叶圆片40片（钻孔器的直径为6mm），叶圆片要全部浸在溶液中，塞上木塞，每隔5分钟摇动一次
4、30分钟后，用牙签取次甲基蓝结晶少许，分别投入小试管中，摇匀
5、用0.1ml的移液管从小试管中吸取溶液约0.1ml，然后将之插入相对应浓度的大试管中的中部，慢慢放出蓝色液，并观察记录小液流的流向，从中找出小液流停止不动的该溶液的浓度（每一浓度配备0.1ml移液管一支）
6、量出该蔗糖溶液的温度
7、根据公式φs=-CiRT，求出组织的水势
四、实验报告
i：渗透系数R：气体常数C：溶液的摩尔浓度
计算所测材料的水势φn（φs）
五、思考
在干旱地方生长的植物的水势较高还是较低？为什么？。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势是指植物细胞内的水分势，它是维持植物细胞正常生理活动的重要因素。
本实验旨在通过测定植物组织水势的变化，探究植物在不同环境条件下的水分调节机制。
实验中我们选择了甜菜和马铃薯作为实验材料，通过测定它们在不同浓度蔗糖溶液中的质量变化，来间接推断植物组织的水势变化。
以下是实验的具体过程和结果。
首先，我们准备了不同浓度的蔗糖溶液，分别为0.2M、0.4M、0.6M、0.8M和1.0M。
然后，将甜菜和马铃薯均匀切成小块，分别放入不同浓度的蔗糖溶液中浸泡一段时间。
浸泡结束后，取出植物组织，用纸巾将其表面水分吸干，然后称量其质量并记录下来。
实验结果显示，随着蔗糖溶液浓度的增加，甜菜和马铃薯的质量均呈现出不同程度的减少。
这表明植物组织在高浓度蔗糖溶液中失去了水分，导致质量减少。
而在低浓度蔗糖溶液中，植物组织的质量减少较少，甚至有些情况下质量还有所增加。
这说明低浓度蔗糖溶液中的水势比植物组织的水势高，因此水分会从溶液中渗入植物组织，导致质量增加。
通过对实验结果的分析，我们可以得出以下结论，植物组织的水势受到周围环境的影响，当外部环境的水势高于植物组织的水势时，水分会从外部环境渗入植物组织；反之，当外部环境的水势低于植物组织的水势时，水分会从植物组织流向外部环境。
这种水分调节机制有助于植物在不同环境条件下维持细胞内稳定的水分平衡，保证正常的生长和代谢活动。
综上所述，本实验通过测定植物组织在不同浓度蔗糖溶液中的质量变化，间接测定了植物组织的水势变化，并探究了植物的水分调节机制。
通过本实验的学习，我们更深入地理解了植物细胞内水分调节的重要性，也为今后进一步研究植物生长发育提供了一定的参考和指导。
总之，植物组织水势的测定实验为我们提供了一个更清晰的认识植物水分调节机制的途径，也为我们理解植物生长发育的规律提供了重要的实验依据。
希望通过今后的学习和实践，我们能够进一步深化对植物生理学的理解，为推动植物科学研究做出更大的贡献。
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本文内容如下：【下载该文档后使用Word打开】小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室小液流法：1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
植物生理学实验 植物组织水势的测定(小液流法)
一、原
理
当植物细胞或组织放在溶液中时，如果植物的水 势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而 使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流 而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的 渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，外部溶 液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的 水势。可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的 原理来测定试验前后溶液浓度的变化。然后根据 公式计算其渗透势。
二、仪 器 药 品
试管 毛细吸管（尖端弯成90度）
移液管
单面刀片 镊子 次甲基蓝 打孔器 常春藤叶
三、实 验 步 骤
1．首先配制一定浓度蔗糖溶液 （0.1,0.2,0.3,0.4,0.5,0.6,0.7,0.8M）各10ml， 注入试管中，各管都加上塞子，并编号。按编号 顺序排成一列，放在试管架上，作为对照组。 2．另取8支试管(或青霉素瓶），编好号，按顺序放 在试管架上，作为试验组。然后由对照组中之各 试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管 中，再将各试管都加上塞子。
3．用打孔器把常春藤叶打成大小相等的小圆块， 向试验组的每一试管中各加相等数目的叶片， 塞好塞子，放置30分钟，在这段时间内摇动数 次，到时间后，向每一试管中各加次甲基蓝粉 末少许，并振荡，使溶液着色均匀。
4．用毛细吸管从试验组的各试管中依次吸取着 色的液体少许，然后伸入对照组的相同编号试 管的液体的中部，缓慢放出一滴蓝色试验溶液， 并观察小液流移动的方向，并记录之。
5．计算 记录小液流不动的试管中蔗糖溶液的浓度，按 ψπ=－RTiC计算水势值。 C＝等渗浓度（mol/L） R＝气体常数（0.008314MPa/L/mol/K） T＝绝对温度 i＝解离系数（蔗糖＝1，CaCl2＝2.60）
植物组织的水势测定
用吸管( 或弯形直角毛细管) 4 . 用吸管 ( 或弯形直角毛细管 ) 从小瓶内吸取已 着色液体少许， 小心地伸入试管中部， 着色液体少许 ， 小心地伸入试管中部 ， 并慢 慢的挤出一小滴着色溶液， 慢的挤出一小滴着色溶液 ， 仔细观察小液流 移动方向( 向上， 向下或者不动) 移动方向 ( 向上 ， 向下或者不动 ) ， 记录小液 流不动时的蔗糖溶液的浓度。 流不动时的蔗糖溶液的浓度 。 ( 如找不到静止 不动的浓度， 不动的浓度 ， 则可找液滴上升和下降相邻的 两个蔗糖液浓度，求其平均值) 两个蔗糖液浓度，求其平均值)
如果取浸过植物组织的溶液一小滴（ 如果取浸过植物组织的溶液一小滴（为便 于观察可先染色），放在原来的浓度相同的未 于观察可先染色），放在原来的浓度相同的未 ）， 浸植物组织溶液中， 浸植物组织溶液中，就可根据液滴的升降情况 来断定浓度的变化，如果小液滴不动，则表示 来断定浓度的变化，如果小液滴不动， 溶液浸过植物组织后浓度未变， 溶液浸过植物组织后浓度未变，此溶液的溶质 势即等于组织的水势。 势即等于组织的水势。
用小号打孔器打取菠菜叶片园片， 2. 用小号打孔器打取菠菜叶片园片，每一小 瓶内放10 10片 放置30分钟，并经常轻轻摇动， 30分钟 瓶内放10片，放置30分钟，并经常轻轻摇动， 以加速水分平衡。 以加速水分平衡。 3. 到预定时间后，用解剖针挑少许甲基蓝粉 到预定时间后， 注意不要多放， 末(注意不要多放，以着色为准 ，摇匀。 注意不要多放 以着色为准)，摇匀。
பைடு நூலகம்
五、结果计算 =-iCRT 083*(273℃+t℃)*1 *(273 =-0.083*(273℃+t℃)*1*C 单位：bar， bar=10 单位：bar，1bar=105Pa
实验1植物组织水势的测定。
实验目的
水是原生质的主要组成成分，占原生质总 量的70%~90%。植物水分状况对植物生理的 生理活动具有重要影响。植物水势是植物 的水分状况的重要指标，导意义。
掌握植物组织水势的测定方法及其优缺点， 并了解渗透系统中水势大小是水分移动方 向的决定因素。
实验原理
植物生活细胞是一个渗透系统，当将植物 细胞或组织放人外界溶液中时，水分将以 水势差为动力在两者间流动，最终达到动 态平衡。如果植物组织的水势小于外界溶 液的水势，植物细胞吸水，使外界溶液浓 度增大；反之，植物细胞失水，使外液浓 度变小。若植物组织与外界溶液水势相同， 将不改变外部溶液的浓度，此时外液的渗 透势就等于植物组织的水势。可以利用外 界溶液的浓度不同其比重也不同的原理来 确定与植物组织水势相同的外液，根据公 式计算植物组织的水势。
结果分析
１号管小液流下降，说明组织水势低于蔗 糖溶液水势，组织吸水，蔗糖浓度变大； 2号管小液流不动，说明组织水势与蔗糖 溶液水势相同，二者间无水分量的交换； ３~８号管小液流上升，说明组织水势高 于蔗糖溶液水势，组织排水，蔗糖浓度变 低。
注意事项
1 ．材料投入试管要快，防止材料水分蒸发影响实 验结果。
t 为实验温度）； c 为等渗溶液浓度， mol/L 。
实验结果
组号 1 2 3 4 5 6 7 8
蔗糖 浓度 0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 (M)
小液 流方 向下 悬浮 向上 向上 向上 向上 向上 向上
向
=-1×0.1×0.083×100000×(273+25) =-247340Mpa
４．用铜丝向每支试管中挑入少许甲基兰，摇 匀，使溶液呈浅蓝色。
５．用弯头滴管依次 从实验组试管中吸 取少量溶液，小心 插入装有相同蔗糖 浓度的对照组试管 的中部，轻轻挤出 滴管中的蓝色液体， 观察记录小液流的 方向。
实验 植物组织水势的测定
6、按 -ψw=RTiC 计算水势: 其中ψw为细胞水势， R(气体常数)= 8300L*Pa/mol*K。 T 为绝对温度，单位K，即 273℃+t，t 为实验温度。 i 为解离系数， 蔗糖为1。 C 为等渗溶液的浓度， 单位为mol/kg。
实验二 植物组织水势的测定
小液流法
实验原理
•
水势表示水分的化学势，象电流由高电位处 流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。植 物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间 移动方向都由水势差决定。 当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果 植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组 织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内 水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势 与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡， 所以外部溶液浓度不变，此溶液的渗透势即等于 所测植物的水势．可以利用溶液的浓度不同其比 重也不同的原理来测定试验前后溶液浓度的变化， 然后根据公式计算渗透势．• Nhomakorabea 仪器药品
试管 毛细滴管 移液管 刀片 甲烯蓝 蔗糖溶液(1mol/L) 烧杯 打孔器
操作步骤
1、配制一系列不同浓度的蔗糖溶液 ：0.1、0.15、 0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5 mol/l 各10ml， 注入9支试管，并编号，按编号顺序在 试管架上排成一列，作为对照组。 2、另取9支试管，编好号,按顺序放在试管架上，作 为试验组。然后从对照组的各试管中分别取溶液 4ml移入相同编号的试验组试管中。
3、用打孔器在马铃薯上打孔，然后用刀片将马铃薯 条切成厚薄相等的小块。向试验组的每一试管中 加20片马铃薯小块，放置30分钟，在这段时间内 摇动数次，到时间后，向每一试管中各加甲烯蓝 粉末少许，并振荡，此时溶液变成蓝色。
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植物组织水势的测定实验报告
一、实验目的和要求
了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定
的方法和它们的优缺点。
二、实验原理
小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
三、主要仪器设备
小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室
四、操作方法和实验步骤
小液流法：
1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+toC) ×浓度
压力室法：
根据植物材料选取枝条（或叶片）型的压力室盖→将试样装入压力室盖的孔（或槽）中夹紧，压入压力室并顺时针旋转紧固。
打开钢瓶阀门，使控制阀朝向加压，缓慢打开测定阀，使加压速率达0.1bar,仔细观察伸出压力室盖的植物样品，一发现木质部转湿润液体溢出，立即关闭测定阀，记录压力表读数。
组织Ψw(Mpa) = -0.1×压力室压力表读数
五、实验数据记录和处理
小液流法测定结果：
其他两个小组的实验结果：
根据公式计算得到萝卜组织液浓度
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+t℃) ×浓度=
-0.0083×(273+16 ) ×0.1=-0.240Mpa
萝卜组织液浓度约为0.1mol/L，水势约为-0.240Mpa
压力室法测定结果：
室温16℃，测出出水压力读数为13，水势 -1.3Mpa
六、实验结果与分析
1、比较多组的实验结果发现，各组实验数据差别较大，经分析认为通过小液流法测量的水势误差较大。
2、经分析认为萝卜切片厚薄和总质量不同、在空气中放置的时间不同、萝卜片在溶液中的放置时间不同，均有可能造成小液流法实验数据的偏差。
3、通过小液流法测得的植物组织水势只是一个范围，如要得到更精确的实验结果，需要缩小梯度之间的浓度差，在
0.5mol/L~0.2 mol/L之间设多个测量点。
七、讨论、心得
1、因为小液流法的人为因素误差较大，所以萝卜切片须尽量使大小厚薄均匀，切好后尽快同时放入到六个试管中，以减少人为误差。
2、由于萝卜和外界溶液渗透达到平衡需要一定的时间，所以将萝卜放入溶液后等待的时间不能过短，否则会引起实验误差，将萝卜切成薄片也是为了加快渗透作用。
3、使用注射器向原荣业中加入黄色的渗透平衡溶液时，
应缓慢加入少量即可，如加入太快，会黄色溶液从针头向下喷出，会对液流运动方向的观察造成影响。
4、用压力室法测定植物的水势，可以直接从压力表上读出水势的数值，实验结果直观，但是也存在一些缺点，判断水刚从切面渗出难度较大，同时该实验方法仪器要求较高，且测量值受到环境气压的影响。
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