小白鼠腹腔注射法
小白鼠腹腔注射法
腹腔注射（intraperitoneal）：
①腹腔注射时右手持注射器，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。
②为防止在下腹中间注射时伤到膀胱，最好是从下腹部左侧或右侧注射。
注射时针朝头方向刺入皮肤，针头到达皮下后，沿皮下向前推进3～5mm，然后使注射器针头及皮肤呈45°角刺入腹膜。
针头刺入腹膜后感抵抗力消失，此时在保持针头不动的状态下回抽针栓，如无回血或尿液，则可推入药液。
注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
③针头及腹腔的角度不宜太小，否则易进入皮下，为了避免刺破内脏，穿刺部位不宜太深或太近于上腹部，常用注射量为0.5ml，不宜超过1.0ml。
小鼠腹腔注射实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠腹腔注射的操作方法。
2. 了解腹腔注射在实验动物给药中的优势和应用。
3. 观察药物在小鼠体内的吸收和分布情况。
二、实验材料1. 实验动物：清洁级雄性小鼠，体重20-25g。
2. 实验药物：生理盐水（0.9%氯化钠溶液）。
3. 实验器材：注射器、针头、75%酒精棉球、实验动物笼、天平等。
三、实验方法1. 实验动物处理：将小鼠放入实验动物笼内，适应环境1-2天。
2. 实验分组：将实验动物随机分为实验组和对照组，每组10只。
3. 实验组给药：使用1ml注射器，吸取0.1ml生理盐水，进行腹腔注射。
注射部位为小鼠腹中线两侧0.5cm处。
4. 对照组给药：不进行腹腔注射，仅作为观察。
5. 给药后观察：给药后，观察小鼠的精神状态、活动情况、进食情况等。
6. 实验指标：观察给药后小鼠的体重、饮水量、尿量等指标。
四、实验结果1. 实验组小鼠在给药后，精神状态良好，活动自如，进食正常。
2. 对照组小鼠在给药后，精神状态、活动情况、进食情况与对照组相似。
3. 给药后第1天，实验组小鼠体重较给药前有所下降，但与对照组差异不明显。
4. 给药后第2天，实验组小鼠体重有所回升，接近给药前水平。
5. 给药后第3天，实验组小鼠体重基本恢复至给药前水平。
6. 实验组小鼠饮水量和尿量与对照组相似。
五、实验讨论1. 腹腔注射是一种常见的实验动物给药方式，具有操作简便、给药剂量准确、药物吸收迅速等优点。
2. 本实验结果表明，腹腔注射生理盐水对小鼠无明显不良反应，小鼠在给药后能够正常活动、进食。
3. 在进行腹腔注射时，应注意以下几点：a. 注射部位选择：小鼠腹中线两侧0.5cm处。
b. 注射深度：进入皮下后，沿皮下向前推进2-3mm，再以45度角向腹腔内刺入。
c. 注射速度：缓慢推入药物，避免药物外漏。
d. 注射后观察：密切观察小鼠的精神状态、活动情况、进食情况等。
六、实验结论通过本次实验，我们掌握了小鼠腹腔注射的操作方法，并了解到腹腔注射在实验动物给药中的优势和应用。
注射染毒方法(苯染毒小鼠)
本小组共有六名成员。
自项目申请通过起，本项目研究陆续开展。
目前以针对如何进行苯染毒小鼠的操作，成员进行了学习。
作为研究的初期工作，这将对我们进一步深入学习打下重要基础。
实验内容如下：在进行毒理学动物实验时要使动物经一定的途径接触毒物，染毒的途径要依实验目的并结合人类的实际接触方式，毒物的多少及理化性质和具体设备条件等来决定。
毒理学中最常用的染毒方式有使用注射染毒等。
注射染毒方法（苯染毒小鼠）注射染毒前应对器械及注射部位皮肤进行常规消毒。
1 ．腹腔注射腹腔注射染毒操作简便，受试物吸收快。
大、小鼠腹腔注射：左手抓住头背部皮肤固定动物，用无名指及小指将鼠尾夹住，动物腹部朝上，头略向下垂。
右手持注射针从下腹部外侧朝头方向刺入腹腔，若无回血及尿液即可进行注射苯。
注意事项：( 1 ）注射部位不可太近上腹部，也不可太深，以免损伤内脏。
( 2 ）一次腹腔注射量不宜过大。
( 3 ）进针时针头与腹壁所成角度不宜太小，以免刺入皮下。
2 ．皮下注射小鼠注射部位常选颈背部。
用左手抓起颈背部皮肤，注射针以20°的角度刺入，回抽针芯，无回血即可注射苯。
注射后局部隆起，说明确已注入皮下。
3．肌肉注射注射部位一般选动物臀部。
局部去毛、消毒。
固定动物，将针头垂直刺入肌肉内，回抽针芯无回血即可推注。
4．静脉注射静脉注射大、小鼠常选用尾静脉。
大、小鼠尾静脉注射：将动物固定，露出尾巴，将尾巴浸入温水中约 1-2 分钟，使静脉充血，此时可见三条尾静脉．选择最清楚的一条，于尾末端l／3 处用4 号针头刺入静脉，针头在尾静脉内平行推进少许。
左手将针头和鼠尾一同固定，回抽针芯，有回血时即可慢慢注入药物。
推注过程中若遇阻力或注射部位皮肤变白，说明未刺入静脉内，应拨出重刺。
小鼠注射
一、小鼠腹腔注射：腹腔注射是常见的给药方式，尤其是在麻醉时。
常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用2. 腹腔注射时右手持注射器，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔，注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
液体外漏的主要原因是抓取小鼠时，腹部过紧而致腹内压过高所致，应该紧抓颈部但使其腹部皮肤松软，此时进针注射，不会外漏。
4. 小鼠腹腔注射的给药容积一般为5～10ml/kg二、皮下注射给药将药液推入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环的过程。
作皮下注射常选项背或大腿内侧的皮肤。
操作时，常规消毒注射部位皮肤，然后将皮肤提起，注射针头取一钝角角度刺入皮下，把针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如无回血，可缓慢地将药物注入皮下。
拔针时左手拇、食指捏住进针部位片刻，以防止药物外漏。
注射量约为0.1～0.3ml/10g体重。
三、皮内注射给药将药液注入皮肤的表皮河真皮之间，观察皮肤血管的通透性变化或皮内反应，接种、过敏实验等一般作皮内注射。
先将注射部位的被毛剪掉，局部常规消毒，左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连接4.5针头穿刺，针头进入皮肤浅层，再向上挑起并梢刺入，将药液注入皮内。
注射后皮肤出现一白色小皮丘，而皮肤上的毛孔极为明显。
注射量为0.1ml/次。
四、肌肉注射给药小鼠体积小，肌肉少，很少采用肌肉注射。
当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，采用肌肉注射。
操作时1人固定小鼠，另一人用左手抓住小鼠的1条后肢，右手拿注射器。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法5篇
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法5篇第1篇示例：大鼠小鼠腹腔注射的操作方法一、引言腹腔注射是实验动物体内注射给药的一种常用方法，通常用于药物毒性和药效学研究。
在实验过程中正确的操作方法对于实验结果的准确性至关重要。
本文将介绍大鼠小鼠腹腔注射的操作方法，以供参考。
二、仪器与药品准备1. 注射针：选择适合体积的注射针，常见的有1ml、2ml、5ml 等多种规格，根据实验需要选择合适的规格。
2. 注射器：选择与注射针匹配的注射器，确保注射器的稳定性和操作性。
3. 消毒酒精：用于消毒注射针和注射器。
4. 实验动物：选择健康状况良好的大鼠或小鼠作为实验对象。
5. 麻醉剂：根据实验需要选择合适的麻醉剂，通常可以选择异氟醚或氯仿等。
三、操作步骤1. 准备工作a. 消毒操作台面和工具，保持实验环境清洁。
b. 准备好实验动物，并进行术前麻醉。
（注意：麻醉剂应根据实验动物的种类、体重和实验需要进行选择）c. 准备好需要注射的药品，并按照规定的剂量准备好。
2. 动物定位a. 将实验动物取出并放置于注射操作台上，保持动物处于仰卧位。
b. 用消毒酒精擦拭动物的腹部，保持清洁。
3. 注射操作a. 将注射器连接至注射针，并通过推杆将空气排出，确保注射器内无空气。
b. 用消毒酒精擦拭注射部位，定位后将注射针垂直刺入动物腹部。
c. 缓慢注射所需药品，确保药液完全注入。
4. 结束操作a. 缓慢拔出注射针，用干净的消毒纱布轻压注射部位，以防止药液溢出。
b. 将动物放置在温暖通风的环境中，观察动物的状态，并在必要时进行恢复护理。
四、注意事项1. 操作前需对动物进行术前麻醉，确保动物处于无痛苦状态。
2. 注射时需注意注射的速度和力度，以免伤害到动物内脏器官。
3. 在操作前后要做好手部消毒，并确保注射器和注射针的清洁和消毒。
4. 对于实验动物的选择需遵循伦理规范，确保其健康和人道对待。
五、结语以上就是关于大鼠小鼠腹腔注射的操作方法，正确地操作可以保证实验结果的准确性，同时也能够保护实验动物的健康。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法大鼠小鼠腹腔注射是一种常用的实验操作方法，广泛应用于生物学、药理学和毒理学等领域。
以下是大鼠小鼠腹腔注射的操作步骤：1. 准备工作：- 准备注射器、针头和试管等工具材料。
- 准备所需的药物或试剂，并将其配置成合适的浓度。
2. 动物准备：- 选择符合实验要求的健康动物。
- 在操作前，将动物放在安静、干净、舒适的环境中适应一段时间，以降低压力。
3. 操作步骤：- 将动物固定在适当的位置上，通常用左手握住动物身体，右手操作。
- 用适量的酒精或者消毒液将动物的腹部消毒，尤其是注射部位。
- 使用交叉剪刀和镊子，剪开动物的皮肤，露出腹腔。
- 使用注射器和针头，把准备好的药物吸入注射器中，注意避免气泡。
- 将针头插入动物腹腔，注射药物。
注射时应注意避免穿破内脏器官。
- 缓慢注射药物，避免快速注射造成的动物不适。
- 等待一段时间，确保药物充分吸收后，将针头缓慢地取出。
- 使用消毒棉球或者纱布轻轻按压注射部位，以止血和减少感染的风险。
4. 动物观察：- 在注射后的一段时间内，观察动物的行为、食物摄入和粪便改变等情况，记录相关数据。
- 注意观察是否出现异常反应或不适，如呼吸困难、颤抖等，及时采取处理措施。
5. 安全措施：- 在操作中，严格遵守实验室安全操作规程，佩戴手套和护目镜，避免药物接触皮肤、眼睛或其他部位。
- 使用过的针头和注射器要彻底清洗和消毒，避免交叉感染。
- 操作结束后，将动物放回合适的环境，并给予适当的护理和观察。
以上就是大鼠小鼠腹腔注射的操作方法。
在进行任何实验操作时，要确保操作准确、迅速并严格遵守实验室规范，以保证实验的稳定性和结果的可靠性。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射是一种常见的实验技术，用于给大鼠小鼠注射药物或其他物质。
下面是关于大鼠小鼠腹腔注射的操作方法的详细描述。
1. 实验前准备：
- 检查注射器和针头，确保其干净无菌。
- 准备需要注射的药物或其他物质，并按照要求配置好。
- 准备需要进行注射的大鼠小鼠。
2. 麻醉大鼠小鼠：
- 使用适当的麻醉方法（如麻醉剂注射或吸入麻醉气体）对大鼠小鼠进行麻醉。
- 检查大鼠小鼠的麻醉深度，确保其完全麻醉。
3. 准备注射位置：
- 使用消毒剂将大鼠小鼠的腹部肌肉区域清洁消毒。
4. 注射操作：
- 使用消毒剂消毒注射器和针头。
- 拿起无菌注射器，在注射器上抽取需要注射的药物或其他物质。
- 轻轻捏住大鼠小鼠的腹部肌肉区域，将注射器的针头插入皮肤下方朝向腹腔。
- 缓慢注射药物或其他物质，确保注射过程平稳且不激动大鼠小鼠。
- 在注射完成后，慢慢拔出注射器的针头。
- 用无菌棉球在注射点上轻轻按压几秒钟，以防止药物渗漏。
5. 结束操作：
- 将已完成注射操作的大鼠小鼠放置在恢复箱中进行恢复。
- 监测大鼠小鼠的恢复情况，确保其恢复正常后放回笼子或实验室环境中。
总结：对于大鼠小鼠腹腔注射，操作者需要具备良好的注射技术和动物处理经验。
在操作过程中，需要确保注射器和针头的无菌，并注意大鼠小鼠的麻醉深度以及注射过程中的稳定性。
注射后需要注意观察大鼠小鼠的恢复情况，并及时处理和记录相关数据。
腹腔注射
腹腔注射锁定【定义】：腹腔注射是将药物注入胃肠道浆膜以外，腹膜以内．其吸收速度较快（2小时左右）。
【适应症】：人不常应用，有时可以作为特殊治疗手段，如多巴胺、速尿联合腹腔注射治疗肝硬化顽固性腹水。
当猪只较小而难以寻找耳静脉时，或天冷皮肤血管收缩或猪处于贫血消瘦情况血管不明显时，可以通过腹腔注射补液．以防脱水死亡，因下痢脱水1/3以上即有生命危险．【操作步骤】：小鼠腹腔注射腹腔注射是常见的给药方式，尤其是在麻醉时。
常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用1ml的注射器，配合4号针头。
2. 腹腔注射时右手持注射器，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔，注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
【禁忌】：⒈忌不等渗液体，如50%葡萄糖。
⒉药液须加温至体温⒊选用无刺激性药液，忌葡萄糖酸钙等。
⒋油乳剂，有沉淀，半固体药物不宜腹腔注射。
【优点】：操作方便，任何动物不论大小都可腹腔注射。
腹膜面积大.密布血管和淋巴管,吸收能力特强,每小时可吸收占动物体重3%~8 %的液体.且腹腔补液时间短,速度快大号针头2分钟即可输入500毫升药液,还不考虑心脏超负荷。
【其他声音】：某些兽医认为腹腔注射液不宜过大，20KG的猪20-30ml，30kg的猪40ml，50kg的猪50ml。
【个人体会】：一般情况下，输入体重5%的适宜液体是安全可靠的。
腹腔注射与静脉注射的区别腹腔注射和静脉注射的区别不大，静脉注射的药物注射后马上就能进入体循环；腹腔注射的药物要在腹腔中经过肠系膜静脉吸收后缓慢的逐步进入体循环。
两种给药方式的用量一般一样，但是腹腔注射产生作用的速度可能要慢一些。
动物常用给药实训报告
一、实训目的本次实训旨在使学生掌握动物实验中常用的给药途径和方法，提高实验操作技能，为今后从事相关研究工作打下基础。
二、实训时间2023年X月X日三、实训地点动物实验室四、实训对象小白鼠（雄性，体重约20g）五、实训内容1. 动物给药途径本次实训主要学习了以下动物给药途径：- 灌胃法- 腹腔注射法- 皮下注射法- 静脉注射法2. 给药方法（1）灌胃法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。
2. 用左手抓住小白鼠头部，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。
3. 将药物注入胃内，注入量约为0.2～0.5ml/10g。
4. 慢慢抽出灌胃针，并轻轻抚摸小白鼠的腹部，帮助药物进入胃内。
（2）腹腔注射法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。
2. 用左手抓住小白鼠腹部，右手持注射器，将针头从小白鼠腹部正中线处刺入腹腔。
3. 将药物注入腹腔，注入量约为0.2～0.5ml/10g。
4. 缓慢抽出针头，并轻轻抚摸小白鼠腹部，帮助药物进入腹腔。
（3）皮下注射法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。
2. 在小白鼠背部或腹部选择合适的注射部位。
3. 用左手抓住注射部位上方皮肤，右手持注射器，将针头刺入皮下。
4. 将药物注入皮下，注入量约为0.2～0.5ml/10g。
5. 缓慢抽出针头，并轻轻抚摸注射部位，帮助药物进入皮下。
（4）静脉注射法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。
2. 在小白鼠耳静脉选择合适的注射部位。
3. 用左手抓住小白鼠耳朵，右手持注射器，将针头刺入耳静脉。
4. 将药物注入耳静脉，注入量约为0.2～0.5ml/10g。
5. 缓慢抽出针头，并轻轻抚摸注射部位，帮助药物进入耳静脉。
六、实训结果本次实训中，所有动物均成功接受了给药，给药过程顺利，无意外发生。
七、实训总结1. 通过本次实训，学生掌握了动物实验中常用的给药途径和方法，提高了实验操作技能。
2. 在实际操作过程中，应注意以下几点：- 操作前，仔细观察动物的状态，确保动物健康。
小鼠腹膜注射操作流程
小鼠腹膜注射操作流程
一、目的
通过小鼠腹腔注射给药,使药物直接进入小鼠体内,实现药物的快速吸收。
二、主要器械和药品
1. 1ml单用注射器和针头
2. 需要注射的药物
3. 75%酒精
三、操作步骤
1. 将小鼠固定在固定板上,使其不能移动。
2. 用75%酒精对小鼠腹部进行消毒。
3. 一手拿起注射器,一手抓住小鼠的皮肤,使皮肤绷紧。
4. 将针头对准小鼠下腹部中央,刺入约0.5cm深,角度约10-30度。
5. 慢慢推动注射器的活塞,注射药物。
6. 注射完成后,缓慢拔出针头,用酒精对针孔进行消毒。
7. 观察小鼠情况,记录注射后的反应。
四、注意事项
1. 注射针头插入的角度和深度要适中,避免刺伤内脏。
2. 注射速度不宜过快,以防破裂腹膜。
3. 每次给药量和给药频率要遵医嘱。
4. 注射后要观察小鼠情况,如出现不良反应要及时处理。
五、并发症
1. 针头刺伤内脏造成内出血。
2. 注射过快造成腹膜破裂,药物漏入腹腔。
3. 注射不当造成腹膜炎。
以上为小鼠腹膜注射的基本操作流程,需要根据具体情况进行适当调整。
操作时要细心谨慎,确保给药的准确性和安全性。
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腹腔注射（intraperitoneal）：
①腹腔注射时右手持注射器，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。
②为防止在下腹中间注射时伤到膀胱，最好是从下腹部左侧或右侧注射。
注射时针朝头方向刺入皮肤，针头到达皮下后，沿皮下向前推进3～5mm，然后使注射器针头与皮肤呈45°角刺入腹膜。
针头刺入腹膜后感抵抗力消失，此时在保持针头不动的状态下回抽针栓，如无回血或尿液，则可推入药液。
注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
③针头与腹腔的角度不宜太小，否则易进入皮下，为了避免刺破内脏，穿刺部位不宜太深或太近于上腹部，常用注射量为0.5ml，不宜超过1.0ml。