志贺氏菌,的监测方法,

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志贺氏菌胶体金法-概述说明以及解释

志贺氏菌胶体金法-概述说明以及解释

志贺氏菌胶体金法-概述说明以及解释1.引言1.1 概述概述志贺氏菌胶体金法是一种用于检测志贺氏菌感染的生物学方法。

志贺氏菌是一种能够引起胃肠道感染的细菌,其中一种亚型称为志贺氏菌O157:H7是引起人类食物中毒的主要菌株之一。

志贺氏菌胶体金法基于金标记技术,通过与志贺氏菌特异性抗原的结合来实现对志贺氏菌的检测和定量分析。

志贺氏菌胶体金法的原理是利用胶体金颗粒与志贺氏菌特异性抗原之间的亲和性作用。

金颗粒具有良好的生物相容性和稳定性,其颗粒表面可以通过化学修饰等方法引入志贺氏菌的特异性抗原,使得金颗粒能够与志贺氏菌特异结合。

当志贺氏菌存在于样本中时,与其特异性抗原结合的金颗粒会出现红色或其他可见颜色的沉淀,从而实现志贺氏菌的检测。

志贺氏菌胶体金法在医学、食品安全和环境监测等领域具有广泛的应用前景。

在医学领域,该方法可以快速、准确地检测出志贺氏菌感染,为临床诊断提供重要依据。

在食品安全领域,志贺氏菌胶体金法可以用于检测和监测食品中的志贺氏菌污染,保障公众健康。

在环境监测领域,该方法可以用于水源、土壤等环境中志贺氏菌的快速检测,以指导环境卫生管理。

然而,志贺氏菌胶体金法也存在一些局限性。

首先,该方法对志贺氏菌的特异性抗原要求较高,若抗原选择不当或存在交叉反应,则可能导致误诊。

其次,该方法需要专业的实验操作和设备支持,对操作人员的技术要求较高。

此外,该方法目前还没有得到广泛推广和应用,需要进一步的研究和验证。

总而言之,志贺氏菌胶体金法是一种有潜力的志贺氏菌检测方法,其原理基于金颗粒与志贺氏菌特异性抗原的结合。

该方法在医学、食品安全和环境监测等领域具有广泛的应用前景,但同时也存在一些局限性。

进一步的研究和验证将有助于进一步完善和推广该方法。

1.2 文章结构文章结构部分的内容可以包括以下内容:文章的结构是指整篇文章的组织方式和各个部分之间的逻辑关系。

一个良好的文章结构能够使读者更好地理解整个文章的内容,提高文章的可读性和逻辑性。

《志贺氏菌检测》课件

《志贺氏菌检测》课件
拉曼散射光谱法
利用激光散射光谱技术对志贺氏菌的分 子结构进行分析和鉴定。
志贺氏菌的防治
,可有效预防志贺氏菌的传播。
严格遵守食品安全标准,确保食 品的储存、加工和烹饪过程符合 卫生要求。
健康教育
加强对公众、食品从业人员和医 疗卫生工作者的健康教育和培训。
3 健康威胁
志贺氏菌可通过接触感染、 食物污染和水源污染等途 径传播给他人。
志贺氏菌感染对儿童、年 长者和免疫系统较弱的人 群构成严重威胁。
志贺氏菌的检测方法
1
培养法
2
将样本放入富含营养物质的培养基,利
用志贺氏菌的生长和代谢特性进行检测。
3
直接涂片法
通过取样涂片、染色和微观观察来检测 志贺氏菌的存在与数量。
《志贺氏菌检测》PPT课 件
志贺氏菌是一种常见的肠道细菌,了解其检测方法和防治措施对保障公共健 康至关重要。
志贺氏菌的由来
志贺氏菌最早由日本细菌学家志贺博士于1897年发现,其名字也是为了纪念 他的杰出贡献。
志贺氏菌的危害
1 食物中毒
志贺氏菌感染可导致严重 的食物中毒,引发呕吐和 腹泻等症状。
2 感染传播
结语
了解志贺氏菌的危害和重要性,掌握其检测与防治的方法,将为保障公共健 康作出重要贡献。

志贺氏菌检验方法

志贺氏菌检验方法

03
,如实验服、口罩、手套等。
样品处理注意事项
样品采集时应保证无菌操作,避免污染。
样品应尽快送至实验室进行检验,避免长时间存 放导致细菌繁殖。
样品处理过程中应保持清洁卫生,避免交叉污染 。
检验方法选择注意事项
1
根据样品类型和检验目的选择合适的检验方法。
2
对于不同种类的志贺氏菌,应选择具有针对性的 检验方法。
断结果。
分子生物学检测法
聚合酶链式反应(PCR)
利用特异性引物扩增志贺氏菌基因片段,通过凝胶电泳检 测扩增产物,判断是否存在志贺氏菌。
基因测序
对志贺氏菌基因进行测序分析,与其他已知基因序列进行 比对,以确定志贺氏菌的种属和亚种。
生物传感器技术
利用生物传感器检测志贺氏菌的代谢产物或特异性抗原, 通过信号转换器将生物信号转化为电信号,实现快速、灵 敏的检测。
食品样品的处理
采集到的食品样品应尽快送往实验室进行检验,如果不能及时送检,应将样品低 温保存,避免样品变质和污染。
04
志贺氏菌检验的注意事项
实验室安全注意事项
01
实验室应保持清洁卫生,定期进行消毒处理,确保无菌环境。
02
实验操作应在生物安全柜中进行,避免交叉污染和意外感染。
实验人员应接受专业培训,熟悉操作规程,佩戴个人防护装备
03
志贺氏菌检验的样品采集与处 理粪便样品的采集与处理粪便样品的采集
采集粪便样品时,应确保采集到新鲜 、未被污染的粪便,并尽量多采集一 些,以增加检出率。
粪便样品的处理
采集到的粪便样品应尽快送往实验室 进行检验,如果不能及时送检,应将 样品低温保存,避免样品干燥和污染 。
水样品的采集与处理

志贺氏菌检测

志贺氏菌检测

C群:也称鲍氏菌群,有15个血清型,分解甘 露醇,无鸟氨酸脱羧酶。各型内无交叉凝集。 D群:也称宋内氏菌群,仅有一个血清型。分 解甘露醇,有鸟氨酸脱羧酶,迟缓发酵乳糖。 有Ⅰ(S相光滑菌落)、Ⅱ相(R粗糙菌落)之分。
福氏志贺菌在HE琼脂平板上的菌落 特征蓝绿色大肠埃希菌红色较大
二、志贺氏菌的生物学特性
菌落形态学
关注菌落的形态、大小、边缘、突起、颜色、 质地等等,都是区分细菌的重要手段。
福 氏 志 贺 氏 菌 的 菌 落 特 征
宋内志贺菌乳糖迟发酵菌株 在麦康凯平板上的菌落特征
细菌在肉汤培养基中的生长
均匀浑浊生长是什么意思?
二、志贺氏菌的生物学特性
3、志贺氏菌的生化特性: 本菌属都能分解葡萄糖,产酸不产气。大 多不发酵乳糖,仅宋内氏菌迟缓发酵乳糖。 靛基质产生不定,甲基红阳性,VP试验阴 性,不分解尿素,不产生H2S。与肠杆菌科 各属细菌相比较,志贺氏菌的主要鉴别特 征为不运动,对各种糖的利用能力较差, 并且在含糖的培养基内一般不形成可见气 体。根据生化反应可进行初步分类。
志贺氏菌属的四个群
根据抗原构造的不同,按最新国际分类法,将本 属细菌分为四个群、39个血清型(包括亚型) A群:也称志贺氏菌群,有10个血清型。不发酵甘露 醇,无鸟氨酸脱羧酶,与其他各群细菌无血清学 联系。 B群:也称福氏菌群,已有13个血清型(包括亚型和 变种)。最近又发现3个亚型(1c、4c、5b)。发 酵甘露醇,无鸟氨酸脱羧酶。抗原结构较复杂, 各型间有交叉凝集。每一福氏菌型具有二种抗原, 即型特异性抗原和群抗原,前者只存在于同型菌 株中,后者有许多种,存在于福氏各菌型中。例 如福氏1b型除含有1型特异性抗原外,尚含有4、6 群抗原。
二、志贺氏菌的生物学特性

志贺氏菌检验方法

志贺氏菌检验方法

细菌鉴定与药敏试验
细菌鉴定
通过形态学观察、生化试验、血清学鉴定等方法对细菌进行鉴定,确定其种属。
药敏试验
采用药敏试验方法测定细菌对各种抗生素的敏感性和耐药性,为临床治疗提供依 据。
数据分析与报告生成
数据分析
对实验数据进行整理、分析,包括阳性率、阴性率、菌种分 布等。
报告生成
根据数据分析结果,撰写实验报告,并提交给相关人员使用 。
分离培养
通过采集患者的粪便、尿液、血液等样本进行培养,以分离出 志贺氏菌。
鉴定
通过生化反应、血清学鉴定等手段,对分离出的细菌进行鉴定 ,确认为志贺氏菌。
药敏试验
对分离出的志贺氏菌进行药敏试验,以确定其对抗菌药物的敏 感性。
免疫学检测法
酶联免疫吸附试验(ELISA)
采用特异性抗体捕捉志贺氏菌抗原,然后进行酶联免疫反应,以检测样本中 的志贺氏菌抗原。
预防与控制措施
加强宣传教育
向广大群众普及志贺氏菌的危害和预防知识,提 高公众的健康意识。
加强医疗环境管理
医疗机构应加强对病房、实验室等场所的消毒管 理,防止病菌传播。
规范食品卫生
加强食品生产、加工、储存、运输等环节的卫生 监管,防止食品受到污染。
个人卫生习惯
教育公众养成勤洗手、不喝生水、不吃生冷食物 等良好的卫生习惯,降低感染风险。
THANK YOU.
注意事项
遵循操作规程
在进行志贺氏菌检验时,应严格 遵守实验室操作规程,避免污染 样品和环境。
正确采集标本
采集标本时应选取具有代表性的 部位,如粪便、尿液等,确保采 集到的样品能够真实反映患者的 病情。
灵敏度和特异性
检验方法应具有较高的灵敏度和 特异性,避免出现假阳性或假阴 性结果,影响诊断和治疗。

志贺氏菌检测

志贺氏菌检测
环境中志贺氏菌的消杀
通过检测环境中志贺氏菌的分布和数量,采取有效的消杀措施,降低疾病传播的风险。
05
志贺氏菌检测的挑战与展望
检测挑战
灵敏度与特异性
志贺氏菌检测需要高灵敏 度和特异性,以避免假阳 性或假阴性的结果,给临 床诊断和治疗带来困扰。
快速检测
在感染早期快速准确地检 测志贺氏菌对于及时治疗 和防控疾病传播至关重要。
抵抗力较强
志贺氏菌对理化因素的抵 抗力较强,在粪便、土壤、 食品等外界环境中可存活 数周至数月之久。
志贺氏菌的传播途径
粪口途径传播
志贺氏菌主要通过消化道传播, 通过污染的食物、水或与感染者 的接触而感染。
直接接触感染
志贺氏菌也可通过直接接触感染 者的分泌物或接触被污染的物品 而传播。
志贺氏菌的危害
优点
操作简便、快速。
缺点
可能出现假阳性或假阴性结果,特异性不 如细菌培养法。
分子生物学检测法
聚合酶链式反应(PCR)
通过扩增志贺氏菌的特异性基因片段,实现 快速、灵敏的检测。
优点
灵敏度高、特异性强、检测速度快。
基因芯片技术
利用芯片上固化的探针与样本中的目标基因 进行杂交,实现高通量检测。
缺点
仪器设备和检测技术要求较高,成本也较高。
简便操作
检测方法应具有简便、易 操作的特点,以便在基层 医疗机构和现场环境中广 泛应用。
技术展望
分子生物学技术
随着分子生物学技术的发展,利 用基因芯片、高通量测序等技术 有望提高志贺氏菌检测的灵敏度
和特异性。
免疫学方法
开发特异性强、灵敏度高的免疫 学检测方法,如酶联免疫吸附试 验(ELISA)、免疫荧光技术等, 将为志贺氏菌的快速检测提供有

志贺氏菌检验操作规范

上海味泽生物科技有限公司志贺氏菌检验1 范围本标准规定了食品中志贺氏菌的检验方法。

本标准适合用于各类食品和食物中毒样品中志贺氏菌的检验。

2 术语和定义2.1志贺氏菌志贺氏菌shigella是人类细菌性痢疾最为常见的病原菌,通称痢疾杆菌dyseatery bacteria。

致病性较强,感染10-200个即可发病,人类是唯一的患者和带菌者。

3设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:3.1恒温培养箱:36℃±1℃,30℃±1℃。

3.2冰箱:2℃~5℃。

3.3恒温水浴箱:46℃±1℃。

3.4天平:感量0.1g。

3.5震荡器。

3.6无菌吸管:1ml(具0.01ml刻度)、10ml(具0.1ml刻度)或微量移液器及吸头。

3.7无菌锥形瓶:250ml 500ml。

3.8无菌培养皿:直径90mm。

4 培养基和试剂4.1 GN增菌液4.2 HE琼脂4.3 SS琼脂4.4麦康凯琼脂4.4伊红美蓝琼脂(EMB)4.5三糖铁琼脂(TSI)4.6葡萄糖半固体管5 操作步骤5.1增菌以无菌操作取检样25g(ml),加入装有225mlGN增菌液的广口瓶内,固体食品用均质器以8000r/min打碎1min,或用乳钵加灭菌砂磨碎,粉状食品用金属匙或玻璃棒研磨使其乳化,于36℃±1℃培养6h~8h。

培养时间视细菌生长情况而定,当培养液出现轻微混浊时即应中止培养。

5.2分离和初步生化试验5.2.1取增菌液1环,划线接种于HE琼脂平板或SS琼脂平板一个;另取1环划线接种于麦康凯琼脂平板或伊红美蓝琼脂平板一个,于36℃±1℃培养18h~24h,志贺氏菌在这些培养基上呈现无色透明不发酵乳糖的菌落。

5.2.2挑取平板上的可疑菌落,接种三糖铁琼脂和葡萄糖半固体各一管。

一般应多挑几个菌落,以防遗漏,经36℃±1℃培养18h~24h,分别观察结果。

5.3判定下述培养物可以弃去:a)在三糖铁琼脂斜面上呈蔓延生长的培养物;b)在18h~24h内发酵乳糖、蔗糖的培养物;c)不分解葡萄糖和只生长在半固体表面的培养物;d)产气的培养物;e)有动力的培养物;f)产生硫化氢的培养物。

志贺氏菌的检验

志贺氏菌的检验汇报人:2024-01-06•志贺氏菌概述•志贺氏菌检验方法•志贺氏菌检验过程目录•志贺氏菌检验的注意事项•志贺氏菌检验的应用01志贺氏菌概述志贺氏菌属于革兰氏阴性杆菌,无芽孢、无鞭毛,一般不形成荚膜。

革兰氏阴性杆菌需氧或微需氧抗原构造志贺氏菌在需氧或微需氧环境中生长良好,适宜温度为37℃。

志贺氏菌具有O抗原、K抗原和H抗原,其中O抗原是主要的毒力因子。

030201志贺氏菌的特性志贺氏菌随粪便排出体外,污染水源或食物,经口摄入后感染。

粪口途径传播接触被志贺氏菌污染的物品或环境,再经口摄入感染。

接触传播在医疗机构中,患者与医务人员、其他患者之间因接触而传播。

医疗机构传播志贺氏菌的传播途径志贺氏菌的危害肠道感染志贺氏菌主要引起肠道感染,导致腹泻、腹痛等症状。

败血症严重感染时,志贺氏菌可进入血液,引起败血症。

脑膜炎在特定情况下,如免疫功能低下,志贺氏菌可引起脑膜炎等严重并发症。

02志贺氏菌检验方法选择适合志贺氏菌生长的培养基,如SS琼脂培养基、麦康凯琼脂培养基等。

培养基在37℃恒温条件下培养24-48小时,观察菌落形态、染色特性等特征。

培养条件通过生化试验、血清学试验等方法对培养出的菌落进行鉴定,以确定是否为志贺氏菌。

鉴定细菌培养法03胶体金免疫层析法利用胶体金标记的抗体与抗原的结合反应,通过肉眼观察或仪器检测金颗粒的聚集状态。

01酶联免疫吸附试验(ELISA)利用特异性抗体与抗原的结合反应,通过酶标记技术进行信号放大和检测。

02免疫荧光技术利用荧光标记的抗体与抗原的结合反应,通过荧光显微镜观察荧光信号。

免疫学检测法核酸检测法聚合酶链式反应(PCR)通过特异性引物扩增志贺氏菌的DNA片段,通过凝胶电泳检测扩增产物。

基因测序对志贺氏菌的基因组进行测序,通过比对已知基因序列确定菌种。

利用生物分子识别元件(如酶、抗体、核酸等)与目标物质特异性结合,将信号转换为可检测的电信号或光信号。

用于食品、水源等样品中志贺氏菌的快速检测,具有灵敏度高、特异性强、操作简便等优点。

志贺氏菌检验

志贺氏菌检验志贺氏菌属于肠杆菌科,是一种革兰氏阴性菌,会引起肠道感染,引发肠炎,当人出现连续性腹泻、腹痛等症状的时候,就需要考虑是否感染志贺氏菌。

志贺氏菌的传播途径主要是食物和水,比如沙拉、土豆、金枪鱼、虾、奶制品等,在密闭以及不卫生的条件下志贺氏菌会迅速传播,而且经常出现在人员比较密集的地方,比如餐厅、食堂等地。

食源性志贺氏菌的传播主要是因为从事食品工作的人员感染了志贺氏菌,并且将其传播到食物上所引起的,另外,保存食物的温度不当,也可能引起志贺氏菌。

志贺氏菌检验是临床上检验肠道感染疾病的一个重要途径,在检测过程中常用的方法有以下几种。

一、生化鉴定法常规的生化鉴定方法是志贺氏菌检验过程中的常用方法,需要对细菌进行增殖培养、分离、生化试验、血清学检验等步骤来完成,步骤比较繁琐,而且耗时较长,每一次一般只能检验一个样品,但是检测的结果比较准确,检测稳定性较高,假阳性率低。

二、免疫学检验方法免疫学是检验志贺氏菌最快速、准确的方法,特异性较强,而且灵敏度很高,主要的免疫学检验方法有以下几种:第一,酶联免疫法。

这种方法的灵敏度很高,而且简单快速,检测过程比较稳定,可以进行自动化操作,是志贺氏菌检测过程中最快速的一种方法。

但是,使用酶联免疫法进行检验的时候,影响检测结果的因素较多,而且假阳性率高,所以还需要采用其他的方法进行配合检验。

第二,SPA协同凝集法。

这种方法是使用已知标准血清吸附到含A蛋白的金黄色葡萄球菌表面之后,让金黄色葡萄球菌成为吸附抗体的载体,再根据吸附的结果来诊断是否感染志贺氏菌的一种方法。

三、分子生物学方法分子生物学是建立在很多其他的检测技术基础上的,敏感度高、检测快速,而且特意性高,是生物技术革命的一个重要产物,目前在志贺氏菌的检测过程中十分常见。

志贺氏菌的分子生物学检测方法有以下几种:第一,聚合酶链式反应法,比如常规PCR、多重PCR法、实时荧光PCR法和恒温荧光PCR法等。

以恒温实时荧光PCR法为例,这种方法的原理是利用环介导等温扩增反应为原理进行测量的方法,灵敏度很高,与传统的荧光测量方法相比,灵敏度高出2~5个数量级,而且测量十分迅速,荧光反应的时间较短,一般30-60分钟就可以完成荧光反应。

志贺氏菌检验方法


培养基
选择适合志贺氏菌生长的培养 基,如SS、EMB等选择性培
养基。
培养条件
在37℃左右的恒温环境下培 养24-48小时,观察细菌生长
情况。
菌落特征
志贺氏菌在培养基上形成的菌 落较小,表面光滑、湿润、无
色或略带黄色。
鉴定试验
通过生化试验、血清学试验等 方法对培养出的细菌进行鉴定 ,以确定是否为志贺氏菌。
05
志贺氏菌检验案例分析
案例一:某食品厂志贺氏菌污染事件调查
调查背景
调查过程
某食品厂生产的罐装饮料被检测出含有志 贺氏菌,导致产品召回和消费者健康问题 。
对食品厂的生产线、水源、原料、包装材 料等进行全面检查,同时采集相关样品进 行志贺氏菌检测。
调查结果
案例分析
发现生产线存在卫生问题,水源和原料未 受到污染,包装材料合格。最终确定是生 产线上的某个环节出现了交叉污染。
该案例表明,志贺氏菌污染可能源自食品 生产过程中的交叉污染,需要加强生产过 程中的卫生管理和监控。
案例二:某医院志贺氏菌感染病例诊断
病例背景
某医院收治了一名腹泻患者, 经检测确诊为志贺氏菌感染。
诊断结果
确诊患者感染了志贺氏菌。
诊断过程
对患者进行粪便样本采集,采 用分离培养、生化鉴定等方法 进行志贺氏菌检测。
检验结果的判定
阳性判定
在培养基上出现志贺氏菌菌落,或通过免疫学方 法检测到志贺氏菌抗原或抗体。
阴性判定
未在培养基上出现志贺氏菌菌落,且免疫学检测 结果为阴性。
可疑判定
培养基上出现不能确定是否为志贺氏菌的菌落, 需要进行进一步鉴定。
检验方法的优缺点比较
培养法
优点是灵敏度高、特异性好;缺 点是操作繁琐、耗时长,需要专 业人员操作。
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志贺氏菌是引起人类肠道疾病常见的病原菌,在我国感染性腹泻病原菌中高居首位。

为了能够有效地预防、治疗和控制水或食源性传染病,对水或食品中志贺氏菌的快速检测与鉴定显得十分重要。

本文主要介绍了志贺氏菌的各项检测技术及其优缺点,并对志贺氏菌的检验技术进行了展望志贺氏菌的检测方法随着生物实验技术的发展,志贺氏菌的检测和鉴定技术也在不断的完善,大致可分为三大类:常规生化鉴定方法、免疫学方法以及分子生物学方法。

其中最为常用的是分子生物学上的常规PCR检测。

2.1 常规生化鉴定方法常规生化检测须经过增殖培养、分离纯化、生化试验、血清学实验等,检验步骤繁琐、耗时长、准确性低,且一次检测完成样品项数较少[5],不能应对市场需求的快速准确检验方法的要求。

但这种方法具有直观、准确、稳定性好且假阳性率低等特点,因此一直被沿用至今。

国家标准方法[6]中采用常规生化鉴定方法对志贺氏菌进行检测,整个过程需要4~5d。

通过对SS 培养基、Mac 培养基、HE 培养基和MT 培养基进行比较,发现SS 培养基对志贺氏菌的检出率最高。

为防止漏检其他菌型,可同时采用Mac 培养基来提高检出率。

2.2 免疫学方法免疫学的发展为致病菌的快速检测提供了新方法,同时大大提高了致病菌检测的灵敏性和特异性。

除了凝集实验、沉淀实验和补体实验等经典的免疫学检测方法,以免疫学方法为基础建立起来的检测技术也已被应用于志贺氏菌的检测。

2.2.1 酶联免疫技术酶联免疫技术 (enzyme linked immunosorbent assay,ELISA) 是以免疫学反应为基础,将抗原、抗体的特异性反应与酶对底物的高效催化作用相结合的一种敏感性很高的实验技术。

建立间接 ELISA 方法以检测检测志贺菌纯培养液,其检出限为105~106CFU/ml;建立双抗夹心 ELISA 方法检测含0.1~1CFU/ml 志贺氏菌的样品在增菌13h 后可检出阳性反应,含1~10CFU/ml志贺氏菌的样品在增菌11h 后可检出阳性;用间接 Dot-ELISA 方法检测志贺氏菌的检出限可达106CFU/ml。

E L ISA 法具有灵敏、特异、简单、快速、稳定及易于自动化操作等特点,适用于志贺氏菌的快速检测,但ELISA 方法影响因素多,假阳性率高且不易确定,还需要其他方法辅助检测。

2.2.2 SPA协同凝集法金黄色葡萄球菌 A 蛋白(Staphylococcal protein A,SPA)是某些金黄色葡萄球菌细胞壁的一种表面蛋白,具有同人和多种哺乳动物血清IgG分子中的Fc片段结合的能力。

SPA 协同凝集法是用已知标准血清吸附到含 A 蛋白的金黄色葡萄球菌表面,使之成为吸附抗体的载体,再以此去诊断相应未知抗原产生的肉眼可见的凝集颗粒。

用含 A 蛋白丰富的金黄色葡萄球菌菌体与志贺氏菌抗血清在一定条件下混合致敏,让抗体结合到金黄色葡萄球菌细胞壁的A 蛋白上制成SPA 诊断试剂,样品经增菌后即可用SPA 诊断试剂来检验。

SPA 协同凝集法在 24~48h 内即可得到检测结果,且检出率高,可作为一种快速灵敏的检验方法。

由于SPA 能结合大量抗体,大大提高了灵敏性,缩短了检验周期。

2.3 分子生物学方法以分子生物学为基础建立的众多检测技术以其敏感、快速、高特异等特点成为生物技术革命的新产物,已经应用于食源性致病菌的检测。

检测志贺氏菌的分子生物学技术主要包括:聚合酶链反应、脉冲场凝胶电泳、基因芯片和探针技术等。

2.3.1 聚合酶链式反应志贺氏菌的传统检测方法耗时长,操作繁琐,已不能满足食品安全控制的需要。

分子生物学尤其是 PCR技术的发展给志贺氏菌的快速检测提供了广阔的空间。

在此主要介绍用于志贺氏菌检测的常规 PCR 检测方法,实时荧光 PCR 检测方法和多重 PCR 检测方法。

2.3.1.1 常规PCR检测聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)是依据DNA 模板模仿体内的复制过程,在体外适合的条件下,以单链DNA 为模板,以人工设计与合成的寡核苷酸为引物,利用热稳定的DNA 聚合酶沿5′→ 3′方向掺入单核苷酸来特异性地扩增 DNA 片段的技术。

通过对已知序列DNA 进行扩增,以侵袭性质粒抗原(invasive plasmid)作为检测志贺氏菌的目的基因来设计引物,建立 PCR 检测方法。

PCR 检测志贺氏菌的目的基因有ipaB.ipaC、ipaD 和ipaH,还包括set1A.set1B、ial和virA等片段。

现将有关文献中报道的用于检测志贺氏菌的引物序列总结于表2-1。

表2-1检测志贺氏菌的引物序列2.3.1.2 基于PCR 方法的复合技术PCR-ELISA 只需要6.5h 即可检测出,当测试大量标本时 PCR-ELISA 所需时间比PCR-琼脂糖凝胶电泳更短。

环介导等温扩增法能有效地在2h内检测最低限细菌量中的ipaH基因以检测志贺氏菌。

基于PCR 结合变性高效液相色谱(DHPLC)技术,利用志贺氏菌特异基因序列分别设计特异性引物,复合PCR 扩增产物经DHPLC 技术进行快速检测,从样品制备、增菌到结果报告可在2d 内(26~28h)全部完成。

该方法是一种具有高灵敏度、低检测成本、高通量检测新技术。

2.3.2 脉冲场凝胶电泳脉冲场凝胶电泳(pulsed field gel electrophoresis,PFGE)又称脉冲式交变电场电泳,是一种用于分离大分子量线状DNA 的电泳技术。

通过限制性内切酶消化菌株DNA 来进行细菌分型鉴定,经PFGE 分离,比较染色体限制性内切图谱,经过不同图型间比对来分析同一菌种亚型的不同菌株来源及其变异特点。

PFGE 方法是一种非常有效的分子分型技术,是目前进行志贺氏菌流行病学分析最常用的方法之一。

采用多重荧光定量PCR技术做基因诊断,并通过PFGE 的分型方法,达到理想的志贺氏菌分型效果。

PFGE方法具有分型能力强,重复性好等特点,能及时查明暴发流行的传染源从而有效控制疫情的蔓延,在志贺氏菌的分子流行病学研究中具有重要作用。

虽然这一技术检测成本低,但却存在着反应产物后处理极易受到污染造成假阳性的缺点。

2.3.3 RAPD技术随机扩增多态性 DNA 技术(random amplified polymorphicDNA,RAPD)是建立在 PCR 基础上的一种可对未知序列的基因组进行多态性分析的分子技术。

利用 RAPD 技术建立一套可对水或食品中志贺氏菌进行鉴定的方法,其结果显示,志贺氏菌ipaH引物扩增阳性的细菌经 RAPD 技术进行基因水平的分型,发现同种志贺氏菌株产生基本相同的条带模式,不同种的菌株,甚至同一种菌的不同型间的条带模式存在一定差异。

RAPD 技术利用随机引物扩增未知序列DNA,它具有特异性强、操作简便、快速等特点,并且弥补了标准PCR 方法只能应用于已知DNA 序列的不足,可用于水或食品中志贺氏菌的鉴定。

2.3.4 基因芯片是利用细菌16S rRNA(或16S rDNA)基因作为检测的靶基因,设计针对不同菌属的寡核苷酸探针制备基因芯片,通过杂交检测细菌的种类。

基因芯片可以通过以下三种途径应用于肠道致病菌的检测:直接检测致病菌的DNA或RNA;结合多重PCR 对致病菌的毒力因子或者特异性基因进行鉴定;以致病菌核糖体RNA作为检测的靶基因同时检测多种肠道致病菌。

设计的基因芯片能够区分沙门菌属、志贺菌属、葡萄菌属和耶尔森菌,对于未知菌落,利用基因芯片能在4h内完成细菌菌属的鉴定。

李君文等利用基因芯片技术检测水中常见致病菌获得较高的敏感性,可实现高通量、并行检测,一次实验即可得到全部结果。

用一个包括有8 种肠道致病菌中34 种毒力基因的肠道致病菌基因芯片,可以成功地应用于腹泻患者粪便样品中病原菌的鉴定。

由于基因芯片技术具有特异性强、敏感性高,操作简便且高效快速等优点,该技术要优于其他分子生物学检测方法。

基因芯片技术在肠道致病菌检测中有着巨大的应用价值,具有广阔的应用前景。

2.3.5 基因探针技术基因探针是从微生物中提取或扩增特异性的DNA片段,纯化后标记上可被检测的指示剂如放射性同位素、荧光物质等,使之成为特异性DN 探针。

用决定该微生物特有生理、生化特性并与rRNA互补的rDNA序列来构建特异性的DNA 探针,检测细菌rRNA中的靶序列可大大提高其敏感性。

志贺氏菌的检验(国标法)一、增菌称取检样25g,加入装有225mLGN增菌液的500mL广口瓶内,固体食品用均质器以8000-10000r/min打碎1min,或用乳钵加灭菌砂磨碎,粉状食品用金属匙或玻璃棒研磨使其乳化,于36℃培养6~8h。

培养时间视细菌生长情况而定,当培养液出现轻微混浊时即应中止培养。

二、分离和初步生化试验取增菌液1环,划线接种于HE琼脂平板或SS琼脂平板1个;另取1环划线接种于麦康凯琼脂平板和伊红美蓝琼脂平板各1个,于36℃培养18~24h。

志贺氏菌在这些培养基上呈现无色透明不发酵乳糖的菌落。

挑取平板上的可疑菌落,接种三糖铁琼脂和葡萄糖半固体各1管。

一般应多挑几个菌落,以防遗漏,经36℃培养18~24h,分别观察结果。

下述培养物可以弃去:a. 在三糖铁琼脂斜面上呈蔓延生长的培养物;b. 在18~24h内发酵乳糖、蔗糖的培养物;c. 不分解葡萄糖和只生长在半固体表面的培养物;d. 产气的培养物;e. 有动力的培养物;f. 产生硫化氢的培养物。

凡是乳糖、蔗糖不发酵,葡萄糖产酸不产气(福氏志贺氏菌6型可产生少量气体),无动力的菌株,可做血清学分型和进一步的生化试验。

三、血清学分型挑取三糖铁琼脂上的培养物,做玻片凝集试验。

先用4种志贺氏菌多价血清检查,如果由于K抗原的存在而不出现凝集,应将菌液煮沸后再检查;如果呈现凝集,则用A1、A2、B群多价和D群血清分别试验。

如系B群福氏志贺氏菌,则用群和型因子血清分别检查。

福氏志贺氏菌各型和亚型的型和群抗原见表1。

可先用群因子血清检查,再根据群因子血清出现凝集的结果,依次选用型因子血清检查。

4种志贺氏菌多价血清不凝集的菌株,可用鲍氏多价1、2、3分别检查,并进一步用1~15各型因子血清检查。

如果鲍氏多价血清不凝集,可用痢疾志贺氏菌3~12型多价血清及各型因子血清检查。

四、进一步的生化试验在做血清学分型的同时,应做进一步的生化试验,即:葡萄糖铵西蒙氏柠檬酸盐赖氨酸和鸟氨酸脱羧酶 pH7.2尿素 KCN生长水杨苷和七叶苷的分解除宋内氏菌和鲍氏13型为乌氨酸阳性外,志贺氏菌属的培养物均为阴性结果。

必要时还应做革兰氏染色检查和氧化酶试验,应为氧化酶阴性的革兰氏阴性杆菌。

生化反应不符合的菌株,即使能与某种志贺氏菌分型血清发生凝集,仍不得判定为志贺氏菌属的培养物,已判定为志贺氏菌属的培养物,应进一步做 5%乳糖发酵甘露醇棉子糖甘油的发酵靛基质试验志贺氏菌属4个生化群的培养物,应符合该群的生化特性。

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