蟾蜍坐骨神经干复合动作电位特性
蟾蜍坐骨神经干
注意事项
1.破坏脑脊髓要彻底，防止蟾酥射入操作者眼 中或污染实验标本。 2.操作时避免压挤、损伤和用力牵拉标本，不 可用金属器械触碰神经干。 3.操作过程中，应给神经和肌肉滴加任氏液， 防止表面干燥，以免影响标本的兴奋性。 4.标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使 标本兴奋性稳定,再开始实验效果会较好。
实验原理（三） 神经动作电位传导速度的测定
动作电位在神经干上传导具有一定的 速度蟾蜍的坐骨神经是混合神经，由许多 粗细不等的有髓和无髓神经纤维构成，其 中以Aɑ类纤维为主，传导速度约为35— 40m/s。
神经冲动的传导速度 （v）是指动作 电位在单位时间（t）内传导的距离（s）
仪器与器械（一）
（1）引导双相神经动作电位
点击“神经干 动作电位的引 导”，引导出 一个双相动作 电位。
（2）观察和测定双相动作电位
① 自动调节刺激强度，观
察动作电位波形的变化。读 出波宽为某一数值时的阈刺 激和最大刺激。
②仔细观察双相动作电位的
波形。读出最大刺激时双相 动作电位上下相的振幅和整 个动作电位持续时间数值。
注意事项
1.制备标本时，神经干应尽可能分离长一些，上自 脊柱附近的主干，下至踝关节附近。分离过程中 勿损伤神经组织，以免影响其兴奋性。
2.将神经干搭在引导电极上时，神经干不能与标本 盒壁相接触，尽量将其拉成水平线，不要下垂或 斜向放置。
3.刺激强度在开始时不要过强，先由弱强度开始， 逐步加大强度，以免剌激伤害神经标本。
4.经常滴加任氏液，保持神经标本湿润。 5.实验完毕神经糟应仔细清洗，擦干，以免残留的
盐液. 神经干动作电位与刺激强度有何关系？ 神经干动作电位符合“全或无”定律吗 ？ 为什么?
感谢聆
实验3-蟾蜍坐骨神经干电生理实验
实验3 蟾蜍坐骨神经干电生理实验【摘要】目的运用电生理实验技术测定蛙类坐骨神经干的单相、双相动作电位和其中Ａ类纤维冲动的传导速度，并观察机械损伤、药物对神经兴奋和传导的影响。
方法采用RM6240微机生物信号处理系统，通过电生理的方法来测定蛙坐骨神经干的单相、双相动作电位的电位和时程以及其中Ａ类纤维冲动的传导速度。
并采用夹伤神经和加不同药物等处理措施，记录一定刺激强度下坐骨神经动作电位的大小变化，从而分析坐骨神经干动作电位的影响因素及机制。
结果动作电位的传导速度为31.76±3.63 m/s，阈刺激强度为0.28±0.03 V，最大刺激强度为1.21±0.36 V。
中枢端引导动作电位正相和负相振幅分别为3.15±1.87mV和 2.11±1.46mV，末梢端引导动作电位正负相振幅分别为7.04±2.01 mV和 3.89±1.46 mV，与中枢端引导时的动作电位振幅比有显著性差异（p<0.01）；夹伤神经干后，动作电位振幅为8.49±2.48 mV，时程为 1.73±0.40 ms，与末梢端引导时正相波时程比有显著性差异（p=0.002<0.01）。
引导电极间距离分别等于10mm、20mm和30mm时，动作电位正相振幅：A110为 7.07±1.87 mV，A120为 9.57±3.08 mV，A130为 9.75±3.33 mV，负相振幅：A210为 3.87±1.19 mV， A220为 5.35±2.23 mV，A230为 4.44±2.39 mV，A120、A130分别与A110比均有显著性差异（p<0.05），A220与A210比有显著性差异（p<0.05），A230与A210以及A220与A230比没有显著性差异（p>0.05）。
蟾蜍坐骨神经干
mhtml:http://218.197.48.17/yuanxi/sfzx/shiyankejian/shengli/3.mht!file7570.files/frame.htm
3低温的作用： ⑴ 现象：神经干放在冰水中浸泡后，动作电位的幅度及传导速度均下降。 ⑵ 机制：低温可阻断神经纤维的传导活动，在温度很低时神经纤维的兴奋性及电传导均直线下降，较大的带髓鞘的神经易受抑制。低温时神经细胞的耗氧率及能量代谢率都降低，细胞膜上及细胞内与代谢有关的蛋白酶活性降低，离子扩散速率减慢，细胞膜的流动性下降。
3、神经干动作电位的不应期： 我们所记录到的神经干的动作电位的不应期是不应期最短的那类神经纤维的不应期。动作电位是Na+内流的电化学平衡电位，Na+通道的激活、失活和备用有时间依赖性和电压依赖性。本实验用阈上刺激，虽然可以激活Na+通道，但其离子通道仍要经历激活、失活和备用三个时期。在失活期内无论给多大刺激，均不能产生动作电位，称之为绝对不应期；在备用期，给予阈上刺激，可以产生局部电位，当刺激强度足够大时可以产生一个新的动作电位，称之为相对不应期。
实验讨论：
1、实验观察的是复合神经纤维动作电位及其特性，其与单一神经纤维的动作电位有很多不同： a)引导方法不同：神经干动作电位记录的是多个细胞外两点之间的电势差，记录时负波向上，正波向下；而单一神经纤维的动作电位是用微电极记录的同一细胞膜内外的电势差。 b)波形不同：神经干动作电位随两个记录电极之间电势差的变化而成双相动作电位，如果两个记录两极之间的距离无限大，可以记录到方向相反的两个单相波；而单一神经纤维只能记录到单相动作电位。c)产生原理不同：在单细胞膜外，如图1已兴奋部位（细胞膜内为正，膜外为负）较未兴奋部位或兴奋已恢复部位成负电位，因此两点间存在电势差。神经干动作电位是多根神经纤维的复合电位，如图2当B区兴奋时，B与A和C间存在电位差，由I电极引导出一个动作电位。B区兴奋后，又逐渐复极，动作电位逐渐向C、D区传导。当动作电位传导到D区时，B区已完全复极，D区兴奋故II电极又记录到一个动作电位，同时D区又逐渐复极，由此引导出双相动作电位。
蟾蜍坐骨神经干动作电位传导速度和兴奋性不应期的测定实验报告
实验二蟾蜍坐骨神经干动作电位传导速度和兴奋性不应期的测定一、蟾蜍坐骨神经干动作电位引导及传导速度测定实验目的：加强理解兴奋传导的概念，掌握测定神经干动作电位传导速度的方法。
熟悉仪器设备的操作。
实验原理：通过测出示波器上动作电位传导的距离和传导所需的时间，计算传导速度，可以了解神经的兴奋状态。
1.潜伏期法：测量第一个通道动作电位潜伏期的时间t，输入刺激电极到第一个引导电极间的距离s，v=s/t。
2.潜峰法：测量两个通道的动作电位波峰间的时间差和两对引导电极间的距离，v=(s2-s1)/(t2-t1)。
实验步骤：1.制备坐骨神经-腓神经标本，放入神经屏蔽盒。
2.连接仪器，引导动作电位波形。
3.剪裁编辑图形，计算传导速度。
实验结果：1.（见图）2.计算S=10mm,t=0.33ms,v=10mm/0.33ms=33m/s分析讨论：1.我们通过对潜伏期法和潜峰法测定结果的比较，结合神经干的特性进行分析：动作电位的起点本质是神经干中传导速度最快的一类神经纤维传导兴奋到达记录点引起的，潜伏期法测量的速度本质是此类神经纤维的传导速度。
而潜峰法的形成本质是各种神经纤维兴奋相互叠加后最强的部分。
如果采用潜峰法测量，由于“迁延效应”代表的时间不够准确，不能代表神经干的传导速度，故应该采用潜伏期测量才更准确。
2,.兴奋以局部电流的方式沿着神经干表面传导,兴奋传播过程中造成引导电极下电位改变,故可记录到双相动作电位.通过两对引导电极可观察到兴奋由一对引导电极下传至另一对引导电极下所需时间,根据兴奋传播的距离和所需时间即可计算出传导速度.实验结论：本实验中测出神经干动作电位的传导速度为33m/s。
由实验可知，神经纤维在静息状态下受到有效刺激可产生动作电位，同一条神经干中不同的神经纤维兴奋性不完全相同，且在一次兴奋后兴奋性发生改变，兴奋以一定的速度在神经干表面传导，神经兴奋的传导依赖于神经纤维的完整性。
二、兴奋性不应期的测定实验目的：了解测定不应期的方法和原理，并加深对兴奋性在兴奋过程中的变化过程的理解。
蟾蜍坐骨神经干电生理实验--mine
神经干动作电位及其传导速度的测定摘要目的测定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（compound action potential ，CAP），研究蟾蜍坐骨神经干的电生理特性、双相动作电位形成机制及神经损伤、药物对神经兴奋传导的影响。
方法应用微机生物信号采集处理系统通过电生理的方法来测定蛙类坐骨神经干的单相、双相动作电位的振幅、时程和其中Ａα类纤维冲动的传导速度，并通过夹伤神经和加药物的方法来观察对坐骨神经干的影响。
结果刺激电压1.0V，刺激波宽0.1ms时，中枢端引导的动作电位正相波和负相波振幅分别为4.38±1.81mV和2.70±1.16mV，正相波振幅A1chp大于负相波振幅A1chn，两者有高度显著性差异（P<0.01)；动作电位正相时程1.05±0.11mV显著短于负相时程2.26±0.31mV，两者有高度显著性差异（P<0.01)，末梢端引导的动作电位正相波振幅2.72±0.63mV大于负相波振幅1.31±0.60mV，两者有显著性差异（P<0.01)；动作电位正相波时程1.50±0.26ms显著短于负相波时程2.44±0.52 ms，两者有显著性差异（P<0.01)。
刺激电压1.0V，刺激波宽0.1ms，引导电极间距等于10mm、20mm 和30mm时，末梢端引导的动作电位正相振幅分别A10p为8.94±3.12mV、A20p为11.20±3.80 mV、A30p为11.49±3.84 mV，A30p、A20p大于A10p，有高度显著性差异（ P<0.01)。
负相波振幅分别A10n为5.26±1.56mV、A20n为6.13±1.31 mV、A30n为3.63±1.00 mV，A20n于A10n比无显著性差异（ P>0.05), A30n于A10n比有显著性差异（P<0.05）。
蟾蜍坐骨神经干动作电位记录及性质分析
蟾蜍坐骨神经干动作电位记录及性质分析实验目的：1.制备蟾蜍坐骨神经干标本2.记录神经干动作电位，获得其阈强度、顶强度、传导速度、相对不应期等性质，观察复合动作电位、阳极电紧张、单相动作电位等现象。
3.与单细胞动作电位对照，加深理解神经电学性质。
实验过程：1.预习材料、软件、数据下载地址：/track，用户名和密码均为SLX。
2.自行观看教学短片，了解坐骨神经干标本制备方法。
3.每人制备一条尽量长的坐骨神经干标本。
4.两人一组进行实验。
a)将神经干放置在神经肌肉标本盒内，用任氏液保持神经干湿润（可使用任氏液浸湿的棉球放在标本盒中并盖上盖子）。
b)连接刺激输出，负极（黑色）靠内侧，正极（红色）靠外侧。
c)连接生理记录仪，负极（绿色）靠内侧，正极（红色）靠外侧，连接地线（黑色）。
5.记录数据，按下列步骤进行实验（软件操作说明见附图）：a)数据采集：在E盘建立目录，禁止将数据文件存放在桌面上，记录文件后切记使用“文件---另存为”命名并保存，不要直接使用“保存”按钮。
b)设置参数：采样频率100kHz，扫描速度0.2ms/div，灵敏度自定，时间常数0.02s，滤波3kHz，刺激器使用同步触发。
c)阈强度和顶强度：设置刺激波宽为0.1ms，使用强度递增刺激，初始强度0V，增量0.01V，延迟20ms，组间延迟4s，使用重叠显示，偏移量0，显示强度刺激标注。
观察动作电位波形，使用峰值幅度对刺激强度作图，得到阈强度和顶强度。
d)刺激波宽与阈强度的关系：选择若干刺激波宽，分别测定其阈强度数值，使用阈强度对波宽作图，分析其反比关系e)动作电位的传导速度：根据刺激与动作电位开始之间的潜伏期以及刺激电极负极与记录电极负极之间的距离，计算动作电位的传导速度；或者将记录电极分别放在两个较远的距离上，计算其动作电位的时间差，计算传导速度。
f)观察阳极电紧张现象：将刺激电极正负极位置调换，重新测定阈强度和顶强度，与正常位置下的数据进行对比并分析原因。
浙江大学生理学实验坐骨神经
蟾蜍坐骨神经干复合动作电位特性目的：应用微机生物信号采集处理系统记录蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（compound action potention，CAP），观察刺激、神经损伤、药物对神经兴奋性、兴奋传导的影响并探讨其机制。
1.材料和方法(materials and methods)1.1 实验动物：蟾蜍（中华蟾蜍指名亚种，Zhuoshan Toad）1.2 药品：任氏液、3 mol/L 氯化钾1.3器材：RM6240微机生物信号处理系统（成都仪器厂）、神经干标本盒、包括器械方盘、蛙板等实验器械材料一套。
1.4 坐骨神经干制备：蟾蜍毁脑脊髓，去上肢和内脏，下肢剥皮浸于任氏液中。
蟾蜍下肢背面向上置于蛙板上，剪去尾椎；标本腹面向上，用玻璃分针分离脊柱两侧神经丛，用线在近脊柱处结扎，剪断神经；将神经干从腹面移向背面。
标本背面向上固定，从大腿至跟腱分离坐骨神经。
坐骨神经标本置任氏液中备用。
1.5 仪器连接和参数：神经干标本盒两对引导电极分别接微机生物信号处理系统1、2通道。
仪器参数：1、2通道时间常数0.02s、滤波频率3KHz、灵敏度5mV，采样频率：100KHz，扫描速度：0.2ms/div。
单刺激激方式，刺激幅度1.0V，刺激波宽0.1ms，延迟2ms，同步触发。
1.6 动作电位引导：神经干标本置于标本盒的电极上，神经与电极接触良好，调节刺激电压，记录动作电位。
2.观察（observations）2.1 中枢端引导的双向动作电位（biphasic action potential，BAP）：用1.0V电压，波宽0.1ms方波刺激神经干末梢端，观察动作电位波形。
2.2 测定末梢端引导的双向动作电位：用1.0V电压，波宽0.1ms的单个方波刺激神经干中枢端，测定动作电位正、负向振幅和时程。
2.3 兴奋传导速度测定：用1.0V电压，波宽0.1ms的单个方波激刺激神经干中枢端，测定第1和第2对引导电极引导CAP起点的时间差Δt ，根据υ＝S R1- R2- / Δt 计算出AP的传导速度。
生理实验：实验三 蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本制备及骨骼肌收缩性质观察
实验材料
1、实验动物（laboratory animal) • 蟾蜍（中华蟾蜍指名亚种，Zhuoshan Toad）
2、药品(drug) • 任氏液
• 任氏液由无机盐和蒸馏水配置而成，每 升溶液含NaCl 6.5g、KCl 0.14g、CaCl2 0.12g,、NaHCO3 0.20g、NaH2PO4 0.01g。 任氏液的理化特性与蛙的组织液近似。 可用于蛙的组织、器官润湿和营养。
动作电位以局部电流的形式传导
实验原理
-动作电位传导速度的测定
刺激器
输入通道
+－
R1- Rr1+ R2- R2+
S
Δt
传导速度测定 υ= SAC
Δt
实验步骤
1、制备坐骨神经干
1
• 蟾蜍下肢背面向上置于蛙板上，剪去
尾椎；
• 标本腹面向上，用玻璃分针分离脊柱
两侧神经丛，用线在近脊柱处结扎，
剪断神经；
• 将神经干从腹面移向背面。标本背面
刺激神经使神经细胞产生兴奋兴奋延神经纤维传到通过神经肌接头的化学传递使肌肉终板膜上产生终板电位终板电位可引起肌肉产生兴奋即动作电位传遍整个肌纤维再通过兴奋收缩偶联使肌纤维中粗细肌丝产生相对滑动宏观上表现为肌肉收缩
实验三 蟾蜍坐骨神经-腓 肠肌标本制备及骨骼肌收
缩性质观察
实验目的
• 掌握制备具有正常收缩功能的蛙类坐骨神经腓肠 肌标本的基本操作技术。掌握蛙类手术器械的使 用方法，制备完好的坐骨神经-腓肠肌标本。
向上固定，从大腿至跟腱分离坐骨神 经。坐骨神经标本置任氏液中备用。
2
3
实验步骤
2、仪器连接和参数
• 神经干标本盒两对引导电极分别接微机生物信号处理系统1、 2通道。 开机，选择实验-肌肉神经-神经干兴奋传导速度测 定。仪器参数：1、2通道时间常数0.02s、滤波频率3KHz、 灵敏度5mV，采样频率：100KHz，扫描速度：0.2ms/div。 单刺激激方式，刺激幅度1.0V，刺激波宽0.1ms，延迟1ms， 同步触发。
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蟾蜍坐骨神经干复合动作电位特性1 材料蟾蜍；任氏液；BB-3G标本屏蔽盒，微机生物信号搜集处置系统。
2 方式2．1 系统连接和参数设置RM6240多道生理信号搜集处置系统与标本盒连接，一、2通道时刻常数0.02s、滤波频率3KHz、灵敏度5mV，采样频率100KHz，扫描速度0.2ms/div。
单刺激激模式，刺激波宽0.1ms，延迟1ms，同步触发。
2．2 制备蟾蜍坐骨神经干标本蟾蜍毁脑脊髓和下肢标本制备，下肢标本仰卧置于蛙板上，分离脊柱双侧的坐骨神经，紧靠脊柱根部结扎，近中枢端剪断神经干，将神经干从骶部剪口处穿出。
循股二头肌和半膜肌之间的坐骨神经沟，纵向分离坐骨神经直至腘窝胫腓神经分叉处，将腓浅神经、胫神经与腓肠肌和胫骨前肌分离。
置剪子于神经与组织之间，剪切直至跟腱并剪断跟腱和神经。
剥离附着在神经干的组织，坐骨神经干标本浸入任氏液中。
2．3 实验观看2．3．1 中枢端引导动作电位神经干末梢端置于刺激电极处，用刺激电压1.0V，波宽0.1ms 的方波刺激神经干，测定第1和第2对引导电极引导的双相动作电位正相波和负相波的振幅和时程。
2．3．2 改变引导电极距离用刺激电压1.0V，波宽0.1ms的方波刺激神经干中枢端，记录引导电极距离10mm、20mm、30mm时的动作电位。
别离测定上述三个引导电极距离的动作电位正相波和负相波的振幅和时程。
2．3．3 末梢端引导动作电位和测定动作电位传导速度引导电极距离10mm，神经干中枢端置于刺激电极处，用刺激电压1.0V，波宽0.1ms的方波刺激神经干，测定第1对引导电极引导的双相动作电位正相波和负相波的振幅和时程。
别离测量两个动作电位起始点的时刻差和标本盒中两对引导电极之间的距离S（应测r1- r2的间距），计算动作电位传导速度。
2．3．4 单相动作电位引导用镊子在第1对引导电极之间切近后一电极处神经夹伤，用刺激电压1.0V，波宽0.1ms的方波刺激神经干，测量单相动作电位的振幅和动作电位持续时刻。
测量单相动作电位的上升时刻和下降时刻。
2．3．5 按步长，刺激强度从0V开始慢慢增加至动作电位再也不增大止。
测量动作电位振幅与刺激电压对应数据。
2．3．6 换一神经干，用刺激电压1.0V，波宽0.1ms的方波刺激神经干，假设第2对引导电极引出一双相动作电位，用一小块浸有3mol KCl溶液的滤纸片贴附在第2对引导电极后一电极处处的神经干上。
记录KCl处置前及处置后3min 第2对引导电极引导的动作电位振幅和时程。
2．3．7 用刺激电压1.0V，波宽0.1ms的方波刺激神经干，用一小块浸有40g/L 普鲁卡因溶液的滤纸片贴附在第1对引导电极后一电极处的神经干上。
记录处置前及处置后5min 第1对引导电极引导的动作电位振幅和时程。
2．4 统计方式结果以⎺x±s表示，统计采纳Student t test方式。
3 结果3．1 蟾蜍坐骨神经干的阈强度、最大刺激强度、传导速度的电脉冲刺激蟾蜍坐骨神经干中枢端，引发动作电位的阈刺激为V，最大刺激强度为8V，动作电位的传导速度为24.40±4.50 m/s。
3．2 刺激强度与动作电位振幅的电脉冲刺激蟾蜍坐骨神经干中枢端，当刺激强度达到阈刺激时动作电位迅速增加。
在达到最大刺激后，动作电位几乎再也不发生转变（见图1）。
图1.刺激强度与动作电位波幅转变关系图3．3 神经干中枢引导的双相动作电位正相、负相振幅及持续时刻蟾蜍坐骨神经干中枢引导的动作电位，第1通道和第2通道的负相波振幅明显小于正相波振幅（vs ,; vs ,），但负相波时程明显大于正相波( vs , 01; vs ,01)；第2通道的正相波振幅明显小于第1通道的正相波振幅( vs ,5)，负相波振幅也明显小于第1通道的负相波振幅( vs ,1)（见表2）。
表2.蟾蜍坐骨神经干中枢引导的双相动作电位正相、负相振幅及持续时刻A1chp(mV) A1chn( mV) D1chp(ms ) D1chn(ms ) A2chp(mV) A2chn( mV) D2chp(ms ) D2chn(ms ) Sample10 10 10 10 10 10 10 10 size⎺x±s **△△△ 3.25±1.68*□□##☆☆☆注：*：5，**：，vs A1chp；△△△：01，vs D1chp；□□：，vs A2chp；##：1，vs A1chn；☆☆☆：01，vs D2chp3．4 神经干末梢引导的双相动作电位正相、负相振幅及持续时刻蟾蜍坐骨神经干末梢引导的双相动作电位负相波振幅明显小于正相波振幅( vs ,01)，负相波时程明显大于正相波时程( vs ,01)（见表3）。
表3.蟾蜍坐骨神经干末梢引导的双相动作电位正相、负相振幅及持续时刻A bp(mV) A bn(mV ) D bp(ms ) D bn(ms )Sample size 10 10 10 10⎺x±s ***###注：***：01，vs A bp；###：01，vs D bp；3．5 神经干末梢引导的双相动作电位与单相动作电位的振幅及持续时刻蟾蜍坐骨神经干末梢引导的单相动作电位的振幅明显大于双相动作电位正相波振幅(vs ,)，时程也明显大于双相动作电位正相波时程( vs ,01)（见表4）。
A bp(mV) A bn(mV ) D bp(ms ) D bn(ms ) A m(mV) D m(ms)Sample size 10 10 10 10 10 10⎺x±s ***###**###注：**：P<0.01，***：P<0.001，vs A bp；###：P<0.001，vs D bp；3．6 引导电极间距离对坐骨神经干动作电位振幅和时程的阻碍引导电极间距离为10，20，30mm时，负相波振幅均显著小于正相波振幅(± vs ,01; vs 1,01; vs ,01)；距离为20mm时的正相波振幅显著大于10mm时正相波振幅(vs ,01)，负相波振幅也显著大于10mm时负相波振幅( vs ±1.22,01)；距离为30mm时的正相波振幅显著大于20mm时正相波振幅( vs ,01)，可是其负相波振幅与20mm时负相波振幅没有显著不同( vs ,P>0.05)（见表5）。
引导电极间距离为10,20,30mm时，负相波时程均显著大于正相波时程(vs ,01; vs,01; vs ,01)；距离为20mm时的正相波时程显著大于10mm时正相波时程( vs ,01)，而负相波时程与10mm时负相波时程没有显著不同( vs , P>0.05)；距离为30mm时的正相波时程显著大于20mm时正相波时程( vs ,01)，其负相波时程也显著大于10mm时负相波时程( vs ,01)（见表6）。
表5.引导电极间距离对坐骨神经干动作电位振幅的阻碍A10p(mV) A10n(mV) A20p(mV) A20n(mV) A30p(mV) A30n(mV) Sample size 10 10 10 10 10 10⎺x±s ±******### □□###△△△注：***：P<0.001，vs A10p；###：P<0.001，vs A20p; △△△：P<0.001，vs A30p;□□：，vs A10n；表6.引导电极间距离对坐骨神经干动作电位时程的阻碍D10p(ms) D10n(ms) D20p(ms) D20n(ms) D30p(ms) D30n(ms)Sample size 10 10 10 10 10 10⎺x±s ******### ###△△△☆☆☆注：***：P<0.001，vs D10p；###：P<0.001，vs D20p; △△△：P<0.001，vs D30p; ☆☆☆：P<0.001，vs D20n; 3．7 KCl处置前后动作电位振幅用3mol KCl处置蟾蜍坐骨神经干，2min后的动作电位正相波振幅明显大于处置前( vs , P<0.01)，而负相波振幅那么明显小于处置前( vs , P<0.05)（见表7）。
表7.蟾蜍坐骨神经干用3mol KCl处置前后动作电位振幅A Kp(mV) A Kn(mV )control 2min control 2minSample10 10 10 10size⎺x±s **#注：**：P<0.01，vs A Kp control；#：P<0.05，vs A Kn control；3．8 普鲁卡因处置前后动作电位振幅用4% procaine处置蟾蜍坐骨神经干，5min后的动作电位正相波振幅明显大于处置前( vs , P<0.05)，而负相波振幅那么明显小于处置前( vs , P<0.01)（见表8）。
表8.蟾蜍坐骨神经干4% procaine处置前后动作电位振幅A pp(mV) A pn(mV )control 5min control 5minSample10 10 10 10size⎺x±s *##注：*：5，vs A pp control；##：1，vs A pn control；3．9 双相动作电位正、负波的叠加点蟾蜍坐骨神经干末梢引导的单相动作电位的振幅明显大于双相动作电位正相波振幅(vs ,)（见表4），即双相动作电位正、负波的叠加点在动作电位去极化时期。
4 讨论4．1 神经干动作电位不具有“全或无”的性质的电脉冲刺激蟾蜍坐骨神经干中枢端，当刺激强度从阈刺激增加至最大刺激，神经干动作电位振幅随刺激电压增加而增高。
在达到最大刺激后，动作电位几乎再也不发生转变。
而动作电位“全或无”的性质表现为刺激强度小于阈刺激时可不能引发动作电位，当刺激强度达到阈刺激后能够引发动作电位，动作电位水平不随刺激强度的转变而转变。
因此蟾蜍坐骨神经干动作电位不具有“全或无”性质。
这是因为坐骨神经干由不同类型的神经纤维组成，各个类型的纤维兴奋性水平不同，在一个有限的范围内神经干动作电位的大小随着刺激强度的增加而增加。
当刺激强度足以兴奋所有类型的神经纤维后，坐骨神经干动作电位维持稳固。
蟾蜍坐骨神经干动作电位为复合动作电位（CAP）。
4．2 BAP正、负相波的形成在两引导电极间夹伤坐骨神经干，神经冲动的传导被阻断，形成了单相动作电位，单相动作电位仅具有正相波。
这说明双相动作电位的正相波和负相波别离是由R1和R2引导所得。
蟾蜍坐骨神经干末梢引导的单相动作电位的振幅明显大于双相动作电位正相波振幅，时程也明显大于双相动作电位正相波时程, 这说明双相动作电位是由不对称的正相波和负相波叠加而成的，叠加点在正相波的去极化时期。