蛙或蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备.
生理学实验1 蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备
生理学实验1 蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备一、目的和原理蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动与温血动物近似，但其离体组织所需的生活条件比较简单，且易于控制，因此在生理学实验中常用其离体组织或器官作为实验标本。
例如：蛙或蟾蜍的坐骨神经腓肠肌标本，可用来观察和研究兴奋性、兴奋过程、刺激引起兴奋的条件、兴奋在神经-肌接头处的传递、肌肉收缩的特点等多种生理现象，所以，制备坐骨神经-腓肠肌标本，是生理学实验的一项基本操作技术。
本实验的目的是：学习并掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的方法，为以后的神经肌肉实验打下基础。
二、实验对象蛙或蟾蜍三、器材和用品蛙板、蛙针、蛙钉、剪刀（2把）、镊子（2把）、玻璃针、锌铜弓、培养皿、滴管、棉线、棉球、尸体盘（以上用品合称蛙类解剖器械一套）及任氏液。
四、方法与步骤1．破坏脑脊髓选一活泼健壮的蛙或蟾蜍，用清水冲洗干净。
左手握蛙，用食指下压吻端，拇指按压背部，使头前俯；右手持蛙针由吻端沿正中线向尾端触划，所触到的凹陷处即是枕骨大孔所在部位。
将蛙针由此垂直刺入皮下，再将针尖折向前方，经枕骨大孔进入颅腔，左右搅动捣毁脑组织（图1-1）。
然后将蛙针退出至刺入点皮下，再将针尖向后插入椎管捣毁脊髓。
图1-12．剪除前部躯干及内脏在骶髂关节以上1厘米处用粗剪刀剪断脊柱，并将前部躯干及所有内脏一并剪去，仅保留一段腰骶部脊柱和后肢。
在所留脊柱的腹侧两旁可看到坐骨神经丛。
剪下的部分置于尸体盘内。
3．剥皮左手捏住脊柱断端，右手捏住断端边缘的皮肤，向下剥掉后肢的全部皮肤，标本置于盛有任氏液的培养皿中待用，皮肤弃去。
洗净双手和器械，以免蛙或蟾蜍皮肤的分泌物损害神经和肌肉。
4．分离两后肢将下肢标本腹侧向上用蛙钉固定于蛙板上，用玻璃针沿脊柱两侧分离两条坐骨神经；在两条坐骨神经下各穿一线，于靠近脊柱处将其分别结扎，并在扎线与脊柱之间剪断神经；左手用结扎线提起坐骨神经，右手持剪刀或玻璃针向下游离，直至坐骨神经出盆腔处；将游离的两条坐骨神经分别置于两侧大腿的肌肉上。
坐骨神经—腓肠肌标本的制备
实验名称：坐骨神经—腓肠肌标本的制备一、实验目的学习坐骨神经—腓肠肌标本的制备方法，掌握基本操作技术。
二、实验原理1、牛蛙作为实验动物的优势容易饲养，产量丰富价格便宜，性价比高。
蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与哺乳动物相似，如神经的生物电活动、肌肉收缩等。
牛蛙是哺乳动物的理想替代品。
牛蛙的离体组织所需的生活条件比较简单，易于控制和掌握。
在任氏液的浸润下神经肌肉标本可较长时间保持生理活性。
2、使用锌铜弓检验标本活性的原理锌铜弓是把一根锌棒和一根铜棒一端焊在一起，另一端分开。
锌的金属电势比铜低，形成一定的电势差（就相当于有电压）。
细胞的静息膜电位为外正内负，电刺激可改变可兴奋细胞的膜电位差。
膜电位减小时，细胞去极化。
细胞兴奋，膜电位增大时，细胞超极化，细胞兴奋性被抑制。
当用锌铜弓接触标本时，可产生沿锌片—活组织—铜片流向的电流对细胞产生刺激效应。
引起标本局部去极化，引发动作电位，肌肉收缩。
三、实验器材1、实验动物：牛蛙。
2、实验器材：任氏液，蛙类手术器械一套，大头针，锌铜弓。
四、实验流程和步骤1、实验流程洗干净实验动物→毁髓→剥制后肢→分离两后肢→分离坐骨神经→游离腓肠肌→分离股骨头→标本检验2、实验方法与步骤（1）毁髓：一只手握住牛蛙，使其背部向上。
用拇指压住牛蛙背部，食指压其头部前端，另一只手持毁髓。
用解剖针从蛙的枕骨大孔（把头抬起来时凹陷的部位或者脊柱与头骨的中心点）插入向前搅动后再向后搅动，直至毁髓成功（蛙的四肢自然下垂，瘫软无力）。
（2）剥制后肢标本：轻提双毁髓蛙，自背面耻骨联合上方约 1 公分处用粗剪刀横向剪断脊柱。
轻轻托起后肢，看清坐骨神经位置。
沿脊柱两侧横向切口剪断体壁、去除断口以上肢体和内脏放入污物缸。
剥去后肢皮肤后放入任氏液中备用。
（3）分离两后肢：用粗剪刀纵向剪开脊柱，并剪断两后肢相连的肌肉。
一只用于剥制标本，另一只放入任氏液中保存。
（4）分离坐骨神经、将后肢二标本脊柱端腹面向上、趾端向外侧用蛙钉将标本固定在蛙板上。
生理学实验报告-《坐骨神经-腓肠肌标本的制备》
实验二-坐骨神经标本—腓肠肌标本的制备一、实验目的：1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本及腓肠肌的制备方法。
3.了解电刺激的极性法则。
二、实验原理：1、牛蛙作为实验动物的优势：离体实验是动物生理学主要的实验方法之一。
两栖动物是冷血动物，其基本生理机能与温血动物近似，而其离体组织器官维持活性所需要的条件比较简单，因此它常被选为生理学实验提供离体组织或器官的实验动物。
蟾蜍或青蛙坐骨神经—腓肠肌在任氏液中可维持生理活性数小时，在其基础上还可进一步制作神经干标本、腓肠肌标本，可用于研究肌肉收缩的特性，神经和肌肉的兴奋性、传导性，刺激与反应的关系，神经肌肉接头活动等生理活动及相关机制，甚至还可以用于药物筛选如抗疲劳药物的模型。
其中牛蛙人工养殖成本低产出率高，相对蟾蜍要更安全。
因此，本次实验选择牛蛙作为实验对象。
2、锌铜弓刺激检测标本活性的原理：锌铜弓在溶液中沾湿以后，锌的表面电离出正离子，里面形成负离子；而铜的表面电离出负离子,里面形成正离子。
当用锌铜弓接触活组织时，电流便沿着锌一活组织→铜的方向流动而产生刺激效应。
所以锌相当于正极,面铜相当于负极发挥刺激作用；当断开时，则发生相反的效应。
锌的金属电势比铜低，形成一定的电势差（就相当于有电压），锌铜弓是把一根锌棒和一根铜棒一端焊在一起，另一段分开，则接触样本（例如神经干）时，会引起样本局部去极化，引发动作电位。
三、实验器材：牛蛙，常用手术器械（手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、眼科镊、毁髓针、玻璃分针)，蜡盘，蛙板（木质或硬泡沫塑料），玻璃板，固定针，锌铜弓，培养皿或不锈钢盘，污物缸，滴管，纱布，粗棉线，任氏液。
四、实验流程和步骤：1.牛蛙的双毁髓一手握住牛蛙，背部向上。
用拇指压住牛蛙的背部，食指按压其头部前端，使头端向下低垂；另一手持毁髓针，由两眼之间沿中线向后触划，当触及两耳中间的凹陷处（此处与两眼的连线成等边三角形）时，持针手即感觉针尖下陷，此处即是枕骨大孔的位置。
生理学实验 坐骨神神经腓肠肌标本制备
实验一 坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备技术，为以后有关实验打下基础。
【实验原理】两栖类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似， 而其离体组织所需的生活条件 比较简单，易于建立、控制和掌握。
因此在实验中常用蟾蜍或蛙的坐骨神经腓肠肌标本来观 察兴奋与兴奋性的一些规律以及骨骼肌的收缩特点等。
所以坐骨神经腓肠肌标本的制备是生 理实验的一项基本操作技术。
【实验对象】蟾蜍或蛙。
【实验材料】两栖类手术器械 1套(粗剪刀、组织剪、眼科剪、组织镊、眼科镊、金属探针、玻璃 分针、蛙板)、手术线、蛙尸缸、滴管、平皿、锌铜弓、任氏液。
【实验步骤】1． 破坏脑和脊髓取蟾蜍 1 只，用自来水冲洗干净。
左手握住蟾蜍，用拇指按压背部，食指按压头部 前端使其头部前俯，右手持金属探针在头前缘沿正中线向尾端触划，所触划到的头部后 端的凹陷处，即为枕骨大孔所在部位。
在此处将金属探针垂直刺入皮肤，有突破感后再 将金属探针折向前经枕骨大孔刺入颅腔，左右搅动捣毁脑组织；然后将金属探针回抽至 枕骨大孔处，转向后刺入脊椎管，反复提插捣毁脊髓。
此时如蟾蜍的四肢松软，呼吸运 动消失，表示脑和脊髓已完全破坏，否则应按上法再行捣毁。
2． 剪除躯干上部及内脏如图 1－1 所示，在骶髂关节位置用左手将蟾蜍提起，在骶髂关节水平以上 0.5～l 厘米处用粗剪刀剪断脊柱，然后将粗剪刀尖向下深入体腔沿躯干两侧剪开皮肤，使蟾蜍 头、上肢与内脏自然下垂，将其一并剪除弃去，仅留后肢、骶骨、脊柱及紧贴于脊柱两 侧的坐骨神经。
在整个剪除过程中注意勿损伤神经。
3． 剥皮左手用组织镊夹紧或用手直接捏住脊柱断端(注意：不要夹住或接触神经)，右手捏，将标本放在盛有任氏液 住其上的皮肤边缘，用力向下剥掉全部后肢皮肤（见图 1－2）的平皿中。
将手及用过的粗剪刀、组织镊等全部手术器械洗净，再进行下述步骤。
4． 分离两腿用镊子从背位夹住脊柱将标本提起，剪去向上突出的骶骨(注意勿损伤坐骨神经)，然后沿正中线用粗剪刀将脊柱分为两半，并从耻骨联合中央剪开两侧大腿，然后将分离的两条腿浸于盛有任氏液的平皿中备用。
蛙或蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备
1. 破坏脑脊髓 取蟾蜍一只，用自来水冲洗干净。左手握住蟾蜍，用食指压住头部前端使 头前俯，右手持刺蛙针从枕骨大孔向前刺入颅腔（图 1-1），左右搅动捣毁脑组织，然 后将刺蛙针退到枕骨大孔，不拔出而是将其尖转向后插入脊柱管中捣毁脊髓，插入椎管 时，蟾蜍后肢立即失去紧张性，多数情况出现尿失禁。若脑脊髓破坏完全，可见蟾蜍四 肢松软，呼吸消失。
5. 游离坐骨神经和剪断股骨 认清坐骨神经沟和腓肠肌的部位（图），用剪刀剪断梨状肌 及其周围的结缔组织，左手提着神经上的细线，右手持剪刀或玻璃分针沿坐骨神经沟细 心剥离，直至将坐骨神经剥离到腘窝。将游离干净的坐骨神经放在下腿上，沿膝关节的 周围将大腿的所有肌腱剪断，并用剪刀刮净股骨下段附着的肌肉，在股骨上三分之一处 剪去上段股骨及所附的肌肉，这样制成的称为坐骨神经下腿标本（图 1-4）。
图 1-1 破坏蟾蜍脑脊髓
图 1-2 剪除躯干和内脏
图 1-3 剥除后肢皮肤
4. 分离两腿 用玻璃分针沿脊柱两侧游离出两条坐骨神经，并于近脊柱处各扎一细线，然 后在扎线与脊柱之间剪断神经。提着神经上的细线，将两条坐骨神经分别置于两条大腿 上，左手持脊柱，将骶骨翘起，将下位脊柱全部剪除。捏着两侧骼骨向反方向分离，使 耻骨联合脱臼后，沿耻骨联合正中将两下肢剪开，将一条腿浸于任氏液中备用，另一条 置于浸有任氏液的玻璃板上。
6. 游离腓肠肌 在坐骨神经下腿标本的基础上，用剪刀将跟腱的下端剪断，在跟腱与肌肉 交界处扎一条细线，左手提线，右手用剪刀游离腓肠肌，直到膝关节。最后用粗剪刀在 膝关节下将小腿剪去，留下的即为坐骨神经腓肠肌标本（图 1-5）。做好的标肌立即收缩，表示标本的兴奋性良好，然后将标本 放入任氏液中，待其兴奋性稳定后再进行实验。
实验 1 蛙或蟾蜍坐骨神经－腓肠肌标本的制备
实验1坐骨神经-腓肠肌标本的制备
实验１坐骨神经-腓肠肌标本的制备实验目的掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术，为此后有关的神经肌肉实验打下基础。
实验原理蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与恒温动物近似，而且其离体组织需要的生活条件非常简单，易于控制和掌握。
因此在生理学实验中，坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象，经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。
实验器材和药品蛙类手术器械一套（金属探针1根，粗剪刀、眼科剪刀各1把，圆头镊子、眼科镊子各1把，玻璃分针2根），蛙板和玻璃板各1块，滴管，废物缸、锌铜弓，丝线，棉花；任氏液。
实验对象蟾蜍。
实验方法和步骤1．破坏脑和脊髓以左手持蟾蜍，将其腹面朝向手心，前肢夹在食指和中指之间固定，后肢夹在无名指和小指之间固定，并用拇指按压蟾蜍头部使之下俯30－40度角；然后右手持金属探针沿蟾蜍头部的中线下划，可触及一凹陷处即为枕骨大孔(此处与两眼的连线成等边三角形)。
将探针从枕骨大孔垂直刺入1－1.5mm，再向前刺入颅腔，左右搅动（如毁髓针确在颅腔内，实验者可感到针尖触及颅骨），破坏脑组织；再将探针退回至进针处，但不拔出而是转向后方刺入椎管，破坏脊髓。
彻底捣毁脊髓时，可看到动物的后肢突然蹬直，而后瘫软如棉，此时的动物为双毁髓动物。
如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如，必须重新毁髓。
操作过程中应注意使蟾蜍头部向外侧(不要挤压耳后腺)，防止耳后腺分泌物射人实验者眼内(如被射入，则需立即用生理盐水冲洗眼睛)。
破坏脑和脊髓成功后，蟾蜍出现四肢（尤其是后肢）瘫软，并常有尿失禁现象。
2．剪去躯干上部及内脏用粗剪刀在两侧腋部稍下（或在骶髂关节以上1.5－2cm处）剪断脊柱，用左手握住蟾蜍后肢，拇指按压骶骨，使蟾蜍头部及内脏自然下垂；避开腰骶神经丛后，右手用粗剪刀沿脊柱两侧剪开腹壁，在耻骨联合处将躯干上部及内脏剪掉，弃入废物缸内。
3．剥皮左手持大镊子夹住脊柱断端 (小心勿伤神经)，右手捏住脊柱断端的皮肤边缘，逐步向下剥去全部后肢皮肤。
坐骨神经腓肠肌标本制备步骤
坐骨神经腓肠肌标本制备步骤《坐骨神经腓肠肌标本制备步骤坐骨神经腓肠肌标本制备步骤》嘿，朋友！今天咱们来聊聊坐骨神经腓肠肌标本的制备步骤。
这事儿啊，说起来还挺有趣的，您可得听我慢慢道来。
呢，咱们得准备好一些工具和材料。
像是蛙类动物，常用的是蟾蜍，还有一些手术器械，像解剖刀、镊子、剪刀之类的，当然还少不了一些生理盐水，这可是保持标本活性的关键哦。
准备好这些，咱们就可以开始动手啦！把蟾蜍捉来，先得让它安静下来。
这时候可以给它来一下“温柔的抚摸”，让它放松放松。
然后，用大头针把蟾蜍的四肢固定在解剖盘上。
这一步可得小心点，别弄疼了它。
找到脊柱后，在它的两侧找到坐骨神经，这两条神经就像是藏在深处的宝贝，得仔细找才能发现。
找到后，用镊子轻轻把周围的组织清理干净，让坐骨神经完全暴露出来。
然后，顺着坐骨神经往下，就能找到腓肠肌。
这腓肠肌就像是一个小肌肉块，连着坐骨神经。
用剪刀把坐骨神经和腓肠肌周围的其他组织剪掉，但要注意，千万别把神经和肌肉剪断了，这可需要点耐心和细心。
不过，还没完呢！把取下的标本放在盛有生理盐水的培养皿里，让它好好泡个澡，保持湿润和活力。
经过这一系列的操作，咱们的坐骨神经腓肠肌标本就制备好啦！是不是感觉还挺有意思的？这当中每一步都需要咱们小心谨慎，就像对待一件珍贵的宝贝一样。
朋友，您要是自己动手做这个标本，一定要按照这些步骤慢慢来，相信您一定能成功的！。
实验二 蛙和蟾蜍神经肌肉标本制备
实验二蛙和蟾蜍神经肌肉标本制备一、实验目的熟悉并掌握蛙和蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备方法。
属于急性实验中的离体实验。
原理：两栖类动物的离体组织器官可在室温下，于一定时间内保持其机能，故常用作生理学实验的材料。
蛙或蟾蜍坐骨神经腓肌肠标本，常用来研究兴奋性、兴奋过程、刺激的规律以及肌肉的收缩特点等。
制备坐骨神经腓肌肠标本是生理实验的一项基本操作技术。
可兴奋细胞包括：神经细胞、肌肉细胞兴奋的传递：神经细胞之间突触传递；神经细胞与肌肉细胞之间采用接头传递。
二、实验仪器及材料牛蛙（Rana catesbeiana），手术剪1把，虹膜剪刀1把，大、小镊子各1把，刺蛙针1根，玻璃分针2根，小玻璃板和蛙板各1块，培养皿1个，烧杯1个，滴管1支，棉线、纱布、任氏液、锌铜弓。
三、实验方法与步骤1、破坏脑和脊髓取一只牛蛙，洗净蛙体，用左手握蛙，并用食指按压其头部前端，拇指按压背部，使头前俯；右手持刺蛙针由头前端沿中线向尾方划触，触及凹陷处即枕骨大孔处。
将刺蛙针转向头方，向前探入颅腔，然后向各方搅动刺蛙针，以捣毁脑组织。
脑组织捣毁后，将刺蛙针退出；再由枕骨大孔刺入，并转向尾方，与脊柱平行刺入脊管，以破坏脊髓。
脑和脊髓完全破坏后，动物四肢肌肉的紧张性完全消失。
拔出刺蛙针后，用一小干棉球堵住针孔止血。
2.剪除躯干上部、皮肤及内脏用左手捏住蟾蜍的脊柱，右手持粗剪刀在前肢腋窝处连同皮肤、腹肌、脊柱一并剪断，然后左手握住蟾蜍的后肢，紧靠脊柱两侧将腹壁及内脏剪去(注意避开坐骨神经)，并剪去肛门周围的皮肤，留下脊柱和后肢。
3.剥皮一只手捏住脊柱的断端（注意不要捏住脊柱两侧的神经），另一只手捏住其皮肤的边缘,向下剥去全部后肢的皮肤（图2）。
将标本放在干净的任氏液中。
将手及使用过的探针、剪刀全部冲洗干净。
4.分离两腿用鑷子取出标本，左手捏住脊柱断端,使标本背面朝上，右手用粗剪刀剪去突出的骶骨（也可不进行此步）。
然后将脊柱腹侧向上，左手的两个手指捏住脊柱断端的横突，另一手指将两后肢担起，形成一个平面。
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蛙或蟾蜍。
【实验器材与药品】
蛙类坐骨神经一腓肠肌标本制备手术器械和药品1套,包括:蛙板、小玻板各1块、粗剪刀、直剪刀各1把,大镊子、小镊子各1把,眼科剪刀1把、探针1根、玻璃分针2根、大烧杯、小烧杯各1个,滴管1支,培养皿1个、棉线,任氏液、锌铜叉。
【实验方法和步骤】
1.破坏脑脊髓取蟾蜍一只,用自来水冲洗干净。左手握住蟾蜍,用食指压住头部前端使头前俯,右手持刺蛙针从枕骨大孔向前刺入颅腔(图1-1 ,左右搅动捣毁脑组织,然后将刺蛙针退到枕骨大孔,不拔出而是将其尖转向后插入脊柱管中捣毁脊髓,插入椎管时,蟾蜍后肢立即失去紧张性,多数情况出现尿失禁。若脑脊髓破坏完全,可见蟾蜍四肢松软,呼吸消失。
5.游离坐骨神经和剪断股骨认清坐骨神经沟和腓肠肌的部位(图,用剪刀剪断梨状肌及其周围的结缔组织,左手提着神经上的细线,右手持剪刀或玻璃分针沿坐骨神经沟细心剥离,直至将坐骨神经剥离到腘窝。将游离干净的坐骨神经放在下腿上,沿膝关节的周围将大腿的所有肌腱剪断,并用剪刀刮净股骨下段附着的肌肉,在股骨上三分之一处剪去上段股骨及所附的肌肉,这样制成的称为坐骨神经下腿标本(图1-4。
5.避免用手指或金属器械接触或夹持标本的神经肌肉部分。
【思考题】
你制备的坐骨神经腓肠肌标本兴奋性如何?有哪些体会?
(毕辉段玉斌
图1-1破坏蟾蜍脑脊髓
图1-2剪除躯干和内脏
图1-3剥除后肢皮肤
4.分离两腿用玻璃分针沿脊柱两侧游离出两条坐骨神经,并于近脊柱处各扎一细线,然后在扎线与脊柱之间剪断神经。提着神经上的细线,将两条坐骨神经分别置于两条大腿上,左手持脊柱,将骶骨翘起,将下位脊柱全部剪除。捏着两侧骼骨向反方向分离,使耻骨联合脱臼后,沿耻骨联合正中将两下肢剪开,将一条腿浸于任氏液中备用,另一条置于浸有任氏液的玻璃板上。
6.游离腓肠肌在坐骨神经下腿标本的基础上,用剪刀将跟腱的下端剪断,在跟腱与肌肉交界处扎一条细线,左手提线,右手用剪刀游离腓肠肌,直到膝关节。最后用粗剪刀在膝关节下将小腿剪去,留下的即为坐骨神经腓肠肌标本(图1-5。做好的标本用锌铜
叉的两极轻轻接触坐骨神经,如腓肠肌立即收缩,表示标本的兴奋性良好,然后将标本放入任氏液中,待其兴奋性稳定后再进行实验。
实验1蛙或蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备
【实验目的】
1.学习急性实验的实验方法。
2.通过本实验熟悉刺激、兴奋、兴奋性和可兴奋组织的概念。
3.掌握蛙坐骨神经-腓肠肌标本的制备,为进行神经肌肉实验打下基础。
【实验原理】
蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似,而其离体组织生活条件易于掌握,在任氏液的浸润下,神经肌肉标本可较长时间保持生理活性。因此,在生理学实验中常用蛙或蟾蜍坐骨神经腓肠肌离体标本来观察神经肌肉的兴奋性、兴奋过程以及骨骼肌收缩特点等。
椎骨
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ蛙板
玻璃板
坐骨神经
股骨
玻璃分针
坐骨神经
半膜肌
骨二头肌
腓肠肌腓肠肌
图1-4分离坐骨神经图1-5坐骨神经-腓肠肌标本
【注意事项】
1.已剥离皮肤的组织避免接触皮肤毒液或其他不洁物。
2.分离神经时,一定要用玻璃分针,不能随便用刀、剪进行操作。
3.不能过分牵拉神经,以免造成损伤。
4.标本制备过程中应适当地用任氏液湿润标本。
2.剪除上肢和内脏在骶髂关节上0.5~1.0cm处用粗剪刀剪断脊柱。用镊子夹住后端脊柱,以剪刀沿脊柱两侧剪除所有内脏及头胸部,留下后肢、骶骨、后端脊柱及紧贴于脊柱两侧的坐骨神经(图1-2。
3.剥皮左手用镊子或直接用手捏住脊柱断端(注意不要压迫神经,右手捏住断端边缘皮肤,向下剥去全部后肢皮肤(图1-3 ,将标本置于盛有任氏液的培养皿中。将手和用过的器械洗净后再进行以下步骤。