末梢血常规标本采集操作规程
末梢血常规标本采集操作规程
1.2采血方法
1.2.1 采血部位成人以左手无名指外为宜，半岁以上儿童无名指为好，半岁以下婴儿通常自拇指或足跟两侧采血。
1.2.2 轻按摩采血部位，使其自然充血，用碘伏消毒局部皮肤待干。
1.2.3 捏刺血部位，用无菌刺血针穿刺取血，动作应迅速，深度约2mm稍加挤压以血液能流出为宜。
1.2.4 干棉球擦去第一滴血，按需要依次采血。
1.2.5 采血完毕，用干棉球压住伤口，止血片刻。
1.3注意事项
除特殊情况外若在耳垂采血要避开冻疮、炎症、水肿等部位，以免影响结果。其他注意事项参考静脉血常规标本采集规程。
3.1
4.1 白细胞成年人静脉血:3.5~10.0x109/L;手指血:4.4~10.0x109/L;新生
儿:15.0~20.0x109/L;6个月~2岁:11.0~12.0x109/L。
3.1
4.2 红细胞成年男性:135~180g/L;成年女性:3.77~
5.17x1012/L;新生儿：
6.0~
7.0x1012L。
3.1
4.3 血红蛋白成年男性:135~180g/L；成年女性:115~155g/L;新生儿:170~200g/L。3.14.4 血细胞比容成年男性:0.400~0.517;成年女性:0.367~0.467。
3.1
4.5 血小板 100~300x109/L。
MCV:80~100Fl；MCH：27.2~34.4pg;MCHC:320~360g/L;RDW:0.145;PCT:男性0.183±0.041;女性0.198±0.042;MPV:男性10.07±1.78Fl;女性10.24±1.58fl;PDW:16.8%±0.63%。
3.15检验结果可报告区间
3.15.2警告/危急值白细胞＜0.5x109/L;红细胞＜1.0x1012/L;血红蛋白＜30 g/L;血小板＜
20x109/L。
3.1
4.1 白细胞成年人静脉血:3.5~10.0x109/L;手指血:4.4~10.0x109/L;新生
儿:15.0~20.0x109/L;6个月~2岁:11.0~12.0x109/L。
3.1
4.2 红细胞成年男性:135~180g/L;成年女性:3.77~
5.17x1012/L;新生儿：
6.0~
7.0x1012L。
3.1
4.3 血红蛋白成年男性:135~180g/L；成年女性:115~155g/L;新生儿:170~200g/L。3.14.4 血细胞比容成年男性:0.400~0.517;成年女性:0.367~0.467。
3.1
4.5 血小板 100~300x109/L。
3.1
4.6 其他参数
MCV:80~100Fl；MCH：27.2~34.4pg;MCHC:320~360g/L;RDW:0.145;PCT:男性0.183±0.041;女性0.198±0.042;MPV:男性10.07±1.78Fl;女性10.24±1.58fl;PDW:16.8%±0.63%。
3.15检验结果可报告区间
3.15.1 阻抗法仪器 WBC:（0.2~99.99）X109/L，RBC
（0.50~9.99X1012/L,HGB:0~299g/L,PLT:(10~999)X109/L.
3.15.2警告/危急值白细胞＜0.5x109/L;红细胞＜1.0x1012/L;血红蛋白＜30 g/L;血小板＜
20x109/L。
3.18变异潜在来源
3.18.1 严重的黄疸或脂血标本可使血红蛋白结果假性增高；
3.18.2 标本溶血可使红细胞结果假性减低、血小板计数结果假性增高；
3.18.3 红细胞冷凝集可使红细胞和血小板计数结果假性减低，白细胞假性增高（电阻抗法）或假性减低（激光法法）
3.19MCV 假性增高；
3.19.1 冷凝球蛋白或冷纤维蛋白增高使白细胞和血小板计数结果假性增高；
3.19.2 有血小板凝集者可使血小板计数结果假性减低；
3.19.3 试剂的温度；
3.19.4 检测器微孔不完全堵塞；
3.19.5 标本采集后放置的环境温度过高、时间过长；
3.19.6 试剂变质或过了有效期而未发现等。
3.20异常结果处理血细胞分析仪测定的血常规结果需与临床诊断相不符合的结果应复查。
3.21报告时间与保存门诊患者的血常规检验结果报告不超过30分钟，病房患者的血常规检
验结果报告单应于当日下午4点前由卫生员发回病房科室。住院部
检验后的血常规标本放置室温保存24小时，门诊标本不保存。
3.22实验条件温度：15~32℃，相对湿度：30%~80%，电压：200V±10%，清洁度执行临床实
验室安全准则NCCLS同类标准GP17-A避免强光照射时及辐射源辐
射。
尿常规十项检测操作规程
葡萄糖该试验为葡萄糖特异性试验，尿液中还未发现其它物质能给予试验阳性结果。在稀释的尿液中，所含之维生素C少于0.28mmol/L时，葡萄糖含量少至2.2mmol/L已可致试纸颜色改变而呈阳性反应。若尿液中维生素C浓度等于或大于2.84mmol/L，或铜体浓度高于（4mmol/L）可使葡萄糖含量在4一7mmol/L间的样本呈假阳性反应。。尿液中的非典型颜色可提示胆汁色素的异常性，该样本需作进一步检测（如使用Lctotest TM试剂片）。一些药物的新陈代谢在低PH下可使之产生颜色，例如：吡啶和乙哚酸可致假阳性反应，或非典型反应。靛青甙可使之产生一种桔黄色至红色之颜色反应，这可给胆红素阴性或阳性比色的判断带来干扰。维生素C浓度等于或大于1.42mmol/L可致假阴性结果。
10.2.2酮体该试验检测尿液中的乙酰乙酸，但不与尿中的丙酮酸或B一丁酸反应。一些高比
重/低PH的尿液可提高其反应和对微量的酮体的检测。正常的尿液样本通常给予阴性反应。假阳性结果（微量）可见于色素样本或含有大量左多巴代谢产物的样本。由于该试验对乙酰乙酸的特异性，试纸条上的酮体区不应与CHEKSTlX质控条以外的质控物作反应。
10.2.3比重比重测试可测定尿液中1.000与1.030之间的比重。一般来说，此法所测之比重与用折射指数法所测之比重的相关性良好，其误差在0.005内。为了增加其准确性，当尿液的PH值等于或大于6.5时，在尿液比重的读数上可加上0.005。尿液分析仪在辨读试纸条时会对此作自动调节。Ames的尿比重试验不受尿液中某些非离子物质如葡萄糖或所存在之放射性染料的影响。高度缓冲的硷性尿液之果较使用其它方法所得到比重值低。尿液中存在一定数量的蛋白（1一7.5g/L）亦可使比重值升高。
10.2.4潜血“微量”反应可因人而异，因此需根据具体情况作出临床判断。在60秒钟内试验区出现绿点（完整的红细胞）或绿色（游离血红蛋白/肌红蛋白）提示需作进一步的检查。红细胞尿常见于月经期妇女。此试验对血红蛋白极为敏感，因此可与镜检互作补充。高比重尿液可降低该试验的灵敏度。该试验对血红蛋白的灵敏度与对肌红蛋白的灵敏度相同。（150一620ugl/L的血红蛋白浓度约相当于5一15个完整红细胞/ml）。克莆定和乙哚酸可降低试验的反应性。某些氧化物的污染和次氯酸盐可引致假阳性结果。与尿道感染有关的微生物中的过氧化物酶可致假阳性结果。尿液中常见的维生素水平对比试验并无干扰。
10.2.5PH PH试验区测量PH值通常是在1个单位内，肉眼测定范围是5一8.5，仪器测定范围5一9。
10.2.6蛋白试剂区对白蛋白的灵敏性高于对球蛋白、血红蛋白、本周氏蛋白和黏液蛋白的敏感性，因此“阴性”结果并不排除这些蛋白在尿液中的存在。虽然正常情况下肾脏排泄少量的蛋白，但用传统的方法检测不出它们的存在。任何超过了“微量”比色格的颜色变化均提示了蛋白尿的存在。对于高比重的尿液，尽管尿液存在的蛋白在正常范围，但其颜色的变化常与“微量”比色格相吻合。因此对于“微量”结果的临床判断需作进一步的评估。高度缓冲尿液或硷性尿可致假阳性结果，受四价氨化分物（如来自一些消毒剂或清洁剂）或含有氯化物的皮肤消毒剂的污染尿液标本也可致假阳性结果。
10.2.7尿胆原该试验可检测尿液中尿胆原浓度低至3umol/L（约0.2个Ehrlic单位/dL）。此试验的正常范围是3一16umol/L。33 umol/L的结果代表一种由正常至异常的过度，病人和/或其尿液标本都应作进一步的检查。已知的对Ehrlich试剂有干扰的物质，如对一氨基硫酸和磺胺对此试验均有干扰。尿液中存在高浓度的对一氨基苯酸可致一非典型的颜色反应。如果尿中存在甲醛，则可使结果为假阳性。一些深色物质，如偶氮染料和核黄素少可掩盖反应区上颜色的变化。试纸条的反应随温度的升高而增强，反应的最适温度为22℃一26℃。此试验不能检测尿胆原的消失。
10.2.8胆红素在强酸介质中，直接胆红素与尿试带膜块中的二氯苯胺重氮盐起偶联反应生成红色的复合物，其反应过程是重氮盐作用胆红素中央使其裂开，再结合形成2分子的偶氮胆红素而呈现颜色变化。
10.2.9亚硝酸盐该试验是基于尿液中革兰氏阴性细菌将硝酸盐转化成亚硝酸盐的原理。此试验只对亚硝酸盐有特异性而不会对尿中其他任何正常排泄物质有反应。粉红色斑点或粉红色反应译作阳性结果，并提示尿中所存在的细菌数目在105个/ml以上，但颜色的强度与所在的细菌数不成正比例关系。阴性结果并不表示尿液中无细菌存在。阴性结果可见于非硝酸盐转化型细菌的尿道感染。当尿液在膀胱内储留时间不足（4小时以上）以便使硝酸盐被还原，或者饮食中缺乏硝酸盐，那么尽管尿液中所存在之细菌含有还原酶，其试验结果也可能为阴性。高比重的尿液可降低亚硝酸盐试验的灵敏度。对于含有少量亚硝或大于1.42mmol/L时可产生假阴性结果。
10.2.10白细胞正常的尿液通常为白细胞阴性。阳性结果（“+”或更多）则具临床意义。个
别人的“微量”结果其临床意义有时有可疑，但“微量”结果的多次出现则可能提示有问题存在。“阳性”结果偶尔可见于一些被阴道分泌物污染的随机尿液标本。尿液中葡萄糖浓度的升高（160mmol/L）或高比重尿可使试验结果降低。尿中如有先锋酶素类药物、乙哚酸或高浓度草酸也可使试验结果降低。四环素可降低试验的反应性，高浓度药物可引起假阳性结果。呋喃妥因所引起的黄色尿液可掩盖试纸条的反应颜色。任何引起尿液颜色异常的结果均可影响试验颜色反应。
10.3操作特点操作特点是基于临床和分析研究上的。对于临床样本，试验敏感度决定于下面几个因素：对颜色接收的差异，尿液中有无抑制因素，尿比重、尿PH和比色时的光强度等。每一色格或仪器显示的数值代表一个数值范围。由于样本和比色的差异，样本的分析物浓度如果在两个正常水平之间的话，那么试验结果可被定为其中任何一个水平。如果蛋白、葡萄糖、酮体和尿胆原的结果大于第二个阳性水平的话，其结果则通常会落在其中一个真实浓度内。由于人体肉眼对颜色的判断与仪器对颜色的判断之间存在固有的差异，两者之间还难以达到绝对的一致。以下所列的是人体尿液中通常可检测到的分析物水平，但因临床尿液固有的差异，在某些情形下也许可检测得到更低的浓度。
10.8样本检测步骤
10.8.1将尿纸条所有的实验区浸入样品杯中，2 并立即将其取出。
10.8.2用麻纸除去残余的尿液。
10.8.3放入尿分析仪检测槽中。
10.8.4按仪器的开始键
10.8.5操作完毕自动打印出结果。
10.8.6若十项不变色为阴性，若有变色为阳性。
10.9注意事项尿液防腐剂可能影响测试结果。防腐剂可能防止酮体、胆红素或尿胆原的分解。因污染所致的细菌的生长可影响葡萄糖、PH和潜血试验的结果。
10.9.1试纸条放入样品不易时间太长。
10.9.2试纸条必须保持干燥。
10.9.3试纸条湿温保存（15℃至30℃）。
10.9.4不可直接受阳光照射。
10.9.5使用后请立刻拧紧瓶盖。
10.10干扰因素
10.10.1 尿液放置时间过长，盐类结晶析出、尿胆原转变为尿胆素，细菌增殖和腐败，尿素分解，均可使尿颜色加深和透明度增高。尿液颜色受食物和药物的影响。
10.10.2尿液标本必须新鲜，变质的尿液会使PH发生变化，或者尿液本身过酸过碱都会影响蛋白的测定。奎宁嘧啶等药物可引起蛋白假阳性结果。
10.10.3 干化学法对球蛋白的敏感性低。
10.10.4尿液中青霉素达到一定浓度时对尿蛋白测定产生假阴性。
10.10.5高浓度VC 、高浓度酮体尿可引起尿糖出现假阴性。
10.10.6尿液比重增高可降低试纸带对糖的敏感性。
10.10.7尿液被过氧化物或次氯酸盐污染，尿糖可产生假阳性。
10.10.8尿液中含高浓度维生素C和亚硝酸盐时，抑制偶氮反应，使尿胆红素检测结果出现假阴性结果或结果偏低；当患者接受大剂量氯丙嗪治疗或者尿中含有盐酸苯偶氮吡啶的代谢产物时，胆红素检测也可呈假阴性结果。由于胆红素不够稳定，尤其在阳光照射下更易分解，故留尿标本后应及时检查。尿液中含有酚噻嗪类或吩嗪类药物时，可使胆红素呈现假阳性。
10.10.9由于尿胆原不够稳定，尤其在阳光照射下更易分解，故留取标本后应及时检查，以免尿胆原氧化成尿胆素而呈现假阴性。磺胺药等可因颜色干扰尿胆原检测可呈现假阳性。
10.10.10亚硝酸盐检测的尿液标本必须新鲜，留取尿液标本后应及时检验，以免细菌繁殖产生亚硝酸盐，使检测结果呈现假阳性。非那吡啶也可引起假阳性。大量VC、高比重尿和硝基呋喃可出现假阴性。
10.10.11 尿液中肌红蛋白或菌尿可引起红细胞假阳性。大量VC可引起红细胞假阴性。
10.10.12尿液中污染甲醛或高浓度胆红素或使用某些药物（如呋喃坦啶）时，可使干化学法白细胞测定产生假阳性；尿蛋白＞5g/L，或尿液中含有大剂量先锋Ⅳ、庆大霉素等药物时，可使干化学发白细胞测定结果偏低或出现假阴性。
10.10.13尿液标本必须新鲜，排尿后应立即送检。放置过久即可因腐败而使管型及细胞溶解，影响试验准确性。
10.11实验室解释
10.11.1 尿液颜色近于无色多见于大量饮水、尿崩症、糖尿病、精神性多饮多尿症、肾硬化等，以上原因均伴多尿。如尿量少颜色反很淡，提示肾功能不良。黄褐色、黄绿色、棕绿色尿见于肝细胞性、阻塞性黄疸，服用大黄、番泻叶。棕色、棕黑色尿见于：尿路出血、尿黑酸尿、黑色素瘤、服用酚、左旋多巴、来苏、甲酚、苯肼等。淡红、粉红、红色、棕色、紫红色见于血尿，血尿蛋白尿，卟啉尿，服用甜菜等食物染料色素及酚红、酚酞、刚果红、氨基比林、利福平、大黄、番泻叶等药物。黄色、棕黄色见于饮水少、尿浓缩、发热病、失水及其他代谢增高疾病。食用红萝卜、胡罗卜、核黄素、呋喃坦叮等。蓝绿色、蓝色见于服用美蓝、亚甲蓝、靛卡红、石炭酸、蓝尿布综合征，服用氨苯蝶啶，小肠阻塞、伤寒、腹膜炎所致肠蠕动障碍及胃病。乳白色见于乳糜尿、脓尿、脂肪尿、大量盐类。黄色荧光见于服用黄素等。
10.11.2 尿液浊度正常尿浑浊的主要原因是因含有结晶。病理性浑浊可因尿中含有白细胞、红细胞及细菌等所致。尿中如有黏蛋白、核蛋白也可因pH变化析出产生浑浊。淋巴管破裂产生的乳糜尿也可引起浑浊。
10.11.3 尿糖
10.11.4 生理性糖尿生理性糖尿为一过性糖尿，是暂时性的，排除生理因素后恢复正常。主要见于：饮食性糖尿、应急性糖尿和妊娠性糖尿。
10.11.5 病理性糖尿病理性糖尿见于：真性糖尿、肾性糖尿和其他糖尿。
10.11.6 尿液酮体健康人尿液酮体定性试验呈阴性。
尿液酮体，可大概分为以下4种情况：糖尿病酮症酸中毒、非糖尿病酮体酸中毒、中毒和药物影响。
10.11.7 尿液胆红素胆红素定性阳性常见于肝实质性及阻塞性黄疸。在肝实质性及阻塞性黄疸时，血液中结合胆红素增高，超过肾阈时，可以从尿中排出。
10.11.8 尿液尿胆原健康人尿液尿胆原定性试验呈弱阳性，其稀释度在1:20以下。
尿胆原阴性常见于完全阻塞性黄疸。
尿胆原增加常见于熔血性疾患及肝实质性病变如肝炎时。
10.11.9 尿液亚硝酸盐尿液亚硝酸盐阳性常见于大肠埃希菌引起的泌尿性感染，但必须同时符合以下三个条件：①感染的细菌含有硝酸盐还原酶、食物中含有适量的硝酸盐和尿液标本在膀胱停留间隔4h以上，并除外药物等干扰因素，此实验诊断大肠埃希菌感染的符合率为80%，反之呈阴性结果。②因此本实验阴性并不能排除菌尿的可能；③同样，亚硝酸盐阳性也不能完全肯定泌尿系统感染，标本放置过久或污染可呈假阳性，应结合其他尿液检查结果综合分析，得出正确的判断。
油气分离器操作规程标准范本
操作规程编号：LX-FS-A29117 油气分离器操作规程标准范本 In The Daily Work Environment, The Operation Standards Are Restricted, And Relevant Personnel Are Required To Abide By The Corresponding Procedures And Codes Of Conduct, So That The Overall Behavior Can Reach The Specified Standards 编写：_________________________ 审批：_________________________ 时间：________年_____月_____日 A4打印/ 新修订/ 完整/ 内容可编辑
油气分离器操作规程标准范本 使用说明：本操作规程资料适用于日常工作环境中对既定操作标准、规范进行约束，并要求相关人员共同遵守对应的办事规程与行动准则，使整体行为或活动达到或超越规定的标准。资料内容可按真实状况进行条款调整，套用时请仔细阅读。 一、操作有机械损伤的风险。 二、分离器的启用 1.检查分离器，要求闸门灵活可靠，管线严密，页面控制置保险凡尔压力表完好。冬季应打开保温设施。保证分离器能正常工作。 2.分离器仅有闸门，当分离器压力超过出油闸门下流压力时，打开出油闸门。打开出气闸门，并调节出气闸门，使分离器压力稳定在规定值。 3.调整液面控制装置，使分离器内液面宝石在适当位置。 4.检查分离器压力、温度、液面、排量情况是否
正常，液面控制装置是否灵活可靠，并在分离器正常运行中定时进行巡回检查。 三、分离器安全凡尔校对 1.分离器安全凡尔每季校对一次。定压范围必须低于分离器的工作压力，根据现场设备新旧及实际工作要求解决其值。 2.倒换流程，使分离器投入正常工作状态。 3.关闭分离油、气出口闸门（如果气量大，出气闸门可不关严）。 4.注意观察分离器压力，同时调整安全凡调节螺丝，使其在分离器压力升至需要调节的压力时，安全凡尔刚好打开。 5.打开有力分离油、气出口闸门，投入正常运行。 6.上好安全凡尔阀帽，安好手柄。
检验标本采集运输指南
封面
前言 医学检验的目的就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室依据。为确保实验结果的及时、准确、可靠，就必须保证分析前标本的质量，这就要求广大医护工作者及就诊患者了解各类标本采集、运输等方面的知识和要求。为此，医学检验科、护理部、感染管理科共同制订《检验标本采集运输指南》手册，供全院医务人员使用，以确保实验室分析前的标本质量，并真诚希望广大医务人员在使用本手册的过程中多提宝贵意见，以利于进一步的提高和完善。 宾阳县人民医院 检验科、护理部、感染管理科 2016年8月4日
目录 第一部分检验科各检测项目标本采集要求 (4) 第二部分检验标本采集运输要求 (5) 第三部分患者采血前的准备 (6) 第四部分检验标本采集运输作业指导书 (6) 一、静脉血液采集运输作业指导书 (6) 二、末梢血采集运输作业指导书 (8) 三、动脉血液采集运输作业指导书 (9) 四、尿液标本采集运输作业指导书 (10) 五、粪便标本采集运输作业指导书 (11) 六、前列腺液采集运输作业指导书 (11) 七、精液采集运输作业指导书 (12) 八、脑脊液标本采集运输作业指导书 (13) 九、浆膜腔积液（胸水）采集运输作业指导书 (14) 十、浆膜腔积液（腹水）采集运输作业指导书 (15) 十一、骨髓采集运输作业指导书 (16) 十二、临床微生物标本采集运输作业指导书 (18) 第五部分标本采集运输流程 (20) 第六部分检验标本的接收、拒收标准及流程 (21) 1 . 检验标本的接收标准: (21) 2 . 不合格标本拒收标准: (21) 3 . 检验标本接收流程: (22) 4 . 不合格标本拒收流程: (23)
临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章、体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、阴道分泌物标本采集、运输 三、精液标本采集、运输、保存 四、粪便采集、运输、保存 第二章、血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章、生化检验标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一）检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。
3．其它：尿HCG、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿 即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。门诊患者可采集清晨第二次尿标本。适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。 （2）随机尿（随意一次尿） 即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。适用：门诊和急诊病人。 （3）其他 包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。 【注意事项】 （1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查； （2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入； （3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。
过滤分离器操作、维护、和保养规程
过滤分离器操作、维护、和保养规程 1 操作人员一般要求 1.1 操作人员必须熟知分离器的工艺流程（包括站场工艺流程）、结构、原理、性能、操作、各部件名称、代号、位置和作用。 1.2 操作人员必须熟练掌握分离器的运行参数范围及设定值，以便检查时能够及时、准确地发现和处理问题。 1.3 分离器运行操作及检查维修人员进入现场时，必须身着劳保服装，带防护镜、和劳保手套。 2 使用前的检查 2.1确认进口阀、出口阀在关闭状态，阀套式排污阀在关闭状态，确保设备和人身安全。2.2确认分离器上的压力表及差压表的值是否正确，否则进行校正或更改。 2.3检查分离器的阀套式排污阀及其手动机构是否完好（如有必要可拆开检查），否则进行处理。 3过滤分离器通气、切断操作规程 3.1 过滤分离器通气 3.1.1 确认上游管道内已清理完毕并具备通气条件； 3.1.2 确认过滤分离器快开盲板已正确关闭到位； 3.1.3 关闭所有过滤分离器设备上的阀门； 3.1.4 开启压力表针阀； 3.1.5 微启上游阀门，通气30秒，使设备内升压至0.01Mpa左右； 3.1.6 确认快盲板的安全连锁装置的阀杆已顶出就位，如未顶出，则需检查安全连锁装置，直至通气时阀杆可以顶出； 3.1.7 缓慢打开过滤分离器上游截断阀门，直至压力平稳； 3.1.8 缓慢开启过滤分离器下游截断阀； 3.1.9 开启液位计、差压计等阀门，打开差压计时要先打开平衡阀，再打开左右阀门，避免损坏差压计。 3.2 过滤分离器切断 3.2.1当有特殊情况出现需关闭过滤分离器时(紧急情况或清洗、更换滤芯时), 启用切断程序； 3.2.2 逐渐关闭过滤分离器上游截断阀，减少气流量，直至完全关闭； 3.2.3 关闭过滤分离器下游截断阀； 3.2.4 打开放空阀，排净过滤分离器内燃气； 3.2.5 打开所有排污阀，排净积存的液体及过滤出来的污物。 4 分离器运行中的检查 4.1 检查分离器的压力和温度，查看是否在分离器所要求的允许范围内，否则上报调度和值班领导，并作记录。
医院尿液标本采集和运送操作规程
文档序号：XXYY-ZWK-001 文档编号：ZWK-20XX-001 XXX医院 尿液标本采集和运送 操作规程 编制科室：知丁 日期：年月日
尿液标本采集和运送操作规程1．目的 规范尿液标本采集和运送，提高标本检测合格率。 2．范围 医院科室／部门、员工、医学学员、患者、来访者。 3．定义 无。 4．内容 4.1采集时机：宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。 4.2采集方法： 4.2.1清洁中段尿： 4.2.1.1女性：采样前用肥皂水或0. 1%的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.1.2男性：采样前用肥皂水或0. 05%-0.1010的碘伏消毒液清洗消毒尿道口，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.2耻骨上膀胱穿刺： 4.2.2.1主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。 4.2.2.2消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接
从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处刺人膀胱吸取尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3导尿管尿： 4.2.3.1直接导尿法：0.5010碘伏消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插人膀胱，先弃其前段尿液约15mL，再留取中段尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3.2留置导尿管法：采集前先夹住导尿管，采集时弃其前段尿液，消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺人导尿管（从采样口或靠近尿道的导尿管管壁）抽取10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.3.3回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，消毒吻合口后，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.4小儿收集包： 4.2.4.1对于无自控能力的小儿可采用收集包采集尿液，这种方法易污染产生假阳性。 4.2.4.2如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。 4.3标本运送：标本采集后应及时送检，室温下保存时间不应超过2小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存）。如果不能及时运送或接种，应4℃冷藏，但保存时间也不应超过8小时。
临床标本采集与运送规范
临床标本采集与运送规范 检验标本包括血液标本和其他各种体液标本。检验标本的采集是保证检验结果准确的前堤，要求规范采集并正确送检，特制定本规范。一、尿液标本的采集规范 (一)尿常规检查标本 1、使用清洁干燥容器，住院病人以清晨第一次尿为主，门、急诊患者可随时留取新鲜尿液约20ml送检。 2、尿标本应避免经血、白带、类使等混入。 3、标本留取后及时送检，不得超过1小时，以免细菌在尿中生长繁殖。 (二)尿培养标本 1.需留取清洁中断尿，注意无菌操作，避免污染。 2.病人先清洗外阴部，自行排尿，排尿过程中尿液不要中断，弃前段尿，用无 菌管接中断尿，塞好瓶塞后立即送检。 3.患者应停用抗生素三天后作尿培养检查。 4.尿中应加入防腐剂。 (三) 24小时尿标本 1、准备清洁干燥带盖的广口容器，容量为3000-5000mL。 2、病人于晨7时将尿全部排尽弃去，然后开始留尿，将24小时内历次所排尿液均留于容器中，包括次日晨7时所排最后一次尿。 3、测量尿液总量(mI)并记录，将全部尿液充分混均后，取出20- 50m1，
置于清洁干燥有盖容器中立即总检。 4、若天气炎热，可根据检验要求放入适量的防腐剂。 二、血液标本采集规范 1、理想的采集血标本的时间是早晨7: 00~8 : 00。 2、采集血液标本的真空采血管与容器注射器应干燥，针头不能过细， 3、血培养标本应在发热初期或发热高峰期采血。一般要求选择在应用抗生素治疗前采血，对已用药而不能终止的患者，也应在下次用药之前采血。 4.采血部位和数量成人首选肘部血管:正中静脉、贵要静脉、头静脉等，婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。 5、禁止在静脉输液的同侧肢体采集血标本。 6、采集血液标本时应根据检验日的及要求，准确采集标本量。 7、分装血液标本时应取下针头，将血液沿试管壁缓慢推入试管或其他相应容器。 8、对于抗凝的标本，要温和地使血液与抗凝剂混匀，防止剧烈摇动使细胞损伤。 9、标本送检:血液标本采集后应及时送检，血气分析应在30min内检测，慢则会因为全血中RBC的代谢，不断地耗02产生CO2，致使pHPO2降低PCO2 升高，而影响结果的准确性 血标本采集后应尽快送检，时问最好不超过2 h ①建立标本传送系统，加强对送检人员的培训、教育及监督。
检验标本的采集与运送规范
检验标本的采集与运送规范（护理） 一、血液常规采集与运送规范 （一）、常用真空采血管的种类 1、促凝管／分离胶促凝管（橙色／黄色）：用于医学检验中生化学、免疫学、 血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。管壁经特殊处理，防止挂壁及溶血现象。 2、枸橼酸钠１:９（蓝色）管：用于凝血机制等检查，按抗凝剂与血样体积比为 1：9设定的真空采血管，具有准确的血液量与抗凝剂总量，配比精度较高。 3、肝素钠／锂（绿色／墨绿色）管：用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定 的血液标本采集。对血液成份干扰少，不影响红细胞体积，不引起溶血。具有血浆分离速度快，与血清标本指标兼容性强等优点。 4、EDTA（紫色）管：抗凝剂为乙二胺四乙酸（EDTA，分子量292）及其盐， 适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子，钾离子，钠离子，铁离子，碱性磷酸酶，肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。 （二）多管采样时采集次序 多管采血时一般按下列顺序：凝血试验→血沉→血常规→其它。以防止凝血因子活化，或者血小板聚集而影响检验结果。 多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管或促凝管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管；d．草酸盐/氟化钠管。 （三）各种血标本的采集及注意事项 1、血常规检验标本 一般用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O) 1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽）采血。 采血注意事项： 1)应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。 2)采血后立即上下颠倒混匀（5～10次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；
油气分离器安全操作规程
仅供参考[整理] 安全管理文书 油气分离器安全操作规程 日期：__________________ 单位：__________________ 第1 页共4 页
油气分离器安全操作规程 一、油气分离器启动操作 以下各个步骤应该先以手动操作为主，当操作平稳以后再过渡到白控仪表进行全自动控制。发现液位过高，需逐渐开大放油或放水阀门，适当关小放气阀门，直到运行平稳为止。然后逐渐投用油、水室液位及压力控制仪表。 1.检查油气分离器配管、仪表、附件是否完好。仪表灵活好用，确保处于良好正常状态。 2.进液前先关闭气路、油路、水路出口阀门，打开三相分离器混合液进口阀门，开始进液。观察油、水室液位和容器压力变化情况。 3.油、水室的液面均稳定到容器直径的l／3处后，打开油路、水路出口调节阀门。观察液面及压力变化情况。 4.待压力达到最低操作压力5MPa后，打开气路出口调节阀，保持容器压力的正常稳定运行。 5.操作记录 从油气分离器进液起，操作人员应按下列要求录取资料： 刚开始进液时，人员要盯在现场，每15分钟记录一次分离器压力，分离器进口温度等。待液面平稳后，每2小时记录一次分离器压力，分离器进口油温、油室液位、水室液位、进口原油含水、出口原油含水、污水含油，每2小时记录一次油、气、水的流量。待设备运行平稳后，再转入正常生产。资料录取应做到及时、准确。 二、油气分离器的停运及检修操作 1.关闭来液进口阀门，通过排污管线将设备内的液体排空后，关闭所有阀门。 第 2 页共 4 页
2.通过气路泄压，使油气分离器处于常压状态。 3.向油气分离器内通入蒸汽或热水，焖洗24h，打开排污阀，排空分离器内液体。 4.打开分离器放空口，强制通风或自然通风24h以上。 5.检修有关部件，解决出现的问题，做好停运记录 第 3 页共 4 页
微生物检验标本采集运送程序
微生物检验标本采集运送程序 1．目的 规范微生物检验标本采集、运送，保证实验检测前标本质量。 2．范围 微生物检验标本。 3．职责 3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。 3.2 门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医师采集。 3.3 标本运送人员负责及时送到检验科细菌室，急诊检验标本和值班采集的标本由临床科室相关人员直接送到细菌室（备注：周一至周五8：00AM～5：30PM、节假日8：00AM-12：00AM 送细菌室，余下时间送门诊检验室）。 4．程序 4.1 采集标本前，采样人员根据检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作。包括核对医嘱，打印条形码，选择合适的标本容器，粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。 4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请是否一致，严防差错。 4.3 选择正确的解剖部位，采用适当的技术和设备来采集标本，注意避免自身正常菌群的污染，各标本采集技术、设备和方法参见微生物标本采集指南。 4.4 采集厌氧菌培养标本时一般情况下不要使用拭子，最好选择活检或抽吸物；厌氧菌培养标本的运输应避免接触空气，立即送检，切不可冷藏；厌氧标本采集与需氧标本采集均参见微生物标本采集指南。 4.5 收集足够量的标本，量少可能导致假期阴性结果。 4.6 在每份标本容器上贴上条形码标识，标识中包含有病人基本信息与检验项目，有时还需标明标本来源、采集部位、采集时间。 4.7 将标本放置于合适的密封容器中。 4.8 采集样品所用材料需按照废弃物处理程序处置，参见《废弃物处理程序》）。 4.9 采集标本后，运送人员及时送到检验科细菌室。 4.10 标本运送人员收集标本时，需核对标本数，用硬质、密闭防泄漏的二级容器将标本安全送抵细菌室，参见微生物标本采集指南。
【2017年整理】血标本采集运送、交接管理制度与流程
【2017年整理】血标本采集运送、交接管理制度与流程血标本采集运送、交接管理制度与流程 为落实执行《临床输血技术规范》第三章“受血者血样采集与送检”有关规定，确保血液样本的有效性，防止发生差错事故，以及便于追踪调查，特制定本制度。适用于临床输血工作中血标本的采集、标识、运输、交接、检测、保存和销毁等工作环节的管理。 一、血标本采集要求 1、人员要求:采集交叉配血、血型血样的护士必须具有有资质并接受过相关的血标本采集的培训，实习或进修护士不得进行。 2、采集血标本时要求采血护士必须认真核对受血者身份，如果患者是清醒的，应要求患者回答自己的姓名;若患者意识不清，通过询问患者的亲属确认患者身份。只有当《临床输血申请单》与患者腕带的资料完全一致时方可采集血标本，并在采血后将标有患者姓名、性别、年龄、住院号、检测项目的条形码标签贴在采血试管上并与《临床输血申请单》资料仔细核对。绝对禁止通过床头卡来核实患者身份。 二、血标本的要求: 1、ABO及RhD血型鉴定试验血标本推荐用EDTA?K2抗凝，血量不少于2m1;交叉配血、红细胞不规则抗体筛选试验血标本推荐用白盖不含抗凝剂管，血量至少5ml。 2、疑难交叉配血的血标本要求送检2管，1管抗凝(推荐EDTA?K2抗凝，另1管不抗凝，血量依照2.1要求。) 3、交叉配血标本采集要求，凡患者上次输注过血制品，再次输血仍须重新抽取交叉配血血标本以防止输血反应的发生。 4、受血者血标本采集
(1)血标本采集前应征得受血者知情同意，采血时采血人员持《临床输血申请单》和血型鉴定报告认真核对受血者身份，若患者是清醒的，应要求患者回答自己的姓名;若患者意识不清.通过询问患者的亲属核对患者身份。《临床输血申请单》的相关信息与受血者的资料完全一致时方可采集血标本，二者不一致时不得采集血标本。 (2)采集血标本时严格执行无菌操作和正确穿刺。 (3)一位采血人员不得同时采集两位以上患者用于交叉配血的血标本。 (4)血标本的标识:血标本采集后，采血人员必须于患者床边在血标本上贴上条码，内容至少包括患者姓名、性别、年龄、病案号、检测项目及血标本采集时间等信息采血人员在《临床输血申请单》上签名并注明采血时间。 5、受血者血标本的运输: 1)标识好的血标本连同《临床输血申请单》由医护人员送往输血科。 ( (2)紧急送检血标本应符合输血科紧急检测项目的相关要求，并在申请单上注明“紧急”字样。 (3)送外单位检测的血标本应有试管盖封口，同《疑难配血登记表》一起放入标本袋并密封，观察无血液渗漏后方能送检;若采取4?条件送检，应避免该血标本与冰盒等接触发生溶血。 6、受血者血标本的交接: (1)血标本送交人员与输血科人员交接血标本时按照3. 2的要求对血标本进行检查， 并仔细核对血标本信息与《临床输血申请单》是否一致等。 )确认无误后，由血标本送交人员和接收人员共同在《输血科血标本交接记录表》(2 上签名并注明送检时间。
油气分离器操作规程
编号：CZ-GC-05154 ( 操作规程) 单位：_____________________ 审批：_____________________ 日期：_____________________ WORD文档/ A4打印/ 可编辑 油气分离器操作规程 Operating procedures for oil gas separator
油气分离器操作规程 操作备注：安全操作规程是要求员工在日常工作中必须遵照执行的一种保证安全的规定程序。忽视操作规程在生产工作中的重要作用，就有可能导致出现各类安全事故，给公司和员工带来经济损失和人身伤害，严重的会危及生命安全，造成终身无法弥补遗憾。 一、操作有机械损伤的风险。 二、分离器的启用 1.检查分离器，要求闸门灵活可靠，管线严密，页面控制置保险凡尔压力表完好。冬季应打开保温设施。保证分离器能正常工作。 2.分离器仅有闸门，当分离器压力超过出油闸门下流压力时，打开出油闸门。打开出气闸门，并调节出气闸门，使分离器压力稳定在规定值。 3.调整液面控制装置，使分离器内液面宝石在适当位置。 4.检查分离器压力、温度、液面、排量情况是否正常，液面控制装置是否灵活可靠，并在分离器正常运行中定时进行巡回检查。 三、分离器安全凡尔校对 1.分离器安全凡尔每季校对一次。定压范围必须低于分离器的工作压力，根据现场设备新旧及实际工作要求解决其值。
2.倒换流程，使分离器投入正常工作状态。 3.关闭分离油、气出口闸门（如果气量大，出气闸门可不关严）。 4.注意观察分离器压力，同时调整安全凡调节螺丝，使其在分离器压力升至需要调节的压力时，安全凡尔刚好打开。 5.打开有力分离油、气出口闸门，投入正常运行。 6.上好安全凡尔阀帽，安好手柄。 7.将校正结果填入校正记录本上。 备注：如安全凡尔油赃物或沙卡，或反而密封不严时，应先清洗或用凡尔砂研磨后再校正。 这里填写您的公司名字 Fill In Your Business Name Here
标本采集与运送知识考试题全
标本采集与运送知识考试题 一、填空（20分，每空格1分） 1、采集血培养要从不同的部位获得＿2~3套＿套血培养，最好在＿5＿分钟内采集 2、从静脉取血不宜从静脉导管或静脉留置口取血，除非怀疑＿导管相关血流感染＿；若从 导管取血，必需同时从＿静脉＿取血 3、尿液标本尽量采集晨起第一次尿，且应在膀胱内停留＿6~8＿小时以上，所以夜间最 好＿少＿饮水。尿液培养标本宜立即送检，＿2＿小时内接种。 4、膀胱穿刺适应症＿有尿感表现但中断尿菌落数很低，而又难以确定感染源者＿、＿婴 幼儿、新生儿不能用导管者＿、＿怀疑有厌氧菌感染时＿,穿刺部位＿耻骨联合距脐1/3处＿穿刺针型号宜选＿19或20号＿号针头 5、冷藏保存过的尿标本不能用于＿淋病奈瑟菌＿菌培养 6、脑脊液标本送检时应注意＿保温＿，防止＿防止干燥＿ 7、胃液和胆汁采集后应立即送检，绝对不能注入＿血培养瓶＿内送检 8、疑有宫腔内感染剖宫产时在留取宫腔分泌物的同时需采集＿婴儿耳拭子＿一同送检 9、未破裂的脓肿留取标本时需同时留取＿渗出液＿和＿脓肿壁标本＿ 二、单选题（16分，每题2分） 1、一个静脉穿刺点可以采集几套血培养？（A） A、1套 B、2套 C、3套 D、N套 2、婴幼儿采血量不能超过全血量的（A） A、1% B、2% C、3% D、5% 3、75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞需要（D） A、20秒 B、30秒 C、40秒 D、60秒 4、血培养标本延迟上机的时间不能超过几小时？（D） A、2小时 B、4小时 C、10小时 D、20小时 5、留置导尿管吸取尿液可先夹住导尿但不能超过（C） A、10分钟 B、20分钟 C、30分钟 D、60分钟 6、怀疑肾结核时应连续几天采集晨尿？（B） A、2天 B、3天 C、5天 D、7天 7、以下那份尿标本可以做培养？（D）
压缩空气操作规程
1. 适用范围 本规程适用于深圳瑞华泰薄膜科技有限公司压缩空气系统的操作。 2. 组成部分 压缩空气系统是由2台压缩空气机、1台冷干机、3个空气过滤器、1个压缩空气储气罐、1套智能控制器、压缩空气管道及管道附件阀门系统组成。 3. 工具备件： 梅花或开口扳手一套、螺丝刀（一字和十字）一套、内六角扳手一套、管钳、铜棒、布手套。 4. 开机准备 4.1 检查机房的通风情况，开启窗户以防止机组运行时房间处于负压或环境温度过高引 起机组停机。 4.2 打开空气压缩机和贮气罐的排水阀，排空积水。 4.3 检查空气压缩机油位指示是否在之间，管路系统是否漏油。 4.4 检查空压机的油散热器翅片是否清洁。 4.5 用手盘动皮带轮，检查机组有无异常现象。 4.6 检查安全防护罩是否牢固。 4.7 检查贮气罐的压力表是否指向零，安全阀是否灵活可靠。 4.8 检查冷干机自动排水阀门是否开启。 4.9 检查确认空气管路阀门处于关闭状态。打开所要启动空压机出气管道上金属软管前 后球阀，确认另一台机器出口金属软管前后阀门是关闭状态。 4.10 检查各连接部位有无松动，如有要立即紧固。 4.11 打开控制柜需开启机组的电源，机组通电，按 或键，检查并设定设备运 行参数，（首次设定后直到下次工艺参数修改期间不需再设定）。 5. 运行操作 5.1 接通电源，启动空压机。 5.2 检查空压机的运行情况，检查压力继电器动作是否正常。 5.3 注意润滑油位的变化,注意吸排气的声音是否正常。 5.4 开启通向贮气罐的阀门，使贮气罐达到一定的压力。 5.5 待压缩空气储罐内的压力介于～时，打开储罐与冷干机连接主管路上阀门KF11、KF12 和冷干机进气阀门KL01与出气阀门KL02。
尿液标本采集和运送操作规程
尿液标本采集和运送操作规程 1 Women and Children ' Hospital 1.目的 规范尿液标本采集和运送，提高标本检测合格率。 2.范围 医院科室/部门、员工、医学学员、患者、来访者。 3.定义 无。 4.内容 4.1采集时机：宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿 液。 4.2采集方法： 4.2.1清洁中段尿： 4.2.1.1女性：采样前用肥皂水或0. 1%的高锰酸钾溶液 等冲洗外阴，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL 于无菌容器内。 4.2.1.2男性：采样前用肥皂水或0. 05%-0.1010的碘伏消毒液清洗消毒 尿道口，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段 尿10 - 20mL于无菌容器内。
422耻骨上膀胱穿刺： 4.2.2.1主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。 4.2.2.2消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处刺人膀胱吸取尿 液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3导尿管尿： 4.2.3.1直接导尿法：0.5010碘伏消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插人膀胱，先弃其前段尿液约15mL，再留取 中段尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3.2留置导尿管法：采集前先夹住导尿管，采集时弃其前段尿液，消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺人导尿管（从采样口或靠近尿道的导尿管管壁）抽取10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.233回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，消毒吻合口后，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.4小儿收集包： 4.2.4.1对于无自控能力的小儿可采用收集包采集尿液， 这种方法易污染产生假阳性。 424.2如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。
疑似麻疹标本采集和运送方法
疑似麻疹标本采集和运送方法 一、标本采集 （一）血标本。 1．采集出疹后28天内病例静脉血2～3ml，加入到无菌试管中，标明采集日期和病例姓名、编号。 2．有条件地区可用1500rpm/20分钟离心机分离血清。如果没有离心机，在室温下凝固分离血清，或冷藏条件下放置，直到血清完全析出。 3．在无菌条件下，将血清移至外螺旋盖带垫圈的无菌管中，避免吸到红血球。 4．血清标本运送前应在2～8℃保存，如果7天内不能运送的，应置-20℃以下保存，避免反复冻融。全血标本不能冻结。 5．填写完整的标本送检表，送检表上要注明病例编号。 6．对出疹3天内麻疹IgM抗体阴性者，可于出疹后4-28天再采集第2份血标本。 （二）病原学标本。 采集病原学标本的要求是在暴发疫情早期，至少采集2例（＜10例病例的暴发）或5例（≥10例病例的暴发）新发病例的病原学标本。 1．鼻咽拭子标本 （1）采集出疹前5天至出疹后5天的鼻咽拭子标本。 （2）使用的棉拭子和试管等应灭菌。 （3）用无菌棉拭子适度用力在鼻咽部和咽喉部擦拭，获得上皮细胞。 （4）把拭子放入有外螺旋盖并装有2ml病毒运输液的冻存管中。 （5）病毒运输液有商业成品可用。常用的病毒运输液包括： pH 7.4～7.6的Hank’s液：在90ml蒸馏水中加入10mlHank’s，
然后加入10ml牛血清和0.2ml 0.4%酚红溶液，过滤消毒。加1ml青/链霉素溶液。分装到无菌管中，于4℃储存备用。 组织培养液：DMEM液加入青/链霉素使其终末浓度分别为500～1000IU/ml和500～1000ug/ml，加入胎牛血清使其终末浓度为2％，加入谷氨酰胺至浓度为1％；加入7.5％的NaHCO3调节pH至7.4～7.6。 2．尿标本 （1）采集出疹前5天至出疹后5天内的尿标本10～50 ml。尿液应收集在灭菌容器中，2～8℃保存。 （2）尿中的脱落上皮细胞含有麻疹病毒，通常应在24小时内离心。4℃，转速500g（约1500 rpm），离心5分钟。 （3）弃上清，并用2～3ml病毒运输液悬浮沉淀，置于有外螺旋盖的冻存管中。 （4）在离心悬浮沉淀前不要冷冻尿液。 二、标本运送 （一）血标本。 1．标本采集后应在48小时内送到实验室，严防标本污染或容器渗漏。标本标签应清晰、防水。 2．标本运送时附带标本送检表，送检表上要注明病例编号。安排运送日期并通知实验室，说明标本送达时间。 （二）病原学标本。 1．鼻咽拭子、尿液等病原学标本采集后应立即置2～8℃保存。尿液离心后重悬的沉淀可在2～8℃保存。 2. 病原学标本应尽快送达省级麻疹实验室。48小时内能送达的，可在2～8℃保存，否则-70℃保存。无-70℃保存条件者，可在-20℃保存，但要在1周内送达。在-70℃条件下保存的标本，1个月内送达省级麻疹实验室。 3．标本应在2～8℃运输，严防标本污染或容器渗漏。 4．标本保存和运送过程应避免日光照射。 5．其他送检要求与血清标本相同。
油气分离器操作规程(正式)
编订：__________________ 单位：__________________ 时间：__________________ 油气分离器操作规程(正 式) Standardize The Management Mechanism To Make The Personnel In The Organization Operate According To The Established Standards And Reach The Expected Level. Word格式 / 完整 / 可编辑
文件编号：KG-AO-6287-30 油气分离器操作规程(正式) 使用备注：本文档可用在日常工作场景，通过对管理机制、管理原则、管理方法以及管理机构进行设置固定的规范，从而使得组织内人员按照既定标准、规范的要求进行操作，使日常工作或活动达到预期的水平。下载后就可自由编辑。 一、操作有机械损伤的风险。 二、分离器的启用 1.检查分离器，要求闸门灵活可靠，管线严密，页面控制置保险凡尔压力表完好。冬季应打开保温设施。保证分离器能正常工作。 2.分离器仅有闸门，当分离器压力超过出油闸门下流压力时，打开出油闸门。打开出气闸门，并调节出气闸门，使分离器压力稳定在规定值。 3.调整液面控制装置，使分离器内液面宝石在适当位置。 4.检查分离器压力、温度、液面、排量情况是否正常，液面控制装置是否灵活可靠，并在分离器正常运行中定时进行巡回检查。 三、分离器安全凡尔校对
1.分离器安全凡尔每季校对一次。定压范围必须低于分离器的工作压力，根据现场设备新旧及实际工作要求解决其值。 2.倒换流程，使分离器投入正常工作状态。 3.关闭分离油、气出口闸门（如果气量大，出气闸门可不关严）。 4.注意观察分离器压力，同时调整安全凡调节螺丝，使其在分离器压力升至需要调节的压力时，安全凡尔刚好打开。 5.打开有力分离油、气出口闸门，投入正常运行。 6.上好安全凡尔阀帽，安好手柄。 7.将校正结果填入校正记录本上。 备注：如安全凡尔油赃物或沙卡，或反而密封不严时，应先清洗或用凡尔砂研磨后再校正。 请在这里输入公司或组织的名字 Enter The Name Of The Company Or Organization Here
痰培养标本采集 与运送标准操作规程
鹤壁京立医院痰培养 标本采集与运送标准操作规程(SOP) （试行） 一、目的 正确采集、运送痰标本。 二、内容 （一）采集目的 一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。 （二）一般原则 1 采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。 2 宜采集清晨第二口痰液。 3 对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。不建议24h内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。
4 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。 （三）采集方法 1 自然咳痰法与雾化导痰法 1.1 用物准备：无菌容器、生理盐水、化验单。 1.2 核对患者床号、姓名等。 1.3 无痰或痰量极少者可用3%～5%氯化钠溶液5ml 雾化吸入约5min后留取痰液。 1.4 如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。嘱咐患者留取前摘取牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。 2 经人工气道吸引法 2.1 用物准备：负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器、化验单。 2.2 核对患者床号、姓名等。 2.3 将患者头部转向操作者一侧。
2.4 进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调节吸引器至适宜负压（成人：40.0～5 3.3kPa；小儿：＜40.0kPa）。 2.5 将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。 2.6 折叠一次性吸痰管末端，插入口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分离（使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前后需吸入高浓度氧气1～2min）。 2.7 将痰液注入无菌容器内，如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲入无菌容器内。 （四）运送与保存 应在2h内送至实验室，否则应4℃冷藏，但放置时间不可超过24h。
压缩空气操作规程
1. 适用范围 本规程适用于深圳瑞华泰薄膜科技有限公司压缩空气系统的操作。 2. 组成部分 压缩空气系统是由2台压缩空气机、1台冷干机、3个空气过滤器、1个压缩空气储气罐、1套智能控制器、压缩空气管道及管道附件阀门系统组成。 3. 工具备件： 梅花或开口扳手一套、螺丝刀（一字和十字）一套、内六角扳手一套、管钳、铜棒、布手套。 4. 开机准备 4.1 检查机房的通风情况，开启窗户以防止机组运行时房间处于负压或环境温度过高引 起机组停机。 4.2 打开空气压缩机和贮气罐的排水阀，排空积水。 4.3 检查空气压缩机油位指示是否在H.L 之间，管路系统是否漏油。 4.4 检查空压机的油散热器翅片是否清洁。 4.5 用手盘动皮带轮，检查机组有无异常现象。 4.6 检查安全防护罩是否牢固。 4.7 检查贮气罐的压力表是否指向零，安全阀是否灵活可靠。 4.8 检查冷干机自动排水阀门是否开启。 4.9 检查确认空气管路阀门处于关闭状态。打开所要启动空压机出气管道上金属软管前 后球阀，确认另一台机器出口金属软管前后阀门是关闭状态。 4.10 检查各连接部位有无松动，如有要立即紧固。 4.11 打开控制柜需开启机组的电源，机组通电，按 或键，检查并设定设备运行参数，（首次设定后直到下次工艺参数修改期间不需再设定）。 5. 运行操作 5.1 接通电源，启动空压机。 5.2 检查空压机的运行情况，检查压力继电器动作是否正常。 5.3 注意润滑油位的变化,注意吸排气的声音是否正常。 5.4 开启通向贮气罐的阀门，使贮气罐达到一定的压力。 5.5 待压缩空气储罐内的压力介于0.6MPa ～0.8MPa 时，打开储罐与冷干机连接主管路上 阀门KF11、KF12和冷干机进气阀门KL01与出气阀门KL02。 5.6 开启压缩空气通往各个系统主管道上阀门KF21、KF22、KF31、KF32，根据各个用气 点的使用状态选择开启通往个系统的阀门，通往氮气需开启阀门KG04，通往车间开
标本采集运输指南
标本采集运输指南 1目的 对检验申请、患者的准备、临床标本的采集与运输以 及样品在实验室内的传输过程进行控制，以保证检验前样 品的质量。 2 范围 适用于检验科受理的标本。 3 职责 3.1临床医师负责检验的申请。 3.2检验科主任负责组织人员编写检验标本采集手册。 3.3医护人员和检验人员均负责指导患者如何正确留 取标本。 3.4门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医生采集。 3.5医院指定的标本收集人员负责定时到临床各科室 收集标本和运输。 3.6相关检验人员负责样品在实验室内的传输。 4 工作程序 4.1检验申请 4.1.1 检验项目选择
临床医师根据病人病情需要和检验项目的敏感度、特 异性来正确选择检验项目。检验科人员可为其提供检验项 目的咨询，监督实验室服务对象选择的检验项目是否明确，实验室检验项目能否满足实验室服务对象的要求。 4.1.2检验申请表 本实验室的检验申请表包括以下内容： a)患者的唯一性标识，如门诊病人的诊疗卡号、住院 病人的住院号； b)患者的姓名、性别、年龄； c)患者就诊或住院的科别、床号； d)样品的类型和原始解剖部位，如静脉抗凝血等； e)申请的检验项目或项目的组合； f)临床标本采集日期和时间； g)实验室收到样品的日期和时间； h)申请者姓名； i)申请日期。 4.2病人的准备 为了使检验结果有效地用于临床，临床医护人员和检 验人员应了解标本收集前影响结果的非病理性因素，如饮食、标本采集时间、体位和体力活动、病人用药等对标本 采集的影响。提出要求病人予以配合和服从的内容，采取 切实措施，保证采集的标本符合疾病的实际情况。
标本采集和运送指南
第一篇血液标本采集指南 (依据二甲要求制定本采集指南) 血液标本采集法 1.血清标本测定血液中某些物质的含量（如非蛋白氮，尿素氮等）。 2.血清标本测定血清酶、脂类、电解质和肝功能等。 3.血培养标本查找血液中的病原体（如伤寒杆菌培养等）。 一般常规检验用毛细血管采血法，这种采血法由检验人员执行，血清生化及细菌培养等检验因需要较多量的血液，一般由护理人员协助采血。目前不少生化项目检验已采用微量测定法，故也可采用毛细血管采血法采标本。 （二）静脉采血法 1.用物同静脉注射法，备干燥注射器（5－10ml），7号针头，标本容器（按需要备干燥试管、抗凝管或血培养瓶），酒精灯，火柴等。 2.操作方法 （1）备齐用物，贴好标签，核对无误后按静脉穿刺法采取所需血量，立即卸下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内，切勿将泡沫注入，避免震荡，以防红细胞破裂而造成溶血。因血液中细胞的内外成分有很大差异，如细胞内钾离子浓度是细胞外的20倍，细胞内的某些酶含量也较细胞外高，如发生溶血，则直接影响检验结果的准确性。 （2）如需全血、血浆，可将血液如上法注入盛有抗凝剂的试管内，立即轻轻摇动，使血液和抗凝剂混匀，以防血液凝固。如需作二氧化碳结合力测定时，抽取血液后，应立即注入有石蜡油的抗凝试管中，注入时针头应插入石蜡油面以下，以隔绝空气，立即送验。否则血液中二氧化碳逸出，使检验结果降低，影响准确性。 （3）采集血培养标本时，应防止污染。静脉采血后，将血液注入培养瓶内，一般培养标本用肉汤培养瓶，如做伤寒杆菌培养则备胆汁培养瓶。 临床常用的培养瓶有两种，一种是密封瓶，瓶口除橡胶塞外另加铝盖密封。瓶内盛培养液约50ml，经高压灭菌，使用时将铝盖剔去，用2％碘酒和70％酒精消毒瓶盖，更换针头将抽出的血液注入瓶内，摇匀后送验。另一种是三角烧瓶，瓶口以棉花塞子及纸严密包封，使用时先将封瓶纸松开，取血后将棉塞取出迅速在酒精灯火焰上消毒瓶口，将血液注入瓶内，轻轻摇匀，再将棉塞经火焰消毒后盖好，扎紧封瓶纸送验。一般血培养取血5ml，亚急性细菌性心内膜炎病人，因血中细菌数目较少，为提高细菌培养阳性率，应取血10－15ml. （4）采血完毕，连同检验单及时送验，清理用物，归还原处。一次性注射器使用后应经消毒液浸泡集中处理。 血液标本采集所需血量视检验目的而定，各医院检验方法不同，其采血量也各异。下面介绍
油气分离器操作规程通用版
操作规程编号：YTO-FS-PD290 油气分离器操作规程通用版 In Order T o Standardize The Management Of Daily Behavior, The Activities And T asks Are Controlled By The Determined Terms, So As T o Achieve The Effect Of Safe Production And Reduce Hidden Dangers. 标准/ 权威/ 规范/ 实用 Authoritative And Practical Standards
油气分离器操作规程通用版 使用提示：本操作规程文件可用于工作中为规范日常行为与作业运行过程的管理，通过对确定的条款对活动和任务实施控制,使活动和任务在受控状态，从而达到安全生产和减少隐患的效果。文件下载后可定制修改，请根据实际需要进行调整和使用。 一、操作有机械损伤的风险。 二、分离器的启用 1.检查分离器，要求闸门灵活可靠，管线严密，页面控制置保险凡尔压力表完好。冬季应打开保温设施。保证分离器能正常工作。 2.分离器仅有闸门，当分离器压力超过出油闸门下流压力时，打开出油闸门。打开出气闸门，并调节出气闸门，使分离器压力稳定在规定值。 3.调整液面控制装置，使分离器内液面宝石在适当位置。 4.检查分离器压力、温度、液面、排量情况是否正常，液面控制装置是否灵活可靠，并在分离器正常运行中定时进行巡回检查。 三、分离器安全凡尔校对 1.分离器安全凡尔每季校对一次。定压范围必须低于分离器的工作压力，根据现场设备新旧及实际工作要求解决其值。