全血及成分血质量抽检结果趋势及不合格原因分析
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
血液检验标本不合格原因分析及处理措施血液检验在医疗诊断中占有重要地位，而血液标本不合格会影响检验结果的准确性和临床诊断的正确性。
及时分析血液检验标本不合格的原因，并采取有效的处理措施，对于医疗机构和患者来说都是非常重要的。
本文将结合实际情况，分析血液检验标本不合格的原因，并提出相应的处理措施，以期提高医疗质量，保障患者的健康。
1. 标本采集不规范血液检验的准确性很大程度上取决于标本采集的质量。
如果标本采集不规范，例如静脉血采集时没有按照规定步骤操作或者清洁消毒不到位，就容易造成标本不合格。
不合理的采血方式、采血时间和采血部位也会影响标本的质量。
2. 标本保存不当血液标本在采集后需要妥善保存，以保持其原有的质量。
如果标本保存不当，例如保存时间过长、保存温度不合适或者在保存过程中发生了泄漏，都会导致标本不合格。
3. 运送过程中受损在血液标本从采集地点到检验实验室的运输过程中，如果包装不当或者运输方式不合理，容易导致标本在途中受到损坏或污染，造成不合格。
4. 实验室操作失误无论是标本的预处理、检验过程还是结果的解读，实验室操作的每一步都需要严格遵守操作规程以保证检验结果的准确性。
如果实验室操作人员操作失误或者操作不规范，就会造成标本不合格。
5. 仪器故障血液检验通常需要借助仪器进行，如果仪器出现故障或者使用不当，就会导致检验结果不准确。
二、处理措施建议1. 加强标本采集人员的培训医护人员在进行血液标本采集时，需要严格按照操作规程进行，以确保采集的标本质量。
医院需要对标本采集人员进行专业的培训，包括采集技术、消毒步骤、标本保存等方面的指导，提高标本采集的质量。
2. 建立严格的标本保存管理制度医院需要建立标本保存管理制度，并设立专门的标本保存区域，对标本的保存条件、保存期限等进行规范，以保证标本的质量。
3. 规范标本的运输过程医院应当规范标本的运输过程，确保标本在运输过程中不会受到损坏或者污染。
应当建立相应的监管体系，确保标本的安全运输。
不合格血液检测标本因素分析及质控对策
不合格血液检测标本因素分析及质控对策不合格血液检测标本因素分析及质控对策摘要：目的探讨血液检测标本不合格的原因及解决对策。
方法对医院检验科2021年3月～2021 年12月的1118例不合格血液标本的原因进行回忆分析。
结果36 例不合格血液标本，不合格由于溶血有23 例，发生凝血5 例，由于送检延迟1例，标本错误4例，由于标本量不准2例，存血容器破裂1例。
结论在标本采集前，进行宣传教育工作，在进行采集的过程中，对于标本的采集过程应当严格执行操作规程，提高检验准确率有重要的意义。
关键词：不合格；血液标本；分析如利用对血液的化验为在进行疾病诊断提供有效地依据，前提需进行血液样本的正确采集。
血液在进行采集后都是交到化验室检验，在进行化验室检验前，经过的程序非常繁琐而且涉及到了各个科室的工作人员，所以对于血液样本的信息的准确性无形之中增加了许多的隐患【1】。
由于血液样本的准确性直接影响着血液检测的价值以及重要性，所以对于血液检测的不合格的原因非常有必要进行相对应地分析，而且还要提出非常具有质量控制的对策，为此来提高血液样本检测的准确率以及质量合格率。
1资料与方法1.1一般资料收集该院2021 年3月～2021年12月的1118 例不合格血液标本，不合格率2.7%。
样本包括血常规、凝血类、血气分析等。
所有检验标本均由专门的护理人员采集和送检。
1.2方法由检验室各个检验环节的专业负责人员，依据检查内容对送检样本进行针对性检验，依据相应标准判断样本是否合格，对不合格样本按照不同原因进行归类，并统计其数量及所占比例，针对不合格原因进行分析，提出对策。
1.3判断标准参照?全国临床检验操作规程?说明，对同一标本倘存在多个不合格现象，以主要不合格的一项作统计。
不合格标本：血液和抗凝剂比例不当、溶血、脂血、抗凝血凝固或有细小凝块、血液稀释、血标本与检测工程不符等。
同一标本有两种以上不合格时，以主要的一种不合格作统计【2】。
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
血液检验标本不合格原因分析及处理措施血液检验标本不合格原因的分析及处理措施：血液检验是临床检验中常用的一种检查方法，它可以通过检测血液中的各种指标来评估人体的健康状况。
在血液检验中，有时会出现标本不合格的情况，这可能会对检验结果的准确性产生影响。
本文将对血液检验标本不合格的原因进行分析，并提出相应的处理措施。
一、血液检验标本不合格的原因分析1. 标本采集不规范：血液检验是需要依靠血液标本来进行的，而不合格的标本采集可能导致标本质量不佳。
不规范的操作可能导致标本含有可溶性物质，如肌酸酐、尿素氮等，从而影响检测结果的准确性。
2. 标本储存条件不当：血液标本在采集后需要储存，如果储存条件不当，如温度过高或过低，可能导致细胞活性降低、细胞破裂等情况，从而影响检测结果的准确性。
3. 标本污染：血液标本是容易受到外界污染的，如果在采集、储存或运输过程中发生了污染，可能会导致标本中存在细菌、病毒等微生物，从而影响检测结果的准确性。
4. 标本量不足：血液检验需要一定的标本量才能进行相应的检测，如果标本量不足，可能会导致检测结果的稀释或者无法进行相应检测，从而影响检测结果的准确性。
二、处理措施1. 标本采集规范：确保标本采集人员熟悉标本采集的操作规范，避免不必要的污染和损害。
标本采集前应仔细询问患者的个人信息，如用药情况、病史等，以确保采集适宜的标本。
2. 标本储存条件优化：确保标本储存的环境符合要求，如储存温度适宜、避免光线直射、避免冻融循环等。
并且要注意不同检测项目的标本储存条件可能有所不同，需要根据具体要求进行储存。
3. 标本运输规范：对于需要运输的标本，应选择合适的容器进行包装，并采取适当的保护措施，避免在运输过程中发生破损或污染。
4. 标本质量控制：建立标本质量评估体系，定期对采集的标本进行质量控制检测，及时发现问题标本并采取相应处理措施，如重新采集、重复检测等。
5. 标本量要求明确：制定标本采集的标准操作规范，明确不同项目所需的标本量，并合理安排标本采集时间和顺序，以确保采集到足够的标本量。
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
血液检验标本不合格原因分析及处理措施血液检验是一种常用的临床检查手段，通过分析血液中的生化指标和血细胞参数等，可以对人体的健康状况进行评估和诊断。
在进行血液检验时，有时会出现血液检验标本不合格的情况，这会影响到检验结果的准确性和可靠性。
本文将对血液检验标本不合格的原因进行分析，并提出相应的处理措施。
血液检验标本不合格的原因主要包括以下几个方面：1. 标本采集不当：血液标本的采集是影响检验结果的重要因素之一。
如果采集过程中不注意卫生和操作规范，可能会引入细菌、血小板凝集等，影响结果的准确性。
在采集标本时，如果不合理地使用抗凝剂，也可能导致标本凝固不完全或出现溶血，影响结果的可靠性。
处理措施：进行标本采集时，需要严格按照操作规程进行操作。
采集前要注意洗手，使用无菌器具进行采集，避免污染。
采用适量的抗凝剂进行标本采集，避免过多或过少的使用。
对于患有凝血功能障碍的患者，应根据情况选择适当的抗凝剂。
2. 标本保存不当：血液标本在采集后需要妥善保存，以保证检验的准确性。
如果标本保存的条件不符合要求，如温度和时间等方面没有做好控制，可能会导致某些生化指标的改变，进而影响结果的准确性。
处理措施：采集的血液标本在采集后应立即送至实验室进行检验，避免保存时间过长。
标本保存的温度应根据不同指标的要求进行控制，一般要求在4-8℃的冰箱中保存。
对于一些需要长时间保存的标本，可以进行冰冻保存。
3. 检验过程中的误差：血液检验的过程中，可能会出现一些操作上的误差，例如使用不合适的试剂、使用过期的试剂、操作时间不准确等，都可能导致检验结果的不准确。
处理措施：检验过程中，要严格按照操作规范进行操作，并使用合适的试剂，避免使用过期的试剂。
操作过程中要掌握好操作时间，避免过长或过短。
同时要定期进行仪器校准和质量控制，确保仪器的准确性和可靠性。
4. 样本传递不及时：血液标本采集后，如果不能及时送至实验室进行检验，可能会导致标本的降解和改变，进而影响结果的准确性。
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
血液检验标本不合格原因分析及处理措施血液检验作为临床医学中的重要辅助检查方法，对诊断与治疗起着至关重要的作用。
有时候会出现血液检验标本不合格的情况，这给临床医学工作带来了困扰。
对血液检验标本不合格的原因进行分析，并提出相应的处理措施，对提高血液检验的准确性和可靠性具有重要意义。
1. 标本收集不当血液检验标本不合格的原因之一是标本收集不当。
当血液采集时，如果采集部位或者方法不正确，就有可能导致血液中混入了其他物质，或者采集的量不足，从而影响检验结果的准确性。
2. 标本保存条件不佳血液标本的保存条件对于检验结果的准确性至关重要。
如果标本保存的温度、湿度等条件不符合要求，会导致血细胞的变性、溶解等问题，从而影响检验结果的准确性。
3. 样本污染在血液检验过程中，样本的污染也是导致检验结果不合格的原因之一。
如果在采集、保存或者运送过程中，样本被外界的其他物质污染，就会影响检验结果的准确性。
血液标本在整个采集、保存、运输的过程中，都要求对其进行合理的处理。
如果在运输过程中出现温度、压力等条件不符合的情况，就有可能导致血液标本的变性、异物混入等问题。
5. 检验仪器问题有时候血液标本本身可能没有问题，但是在进行检验的过程中，仪器的故障或者使用不当也可能导致检验结果不合格。
1.加强标本采集和保存的培训对于医护人员，尤其是新入职的人员，要加强对于血液标本采集和保存的培训。
只有确保医护人员都具备了正确的标本采集、保存知识和技能，才能有效降低因为标本收集不当导致的问题发生。
2.建立标本保存标准医疗机构应当建立完善的标本保存标准，对于标本保存的环境、温度、湿度等条件进行规范，确保血液标本保存的质量。
在具体的操作实践中，医护人员应当严格按照标准操作，确保标本保存条件符合要求。
3.完善标本运输制度医疗机构应当完善标本运输的制度，确保在运输过程中标本的保存条件得到充分的保障。
在标本运输的过程中，应当加强对于温度、压力等条件的监控，确保标本不会因为运输过程中的问题而发生变性。
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
1. 血液标本采集不规范：血液标本采集时可能出现非洁净的操作，如不在洁净的环境中采集标本、采集人员不戴手套或未正确消毒等。
处理措施包括加强采集人员的培训，确保采集标本的操作规范和安全，并定期进行质量控制的培训。
2. 标本存储不当：血液标本在采集后需要妥善存储，以防止标本的变质和血细胞的破坏。
若标本在采集后长时间暴露在高温或者冷藏温度过低的环境中，标本的质量可能会受到影响。
处理措施包括采用专用的标本运输容器，并确保标本的储存条件符合要求。
3. 血液标本污染：在采集和处理标本的过程中，可能会出现标本感染的风险，如与其他标本混合、操作不当等。
处理措施包括加强标本的操作规范，确保操作人员有良好的消毒习惯，并定期进行清洗和消毒设备。
4. 标本超过保存时间：血液标本的保存时间一般是有限的，超过保存时间可能会导致血液成分的变化，进而影响检验结果的准确性。
处理措施包括及时处理标本和确保标本的保存时间不超过规定的时间。
5. 标本采集量不足：血液检验所需的标本量一般是有要求的，不足的标本量可能会导致检验结果不准确。
处理措施包括加强采集人员对标本量要求的培训，并确保采集到足够的标本量进行检验。
血液检验标本不合格的原因可能有多种，处理措施包括加强采集人员的培训、确保标本的存储和操作规范，以及定期进行质量控制和监测。
这些措施可以帮助提高血液检验标本的质量，保证检验结果的准确性。
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
血液检验标本不合格的原因有很多种，主要有以下几点：
1. 标本采集不规范：标本采集时，如果操作不当、不干净或使用不合适的管子或试剂，都可能导致标本不合格。
采集血液时没有充分清洁采血点，不按规定的步骤进行采集，或使用已过期的采血管。
2. 标本处理不当：标本在采集后，如果没有及时处理或处理不当，也可能导致标本
不合格。
标本在采集后没有及时送到实验室进行分析，或者在分析过程中没有按照标准程
序进行处理。
3. 标本保存条件不合适：标本在采集后，如果保存条件不合适，也会导致标本不合格。
血液标本保存时间太长，温度不稳定等情况。
针对这些问题，可以采取以下处理措施：
1. 加强标本采集的规范性：对标本采集的人员进行培训，提高他们的操作技能和操
作规范性，确保采集时按照标准的操作流程进行，使用干净的设备和试剂进行采集。
2. 加强标本处理的及时性：实验室和采集人员之间要建立良好的沟通和协作机制，
及时将采集的标本送到实验室进行处理，确保标本处理的及时性。
3. 提供合适的保存条件：实验室要有合适的设备和环境来保存标本，确保标本的保
存温度稳定，避免标本因温度变化而导致的不合格。
4. 定期检查和维护设备：定期对设备进行检查和维护，确保设备的正常运行，避免
因设备的问题导致标本不合格。
血液检验标本不合格的原因有很多，需要从标本采集、处理和保存多个环节加强管理，通过规范操作流程、提高操作人员的技能和保证设备的正常运行，最大限度地减少标本不
合格的情况发生。
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
血液检验标本不合格原因分析及处理措施血液检验是临床医学中常见的检验项目，用于帮助医生诊断疾病、评估治疗效果，也是了解人体健康状况的重要手段。
在进行血液检验时，标本的质量对检验结果至关重要。
有时候血液检验标本会出现不合格的情况，这可能会对检验结果产生误导，影响患者的诊断和治疗。
对血液检验标本不合格的原因进行分析，采取相应的处理措施是非常重要的。
1. 标本采集不当标本采集时，如果不按照规范操作，可能会导致血液检验标本不合格。
采血时没有用消毒酒精擦拭皮肤，导致污染；采血后没有及时混合抗凝剂，导致凝固等。
这些操作不当会影响血液标本的质量。
2. 标本保存不当在标本采集后，若没有合理储存，也容易导致标本不合格。
标本保存温度过高或过低，导致血清或血浆成分发生变化；保存时间过长，导致血液成分降解等。
3. 标本量不足血液检验所需的标本量是有要求的，如果采集的标本量不足，可能会导致检验无法进行或者结果不准确。
4. 标本混混浊标本在采集过程中，如果受到外部污染或者混入其他物质，就会导致标本混浊，影响检验结果的准确性。
1. 重新采集标本一旦发现血液检验标本不合格，应该立即重新采集标本。
在重新采集标本时，要确保按照规范操作，避免出现同样的问题。
2. 规范操作规程医务人员在进行标本采集、保存、运输等操作时，应该严格按照操作规程进行。
只有规范的操作才能保证标本质量。
3. 加强培训医务人员应该定期接受相关培训，提高对血液检验标本质量的重视，避免因为操作不当而导致标本不合格。
4. 规范储存对于采集到的血液检验标本，要进行规范储存，保持恰当的温度和保存时间，避免由于标本保存不当而导致不合格。
5. 加强质量控制医疗机构应该建立健全的质量控制体系，对血液检验标本采集、保存、检验等环节进行严格控制，确保每一个步骤都符合质量要求。
6. 定期检查定期对血液检验标本进行检查，发现问题及时处理，确保每一个标本都具有良好的质量。
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
血液检验标本不合格原因分析及处理措施血液检验是临床医学中常见的检测手段，可以辅助医生诊断和治疗疾病。
血液检验标本不合格是影响检验结果准确性的主要问题之一。
本文将分析血液检验标本不合格的原因，并提出相应的处理措施，以保证检验结果的准确性。
1.杂质污染：血液检验标本的污染情况会影响检测结果。
杂质如空气、灰尘、细菌、真菌、病毒等都可能污染血液样本。
2.采血不当：采血时，医护人员需要采取严格的消毒措施，同时也需要选择合适的针头和管子。
如果采血不当，极易造成血样的污染，从而影响检测结果的准确性。
3.血样质量不佳：血样质量不佳可能是由于采血量过少、采血速度过快、血液凝固等原因造成的。
不良的血样质量会直接影响检测结果的准确性。
4.储存条件不良：血液样本需要在一定时间内储存，如果储存条件不良，比如温度过高或过低、日光直射等，都可能导致血样的变质，从而影响检测结果的准确性。
5.检测仪器故障：现代化的诊断仪器对检测结果具有直接影响，仪器故障、误差等都可能造成检测结果不准确，使检测结果失去参考价值。
二、处理措施1.杂质污染：在采血和检测的各个环节采取严格的卫生措施，如佩戴手套、使用独立的采血用具和转移用具，确保采血和检测过程中的无菌操作，避免污染。
2.采血不当：对采血人员进行专业培训，提高采血技能和操作规范，确保血样采血过程正确无误，避免造成血样污染。
3.血样质量不佳：提高采血人员工作质量意识，在采血过程中尽量避免影响血样质量的因素，如采集足够的血液，缓慢稳定的采集速度，以及使用合适的采血器具等。
4.储存条件不良：建立完善的血液样本储存管理制度，规定储存条件，保证血样储存温度处于规定的范围之内。
对于采的血样，要及时送达检测地点，尽快进行检测，避免血样的过度储存时间。
5.检测仪器故障：对检测仪器进行定期维护、检修和校准，保持仪器的稳定性和准确性。
同时，对仪器的操作人员进行专业培训，提高操作水平，减少误差的发生。
总之，采取正确的处理措施，避免血液检验标本不合格，可以提高检测结果的准确性，为病人的治疗提供更加有价值的参考。
血液检验标本不合格原因分析及处理措施
血液检验标本不合格原因分析及处理措施1. 引言1.1 研究背景血液检验是临床诊断中常见的检查项目之一，可以通过分析血液中的成分、细胞数量和形态等信息来帮助医生了解患者的健康状况。
由于标本不合格可能会导致检验结果的不准确性，影响到临床诊断和治疗。
对血液检验标本不合格的原因进行分析，并制定相应的处理措施具有重要意义。
在临床实践中，血液检验标本不合格的原因多种多样，如采集过程不规范、运输条件不合适、保存方式不当等。
这些问题的存在不仅会延长患者的诊断时间，还会增加医疗成本，影响医疗质量和安全。
深入研究血液检验标本不合格的原因，提出有效的处理措施，可以提高检验的准确性和可靠性，为临床诊断提供更加可靠的依据。
1.2 问题意义血液检验是临床医学中常见的检查项目之一，可以为医生提供疾病诊断和治疗方案制定的重要参考依据。
血液检验标本不合格的情况时有发生，这不仅会导致检验结果的不准确性，还会影响医生的诊断和治疗决策，给患者带来风险和不便。
血液检验标本不合格的问题意义主要体现在以下几个方面：1. 影响医疗质量：血液检验结果直接关系到患者的健康状况和治疗效果，不合格的标本会导致诊断错误和治疗不当，影响医疗质量。
2. 浪费医疗资源：不合格的血液检验标本需要重新采集和检验，会增加医疗机构的成本和耗费医疗资源。
3. 降低医疗效率：血液检验标本不合格需要重新采集和处理，会延长患者的诊疗时间，降低医疗效率。
4. 增加患者痛苦：重新采集血液标本会给患者带来额外的痛苦和不便，尤其是对于一些特殊人群如儿童、老年人和患有血液疾病的患者来说，更是一种身体和心理的折磨。
研究血液检验标本不合格的原因分析及处理措施具有重要的现实意义，有助于提升医疗质量，节约医疗资源，提高医疗效率，减少患者痛苦。
1.3 研究目的研究目的旨在深入探讨血液检验标本不合格的原因，并提出相应的处理措施，从而提高血液检验的准确性和可靠性。
通过分析不合格标本的具体原因，可以找出存在的问题和改善的空间，进一步完善相关的管理措施和操作规范。
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全血及成分血质量抽检结果趋势及不合格原因分析刘蕾，王媛，刘玉振(河南省红十字血液中心,河南郑州450012)摘要:目的对全血及成分血抽检结果进行趋势及不合格分析,为采供血过程提供纠正预防措施提供依据。
方法利用Excel 对资料数据绘图并进行趋势分析。
结果全血血细胞比容最低0.30;悬浮红细胞比容抽检合格率为79.2%,悬浮红细胞比容最低0.42,不同厂家的采血袋悬浮红细胞血比容合格率差异有统计学意义(P <0.05)。
去白悬浮红细胞前3批白细胞残留量有整体偏高趋势,合格率为50%,后3批合格率为100%;冷血过滤残留白细胞明显低于温血过滤(P <0.05)。
冷沉淀Ⅷ因子4月份和10月份抽检合格率较低,冬季合格率较高。
结论严格执行采血前的Hb 筛查工作,在离心制备时尽可能将血浆分离出,提高悬浮红细胞血比容合格率;滤除白细胞热过滤改为冷过滤,残留白细胞合格率明显上升;加强采血及血液制备环境温度的控制,确保Ⅷ因子含量不失活。
关键词：全血;成分血;质量抽检;趋势分析;不合格中图分类号：R457.1文献标识码：A文章编号：1674-1129(2019)04-0757-03DOI :10.3969/j.issn.1674-1129.2019.04.065·输血与检验·图1全血和悬浮红细胞血比容趋势表1不同厂家采血袋悬浮红细胞血比容结果比较厂家南格尔威高合计袋数比容合格率%1001002000.563±0.0330.499±0.0290.516±0.0411007082注:两者有显著差异P <0.05(t =13.416)。
图2去白细胞悬浮红白细胞残留白细胞趋势通过对郑州市血液质量抽检结果进行回顾性数据分析,了解血液质量抽检结果变化趋势,为决策者采取相应的纠正预防措施,保证临床用血安全有效提供参考,报告如下。
1材料与方法1.1材料资料来源于2014年1月1日-2017年12月31日全血及成分血质量抽检结果;采血袋(山东威高和四川南格尔);全自动血细胞计数仪(日本Sysmex K-4500);全自动血凝仪(日本Sys ⁃mex CA -500);显微镜(德国徕卡LEICADM6000B )。
1.2统计方法利用Excel 对资料数据绘图并进行趋势分析[1];使用SPSS 17.0统计软件计算P 值。
2结果2.1血细胞比容2.1.1血细胞比容趋势全血血细胞比容最低0.30,最高0.43,平均0.37。
悬浮红细胞比容抽检合格率为79.2%,悬浮红细胞比容最低0.42,最高0.61,平均0.51。
见图1。
2.1.2不同厂家采血袋悬浮红细胞血比容比较使用不同厂家400ml 的采血袋,但抗凝剂含量不一样,山东威高是100ml ,四川南格尔是56ml ,各采100袋,离心分离相同的血浆后,制备成悬浮红细胞进行血比容测定,见表1。
2.2白细胞残留量2.2.1白细胞残留量趋势去白悬浮红细胞前3批12袋,白细胞残留量合格率为50%,白细胞残留量最低2.31×1011/袋,最高10.1×1011/袋;后3批12袋,白细胞残留量合格率为100%,白细胞残留量最低0.20×1011/袋,最高1.24×1011/袋。
残留白细胞前3批有整体偏高趋势。
见图2。
2.2.2白细胞残留量不合格原因采用当日过滤型滤白滤器,采血后60袋400ml 全血立即放入4±2℃冰箱中,当血液温度降至22±2℃(温血),此时拿出30袋过滤,余下30袋当温度降至4±2℃(冷血)时拿出进行过滤,过滤后在24h 检测白细胞,保存期末检测溶血率,见表2。
2.3Ⅷ因子含量2.3.1Ⅷ因子含量趋势新鲜冰冻血浆Ⅷ因子含量抽检合格率为81.3%,Ⅷ因子含量最低61IU/100ml (0.61IU/ml ),最高127IU/100m (1.27IU/ml ),平均83IU/100ml (0.83IU/ml )。
冷沉淀Ⅷ因子4月份抽检(第13-16袋)和10月份抽检(第41-44袋)有2个时间段Ⅷ因子含量下降趋势。
见图3。
2.3.2冷沉淀Ⅷ因子含量不合格原因冷沉淀Ⅷ因子制备环境温度。
改进前(2014-2015年):本单位中央空调每年4月底和10月初例行检修,成分室室温个别日达30℃左右。
改进后(2016-2017年):成分室安装应急备用空调,保持室温在20℃左右。
每袋冷沉淀有400ml 全血制备成的,检测结果见表3。
3讨论悬浮红细胞比容合格率偏低原因:一是全血比容偏低,图1显示极个别全血比容偏低(0.30),因此,严格执行初筛化验的血红蛋白筛查规程;二是血浆残余太多,表1显示采400ml 的全血的采血袋,抗凝剂含量有100ml (威高)和56ml (南格尔)两种,如果离心后分离出相同的血浆,则含抗凝剂少的悬浮红细胞血比容合格率明显高于含抗凝剂多的(P <0.05),因此,增加离心力和时间[2-5],将离心时间12min (离心力3840g )改为20min ,同时将采血3联袋改为4联袋,将多余的血浆尽量挤出,制成200ml 、100ml 、50ml 的血浆。
图2显示去白悬浮红细胞残留白细胞前3批有整体偏高趋势,后3批抽检正常,因为前3批为热过滤,后3批改为冷过滤,表2进一步实验验证冷血过滤残留白细胞明显低于温血过滤(P <0.05),且保存期末溶血率合格。
因为经过冷藏处理的血液的白细胞变形性低容易被阻挡到[6],整改措施为,购置几台大冰箱,采血后全血应立即放入冰箱,在温度为2℃~6℃的情况下保存4h 以上。
即用于滤白的血液必须保证温度能达到2℃~6℃,并且整袋全血温度均匀。
考虑当日过滤,能够制备新鲜冰冻血浆,正确选择过滤时机及温度,可减少白细胞去除效果。
表3及图3显示改进前的冷沉淀Ⅷ因子含量4月份和10月份抽检合格率较低,冬季合格率较高,改进后合格率明显升高。
其原因一是本单位中央集中空调每年4月底和10月初例行检修,成分室室温个别日达30℃,超过成分制备的环境温度要求,建议成分室安装应急备用空调;二是新鲜冰冻血浆Ⅷ因子含量合格率也不算太高(81.2%),因此加强采血及血液制备环境温度以及制备冷链温度的控制[7-9],对于外出采血时间过长,每天13点前将血液先送一部份血液到血站,做到先采先制备[10]。
温度袋数计数(×106/袋)温血(22±2)℃冷血(4±2)℃合计3030605.26±2.390.60±1.081.99±2.66合格率(%)溶血率(%)66.6796.6781.670.12±0.070.21±0.740.18±0.62表2不同的过滤温度对残留白细胞和溶血率的影响残留白细胞注:温血与冷血过滤,残留白细胞有显著差异P <0.05(t =9.450)。
图3新鲜冰冻血浆和冷沉淀Ⅷ因子含量趋势月份ⅧIU/袋合格率%123456789101112平均109±10.8147.3±41.893.4±29.175.2±16.885.2±24.9102.6±24.3135.9±53.2100.1±36.4104.2±26.178.9±8.1136.1±25.1135.1±25.8106.2±36.3100.075.0100.050.075.075.0100.075.083.366.7100.0100.083.3ⅧIU/袋合格率%113.6±31.2165.0±74.893.4±8.8105.3±36.896.0±45.1114.0±35.9135.0±58.1128.3±50.992.8±26.9103.1±27.7107.8±14.6128.9±15.9119.7±46.2100.0100.0100.0100.075.075.0100.075.0100.0100.0100.0100.093.8表3冷沉淀Ⅷ因子制备环境温度改进前后检测结果改进前改进后[4]陈杰,胡娜,苏斌涛,等.系统性红斑狼疮患者血清中Tim-1蛋白水平及其基因多态性[J].中国免疫学杂志,2014,30(1):114-116.[5]中华医学会肾脏病学分会,临床诊疗指南肾脏病学分册[M].人民卫生出版社,2011,6(4):27-29.[6]姚舒蕾,高丽芳,王晨,等.IgA 肾病牛津分型与Hass 分型临床意义的比较研究[J].中国药物与临床,2013,13(9):1124-1126.[7]高原,杨林,杨万霞,等.胰岛素抵抗对IgA 肾病肾小管间质病变的影响及作用机制[J].广东医学,2018,39(16):2495-2497.[8]江艳,黄珍伦.以肾病综合征为临床表现的原发性IgA 肾病临床特征分析[J].检验医学与临床,2017,14(12):1770-1772.[9]喻信林.肾小球内皮细胞的损伤机制研究进展[J].实验与检验医学,2018,36(4):463-466.[10]Hamilton P ,Kanigicherla D ,Hanumapura P ,et al.Peptide GAM immunoadsorption therapy in primary membranous nephropathy(PRISM):Phase II trial investigating the safety and feasibility ofpeptide GAM immunoadsorption in anti ‐PLA2R positive primary membranous nephropathy [J].J Clin Apheresis ,2017,33(3):283-290.[11]孟伟,姜健,沈沛成,等.益气固本调免方对IgA 肾病患者外周血TGF-β1表达的影响[J].西部中医药,2018,31(4):1-4.[12]任荣,张艳,张静,等.IgA 肾病大鼠肾Smurf2与TGF-β1表达的关系及其意义[J].中国临床研究,2018,31(6):721-724.[13]王莹,杨军平,杨小军,等.胸腔积液中巨噬细胞细胞因子的表达[J].实验与检验医学,2018,36(6):39-41.[14]孔凌云,蒋更如.不同肾功能进展IgA 肾病患者血清IgA1对人肾小球系膜细胞增殖及TGF-β1表达的影响[J].上海交通大学学报(医学版),2018,38(6):647-652.[15]Li L ,Ma Y ,Xu Y ,et al.TIM-3expression identifies a distinctive PD-1+follicular helper T cell subset ,with reduced interleukin 21production and B cell help function in ovarian cancer patients[J].Int Immunopharmacology ,2018,57(4):139-146.[16]王缨,胡贵荣,李弼民.IgA 肾病大鼠肾组织中T 细胞免疫球蛋白与黏蛋白域基因1的表达和意义[J].中国现代医学杂志,2017,27(19):12-16.[17]岳佳,韩子明,韩玫瑰.血清IL-33和Tim-1在过敏性紫癜及紫癜性肾炎患儿中的检测意义[C]//全国儿科中西医结合学术会议,2015,4(5):390-390.[18]孟祖东,杜天平,王玉.小柴胡汤治疗系统性红斑狼疮临床疗效及对血清TIM-1、TIM-3水平的影响[J].陕西中医,2017,38(11):1544-1545.[19]Wang J ,Qiao L ,Hou Z ,et al.TIM-1Promotes Hepatitis C Virus Cell Attachment and Infection[J].J Virol ,2017,91(2):e01583-16.[20]王缨,胡贵荣,李弼民.IgA 肾病大鼠肾组织中TIM-1、IFN-γ、IL-4表达的变化及意义[J].广东医学,2017,38(4):505-508.(收稿日期2019-04-23;修回日期2019-06-20)（上接第753页）参考文献[1]余平,黄丽红.江西省血液中心2002-2011年临床供血总量趋势分析[J].中国卫生统计,2013,30(4):563-564.[2]张淑琴,温涛,赵君.不同方法制备的红细胞悬液血比积与容量的探讨[J].临床输血与检验,2011,13(1):76-77.[3]陈冬梅,宋美兰,冯博,等.悬浮红细胞容量与血细胞比容的质控分析[J].北京医学,2014,36(4):316-320.[4]戴庆昭,李进才,陈骥,等.不同离心条件对悬浮红细胞比容影响的研究[J].中国输血杂志,2009,22(2):132-133.[5]何红.全血及悬浮红细胞质量抽检分析[J].四川医学,2008,29(3):350-351.[6]孟莉,黄庆香.影响去白细胞滤器效果的因素分析[J].中国输血杂志,2015,28(9):1131-1133.[7]李莹,杨剑,黄丽红,等.三种方法批量全血制备的血浆产品质量分析[J].实验与检验医学,2016,34(2):180-182.[8]徐蓓,邱颖婕.趋势分析方法在血液成分质量控制中的探索和应用[J].临床输血与检验,2015,17(2):167-170.[9]石洁,贾璐,段志倩,等.血液成分质量控制关键指标的趋势分析[J].中国输血杂志,2017,30(9):1057-1059.[10]尤榕,黄丽红,黄智君.不同分离制备时间对凝血因子Ⅷ含量的影响探讨[J].实验与检验医学,2014,32(6):735-747.(收稿日期2018-05-15;修回日期2019-06-13)。