转录组学研究的可视化分析

合集下载

转录组分析流程

转录组分析流程

转录组分析流程转录组学是研究生物体在特定时期或环境中所有mRNA的总体,通过对转录组的分析可以揭示基因的表达模式、功能及调控机制,对于疾病的诊断、治疗及基因工程等领域具有重要意义。

转录组分析流程是对转录组数据进行处理和解读的过程,下面将介绍转录组分析的一般流程。

1. 数据获取。

转录组数据通常来源于高通量测序技术,包括RNA-seq和单细胞RNA-seq等。

首先需要进行样本采集和RNA提取,然后进行测序实验,获取原始的测序数据。

2. 数据预处理。

原始测序数据通常包含低质量序列、接头序列和重复序列等,需要进行质量控制和过滤,包括去除接头序列、低质量序列和重复序列,得到高质量的测序数据。

3. 序列比对。

将高质量的测序数据与参考基因组进行比对,确定每个序列在基因组中的位置,得到比对结果,为后续的基因表达定量和差异表达分析奠定基础。

4. 基因表达定量。

通过对比对结果进行基因表达定量,包括计算基因的读数、FPKM(每百万读数下的每个基因的预期碱基数)或TPM(每百万读数下的每个基因的转录本数),得到每个基因在不同条件下的表达水平。

5. 差异表达分析。

对不同条件下的基因表达水平进行比较,筛选出差异表达的基因,通过统计学方法进行显著性分析,找出在不同条件下表达水平显著变化的基因。

6. 功能注释。

对差异表达的基因进行功能注释,包括GO(Gene Ontology)富集分析、KEGG(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes)通路分析等,确定差异表达基因的功能和通路富集情况。

7. 数据可视化。

通过绘制热图、火山图、基因表达曲线等图表,直观展示转录组数据的分析结果,帮助研究人员更好地理解和解释数据。

8. 结果解释。

最后根据分析结果,解释不同条件下的基因表达模式和功能富集情况,为后续的生物学实验和功能研究提供重要参考。

总结,转录组分析流程是一个系统的、复杂的过程,需要对原始数据进行处理、分析和解释,通过转录组分析可以揭示基因的表达模式和功能,为生物学研究和应用提供重要信息。

转录组分析报告

转录组分析报告

转录组分析报告介绍转录组分析是研究基因组中转录过程的研究领域。

通过转录组分析,我们可以了解到在特定条件下细胞中正在转录的所有基因。

这些信息对于理解细胞功能、疾病发展以及生物技术的开发都非常重要。

本报告将介绍转录组分析的一般步骤和常用方法。

步骤一:实验设计转录组分析的第一步是设计实验。

在这个步骤中,我们需要确定要研究的样本类型、实验条件和重复次数。

合理的实验设计可以最大程度地减少误差,并提高结果的可靠性。

步骤二:RNA提取在转录组分析中,我们需要从样本中提取RNA。

RNA是细胞中转录的产物,它可以反映细胞中正在表达的基因信息。

RNA提取的质量和纯度对后续的转录组分析非常重要。

常用的提取方法包括酚氯仿法、磁珠法和硅胶膜法等。

步骤三:RNA测序RNA测序是转录组分析的核心步骤之一。

通过RNA测序,我们可以将RNA样本转化为对应的DNA序列,并确定每个基因的表达水平。

常见的RNA测序技术包括Sanger测序、二代测序和三代测序等。

二代测序技术如Illumina和Ion Torrent等已经成为转录组分析的主流技术。

步骤四:数据预处理RNA测序会产生大量的原始数据,这些数据需要进行预处理以去除噪音和提高数据质量。

数据预处理包括去除低质量的reads、去除接头序列、去除重复序列和过滤低表达基因等。

预处理后的数据可以为后续的分析提供可靠的基础。

步骤五:差异表达基因分析差异表达基因分析是转录组分析的重要环节之一。

通过比较不同条件下基因的表达水平,我们可以找到与特定条件相关的差异表达基因。

常用的差异表达基因分析方法包括DESeq、edgeR和limma等。

这些方法可以帮助我们发现与特定条件相关的生物学过程和信号通路。

步骤六:功能注释和富集分析一旦确定了差异表达基因,我们可以对这些基因进行功能注释和富集分析。

功能注释可以帮助我们了解差异表达基因的功能和参与的生物学过程。

而富集分析可以帮助我们发现差异表达基因在特定功能和通路中的富集情况。

有参考基因组的转录组生物信息分析模板

有参考基因组的转录组生物信息分析模板

有参考基因组的转录组生物信息分析模板转录组是指一些特定生物体在特定时期和特定环境下,在其中一种特定的组织或细胞中所表达的所有基因的mRNA的总和。

转录组测序技术的发展使得我们能够全面了解基因的表达水平和差异,并帮助我们深入探索特定生物体的功能和特性。

本文将为您提供一个转录组生物信息分析的模板,以帮助研究者进行转录组数据分析。

一、质检与预处理1. 检查转录组测序数据的质量,使用FastQC等工具查看测序质量报告。

2. 根据报告,去除测序中存在的接头污染、低质量碱基,以及过短或过长的reads。

3. 使用Trimmomatic等工具进行reads修剪和过滤,保留高质量的reads。

二、比对到参考基因组2. 使用比对软件如Bowtie2、STAR等将reads比对到参考基因组上。

3. 根据比对结果生成BAM/SAM文件,并使用Samtools等工具对文件进行排序和索引。

三、基因表达量估计1. 使用HTSeq、featureCounts等软件对比对结果进行基因表达量估计,生成基因计数矩阵。

2. 将基因计数矩阵导入R或Python环境,进行表达量分析和统计。

3. 使用DESeq2、edgeR等软件对不同样本之间的差异表达基因进行筛选和统计。

四、差异表达基因分析1. 使用DESeq2、edgeR等软件进行差异表达基因分析,确定在不同条件下表达显著变化的基因。

2.使用热图、散点图、MA图等工具可视化差异表达基因的分布和表达模式。

五、注释分析1. 使用生物信息学工具如DAVID、enrichR等进行功能富集和通路分析,找出差异表达基因所涉及的生物学过程和通路。

2. 利用基因本体论(Gene Ontology)和KEGG数据库等进行差异表达基因的功能注释。

六、蛋白质互作网络分析1.将差异表达基因输入蛋白质互作数据库如STRING等,构建差异表达基因的蛋白质互作网络。

2. 使用Cytoscape等工具进行蛋白质互作网络的可视化和分析。

使用生物大数据技术进行转录组分析的实用指南

使用生物大数据技术进行转录组分析的实用指南

使用生物大数据技术进行转录组分析的实用指南转录组分析是研究细胞内转录过程的重要手段,它可以帮助我们全面了解基因表达的调控机制以及某一生物条件下的基因表达模式。

随着生物大数据技术的快速发展,转录组分析已经成为了生物学研究中的一个关键领域。

本文旨在提供一份使用生物大数据技术进行转录组分析的实用指南,帮助读者快速掌握这一技术。

1. 数据获取转录组分析的第一步是获取所需的转录组数据。

目前,公共数据库如NCBI Gene Expression Omnibus (GEO)、European Nucleotide Archive (ENA) 和 Sequence Read Archive (SRA)等提供了大量的转录组数据。

可以通过这些数据库获取到不同物种、不同组织和不同条件下的转录组数据。

2. 数据预处理获得转录组数据后,需要进行一系列的预处理步骤。

这些步骤通常包括去除低质量序列、去除接头序列、去除污染序列、质量修剪、序列比对等。

常用的预处理工具有Trimmomatic、FastQC和Bowtie等。

3. 数据分析在数据预处理完成后,接下来进行转录组数据的分析。

转录组数据分析的目标是确定差异表达基因、寻找调控因子以及功能注释等。

下面是常见的转录组数据分析方法:3.1 差异表达基因分析差异表达分析是转录组分析中的关键环节,它可以帮助识别在不同条件下表达水平差异明显的基因。

常用的方法有DESeq2、edgeR和limma等。

这些方法可以通过统计学模型来确定差异表达基因,并生成差异表达基因列表。

3.2 富集分析富集分析是转录组数据分析的一个重要环节,它可以帮助确定差异表达基因的富集功能及通路。

常用的富集分析工具包括GOseq、KEGG和GSEA等。

这些工具可以根据差异表达基因列表,查询数据库中所包含的功能注释信息并进行富集分析。

3.3 基因网络分析基因网络分析可以帮助研究人员从整体上了解基因间的相互作用关系。

常用的基因网络分析工具有STRING、Cytoscape和GeneMANIA等。

生物信息学中的转录组测序数据分析流程解析

生物信息学中的转录组测序数据分析流程解析

生物信息学中的转录组测序数据分析流程解析转录组测序是一种基于高通量测序技术的生物学研究方法,用于研究特定物种在特定生理或环境条件下所产生的所有转录本(mRNA)。

转录组测序数据分析是将原始的测序数据转化为有意义的生物学信息的过程。

本文将解析转录组测序数据分析的基本流程。

1. 数据质量控制(Quality Control,QC)数据质量控制是在转录组测序数据分析中非常重要的一步,它能够及早发现并剔除测序过程中产生的低质量测序数据,保证后续分析的准确性。

常用的QC工具包括FastQC和Trimmomatic。

FastQC用于检查测序数据的质量分布情况,发现可能存在的测序错误和污染问题。

Trimmomatic则用于去除低质量的测序片段和接头,提高数据的质量。

2. 数据比对数据比对是将测序数据与参考基因组进行比对的过程。

比对的目的是将测序片段精确地定位到基因组上,并获得每个基因组区域的覆盖度和深度等信息。

常用的比对工具包括Bowtie2和TopHat。

Bowtie2是一种基于Burrows-Wheeler Transform的短序列比对工具,适用于低错配率的比对。

TopHat则是一种用于对转录组数据进行比对和注释的工具,可以检测新基因和外显子剪接事件。

3. 定量分析定量分析是研究不同转录本在不同条件下的表达水平差异的过程。

常用的定量工具包括Cufflinks和HTSeq。

Cufflinks是一种用于估计转录本表达水平和发现新的转录本的工具。

它可以根据RNA-Seq数据拼接转录本,并计算不同基因或转录本的表达水平。

HTSeq则是一种用于计算不同基因的读数的工具,读数可以用来估计基因的表达水平。

4. 差异分析差异分析是研究在不同处理条件下,基因或转录本的表达水平是否存在显著差异的过程。

常用的差异分析工具包括DESeq2和edgeR。

DESeq2是一种基于负二项分布模型的差异表达分析工具,它可以对转录本进行差异分析,并计算基因的表达水平在不同条件下的折叠变化。

单细胞转录组学的研究及应用

单细胞转录组学的研究及应用

单细胞转录组学的研究及应用随着科技不断发展,单细胞转录组学研究逐渐成为热门领域。

单细胞转录组学是指通过对单个细胞进行转录组测序来研究基因表达的方法,它能够提供高分辨率的分析,为生物学、医学等多个领域带来了新的突破。

本文旨在探讨单细胞转录组学的研究及应用方向。

一、单细胞转录组学的研究手段单细胞转录组学的研究手段主要有以下几个步骤:1.单细胞分离:将细胞进行单个染色体分离,取得纯净的单个细胞。

2.细胞裂解:对单个细胞进行裂解,得到RNA,通过反转录反应合成cDNA。

3.建立文库:对cDNA进行扩增,建立转录组文库。

4.测序:通过Illumina、PacBio等测序技术,将文库进行测序。

5.生物信息学分析:对测序结果进行生物信息学分析,包括选取差异表达基因、聚类分析等。

以上步骤能够获得单个细胞的表达谱信息。

在这个过程中,需要注意的是如何有效地分离单个细胞。

常用的方法包括流式细胞术、微操作、单细胞机械分离等。

针对前述中的每一步骤,不同的实验室和研究方向会有不同的优化方案。

二、单细胞转录组学的卓越特点单细胞转录组学的优越特点在于其具备高分辨率和高灵敏度。

首先,单细胞转录组学能够抛开芯片或测序技术的局限性,实现单个细胞的表达量检测,能够深入分析细胞的表达谱、转录组等。

其次,由于在细胞水平进行分析,能够克服组织中不同细胞类型所混杂的影响,以及自由基等因素的干扰。

此外,单细胞转录组学也具备多样性,可以应用于不同的单细胞类型和不同的应用场景。

例如,在生物学的研究中,可应用于对于不同发育阶段、不同组织和器官中的细胞组成和结构、细胞形态和表现等不同层次的研究;在医学上可应用于癌症、神经系统疾病、自身免疫性疾病等疾病初期诊断以及药物治疗的研发等。

三、单细胞转录组学的应用前景随着单细胞转录组学技术的逐渐成熟,其应用范围逐渐扩展。

下面举几个例子:1.肿瘤研究单细胞转录组学技术能够将癌症细胞、免疫细胞及周围组织间的相互作用可视化。

单细胞转录组学umap模型可视化簇

一、概述在生物学研究中,单细胞转录组学一直是一个备受关注的领域。

通过研究单个细胞的基因表达情况,可以更好地理解细胞的功能和发育过程。

而在单细胞转录组学中,umap模型可视化簇的技术在近年来得到了广泛的应用和关注。

二、单细胞转录组学的意义1. 单细胞转录组学是一种能够揭示细胞多样性和功能的重要技术手段。

2. 通过单细胞转录组学,我们可以了解不同细胞之间基因表达的差异,从而揭示细胞的功能和发育过程。

三、umap模型的原理1. umap(Uniform Manifold Approximation and Projection)是一种降维技术,能够将高维数据映射到二维或三维空间中,以便于可视化和分析。

2. umap模型通过保持邻近点之间的距离关系,并最大限度地保持全局结构来实现数据的降维处理。

四、umap模型在单细胞转录组学中的应用1. 在单细胞转录组学研究中,通过umap模型可视化簇,可以将细胞按照它们的基因表达模式进行分类和展示。

2. umap模型可以帮助研究人员发现细胞之间的相似性和差异性,从而更好地理解细胞的功能和发育过程。

五、umap模型可视化簇的优势1. umap模型能够将高维数据映射到二维或三维空间中,并保持数据的全局结构,使得细胞分类和聚类更加直观和清晰。

2. umap模型具有较高的计算效率和稳定性,适用于大规模的单细胞转录组学数据分析。

六、umap模型可视化簇的局限性1. 在使用umap模型进行单细胞转录组学数据分析时,需要合理选择参数和调整参数,以获得最优的可视化效果。

2. umap模型在处理非线性数据和噪声数据时,可能会出现一定的误差和偏差。

七、结语通过umap模型可视化簇技术,我们可以更好地理解和分析单细胞转录组学数据,揭示细胞之间的功能和相互关系。

相信随着技术的不断进步和发展,umap模型在单细胞转录组学研究领域中将发挥越来越重要的作用。

八、umap模型的参数选择与调整在使用umap模型进行单细胞转录组学数据的可视化过程中,选择合适的参数和进行适当的调整是非常重要的。

生物信息学中的转录组数据分析教程

生物信息学中的转录组数据分析教程转录组数据分析是生物信息学中的重要领域,它研究基因组水平上的基因在不同组织、不同条件下的表达差异。

本文将为您介绍如何进行转录组数据分析的一般步骤和常见方法。

一、数据获取与预处理转录组数据通常以FASTQ格式存储,其中包含了测序机器输出的原始测序数据。

在进行数据分析之前,首先需要获取适当的转录组数据和对其进行预处理。

一般步骤包括质量控制、去除低质量序列、去除接头序列、过滤低质量碱基等。

在质量控制阶段,我们可以使用一些工具如FastQC来检查数据的质量,确保后续分析的准确性。

二、比对与基因表达量计算在转录组数据分析中,比对是寻找转录组数据对应于基因组的位置信息。

比对过程一般分为两个步骤:第一步是将转录组数据映射到参考基因组上,这可以使用一些工具如Bowtie、STAR和HISAT等进行;第二步是通过统计转录组数据在每一个基因的表达量,这可以使用工具如HTSeq和featureCounts等进行。

三、数据标准化与差异表达分析转录组数据的表达量通常具有较大的差异性,为了在样本间进行比较,需要对数据进行标准化。

在标准化过程中,我们可以采用一些方法如RPKM、TPM和FPKM等,将转录组数据的表达量进行归一化。

差异表达分析是比较不同组间的基因表达差异,通常使用一些统计学方法如DESeq2、edgeR和limma等。

四、功能注释和富集分析功能注释与富集分析是转录组数据分析的重要环节。

功能注释通过对差异表达基因进行生物学功能和通路的注释,可以帮助我们了解差异表达基因的潜在功能和作用机制。

富集分析则是用来确定基因表达差异是否与特定的生物过程或通路相关联。

常用的功能注释和富集分析工具有DAVID、GOseq和KEGG等。

五、绘图与可视化分析可视化分析是转录组数据分析中的重要环节,它通过图表和图像等形式展示数据结果,帮助我们更好地理解和解释数据。

在转录组数据分析中,可以使用一些工具如R包的ggplot2和pheatmap等进行数据可视化。

转录组数据分析解读及实例操作

转录组数据分析解读及实例操作1.数据预处理:对原始转录组数据进行质控和过滤,如去除低质量的序列或测序错误,去除接头序列等。

3.表达量估计:通过计算与每个基因相关的转录本数量,估计每个基因的表达水平。

4.差异表达分析:比较不同条件下的基因表达水平,寻找差异表达的基因。

5.功能注释:对差异表达的基因进行功能注释,探究其在生物过程中的作用和相关的信号通路。

6.富集分析:通过富集分析,找出差异表达的基因是否在特定的功能类别或通路中过度表示。

7.数据可视化:将分析结果可视化展示,以便更好地理解和解读转录组数据。

以下是一个转录组数据分析的实例操作:1. 数据准备:从高通量测序平台获取转录组数据(如RNA-seq数据)。

2.数据预处理:使用适当的软件对原始数据进行质量控制和过滤,去除低质量序列和接头序列等。

3. 数据对齐:将预处理后的转录组数据与参考基因组或转录组进行比对,可以使用Bowtie、STAR等工具进行比对。

4. 表达量估计:使用软件(如HTSeq、featureCounts等)统计每个基因的转录本数量,得到基因的表达矩阵。

5. 差异表达分析:使用DESeq2、edgeR等工具,比较不同条件下的基因表达水平差异,并筛选出显著差异表达的基因。

6.功能注释:通过使用数据库和工具(如DAVID、GO、KEGG等),对差异表达基因进行功能注释,分析其在生物过程中的作用和相关的信号通路。

7. 富集分析:使用富集分析工具(如GSEA、clusterProfiler等),将差异表达基因与已知的功能类别或通路进行比较,寻找显著富集的类别或通路。

8. 数据可视化:使用R语言中的ggplot2、heatmap等包,将转录组数据的分析结果可视化展示,以便更好地理解和解读分析结果。

在实际应用中,转录组数据分析可以应用于许多领域,如生物医学研究、生物进化、植物育种等。

通过分析转录组数据,可以揭示生物体的分子机制和疾病发生发展的模式,有助于发现新的治疗靶点和药物开发。

生物信息学的转录组数据分析

生物信息学的转录组数据分析一、引言转录组是一个生物组织或细胞中所有转录的RNA分子的总和,它反映了基因在特定条件下的表达水平。

转录组数据分析是生物信息学中的一个重要领域,它通过对转录组数据的处理和解读,可以揭示基因的功能和调控机制,以及在疾病发生发展中的作用。

本文将介绍转录组数据分析的基本步骤和方法。

二、数据预处理转录组数据通常以测序的形式存在,因此首先需要进行数据质控和预处理。

数据质控主要包括去除接头序列、低质量序列过滤、去除待测序列污染等步骤,以保证后续分析的准确性和可靠性。

预处理包括剔除低质量碱基、去除接头序列、剪切序列、质量修剪、构建序列库等步骤,以准备分析所需的干净数据。

三、基因表达分析基因表达分析是转录组数据分析的核心内容之一。

它通过比较不同条件下的基因表达水平,揭示基因的差异表达情况。

基因表达分析方法包括差异基因表达分析、基因聚类分析和基因富集分析等。

差异基因表达分析可以筛选出在不同条件下表达显著差异的基因,通过Gene Ontology(GO)和通路富集分析可以进一步了解这些差异基因的功能和相关通路。

四、基因调控网络分析基因调控网络分析是转录组数据分析的另一个重要方面。

它通过挖掘转录因子和靶基因之间的关系,揭示基因调控网络的结构和功能。

基因调控网络分析方法包括共表达网络分析和转录因子-靶基因分析等。

共表达网络分析可以用来发现与特定条件相关的基因模块,而转录因子-靶基因分析可以用来确定重要的转录因子并预测其功能。

五、功能注释与通路分析功能注释和通路分析是转录组数据分析的重要环节。

功能注释用于对差异表达基因进行功能注释,以了解其可能的生物学功能和参与的调控通路。

通路分析则是将差异基因映射到特定通路中,以揭示基因在特定生物学过程中的功能和相互作用关系。

功能注释和通路分析可以辅助我们理解基因调控网络的功能和调控机制。

六、数据可视化数据可视化是转录组数据分析的一个重要环节,它通过图表、散点图、热图等形式展示转录组数据的信息,增强数据分析结果的直观性和可解释性。

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

sequences.
• 第三篇:The Transcriptional Landscape of the Mammalian Genome.
重要文献分析——核心性?
2.重要文献分析:高被引文献
年份 2009 2008 2010 2011 被引频次 250 189 146 136 中心性 0.58 0.89 0.04 0.11 被引文献 WANG Z, 2009, NAT REV GENET, V10, P57, DOI 10.1038/NRG2484 MORTAZAVI A, 2008, NAT METHODS, V5, P621, DOI 10.1038/NMETH.1226 ANDERS S, 2010, GENOME BIOL, V11, P, DOI 10.1186/GB-2010-11-10-R106 GRABHERR MG, 2011, NAT BIOTECHNOL, V29, P644, DOI 10.1038/NBT.1883
第一:RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics.描述了RNA-Seq使用方法和与它的
应用相关的挑战。
第二:Mapping and quantifying mammalian transcriptomes by RNA-Seq,绘图和量化了
哺乳动物转录组。
3.研究热点分析:关键词聚类分析
这6个大类代表了转录组学 研究热点的6大分区,即小
RNA分子、营养基因组学、
数据库、骨骼肌、候选基 因 、动脉粥样硬化。
高频关键词聚类
4.研究前沿分析
突变词 dna microarray cdna microarray nutrigenomics functional genomics microarray analysis 权重 9.63 7.78 5.55 4.58 4.33 年份 2006 2007 2007 2006 2006
3.研究热点分析:关键词词频分析
频次 1547 1021 459 关键词 transcriptomics Genne expression expression 翻译 转录组学 基因表达 表达
455
353 298 277 264
proteomics
microarray metabolomics identification genomics
它的研究前沿集中在DNA芯片、cDNA芯片、 营养基因组学。
THANK YOU
1.研究力量分析:机构
发文量 中心性 机构
64 51 44
41 41 36 34 25
0.01 0.01
Maastricht Univ INRA Chinese Acad Sci
Harvard Univ Univ Illinois Wageningen Univ Univ Queensland Univ Groningen
Nielsen J(23)
Uhlen M(23) Pennings JLA(21)
2.重要文献分析:早期奠基性文献
2.重要文献分析:早期奠基性文献
年份 2001 2006 2005 频次 39 31 31 中心性 0.64 0.02 0.08 被引文献 BRAZMA A, 2001, NAT GENET, V29, P365, DOI 10.1038/NG1201-365 LI WZ, 2006, BIOINFORMATICS, V22, P1658, DOI 10.1093/BIOINFORMATICS/BTL158 CARNINCI P, 2005, SCIENCE, V309, P1559, DOI 10.1126/SCIENCE.1112014
第三:Differential expression analysis for sequence count data,一个新的算法——DESeq。
2.重要文献分析:高中心性文献
年份 2008 2001 2004 2009 频次 189 39 18 250 中心性 0.89 0.64 0.60 0.58 被引文献 MORTAZAVI A, 2008, NAT METHODS, V5, P621, DOI 10.1038/NMETH.1226 BRAZMA A, 2001, NAT GENET, V29, P365, DOI 10.1038/NG1201-365 JENKINS H, 2004, NAT BIOTECHNOL, V22, P1601, DOI 10.1038/NBT1041 WANG Z, 2009, NAT REV GENET, V10, P57, DOI 10.1038/NRG2484
454
358 293 266 244
0.23
0.25 0.09 0.19 0
GERMANY
ENGLAND NETHERLANDS FRANCE PEOPLES R CHINA
美国的发文量和中心性都居首位,表明美国对于转录组学的研究力量雄厚,德国与
英国的研究力量也较高。中国大陆的文献量虽大,但中心性不突出。
中心性第一和频次第二是同一文献,表明这篇文献在转录组学领域具有一定的重要性。 中心性第二的文献是奠基性最强的文献,表明这篇文献在转录组学领域有很大的奠基作用和核 心作用力。 中心性第三:A proposed framework for the description of plant metabolomics experiments and their results一文,完善了代谢组学的标准,推动了代谢组学的发展。
蛋白质组学
基因芯片on、 identification表明基因表达、鉴定是当前研究热点。 而研究热点集中的学科是transcriptomics、proteomics、metabolomics、 genomics。另外microarray也是研究热点之一。
一步系统了解转录组学这门学科。
数据来源与方法
数据库:Web of Science 1 2 时间跨度:2006-2015年 3 4
共检出4952记录条
方法:CiteSpace分析
结果分析
1.研究力量分析
2.重要文献分析
3.研究热点分析
4.研究前沿分析
1.研究力量分析:国家
发文量 1223 中心性 0.28 国家(地区) USA
tandem mass spectrometry h 1 nmr spectroscopy
4.08
3.79
2006
2006 2009
expressed sequence tag 3.70
DNA芯片、cDNA芯片、 营养基因组学
都是转录组学的研究前沿之一。
结论
转录组学的研究力量主要集中在美国,所有研究机构相对薄弱。 它的重要性文献最有代表性的是WANG Z 于2009年发表的论文, 描述了RNA-Seq使用方法和与它的应用相关的挑战。 它的研究热点集中在基因表达与鉴定以及基因组学。
《生物信息学概论》开放式精品示范课堂
转录组学研究的可视化分析
主讲人: 王大鹏 组 员:桑杰卓嘎、西热桑姆、刘亚楠
引言
转录组学是一门在整体水平上研究细胞中所有基因转录及转录
调控规律的学科,对于人类更加深层次认识基因提供了方向。 本研究选取陈超美教授开发的CiteSpace作为主要分析软件,对
转录组学研究文献进行可视化分析,并结合文献的仔细阅读,进
研究机构集中在高校和研究院,Maastricht Univ达到了64篇,INRA有51 篇,中科院有44篇,无论是发文量还是中心性,机构的研究力量相对薄弱, 尚未有高产出和高影响力的机构出现。
1.研究力量分析:作者
发文量20篇以上的高产作者: Kleinjans JCS(27) Piersma AH(24)
• 第一篇:Minimum information about a microarray experiment (MIAME)-toward standards for microarray data.文中提出了著名的MIAME,MIAME制定了基因芯片数据的信息的最低限度的标准。 • 第二篇:Cd-hit: a fast program for clustering and comparing large sets of protein or nucleotide
相关文档
最新文档