膳食纤维含量测定方法
食品中粗纤维的测定方法
食品中粗纤维的测定方法概述
食品中粗纤维的测定方法主要有两种：
1. 酸-碱消煮法：包括热的稀酸处理、热的氢氧化钠处理以及乙醇或乙醚洗涤。
其中，热的稀酸处理主要是去除样品中的淀粉、果胶质和部分纤维素；热的氢氧化钠处理则能去除蛋白质、部分半纤维素和部分木质素，并使脂肪皂化而去除；乙醇或乙醚洗涤则是为了去除单宁、色素、残余脂肪、蜡、部分蛋白质和戊糖。
最后，灰化处理可以去除灰分（金属氧化物）。
这种方法操作简便，而且测定精度高，符合国标GB/T5515、GB/T6434的规定。
2. 非酶重量法：又被称为粗纤维测定法，是通过酸、碱消煮样品，将得到的残渣烘干后灼烧灰化，再减去灰分重量来计算粗纤维的含量。
这种方法由Einhof于1801\~1809年建立，多应用于饲料及宠物食品中的纤维分析。
以上两种方法各有特点，可以根据具体的食品类型和实验条件选择适合的方法进行测定。
总膳食纤维国标测定方法-符合AOAC等
总膳食纤维测定的介绍1、在α-淀粉酶的作用下，PH为6的磷酸盐缓冲溶液，95—100度下加热15分钟。
2、用蛋白酶在PH为7.5时60度培养30分钟。
3、用淀粉葡(萄)糖苷酶在PH为4.0---4.6下60度培养30分钟。
4、4体积的95%的乙醇沉淀。
5、过滤。
6、用78%和95%的乙醇和丙酮清洗沉淀物。
7、烘干称重。
8、干样可以拿去做凯氏定氮，也可以在525度的马弗炉里灰份5个小时，然后去称重。
不溶的膳食纤维的定义为进行烘干前用乙醇进行清洗并用温水洗涤后残留物。
总膳食纤维（TDF）—不溶膳食纤维= 可溶膳食纤维（SDF）标准酶法测定食品和饲料中的总膳食纤维量1、研磨分级样品2、在105度的烘箱烘干并恒重，在干燥箱中冷却到室温。
3、如果样品脂肪含量高于10%，需要用石油醚进行脱脂，在最终结果中再进行校正。
4、称出0.5—1克的样品，并转移到400毫升的烧杯中。
5、用α-淀粉酶在50毫升的PH为6的磷酸盐缓冲溶液中培养15分钟，培养温度为95—100度，温度可以用温度计控制。
6、冷却到室温，并用0.275 N 浓度的氢氧化钠溶液调节PH到7.5。
7、将烧杯和样品一起转移到磁力搅拌培养器中（GDE）。
8、在搅拌的情况下，加入蛋白酶在60度的情况下培养30分钟。
9、冷却到室温，用0.325的盐酸调节PH值为4.0—4.6。
10、在搅拌的情况下，加淀粉葡(萄)糖苷酶，在60度时培养30分钟。
11、通过加4体积的95%的乙醇沉淀可溶性膳食纤维，并且在室温下沉淀大约1个小时。
12、称量已经添加了0.5克的硅藻土(作为助滤剂)玻璃坩埚.13、将坩埚放在CSF6 (或者FIWE6)上,倒入上述操作的沉淀物,并用V ACUUM进行吸液排空,用78%的乙醇溶液进行洗涤转移沉淀物。
14、用20毫升的78%的乙醇溶液洗涤玻璃坩埚中的沉淀物两次，再用10毫升95%的乙醇溶液洗涤两次，10毫升的丙酮溶液洗涤两次并排除废液。
膳食纤维测定原理
膳食纤维测定原理
膳食纤维测定原理是通过测量食物样品中的不溶性和可溶性膳食纤维的含量来评估其膳食纤维含量的方法。
其基本原理如下：
1. 来自食物样品的膳食纤维可以通过一系列预处理步骤来提取和分离。
一般来说，样品首先需要被酶解，以将可溶性膳食纤维从样品中释放出来。
2. 提取过程通常使用不同溶剂（如乙醇、酸、酚等），并通过机械搅拌或超声波处理来增强提取效果。
这将有助于将纤维素和其他成分从样品基质中分离出来。
3. 提取得到的溶液通常需要进行进一步净化和浓缩。
这可以通过离心、过滤或其他净化方法来完成。
目的是去除杂质，使得最终测定结果更加准确。
4. 在提取和净化的过程中，测定膳食纤维的主要方法之一是使用重铬酸钠。
该方法基于重铬酸钠与纤维素形成不容易溶解的沉淀的反应。
此外，也可以使用其他糖类或酸碱滴定法来测定溶解性纤维素的含量。
5. 最终，根据测定所用方法的不同，可以得到食物样品中的不溶性和可溶性膳食纤维的含量。
通常以克/100克食物样品的形式来报告。
需要注意的是，膳食纤维测定原理是一个复杂的过程，需要严格的实验操作和仪器设备。
不同的测定方法可能会有一些细微
的差异，因此在进行膳食纤维含量测定时，应根据所采用的具体方法和标准来操作。
膳食纤维含量测定方法
酶-重量法1.原理：样品分别用α-淀粉酶、蛋白酶、葡萄糖苷酶进行酶解消化以去除蛋白质和可消化的淀粉。
总膳食纤维（TDF）是先酶解，然后用乙醇沉淀，再将沉淀物过滤，将TDF残渣用乙醇和丙酮冲洗，干燥称重。
不溶性和可溶性膳食纤维（IDF和SDF）是酶解后将IDF过滤，过滤后的残渣用热水冲洗，经干燥后称重。
SDF是将上述滤出液用4倍量的95%乙醇沉淀，然后再过滤，干燥，称重。
TDF、IDF和SDF量通过蛋白质、灰分含量进行校正。
2.适用范围AOAC991.43 本方法适用于各类植物性食物和保健食品。
3.仪器3.1烧杯：400或600ml高脚型。
3.2 过滤用坩埚：玻料滤板，美国试验和材料学会（ASTM）40-60μm，Pyrex 60ml （Corning No.36060 buchner，或同等的）。
如下处理：（1）在灰化炉525℃灰化过夜。
炉温降至130℃以下取出坩埚。
（2）用真空装置移出硅藻土和灰质。
（3）室温下用2%清洗溶液浸泡1小时。
（4）用水和去离子水冲洗坩埚；然后用15ml丙酮冲洗然后风干。
（5）在干燥的坩埚中加0.5g硅藻土，在130℃烘干恒重。
（6）在干燥器中冷却1小时，记录坩埚加硅藻土重量，精确至0.1mg。
3.3 真空装置：（1）真空泵或抽气机作为控制装置。
（2） 1L的厚壁抽滤瓶。
（3）与抽滤瓶相配套的橡皮圈。
3.4振荡水浴箱：（1）自动控温使温度能保持在98±2℃。
（2）恒温控制在60℃。
3.5 天平：分析级，精确至±0.1mg。
3.6马福炉：温度控制在525±5℃。
3.7干燥箱：温度控制在105和130±3℃。
3.8干燥器：用二氧化硅或同等的干燥剂。
干燥剂两周一次在130℃烘干过夜。
3.9 PH计：注意温控，用pH4.0、7.0和10.0缓冲液标化。
3.10 移液管及套头：容量100μl和5ml。
3.11 分配器或量筒：（1） 15±0.5ml，供分配78%的乙醇，95%的乙醇以及丙酮。
纤维指标测定方法
1.2.2 膳食纤维物性测定方法1.2.2.1 膳食纤维溶胀性测定[7] 称取1.00g 样品, 置于温条件下静置24h, 读取液体中样品的体积。
按下式计算溶胀性:溶胀性=[溶胀后纤维体积(mL)- 干品体积(mL)]/样品干重(mL)20mL 试管中, 吸15mL 蒸馏水加入其中, 振荡后在室1.2.2.2 膳食纤维持水力测定[7] 称取1.00g 样品放入20mL 试管中, 加入蒸馏水15mL 室温下浸泡24h 后,然后用胶头滴管吸取上层澄清液, 插入滤纸条, 使其最底部刚刚接触渣液平面, 12h 后沥干样品水分。
之后将取下滤纸条的试管放在电子天平上准确称重。
按下式计算持水力:持水力=[样品湿重(g)- 样品干重(g)]/样品干重(g)1.3.5.1 膳食纤维膨胀力测定[8]称取0.10g 样品，置于50ml 量筒中，吸5ml 蒸馏水加入其中，振荡后在25℃条件下密封放置24h，读取液体中样品的体积。
按下式计算膨胀力：膨胀力=[溶胀后纤维体积(ml)－干品体积(ml)]/样品干重(ml)1.3.5.2 膳食纤维持水力测定[8]称取2.00 g 样品放入100ml 烧杯中，加入20℃蒸馏水40ml 常温下浸泡1h 后，在定量滤纸上沥干样品水分，并将其迅速转入表面皿中称重。
按下式计算持水力：持水力=[样品湿重(g)－样品干重(g)]/样品干重(g)1.3.5.3 膳食纤维结合水力测定称取1.00g 样品，置于平皿中，加入20℃蒸馏水20ml，室温下保持1h 后移置定量滤纸上沥干水分，将湿样移入10ml 刻度离心管中，在4000r/min 条件下离心5min 后弃去水分，所获得湿样所含水分即为结合水，其与干样的重量之比即为结合水力。
按下式计算结合水力：结合水力=[离心后样品湿重(g)－样品干重(g)]/ 样品干重(g)1.3.6 高品质膳食纤维的评定方法高品质膳食纤维的可溶性成分含量应达12% 以上，膨胀力大于10ml/g，持水力不小于7g/g，结合水力不低于5g/g[3][8]。
食品中膳食纤维的测定
1.1.1.1.1.3食品安全国家标准食品中膳食纤维的测定（征求意见稿）发布实施中华人民共和国卫生部发布前言本标准代替《食品中膳食纤维的测定》。
本标准与相比，主要变化如下：——修改了方法适用范围；——增加了膳食纤维、总膳食纤维、不溶性膳食纤维、可溶性膳食纤维的术语和定义；——修改了试剂顺序和文字格式；——修改了总膳食纤维计算公式；——添加了当食品中含有低分子质量可溶性膳食纤维时总膳食纤维计算方法的注释；——将酶重量法作为第一法，中性洗涤剂法作为第二法。
食品安全国家标准食品中膳食纤维的测定1 范围本标准规定了食品中膳食纤维的测定方法。
本标准酶重量法适用于植物类食品及其制品中总的、可溶性和不溶性膳食纤维的测定；中性洗涤剂法适用于谷物原料中不溶性膳食纤维的测定。
本标准第一法为仲裁法。
2 术语和定义下列术语和定义适用于本标准。
2.1 膳食纤维指植物中天然存在的、提取或合成的、聚合度 的碳水化合物聚合物，不能被人体小肠消化吸收、对人体有健康意义，包括纤维素、半纤维素、木质素、果胶、菊粉及其他一些膳食纤维单体成分等。
2.2 可溶性膳食纤维指能溶于水的膳食纤维部分。
2.3 不溶性膳食纤维指不能溶于水的膳食纤维部分，包括木质素、纤维素、部分半纤维素等。
2.4 总膳食纤维可溶性膳食纤维与不溶性膳食纤维之和。
第一法总的、可溶性和不溶性膳食纤维的测定（酶重量法）3 原理干燥试样经热稳定α淀粉酶、蛋白酶和葡萄糖苷酶酶解消化去除蛋白质和淀粉后，酶解液经乙醇沉淀、过滤，残渣用乙醇和丙酮洗涤，干燥后称重，即为总膳食纤维残渣。
另取同样经酶解的酶解液直接过滤，用热水洗涤残渣，干燥后称重，即得不溶性膳食纤维残渣；滤液用倍体积的乙醇沉淀、过滤、干燥后称重，得可溶性膳食纤维残渣。
扣除残渣中相应的蛋白质、灰分和空白即可计算出试样中总的、不溶性和可溶性膳食纤维的含量。
采用酶重量法测定的总膳食纤维包括不溶性膳食纤维和能被乙醇沉淀的高分子质量可溶性膳食纤维，如纤维素、半纤维素、果胶、其它非淀粉多糖及木质素等；不包括低分子质量的可溶性膳食纤维，如抗性麦芽糊精、果寡糖、低聚半乳糖、多聚葡萄糖等，及部分被加热破坏的抗性淀粉。
膳食纤维含量实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本次实验旨在测定不同食物中膳食纤维的含量，了解膳食纤维在食物中的分布情况，以及其对人体健康的重要性。
通过实验，我们可以掌握膳食纤维的测定方法，并对富含膳食纤维的食物进行评估。
二、实验材料1. 食物样品：大米、小麦、玉米、燕麦、豆类、蔬菜、水果等。
2. 试剂与仪器：无水乙醇、丙酮、热稳定α-淀粉酶、蛋白酶、葡萄糖苷酶、电子天平、离心机、烘箱、烧杯、漏斗、滤纸等。
三、实验方法1. 样品处理：将各种食物样品分别研磨成粉末，过筛，以去除杂质。
2. 酶解：取一定量的样品粉末，加入适量的热稳定α-淀粉酶、蛋白酶和葡萄糖苷酶，在适宜的温度和pH条件下进行酶解反应。
3. 沉淀与抽滤：酶解后的溶液加入无水乙醇和丙酮，充分混合，静置沉淀，抽滤，得到膳食纤维残渣。
4. 洗涤与干燥：将残渣用无水乙醇和丙酮洗涤，干燥称量，得到总膳食纤维（TDF）含量。
5. 可溶性膳食纤维（SDF）测定：将酶解后的溶液直接抽滤，用热水洗涤残渣，干燥称量，得到不溶性膳食纤维（IDF）含量；滤液用无水乙醇沉淀，抽滤，干燥称量，得到SDF含量。
四、实验结果1. 大米：TDF含量为2.2%，SDF含量为0.6%。
2. 小麦：TDF含量为2.5%，SDF含量为0.8%。
3. 玉米：TDF含量为2.8%，SDF含量为0.9%。
4. 燕麦：TDF含量为5.3%，SDF含量为1.2%。
5. 豆类：TDF含量为6.5%，SDF含量为1.8%。
6. 蔬菜：TDF含量为3.2%，SDF含量为0.9%。
7. 水果：TDF含量为2.7%，SDF含量为0.8%。
五、实验讨论1. 从实验结果可以看出，不同食物中膳食纤维的含量差异较大。
豆类、蔬菜和燕麦的膳食纤维含量较高，适合作为高纤维食物的来源。
2. 燕麦的膳食纤维含量最高，其TDF含量是大米的2倍多，小麦的2倍。
这说明燕麦是一种非常优秀的膳食纤维来源。
3. 豆类、蔬菜和水果中的膳食纤维含量较高，可以促进肠道蠕动，增加粪便体积，有助于缓解便秘症状。
食品中的纤维素含量测定方法研究
食品中的纤维素含量测定方法研究食品中的纤维素是我们日常饮食不可或缺的一部分，它对人体健康有着重要的影响。
然而，准确测定食品中的纤维素含量并不是一件容易的事情。
本文将探讨一些常用的纤维素含量测定方法，以及其优缺点和适用范围。
从营养学角度来看，膳食纤维是指那些不能被人体内酶解的多糖和半纤维素。
它包括了植物细胞壁中的纤维素、半纤维素以及可溶性纤维，对促进肠道运动、调节血糖和血脂有着重要作用。
因此，准确测定食品中的纤维素含量对于评估其营养价值至关重要。
目前常用的纤维素含量测定方法主要包括经典重量法、酶解法和高效液相色谱法等。
经典重量法是最早用于测定纤维素含量的方法之一。
该方法的原理是通过一系列溶剂提取和酶解步骤去除非纤维素物质，然后通过加热干燥、冷却和称重来确定纤维素的含量。
这种方法简单而直接，适用于各种食品样品。
然而，由于该方法涉及到多个步骤的处理，容易受到人为误差的影响，并且操作过程需要较长时间，不适用于大样本量的测定。
酶解法是近年来广泛使用的一种纤维素含量测定方法。
该方法主要是利用酶解纤维素，将其转化为可溶性的糖类物质，再通过酶活测定方法来确定纤维素的含量。
这种方法相对于传统的重量法更加准确和迅速，同时可以避免重量法中的一些误差。
然而，酶解法对于不同类型的纤维素具有不同的酶适应性，因此在样品处理过程中需要选择适当的酶类来提高测定的准确性。
高效液相色谱法是一种较为精确的纤维素含量测定方法。
该方法通过将样品中的纤维素分离出来，然后通过色谱柱的分离和检测来确定纤维素的含量。
相比于前两种方法，高效液相色谱法不需要多个步骤的样品处理，操作也更为简便。
同时，该方法对于不同类型的纤维素具有较好的检测能力，可以准确测定各种食品样品中的纤维素含量。
但是，高效液相色谱法需要相应的仪器设备和专业知识，对于一般实验室来说可能较难操作。
除了上述几种方法外，还有一些其他的纤维素含量测定方法，如红外光谱法、核磁共振法等。
这些方法在一定程度上可以提高测定的准确性和效率，但在实际应用中仍存在一些限制和挑战。
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酶-重量法1.原理：样品分别用α-淀粉酶、蛋白酶、葡萄糖苷酶进行酶解消化以去除蛋白质和可消化的淀粉。
总膳食纤维（TDF）是先酶解，然后用乙醇沉淀，再将沉淀物过滤，将TDF残渣用乙醇和丙酮冲洗，干燥称重。
不溶性和可溶性膳食纤维（IDF和SDF）是酶解后将IDF过滤，过滤后的残渣用热水冲洗，经干燥后称重。
SDF是将上述滤出液用4倍量的95%乙醇沉淀，然后再过滤，干燥，称重。
TDF、IDF和SDF量通过蛋白质、灰分含量进行校正。
2.适用范围AOAC991.43 本方法适用于各类植物性食物和保健食品。
3.仪器3.1烧杯：400或600ml高脚型。
3.2 过滤用坩埚：玻料滤板，美国试验和材料学会（ASTM）40-60μm，Pyrex 60ml （Corning No.36060 buchner，或同等的）。
如下处理：（1）在灰化炉525℃灰化过夜。
炉温降至130℃以下取出坩埚。
（2）用真空装置移出硅藻土和灰质。
（3）室温下用2%清洗溶液浸泡1小时。
（4）用水和去离子水冲洗坩埚；然后用15ml丙酮冲洗然后风干。
（5）在干燥的坩埚中加0.5g硅藻土，在130℃烘干恒重。
（6）在干燥器中冷却1小时，记录坩埚加硅藻土重量，精确至0.1mg。
3.3 真空装置：（1）真空泵或抽气机作为控制装置。
（2） 1L的厚壁抽滤瓶。
（3）与抽滤瓶相配套的橡皮圈。
3.4振荡水浴箱：（1）自动控温使温度能保持在98±2℃。
（2）恒温控制在60℃。
3.5 天平：分析级，精确至±0.1mg。
3.6马福炉：温度控制在525±5℃。
3.7干燥箱：温度控制在105和130±3℃。
3.8干燥器：用二氧化硅或同等的干燥剂。
干燥剂两周一次在130℃烘干过夜。
3.9 PH计：注意温控，用pH4.0、7.0和10.0缓冲液标化。
3.10 移液管及套头：容量100μl和5ml。
3.11 分配器或量筒：（1） 15±0.5ml，供分配78%的乙醇，95%的乙醇以及丙酮。
（2） 40±0.5ml，供分配缓冲液。
3.12. 磁力搅拌器和搅拌棒。
4. 试剂全过程使用去离子水，试剂不加说明均为分析纯试剂4.1 乙醇溶液：（1） 85%：加895ml95%乙醇在1L量筒中，用水稀释至刻度。
（2） 78%：加821ml95%乙醇在1L量筒中，用水稀释至刻度。
4.2 丙酮：4.3 供分析用酶：在0-5℃下储存。
（1）热稳定α-淀粉酶溶液：Cat. No. A3306，Sigma Chemical Co.，St. Louis，MO63178，或 Termamyl 300L，Cat. No. 361-6282，Novo-Nordisk，Bagsvaerd，Denmark，或等效的酶。
（2）蛋白酶：Cat. No. P3910，Sigma Chemical Co.，或等效的。
当天用MES/TRIS缓冲液中现配50mg/ml酶溶液。
（3）淀粉葡糖苷酶溶液：Cat. No. AMG A9913，Sigma Chemical Co.，或等效的。
4.4 硅藻土：酸洗（Celite 545 AW，No.C8656，Sigma Chemical Co.，或等效的）。
4.5 洗涤液：两者挑一。
（1）铬酸：120g重铬酸钠Na2Cr2O7·2H2O，1000ml蒸馏水和1600ml浓硫酸。
（2）实验室用液体清洁剂，预备急需清洗的（Micro，International Products Corp.，Trenton，NJ08016，或等效的）。
用水配制2%溶液。
4.6 MES-TRIS缓冲液：0.05mol/L，温度在24℃时pH值为8.2。
（1） MES：2-（N-吗啉代）磺酸基乙烷（No.M-8250，Sigma Chemical Co.或等效的）。
（2） TRIS：三羟（羟甲基）氨基甲烷（No.T-1503，Sigma Chemical Co.或等效的）。
在1.7L的蒸馏水中溶解19.52gMES和12.2gTRIS，用6mol/L NaOH调pH到8.2，用水定容至2L。
（注意：24℃时的pH为8.2，但是，如果缓冲液温度在20℃，pH就为8.3，如果温度在28℃，pH为8.1。
为了使温度在20-28℃之间，需根据温度调整pH值。
）4.7 盐酸溶液：0.561mol//L，加93.5ml6mol/L盐酸到700ml水中，用水定容至1L。
5. 操作方法5.1. 样品制备：（1）固体样品：如果样品粒度＞0.5mm，研磨后过0.3-0.5mm（40-60目）筛。
（2）高脂肪样品：如果脂肪含量＞10%，用石油醚去脂。
每克样品用25ml，每次提取完静置一会儿再小心将烧杯倾斜，慢慢将石油醚倒出，共洗三次。
（3）高碳水化合物样品：如果样品干重含糖＞50%，用85%乙醇去除糖份，每克样品每次10ml，共洗三次轻轻倒出，然后在40℃烘箱中不时翻搅干燥过夜，并研磨过0.5mm筛。
5.2. 样品消化（1）准确称取双份1.000±0.005g样品（M1和M2），置于高脚烧杯中。
（2）在每个烧杯中加入40ml MES-TRIS缓冲液，在磁力搅拌器上搅拌直到样品完全分散。
（防止团块形成，使受试物与酶能充分接触）。
（3）用热稳定的淀粉酶进行酶解处理：加100μl热稳定的淀粉酶溶液，低速搅拌。
用铝箔片将烧杯盖住，在95-100℃水浴中反应30分钟。
（起始的水浴温度应达到95℃）。
（4）冷却：所有烧杯从水浴中移出，凉至60℃。
打开铝箔盖，用刮勺将烧杯边缘的网状物以及烧杯底部的胶状物刮离，以使样品能够完全的酶解。
用10ml蒸馏水冲洗烧杯壁和刮勺。
（5）用蛋白酶进行酶解处理：在每个烧杯中各加入100μl蛋白酶溶液。
用铝箔盖住，在60℃持续摇动反应30分钟（开始时的水浴温度应达60℃），使之充分反应。
（6） pH值测定：30分钟后，打开铝箔盖，搅拌中加入5ml0.561mol/L HCL至烧杯中。
60℃时用1mol/L NaOH溶液或1mol/L HCL溶液调最终pH为4.0-4.7。
（注意：当溶液为60℃时检测和调整pH，因为在较低温度时pH会偏高。
）（7）用淀粉葡糖苷酶溶液酶解处理：搅拌同时加100μl淀粉葡糖苷酶溶液。
用铝箔盖住，在60℃持续振摇反应30分钟，温度应恒定在60℃。
5.3 测定5.3.1.总的膳食纤维测定（1）用乙醇沉淀膳食纤维：在每份样品中，加入预热至60℃的95%乙醇225ml，乙醇与样品的体积比为4∶1。
室温下沉淀1小时。
（2）过滤装置：用15ml78%乙醇将硅藻土湿润和重新分布在已称重的坩埚中。
用适度的抽力把坩埚中的硅藻土吸到玻板上。
（3）酶解过滤，用78%乙醇和刮勺转移所有内容物微粒到坩埚中。
（注意：如果一些样品形成胶质，用刮勺破坏表面，以加速过滤。
）（4）抽真空，分别用15ml的78%乙醇，95%乙醇和丙酮冲洗残渣各2次，将坩埚内的残渣抽干后在105℃烘干过夜。
将坩埚置干燥器中冷却至室温。
坩埚重量，包括膳食纤维残渣和硅藻土，精确称至0.1mg。
减去坩埚和硅藻土的干重，计算残渣重。
（5）蛋白质和灰分的测定:取成对的样品中的一份测定蛋白质，用本书前述或GB-960.52方法测定。
用（N×6.25作为蛋白质的转换系数）。
分析灰分时用平行样的第二份在525℃灼烧5小时，在干燥器中冷却，精确称至0.1mg，减去坩埚和硅藻土的重量，即为灰分重量。
5.3.2 .不溶性膳食纤维测定：（1）称适量样品按5.2进行酶解，过滤前用3ml水湿润和重新分布硅藻土在预先处理好的坩埚上，保持抽气使坩埚中的硅藻土抽成均匀的一层。
（2）过滤并冲洗烧杯，用10ml70℃水洗残渣2次，然后再过滤并用水洗，转移到600ml 高脚烧杯，保留用以测定可溶性膳食纤维，按5.3.3。
（3）用抽滤装置，分别用15ml78%乙醇，95%乙醇和丙酮各冲洗残渣2次。
（注意：应及时用78%乙醇、95%乙醇和丙酮冲洗残渣否则可造成不溶性膳食纤维数值的增大。
）（4）按5.3.1.5用双份样品测定蛋白质和灰分。
5.3.3.可溶性膳食纤维测定：（1）将不溶性膳食纤维过滤后的滤液收集到600ml高脚烧杯中，对比烧杯和滤过液，估计容积。
（2）加约滤出液4倍量已预热至60℃的95%乙醇。
或者将滤液和洗过残渣的蒸馏水的混合液调至80g，再加入预热至60℃的95%乙醇320ml。
（3）室温下沉淀1小时。
下面按5.3.1测定总膳食纤维，从"湿润和重新分布硅藻土……"。
6. 计算TDF、IDF、SDF均用同一公式计算膳食纤维（DF，g/100g）测定：DF={[（R1+R2）/2]-P-A}/[（M1+M2）/2]×100式中：R1和R2=双份样品残留物重量（mg）P和A=分别为蛋白质和灰分重量（mg）M1和M2=样品重量（mg）如有侵权请联系告知删除，感谢你们的配合！。