线粒体的染色方法(红色荧光)
JC 线粒体膜电位的检测方法
JC-1线粒体膜电位检测试剂盒产品组成：产品编号BB-4105-1 BB-4105-2 BB-4105-3规格20 assays 50 assays 100 assaysJC-1 100ul 250ul 500ul10×孵育缓冲液4ml 10ml 20ml产品简介：线粒体膜电位的下降是细胞凋亡早期的一个标志性事件。
JC-1是一种广泛用于检测线粒体膜电位(mitochondrial membrane potential)△Ψm的理想荧光探针。
可以检测细胞、组织或纯化的线粒体膜电位。
在线粒体膜电位较高时，JC-1聚集在线粒体的基质中，形成聚合物，488nm激发时的最大发射波长为590nm，可以产生红色荧光，在流式图上表现为FL1和FL2双阳性；在线粒体膜电位较低时，JC-1不能聚集在线粒体的基质中，此时JC-1为单体，488nm激发时最大发射波长为527nm，可以产生绿色荧光，形成流式图中所有细胞FL1均为阳性。
凋亡细胞则大多为FL1单阳性。
这样就可以非常方便地通过荧光颜色的转变来检测线粒体膜电位的变化。
常用红绿荧光的相对比例来衡量线粒体去极化的比例。
贝博线粒体膜电位检测试剂盒(JC-1)可以快速灵敏地检测细胞、组织或纯化的线粒体膜电位变化，可以用于早期的细胞凋亡检测。
试剂盒染料与其他的阳离子染料如DiOC6(3)和罗丹明123相比，特异性更高，对线粒体膜电位变化的特异性高于质膜电位变化，对线粒体去极化检测的检测一致性更好；红绿色荧光强度比率只受线粒体膜电位的变化，不受线粒体大小，形状，密度的差异干扰；检测灵敏度强，对细胞应激反应的微小异质性都能辨别；使用方法：悬浮细胞1、孵育缓冲液和JC-1染色工作液的配制：根据样品数按下列比例配制孵育缓冲液和JC-1染色工作液。
取100ul 10×孵育缓冲液加900ul无菌纯水稀释，混匀并预热至37℃，即成1×孵育缓冲液；在500ul 1×孵育缓冲液中加入5ul JC-1，涡旋混匀配成JC-1染色工作液；2、收集样本细胞以及阴性、阳性对照细胞。
淋巴细胞线粒体荧光染色
淋巴细胞线粒体荧光染色嘿，朋友们！今天咱就来唠唠淋巴细胞线粒体荧光染色这档子事儿。
咱就说这淋巴细胞啊，那可是咱身体里的小卫士呢！它们时刻准备着和那些坏家伙打仗。
那线粒体呢，就像是这些小卫士的能量站，给它们提供动力。
而这荧光染色呀，就像是给这些小卫士和它们的能量站打上了特别的标记。
你想想，要是没有这个荧光染色，咱咋能清楚地看到淋巴细胞线粒体的情况呢？那不就像在黑夜里找东西，摸瞎呀！有了这个荧光染色，就好像给咱安上了一双明亮的眼睛，能一下子就把它们看得清清楚楚。
比如说，咱可以通过这个染色看到线粒体的形态呀，是不是健康饱满的。
这就好比咱看一个人精神头好不好，一眼就能瞧出来。
要是线粒体不健康，那淋巴细胞还怎么有力气去打仗呀，咱的身体不就容易出问题啦？而且啊，这个荧光染色的过程还挺有意思的呢。
就跟画画似的，一点点地把淋巴细胞线粒体给染上颜色，让它们变得特别显眼。
这可不是随便涂涂画画哦，得非常小心、非常仔细才行呢。
要是不小心染错了，那不就糟糕啦，就像画画画出界了一样。
咱做这个实验的时候，可得有耐心。
就跟绣花似的，一针一线都不能马虎。
要是着急忙慌的，那能做好吗？肯定不行呀！你说是不是？这淋巴细胞线粒体荧光染色，在医学研究里那可是相当重要的呢。
通过它，医生们能更好地了解淋巴细胞的工作状态，能更好地诊断和治疗疾病。
这就像是给医生们配了一把钥匙，能打开了解疾病的大门。
你说神奇不神奇？咱平时可能觉得这些东西离咱挺远的，可实际上它们就在默默地为咱的健康服务呢。
咱可得好好珍惜这些科学家们的研究成果呀，这可都是他们的心血呢！总之呢，淋巴细胞线粒体荧光染色是个特别有趣又特别重要的事儿。
咱可别小瞧了它，它说不定哪天就能帮上咱的大忙呢！大家说是不是呀！。
实验六 线粒体的活体染色和观察PPT课件
色、毒性最小的碱性染料，由于线粒体中细胞色素酶 系的作用，使它始终保持氧化状态，并呈现蓝绿色， 在线粒体周围的细胞质中的染料被还原为无色的色基。
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• 三、实验材料：常规解剖器、大白鼠肝细胞 • 四、步骤及方法 • 1、鼠肝边沿较薄组织小块，放入盛有Ringer
鼠肝边沿较薄组织小块放入盛有ringer15000janusgreen染液倒入另一培养皿中将肝组织移入其内但不可将组织块完全淹没要让组织上面部分半裸露在染液外面这样细胞内的线粒体的酶系可充分得到氧化线粒体才易染色一般染3040分钟组织块边缘染成蓝绿色即可
实验七、线粒体的活体染色和观察
一、实验目的： 了解线粒体在细胞中的分布及形态、掌握研究方法。
• 3、染色后，用两根解剖针，同时用左右两手， 用一手的针压住组织块，然后用另一手的针稍 稍用力拉肝组织块边缘，就会有一些细胞或细 胞群和组织块分离。
• 4、用吸管将分离的细胞吸起，放在载玻片中央 的Ringer氏液中。垫两根头发，盖上盖玻片， 液体不要太多。
• 5、油镜观察：观察时，不断地上下微调节螺旋， 使盖玻片上下稍稍移动，这样所观察到的材料 总得到充足的氧气，线粒体的染色才显示得非 常清楚。
氏液的培养皿内，洗去血液。 • 2、将1/5000Janus Green B 染液倒入另一培
养皿中，将肝组织移入其内，但不可将组织块 完全淹没，要让组织上面部分半裸露在染液外 面，这样，细胞内的线粒体的酶系可充分得到 氧化，线粒体才易染色，一般染30-40分钟 （组织块边缘染成蓝绿色即可）。
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• 6、结果：油镜下，可见肝细胞质中线粒体被染成蓝绿色，呈颗粒状或线 条状，在细胞核周围分布得特别多。
实验二液泡系和线粒体的活体染色及观察
（三）材料
人口腔上皮细胞 洋葱鳞茎内表皮细胞 黄豆幼根根尖
四、实验步骤
（一）线粒体的超活染色与观察
1、线粒体是细胞进行呼吸作用的场所，其形态和 数量虽不同物种、不同组织器官和不同的生理 状态而发生变化。
1）人口腔粘膜上皮细胞线粒体的超活染色与观察 ⑴取清洁载玻片放在37℃恒温水浴锅的金属板 上，滴2滴1/5000詹纳斯绿B染液。
二、实验原理
线粒体是细胞内重要的细胞器，线粒体内膜上 分布有细胞色素氧化酶，该酶能使詹姆斯绿 B 保持在氧化状态，呈现蓝绿色从而使线粒体显 色，而细胞质中的染料被还原成无色。 液泡是细胞内浓缩产物的主要场所，有十分重 要的功能。中性红是液泡的特殊染色剂，将液 泡染成红色。在活细胞中，细胞质和细胞核不 着色。如果细胞死亡，染料会弥散开来，使核 着色。
二、液泡系的超活染色与观察
中性红为弱碱性染料，对液泡系（即高 尔基体）的染色有专一性，只将活细胞中的 液泡系染成红色，细胞核与细胞质完全不着 色，这可能是与液泡中某些蛋白质有关。
小麦或黄豆根尖细胞液泡系的中性红染色 观察
⑴ 实验前，把黄豆培养在培养皿内潮湿的滤纸上，使其 发芽，胚根生长到1以上备用。 ⑵ 用双面刀片把黄豆幼苗根尖（约1～2cm长）小心切一 纵切面，放入载玻片上的1/3000中性红染液滴中，染色 5～10min。 ⑶ 吸去染液，滴一滴Ringer液，盖上盖玻片，并用镊子 轻轻地下压盖玻片，使根尖压扁，利于观察。 ⑷ 在高倍镜下，先观察根尖部分的生长点的细胞，可见 细胞质中散在很多大小不等的染成玫瑰红色的圆形小泡， 这是初生的幼小液泡。然后，由生长点向延长区观察， 在一些已分化长大的细胞内，液泡的染色较浅，体积增 大，数目变少。在成熟区细胞中，一般只有一个淡红色 的巨大液泡，占据细胞的绝大部分空间，将细胞核挤到 细胞一侧贴近细胞壁处。
实验二-线粒体超活染色技术及观察PPT课件
• （4）染色10～15min，盖上盖玻片，吸去周围染液， 显微镜下观察。
• （5）计数50个细胞中线粒体数目，得出平均值。
• ２、洋葱鳞茎内表皮细胞线粒体的超活染色与观察
• （1）取载玻片于37℃恒温水浴：
• （2）1/5000詹纳斯绿Ｂ溶液 2滴
• （3）洋葱鳞茎内表皮 镊子撕取
• （4）染色10～15min，吸去染液，加Ringer溶液１ 滴，盖上盖玻片，显微镜下观察．
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• 【实验用品】
• 材料：
• 人口腔上皮细胞、洋葱鳞茎内表皮细胞
• 器材：
• 显微镜、恒温水浴锅、刀片、镊子、载玻片、盖玻片、牙 签、吸水纸、洋葱
• ２、试剂：
• （1）Ringer溶液
• 氯化钠
0.85 g
• 氯化钾
0.25 g
• 氯化钙
0.03 g
• （2）1/5000詹纳斯绿Ｂ溶液：
• 称取0.5g詹纳斯绿Ｂ溶于5ml Ringer溶液中，稍加热(3040℃)溶解，用滤纸过滤后，即为1%原液。
• 但不是任何染料都可作为活体染色剂使用,一般应 选择那些无毒或毒性小的碱性染料(易溶于类脂质) 并配成较稀的溶液来使用.詹纳斯绿Ｂ是活体染色 中重要的染料，对线粒体有专一性．詹纳斯绿Ｂ可 专一性地对对线粒体进行活染，这是由于线粒体内 的细胞色素氧化酶系的作用,使染料始终保持氧化 状态(即有色状态),呈蓝绿色;而线粒体周围的细胞 质中,这些染料被还原为无色的色基。
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• 根据所用染色剂的性质和染色方法的不同, 活体染 色可分为体内活染与体外活染两类.体内活染是以 胶体状的染料溶液注入动植物体内,染料的胶粒固 定于细胞内某些特殊结构内以达到易于识别的目的. 体外活染又称超活染色，是由活的动植物分离出部 分细胞或组织小块，以染料溶液浸染，染料因其 “电化学”特性与被染部分相互吸引被选择固定在 活细胞的某种结构中而显色。
实验二 线粒体和液泡的活体染色
实验师：刘伟 助教：史海丹 教师：赵红桃
关键词
• • • • • • 活体染色 线粒体-詹纳斯绿B 液泡-中性红 人口腔粘膜上皮细胞 小麦根尖 洋葱内表皮
实验原理
线粒体和詹纳斯绿B
线粒体（Mitochondria） 呼吸作用 氧化反应
詹纳斯绿B (Janus green B) 氧化状态呈现蓝绿色， 还原状态为无色。
实验流程
一、口腔上皮线粒体观察 二、小麦根尖分生区液泡系观察 三、洋葱表皮液泡观察
詹纳斯绿B 室温 中性红染液
取口腔 上皮细胞
取0.5cm左右 小麦根尖
1份
中性红染 色10 ' 蒸馏水洗 蒸馏水中 压片观察 描述 3份 自来水15' 自来水中 压片观察 描述 KNO3中5' 压片观察 酒精灯略微 加热观察 描述
扩展知识
活体荧光标记技术
• 荧光染料标记细胞器
– 线粒体：Mito Tracker Green – 溶酶体：LysoTracker – 高尔基体：Golgi-Tracker red – 细胞核：DAPI，Hoechst 33342, 33258 – 内质网：ER Tracker
• 荧光蛋白（FP）
思考题
• 染线粒体时，为什么有的细胞的线粒体未 被染色而细胞核却被染成了蓝色？ • 染液泡时，为什么有的细胞的液泡未被染 色而细胞质和细胞核却被染成了红色？
线粒体内的细胞色素氧化酶系的作用，使染料始终保持氧化状态，呈蓝绿色; 而线粒体周围的细胞质中，这些染料为无色。ຫໍສະໝຸດ 实验原理液泡和中性红
液泡 (Vacuole) 偏酸性环境
中性红 (neutral red) 弱酸性条件下呈现樱桃红色
实验三 线粒体活体染色
油镜下小鼠骨髓细胞染色体
油镜下观察
染色体标本观察
线粒体活体染色
线粒体活体染色
线粒体电镜观察
A
C
M
C
N
M
线粒体电镜观察
C C C
N M
MV L
线粒体电镜观察
B M
M
N L
MV
MV
N
L
N
1、人口腔粘膜上皮细胞活体染色显示线粒体 （1）用消毒牙签刮取口腔粘膜细胞，用力应稍重些， 以便得到生活力教旺盛的细胞，将刮取物涂在载玻片 中央。 （2）滴1滴詹纳斯绿B染液于细胞涂片处，2~3分钟后 盖上盖玻片。 （3）用显微镜观察，在高倍镜下可见细胞质中散在一 些被染成亮绿色的短棒状和圆形颗粒，即为线粒体。
实验三 线粒体活体染色
线粒体活体染色
实验目的： 掌握线粒体活体染色的方法与原理
实验原理：
线粒体是细胞内一种重要细胞器，是细胞进行呼吸作用的场所。 活 体染色是应用无毒或毒性较小的染色剂真实地显示活细胞内某些结构而 又很少影响细胞生命活动的一种染色方法。詹纳斯绿 B是线粒体的专一 性活体染色剂。呈碱性，具有脂溶性，能够穿过细胞膜进入细胞内，并 通过其结构中带有正电荷的染色基团结合到带负电荷的线粒体内膜上。 线粒体中细胞色素氧化酶使染料保持氧化状态呈蓝绿色，而在周围的细 胞质中染料被还原，成为无色状态。
线粒体活体染色
活体染色：是使生活有机体的细胞或组织特异性着色， 但对该样本又没有毒害作用的一种染色方法。 目的：既显示活体细胞内的某些结构，又不影响细胞 的生命活动和产生任何物理和化学变化以致细胞的死亡。 应用：活体染色技术可用来研究生活状态下的细胞形 态结构和细胞生理、病理状态
线粒体活体染色
实验二液泡系和线粒体的活体染色与观察PPT讲稿
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口腔颊部上皮细胞示线粒体
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2）植物细胞线粒体的活体染色与观察（洋葱 鳞茎内表皮细胞）
⑴用吸管吸取1/5000詹纳斯绿B染液，滴一滴在干净 的载波片上，然后用镊子撕取洋葱鳞茎内表皮一 小块，置于染液中，染色10～15min。
不得交叉。
4、每幅图的大小、位置在纸面上必须安排得当，并注意
纸面的整洁。
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一、实验目的
• 学习并了解线粒体和液泡系超活染色的基本原理、方
法和注意事项；
• 学习如何观察动、植物活细胞内线粒体、液泡系；
• 了解动、植物活细胞内线粒体、液泡系的形态、
数量与分布；
• 学习并掌握线粒体和液泡系的超活染色技术。
• 了解植物细胞液泡系的发育过程。
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临用前，取已配制的1%中性红溶液1ml，加入29ml Ringer溶液混匀，装入棕色瓶备用。 3．1%、1/5000詹姆斯绿B溶液
称取50mg詹姆斯绿B溶于5ml Ringer溶液中，稍加 微热 （30~40度）使之溶解，用滤纸过滤后，即为1%原液。取1%原液 1ml加入49ml Ringer溶液，即成1/5000工作液，装入瓶中备
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（二）试剂
1、Ringer 溶液 氯化钠0.85g（变温动物用0.65g） ；氯化钾 0.25g ； 氯化钙 0.03g ；蒸馏水100ml
2、10%、1/3000中性红溶液