项目一微型生物监测-浮游生物的测定(精).ppt
水产饵料生物学第二章浮游动物生物量的测定方法学习课件PPT

三、计 数
进行浮游动物计数的主要仪器是显微镜和计数 框,计数原生动 物用0.1毫升计数框;计数 轮虫和甲壳动物用l毫升计数框。
(1)原生动物、轮虫的计数
计数时,沉淀样品要充分摇匀,然后用定量吸管吸 0.1ml注入0.1 ml计数框中,在10×20的放大倍数下 计数原生动物;吸取1毫升注入1毫升计数框内,在 10×10的放大倍数下,计数轮虫。一般计数两片,取 其平均值(参阅浮游植物章节)。 (2)甲壳动物的计数 甲壳动物指枝角类、桡足类。按上述方法取10-50升 水样,用25号浮游生物网过滤,把过滤物放入标本瓶 中,并洗三次,所得的过滤物亦放入上述瓶中。在计 数时,根据样品中甲壳动物的多少分若干次全部过数。 如果在样品中有过多的藻类,则可加伊红(Eosin-Y)染 色。
(2)采水层次
由水体的深度决定。切不可只采一个表层或一个底层水样。据夏 季调查,东湖B站(水深4米左右),在2米的水层区,甲壳动物的数 量约占31%,而2米以下的水层占69%左右。同时还发现,在夏季, 一般幼体喜欢在表层,成体则在深层。尽管这种分布格局因时田 地而变,但浮游动物存在垂直分布却是一个普遍现象。由此可见, 如果只取表层水样就不能正确地测算浮游动物的现存量。但是如 果每隔0.5米或2米取一个水样,则计数工作量又相当大。一个折 衷的办法是每隔0.5米或1米,甚至2米取等量水样加以混合,然后 取出一部分作为浮游动物定量之用。如东湖水深4.2米,则在0、 1、2、3、4米五个水层各取10升水样加以混合,用25号浮游生物 网过滤后供该站甲壳动物定量之用;依上法各取1升水样均匀混合 和取其I升沉淀作为原生动物、轮虫定量样品。 许多水库或深水湖泊,水深20米以上,这种水体在夏季及冬季 存在温跃层(或称变温层)。由于在温跃层以下缺乏光照,浮游植物 数量极少,赖以植物生存的浮游动物数量也相应减少。如果从养 殖业角度而言,只取温跃层以上的水层就足够了。
浮游生物个体大小

2、Na2S2O3标准溶液(0.01mol/L) 2.5gNa2S2O3· 10H2O固体溶于经煮沸冷却的纯水中, 并稀释至1L。 3、淀粉溶液(1%):1g可溶性淀粉,先用少量纯水 调成糊状,倾倒入沸水中煮沸并稀释有MnSO4· 2O 4H 480g。 5、KI-NaOH溶液:1L溶液中溶有KI150 g和NaOH 固体500 g,NaOH在溶解过程中放出大量热量, 可把烧杯置于冷水浴中。
6、H2SO4溶液(1:1)。在不断搅拌下,把浓 H2SO4缓慢倒入等体积的纯水中,混合最好在冷 水浴中进行。 7、KI溶液(10%)
(二)测定步骤
1、 Na2S2O3标准溶液的标定: 取K2Cr2O3标准溶液20.00ml于250ml碘量 瓶中,加入KI溶液5ml和H2SO4溶液2ml, 盖上瓶口混匀并在暗处放置5min,加纯水 50ml,以Na2S2O3标准溶液滴至淡黄,加 入淀粉溶液1ml,继续滴至溶液呈无色为止, 读取滴定管读数V(双样滴定取平均值), 依下式计算Na2S2O3标准溶液的准确浓度: C=(0.01000×20.00)/V (mol/L)
注意:生产力较高的水体氧气过饱和在白瓶 中产生大的气泡,该气泡主要是氧气,不要 放掉。
2、测定溶解氧
(一)试剂及其配制
1、K2Cr2O3标准溶液(C1/6K2cr2o7=0.0100mol/L) , 称取K2Cr2O7固体(AR,于130℃烘3h)0.4904g,溶 解后在1000ml容量瓶中定容。
(四)结果与换算
①各挂瓶水层生产量的计算: • 单位:毫克∕升.日 • 毛产量=白瓶溶氧量-黑瓶溶氧量 • 呼吸量=初始氧量-黑瓶溶氧量 • 净生产量=白瓶溶氧量-初始氧量 =毛产量-呼吸量 ②水柱日生产量的计算: 单位:毫克∕m2.日
浮游生物检测

浮游生物检测:声学和光学成像1.介绍2.物理学;物理现象2.1浮游动物声学检测2.2水下光学成像的原理3. 应用:关于系统关联实时检测3.1 检测浮游动物的声学系统3.1..A 单频系统3.1.B 多频系统3.1.C 宽带系统3.1.D 探讨浮游动物的实时声学监测3.2 浮游动物的光学成像3.2.A 视频浮游生物记录器3.2.B动物园可见系统3.2.C 水下视频分析系统3.2.D 3D浮游动物观测台3.2.E 探讨浮游动物实时成像3.3 浮游植物光学成像3.3.A 全息成像3.3.B 流动凸轮3.3.C FIDO-4. 声学和光学的结合5. 总结和结论1.介绍:浮游生物群体是普遍存在的,是多种多样的生物体的集合,浮游生物在海洋生态结构中扮演重要角色。
浮游植物的光合作用将在本书中的其他章节中讨论,它支撑着海洋食物网络和改变海洋中营养物质和二氧化碳的生物化学循环。
浮游动物作为单细胞浮游植物的主要产物和更高的营养级别如海洋鱼类之间的联系,它们中的许多被商业开发了。
环境和生物因素控制的海洋生物群落的种群数量是海洋学的中心目标。
明白有时空解析度增长的浮游生物有机体的数量、动态和相互作用的重要性已经促使了经过改进的观察和量化它们的传感器的发展和应用。
在本书中的有记录的有害藻类水华通过消耗营养物质,毒素和缺氧环境的产生来对海洋生态环境产生显著影响,这种影响是有害的。
精密装置和食物链如何变化是很有意义的。
在这里,我们考虑发展技术带着终极目的来研究和理解HABs可能减弱它们的影响。
就有害藻类水华和浮游动物而言,弄清楚有害藻类水华对浮游动物的影响和浮游动物对有害藻类水华的影响是有必要的。
尽管我们有很多东西要学习,但是Turner 等(2000) and Buskey(2003)在这个领域的早期工作已经帮助我们确定了浮游植物和浮游动物之间的关系,对于将来的工作也留下了很多问题。
在这个章节中所描述的一些技术对阐明这种生态系统有益的方面是很有用的。
浮游生物监测.ppt

浮游生物
1 2 3
样品固定 样品浓缩 样品保存
浮游生 物的 测定
结果报 告
4
1
采样
一、采样工具
2.采水器
1.1定性网 1.2定量网
1.定性样的采集 水面下0.5m处 画 二、采样层次(深度) 时间为 5~10分钟 1.江河: 在水面下0.5m处 2.定量样的采集 2.湖泊、水库
2.1水深<2m 在0.5 m 处 2.2深水水体 要分层
浮游生物的测定
定性: 将样品分类鉴定,以确定其中的种类组成
载玻片、显微镜、麻醉剂(1%硫酸镉、水合氯醛、酒精等)
1. 计数框及其使用
1.2网格计数框
1.1塞奇威克一拉夫脱计数框(简称S-R计数框)
长:50mm,宽20mm,深1mm
计 数 方 法 方 法 方 法 呢
2.显微镜的校准
两重合线之间台尺格数 目尺长度(m m) 两重合线之间目尺格数
10~50
2
固定浓缩保存
鲁哥氏液 (
KI + I2 + H2O)
1000mL水样 + 15mL鲁哥氏液
4%的福尔马林
100mL水样 + 4~5mL福尔马林
70%酒精 沉淀法:沉淀24~48小时 过滤法:用滤器过滤 离心法:用离心机离心源自 3未完待续定性测定
计数框使用
计数 计数方法
显微镜校准
定量测定
注
3.计数
个体计数仍是目前常用的浮游生物定量方法
浮游生物数/ mL=
C 1000 L W D S
计数方法
3.网格计数法
C 1000 ADF
C V1 V2
4
进利 行用 评指 价示 生 物
环境质量的生物监测与生物评价ppt课件

3 生物监测的缺点: (1)不能迅速作出反应;
(2)不能精确地监测出环境中某些污染物的含量, 通常只是反映各监测点的相对污染或变化水平。
第二节 生物监测与评价 一、大气污染生物监测与评价
1 动物监测 2 植物监测(在大气中被广泛应用)
(一)大气污染的植物监测方法
------利用植物对大气污染的反应,监测有害气体的 成分和含量以了解大气环境质量状况。
⑨酸雾(硫酸、盐酸、硝酸等):叶上出现细密、近圆形 坏死斑。
2.现场调查法 选择观察点→调查了解主要大气污染物的种类、
浓度和分布扩散规律→ 选择观察对象→根据调查目的 和人力条件确定观测时间→确定观测项目→根据调查 和资料对比分析,确定各种植物对有害气体的抗性等 级,也可把地区受害程度表示在地图上。
⑤过氧乙酰硝酸酯:可在叶片的先端、中部或基部出 现坏死带,叶片背面变为银白色、棕色、古铜色或玻 璃状。
⑥臭氧:大多为叶面散布细密点状斑,呈棕色或黄 褐色,少数为脉间块斑。
⑦二氧化氮:伤斑白色、黄褐色或棕色,叶脉间多不 规则形,有时出现全叶点状斑。
⑧氨气:伤斑与正常组织之间界线明显,症状一般出 现较早,褐色或褐黑色,大多为脉间点块状伤斑。
(1)水污染的细菌学指标:我国现行饮用水卫生标准规 定,细菌总数1 mL自来水不得超过100个;大肠菌群数 每升水中不得超过3个。 如在1 mL水中细菌总数为:
10~100个为极清洁水; 100~1 000个为清洁水; 1 000~10 000个为不太清洁水; 10 000 ~100 000个为不清洁水; >100 000个为极不清洁水。
②滤膜法:比发酵法时间短,有可能在24 h内完成。
选取孔径0.45~0.65um的微孔滤膜→抽滤,将 水中的细菌截留于滤膜上→将滤膜不截菌的一面贴附 在特定固体培养基上(如伊红美蓝培养基) →培养→初 步确定大肠菌群细菌(依据菌落特征及镜检菌体形态 ) →根据通过水量及滤膜上长出的肯定为大肠菌群的 菌落数换算出每升水样中大肠菌群数。
浮游动物的定量测定

两条重合线间目镜测微尺格数
如:目测为30小格等于台测为 20小格,已知台测每格为 10 微米,则20小格的宽度为 20×20=200微米,那么相应的在 目镜测微尺上每格长度为(20×20)÷30=6.6(微米)。
用同样方法校正并求出在高倍镜上目镜测微尺 每格的长度。 接目镜测微尺校正好后,将镜台测微尺从载物 台上取下来,换上待测标本。 在高倍镜下,以目镜测微尺来测量标本的长和 宽各占几格,即可算出该标本的大小。
谢
谢
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生物量测定(续)
(3)桡足类的体长-体重回归方程(统计方法获得):
W = 0.0285 L2.9505 式中, W —体重(mg),L—体长(mm)。
• 附: • 桡足类卵的质量如何测定?
桡足类的卵一般较小,但均为球形,用体积法可获 得较佳结果。 (1)先用台微尺(每小格间的距离为0.01mm)校 正目测微尺,求出在某一合适的放大率下,目测微 尺每小格所代表的实际长度; (2)将台微尺换上标本,在相同放大率下用目测 微尺量出卵的平均直径;(至少要测3粒卵的直径, 再求平均数) (3)代入球体积公式: V = 1/6πD3 或 V = 4/3πr3 其中,D为卵的平均直径(r为卵的平均半径),V 为卵的体积。 (4)再按卵的比重为1.05[密度为1.05g/cm3]求得 卵的重量[质量]。
C V1 Ni V2 V3
式中:Ni—每升水中浮游动物的数量,C— 计数所得个体数,V1 —浓缩样品体积(ml), V2 —计数体积(ml),V3 —采样量体积数 (L)。
注意事项
1.甲壳动物计数时,如果在样品中有过多的藻类, 则可加伊红(Eosin-Y)染色。 2.无节幼体(桡足类的幼体)一般很小,可与枝 角类和桡足类一样全部计数(或稀释后取样计 数),也可在1L沉淀样品中,用与轮虫相同的方 法进行计数。
教科版科学六年级上册6.观察水中微小的生物(说课课件)(共16张PPT).ppt

维(如脱脂药棉、干净毛笔上的毛等),交织成网状放在载玻片上; ③用镊子夹取盖玻片从水滴一侧轻轻盖到水滴上; ④用吸水纸从盖玻片边缘吸去多余的水分,限制微小生物活动。
(二)观察水中微小的生物(预设22分钟) 1.明确活动要求:用显微镜来观察自制的水中微小生物的玻片标本, 并将观察结果记录在学习单上。课件出示样例示范,强调若观察到水 中微小的生物要画出大致轮廓,有比较典型的局部特征,配上适当的 文字或符号等。 2.学生以小组(2人一组)为单位进行观察,并记录下水中微小生物 的形态和行为特征。如果你在观察时出现了观察不到的情况,那就请 你从不同处多取几次水,重新制作玻片标本,观察时慢慢移动位置再 观察。这个观察活动需要很长时间的耐心和坚持,你才能发现更多的 微小生物。 【设计意图】这个环节对学生来说很重要,旨在对观察到的信息进行 处理分析,确定属于微小生物的部分,并能进一步确认微小生物的种 类或者名称。
2.小结:大部分微生物肉眼看不见,也有部分肉眼看 得见的微生物。
【设计意图】拓展对微生物的认识范围,激发学生继续观察和探索微 生物的兴趣,为下节课铺垫。
(五)练一练
一、选择题 1.为了便于观察草履虫,通常的做法是( B )。
A.把水晒干 B.放一些棉花纤维 C.用胶水固定 D.滴碘酒
2.利用干草来培养微生物时,其中的水可以采自( A )。 A.河里打来的水 B.水厂提供的自来水 C.烧开过的水 D.纯净水
通过显微镜观察水中微小的生物,知道水中微小的生物形态各异, 认识到它们也具有生物的特征。
能把观察到的现象转化为证据来分析水中微小的生物也具有生物的 特征。
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(二)定量测定
35
五、用浮游生物评价水质的优点
1.实验容器小
2.取材方便
3.生长快、繁殖快
4.可以在合成的培养基中培养 5.和环境接触密切,对环境污染物反映 的时间短 6.具有无性繁殖和有性繁殖,可以提供品 系均一的后代
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7.微型生物基本上是世界性分布 8.可以储存、易保存、要求的空间小 9.浮游生物与其它水生群落相比,对废水
的耐受能力差别不大 10.从数量上,重量上,在水生态系中占优势
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固定液: (1)鲁哥氏液(Lugols):
KI + I2 + H2O 60g 40g 1000mL 适宜固定藻类、原生动物、轮虫 1000mL水样 + 15mL Lugols
7
(2)4%的福尔马林
福尔马林 + 甘油 + 水
4mL
10mL 86mL
适宜固定枝角类和桡足类
100mL水样 + 4~5mL福尔马林
1mL
28
(2) 网格计数框
深0.25mm
2. 显微镜的校准 目测微尺
测微尺 台测微尺
29
目尺长度(mm)
两重合线之间台尺格数 两重合线之间目尺格数
3. 计数方法 (1) 长条计数法
C1000
浮游生物数/ mL=
L W DS
式中C-- 计数的浮游生物数;
L-- 一个长条的长度,也就是计数框的长度(mm);
W-- 一个长条的宽度,即目尺的长度(mm);
D-- 一个长条的深度,即计数框的深度(mm);
S-- 计数的长条数。
30
浮游生物数/ L=
C1000
×
V1
L W DS V
V1-浓缩后的水样量, mL V-采样量,L
31
(2)视野计数法 浮游生物数/mL=
C 1000 ADF
式中A-- 一个视野面积(mm2); D-- 视野的深度(mm); F-- 计数的视野数(一般至少10个); C-- 计数的生物个数。
(3)70%酒精 适宜固定枝角类和桡足类
8
浓缩方法: (1)沉淀法:沉淀24~48小时 (2)过滤法:用筛绢或滤器过滤 (3)离心法:用离心机离心
9
三、浮游生物的测定
(一)浮游生物的定性测定
最好是活体观察
一个样品至少观察两张装片
麻醉剂: 1%硫酸镉、水合氯醛、酒精等
1. 浮游植物: (1) 蓝细菌门:
Ⅱ 浮游生物的测定
浮游生物:随波逐流的生活在水体中的微型 生物。
浮游生物
浮游植物: 藻类 原生动物
浮游动物 轮虫 枝角类、桡足类
1
一、采样
(一)采样工具 1.浮游生物网
(1) 定性网 (2) 定量网
2
定性网
定量网
3
2.采水器
(1) 瓶式采水器 (2) 水生---81型有机玻璃采水器
3.透明度盘 直径 = 20cm
透明度盘
4
(二)采样层次
江河: 在水面下0.5m 左右采样
湖泊、水库:
水深<2m 在0.5 m 处采集 深水, 分层采
(三)采样方法及采样量
1.定性样的采集 水面下0.5m
采样时间 : 5~10分钟
5
2.定量样的采集
水样体积 = r2 X H
r: 网口半径
H:拖取深度
(四)采样频率
6
二、样品的固定、浓缩和保存
头冠 咀嚼囊 排泄系统:一对原肾管
红眼旋轮虫
梳状疣毛轮虫 不同形态的长三肢轮虫
22
花箧臂尾轮虫
镰形臂尾轮虫
23
(3)枝角类、桡足类
24
桡足类
25
桡足类三个目的特征
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汤匙华哲水蚤
毛饰拟剑水蚤 单节水生猛水蚤
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(二)浮游生物的定量测定
1. 计数框及其使用 (1) 塞奇威克一拉夫脱计数框(简称S-R计数框): 长:50mm,宽20mm,深1mm
平列藻属
微囊藻属 螺旋藻属 颤藻属 席藻属
10
具缘微囊藻
不定微囊藻
水花微囊藻
11
中华平裂藻
微小平裂藻
大平裂藻
12
小颤藻
为首螺旋藻 大螺旋藻 极大螺旋藻
巨颤藻
13
(2) 隐藻门 (3) 金藻门
(4)甲藻门 (5)黄藻门 (6)裸藻门
鱼鳞藻属 锥囊藻属 黄群藻属 裸甲藻属 角甲藻属 多甲藻属 黄丝藻属 裸藻属 扁裸藻属 囊裸藻属
扭曲扁裸藻
梨形扁裸藻
棘刺囊裸藻
18
小球衣藻
莱哈衣藻
四足十字藻
截断十字藻
四角盘星藻 二形栅藻
三角四角藻
斜生栅藻
狭形纤维藻
针形纤维藻 19
2.浮游动物
(1)原生动物
纤毛亚门 肉鞭亚门
植鞭纲 动鞭纲 根足纲 辅足纲
20
大 变 形 虫
毛板壳虫 僧帽斜管虫
放
天蓝喇叭虫
射
太
阳
虫
球形砂壳虫 有肋楯纤虫
21
(2)轮虫 主要形态结构
浮游生物数/ L= C 1000 × V1 ADF V
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(3)网格计数法
浮游生物数/升= C V 1 V2
式中C-- 计数的生物个数; V1-- 由1升水浓缩成的样品水量,mL; V2-- 计数的样品水量,mL。
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四、结果报告
(一)定性测定 1. 利用指示生物进行评价 2.利用多样性指数和各种生物指数进行评价 3.利用藻类各类群在群落中所占比例进行评价
(7)绿藻门
衣藻属
弓形藻属
小球藻属
顶棘藻属 四角藻属纤维藻属来自卵囊藻属胶网藻属 盘星藻属 栅藻属 十字藻属 刚毛藻属 丝藻属 毛枝藻属 鼓藻属 14
长形蓝隐藻
卵形隐藻
15
长刺鱼鳞藻
阿氏黄群藻 密集锥囊藻
分歧锥囊藻
16
光薄甲藻 二角多甲藻-正面观
近缘黄丝藻
角甲藻
绿黄丝藻
17
沟状扁裸藻
间断裸藻 尖尾裸藻