人外周血白细胞分离液试剂盒

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人外周血淋巴细胞分离液使用说明

人外周血淋巴细胞分离液使用说明

人外周血淋巴细胞分离液使用说明
人外周血淋巴细胞分离液是一种常用的实验试剂,用于分离和提取人体外周血中的淋巴细胞。

下面是使用该试剂的详细说明:
1. 实验准备:
- 准备干净的工作台和操作工具。

- 检查分离液是否过期,确保其保存条件良好。

- 为实验准备足够数量的外周血样本。

2. 样本处理:
- 从被试者的外周血中采集适量的血液。

- 使用无菌技术将血液转移至无菌离心管中。

3. 样本离心:
- 将含有外周血的离心管放入离心机中。

- 以2000-2500转速离心10分钟,使细胞沉淀到离心管底部。

4. 废液处理:
- 弃去上层的血浆和血小板,只留下上清或底部的细胞悬浮液。

5. 细胞分离:
- 将分离液缓慢倒入含有细胞沉淀的离心管中,通常使用10 mL分离液对应1 mL的细胞悬浮液。

- 轻轻摇晃离心管,使分离液均匀混合。

- 静置15-20分钟,使淋巴细胞在分离液中上浮。

6. 细胞收集:
- 将含有上浮淋巴细胞的上清缓慢转移到新的离心管中。

- 用相同的方法重复上述步骤,以提高细胞收集率。

- 将收集到的细胞悬浮于适当的培养基中,进行后续实验。

请注意,这只是一个基本的使用说明,具体的实验步骤和分离效果可能会因实验目的和细胞样本的来源而有所不同。

在进行实验前,建议查阅供应商提供的用户手册,以获得更加详细的使用说明和操作技巧。

同时,使用过程中严格遵守实验室安全操作规范,确保个人和实验室的安全。

希望以上使用说明能够对您的实验工作有所帮助。

白细胞分离技术汇总

白细胞分离技术汇总

外周血白细胞的分离:(细胞分离液有市售,有各种型号:白细胞、单核细胞淋巴细胞等分离液)1> 取3ml正常人的外周血(枸橼酸钠抗凝)与等体积pbs混匀后小心的加于6ml白细胞分离液液面上,1500r/min离心20 min。

(或先将抗凝血离心,然后吸取中间白细胞层,再混以等体积pbs然后小心加于等体积细胞分离液液面上,离心同上)2> 吸取中间云雾状白细胞,加3-4mlPBS后3000 r/min离心10 min。

3> 弃上清,加1ml PBS洗涤沉淀后,将细胞悬液转移至1.5mLEp 管中。

4> 3000r/min离心20 min,弃上清。

即得白细胞可以试试红细胞裂解液提供我的配方:氯化铵82.9克;重碳酸钾10.0克;EDTA0.37克;用三蒸水配成1升所有的细胞培养都应该坚守无菌操作原则2.分层后的确有3层,准确说来是4层,最下面是红细胞,上面的一层不应该是稍微混浊的白色,应该也比较透明,这一层上面就是我们需要的薄细胞层,最上面是血清3.细节:a.淋巴细胞分离液要避光保存b.就您的试验看来,淋巴细胞分离液的问题可能是最主要的c.首先再离心管中加入淋巴细胞分离液,然后把标本缓慢加在淋巴细胞分离液表面上,一定要缓慢小心操作,切不可混匀d.所有操作都应在无菌环境进行e.把离心管放入离心机是也应小心,不要太大幅度的摇幌离心管,当然离心后拿出来也要小心就这么多了吧,这个操作是不是很难的,比较基本祝您好运了!.参考方法:人外周血, 肝素抗凝(100U öm l) , 等量无血清培养液(或者PBS等缓冲液)稀释。

按1∶2 的体积比缓置于比重1. 077 g/m l 的淋巴细胞分离液, 1000 ×g 离心30 m in, 收集培养液2分离液界面上的单个核细胞。

于无血清培养液, 400×g 离心10 m in, 洗涤2次。

用培养液重新悬浮细胞并计数我也是最近要做所以查了一下,仅供分享,呵呵!一外周血白细胞的分离1> 取3ml正常人的外周血(枸橼酸钠抗凝)与等体积pbs混匀后小心的加于6ml白细胞分离液((33.9%泛影葡胺和9%Ficoll液按1:2.4体积比混合))液面上,1500r/min离心20 min。

ficoll分离液分离外周血单个核细胞操作原理

ficoll分离液分离外周血单个核细胞操作原理

ficoll分离液分离外周血单个核细胞操作原理一、前言外周血单个核细胞是指没有细胞核的血细胞,如红细胞、血小板等。

分离外周血单个核细胞是许多实验室和临床诊断中常用的一项操作。

而ficoll分离液则是分离外周血单个核细胞时常用的一种试剂。

本文将详细介绍ficoll分离液的原理及其在分离外周血单个核细胞中的应用。

二、ficoll分离液1. 概述ficoll分离液是由Ficoll(Ficoll-400)和盐水(PBS或Hanks平衡盐溶液)组成的一种密度梯度试剂。

它主要用于体外培养、淋巴细胞和其他白细胞的分离。

2. 原理ficoll分离液利用了不同密度的细胞在密度梯度中沉降速度不同的原理。

在密度梯度中,密度大的物质沉降速度快,而密度小的物质沉降速度慢。

当样品加入到ficoll分离液中时,样品中含有不同密度的各种成分,如红细胞、白细胞、淋巴细胞等。

这些成分会在密度梯度中沉降,最终形成一个由不同密度的层次组成的梯度。

在ficoll分离液中,Ficoll-400的密度大于外周血单个核细胞,但小于红细胞和粒细胞。

当样品经过离心后,外周血单个核细胞会沉降到ficoll分离液中的某一层次中,并被分离出来。

而其他成分则会沉降到不同的层次中。

3. 优点ficoll分离液具有以下优点:(1)样品处理方便:只需要将样品加入到ficoll分离液中进行离心即可。

(2)操作简单:只需要进行一次离心即可将外周血单个核细胞从其他成分中分离出来。

(3)高效:能够快速、高效地将外周血单个核细胞分离出来。

三、操作原理1. 实验材料(1)ficoll分离液;(2)外周血样本;(3)PBS或Hanks平衡盐溶液;(4)15ml或50ml的锥形试管;(5)离心机。

2. 操作步骤(1)将外周血样本加入到15ml或50ml的锥形试管中;(2)加入等体积的PBS或Hanks平衡盐溶液,轻轻混合;(3)将ficoll分离液缓慢加入到试管中,使其与样品充分混合;(4)将试管放入离心机中,以800~1000g的速度离心30分钟;(5)离心后,可以看到样品被分成了不同层次。

白细胞分离技术汇总

白细胞分离技术汇总

外周血白细胞的分离:细胞分离液有市售,有各种型号:白细胞、单核细胞淋巴细胞等分离液1> 取3ml正常人的外周血枸橼酸钠抗凝与等体积pbs混匀后小心的加于6ml白细胞分离液液面上,1500r/min离心20 min;或先将抗凝血离心,然后吸取中间白细胞层,再混以等体积pbs然后小心加于等体积细胞分离液液面上,离心同上2> 吸取中间云雾状白细胞,加3-4mlPBS后3000 r/min离心10 min;3> 弃上清,加1ml PBS洗涤沉淀后,将细胞悬液转移至管中;4> 3000r/min离心20 min,弃上清;即得白细胞可以试试红细胞裂解液提供我的配方:氯化铵克;重碳酸钾克;克;用三蒸水配成1升所有的细胞培养都应该坚守无菌操作原则2.分层后的确有3层,准确说来是4层,最下面是红细胞,上面的一层不应该是稍微混浊的白色,应该也比较透明,这一层上面就是我们需要的薄细胞层,最上面是血清3.细节:a.淋巴细胞分离液要避光保存b.就您的试验看来,淋巴细胞分离液的问题可能是最主要的c.首先再离心管中加入淋巴细胞分离液,然后把标本缓慢加在淋巴细胞分离液表面上,一定要缓慢小心操作,切不可混匀d.所有操作都应在无菌环境进行e.把离心管放入离心机是也应小心,不要太大幅度的摇幌离心管,当然离心后拿出来也要小心就这么多了吧,这个操作是不是很难的,比较基本祝您好运了.参考方法:人外周血, 肝素抗凝100U öm l , 等量无血清培养液或者PBS等缓冲液稀释;按1∶2 的体积比缓置于比重1. 077 g/m l 的淋巴细胞分离液, 1000 ×g 离心30 m in, 收集培养液2分离液界面上的单个核细胞;于无血清培养液, 400×g 离心10 m in, 洗涤2次;用培养液重新悬浮细胞并计数我也是最近要做所以查了一下,仅供分享,呵呵一外周血白细胞的分离1> 取3ml正常人的外周血枸橼酸钠抗凝与等体积pbs混匀后小心的加于6ml白细胞分离液%泛影葡胺和9%Ficoll液按1:体积比混合液面上,1500r/min离心20 min;或先将抗凝血离心,然后吸取中间白细胞层,再混以等体积pbs然后小心加于等体积细胞分离液液面上,离心同上2> 吸取中间云雾状白细胞,加3-4mlPBS后3000 r/min离心10 min;3> 弃上清,加1ml PBS洗涤沉淀后,将细胞悬液转移至管中;4> 3000r/min离心20 min,弃上清;即得白细胞二自然沉降法本法是利用血細胞自然沉降率的分離法,採集血液後應及時抗凝,通常選用肝素抗凝法;肝素能阻止凝血酶原轉化為凝血酶,從而抑制纖維蛋白原形成纖維蛋白而防止血液凝固;操作原則是將含抗凝血的試管直立靜置室溫30~60min後,血液分成明顯三層,上層為淡黃色血漿,底層為紅細胞,緊貼紅細胞層上面的灰白層為白細胞,輕輕吸取即得富含白細胞的細胞群,離心洗滌後加入少量蒸餾水或含氯化銨的Gey溶液,經短時間的低滲處理,使紅細胞裂解,經過反復洗滌可得純度較高的白細胞懸液;。

人外周血单个核细胞的采集、分离和保存标准

人外周血单个核细胞的采集、分离和保存标准

人外周血单个核细胞的采集、分离和保存标准全文共四篇示例,供读者参考第一篇示例:人外周血单个核细胞(Peripheral Blood Mononuclear Cells, PBMCs)的采集、分离和保存是在医学研究和临床诊断中非常重要的步骤。

PBMCs是一类具有免疫功能的细胞,包括淋巴细胞、单核细胞和浆细胞,能够在机体的免疫应答中发挥重要作用。

为了保证试验结果的准确性和可靠性,对PBMCs的采集、分离和保存必须按照相应的标准进行操作。

一、采集1. 选择合适的采集方法:一般常用的采集方法包括静脉抽血和手指取血等,静脉抽血常用于采集较多血液量的情况,手指取血则适用于采集少量血液的情况。

2. 确保采集操作标准化:在采集PBMCs的过程中,应该遵守严格的消毒和无菌操作规程,以防止细菌和病毒的污染。

3. 采集完整的血液样本:为了确保PBMCs的纯度和稳定性,应该尽量避免气泡和血细胞破损导致的RNA降解等情况。

二、分离1. 使用适当的分离方法:一般常用的PBMCs分离方法包括密度梯度离心和磁珠分选等,密度梯度离心适用于分离较大量的PBMCs,磁珠分选则适用于分离特定类型的细胞。

2. 选择合适的分离液:密度梯度离心中一般使用的分离液包括Ficoll和Percoll等,磁珠分选中则需要选择特定的磁珠标记物。

3. 保证分离效率和纯度:在PBMCs的分离过程中,应该确保细胞的分离效率和纯度,避免细胞的损失和杂质的混入。

三、保存1. 选择合适的保存条件:PBMCs的保存条件包括温度、储存液和容器等要素,应该选择适合PBMCs存活的条件进行保存。

2. 快速冻存PBMCs:为了避免细胞的降解和失活,应该在采集和分离PBMCs后尽快将其冻存。

3. 定期监测保存效果:在存储PBMCs的过程中,应该定期监测PBMCs的存活率和纯度,以确保PBMCs的质量和稳定性。

对于人外周血单个核细胞的采集、分离和保存,在操作的过程中应该严格按照相应的标准进行,以确保PBMCs的质量和稳定性,为后续的研究和临床应用提供可靠的基础。

人外周血白细胞分离液使用说明

人外周血白细胞分离液使用说明

人外周血白细胞分离液使用说明一、试剂的制备1.将人外周血样品采集入采血管中,并将其与抗凝剂轻轻混匀。

2. 采用无菌条件下,将采集的外周血放入离心管中,以2000 rpm的转速离心10分钟。

3.弃去上清液,保留沉淀,注意不要干扰底部白细胞沉积。

4. 向离心管中加入合适体积的分离液,通常建议将1 ml分离液加入约2 ml外周血样品中。

5. 使用离心机以2000 rpm的速度离心10分钟。

6.弃去上清液,并将其中的底泥转移到新离心管中。

7.向新的离心管中加入平衡液,与底泥充分混匀。

8. 使用离心机以2000 rpm的速度离心5分钟。

9.弃去上清液,并将底泥转移到合适的容器中。

10.向底泥中加入适量的培养基,细胞培养基通常是最常用的培养基。

二、试剂的存储1.试剂储存温度通常在2-8摄氏度之间。

2.开封后的试剂,建议在使用之前将其置于室温下适当回温。

3.试剂一旦开封,应避免重复的冻融循环,以防止对试剂活性造成损害。

4.尽量避免接触光线,以防止试剂活性的降低。

三、使用注意事项1.使用前,请确认试剂是否过期,过期试剂不得使用。

3.使用前,应先将分离液均匀搅拌,以保证其活性。

4.在试剂使用过程中,尽量避免受到湿气和阳光的影响。

5.将待提取的外周血样品严格根据提取方法进行操作,以获得高质量的白细胞。

6.在离心过程中,注意离心管的盖子要盖好,防止离心时离心液的外溢。

7.实验过程中,尽量避免反复提取,以避免对白细胞活性造成损害。

8.在培养细胞的过程中,注意细胞培养基的选择和培养条件的控制,以保证白细胞的健康生长。

四、注意事项1.本试剂仅供科研使用,禁止用于临床诊断等用途。

3.请按照相关实验室安全操作规范进行操作,做好个人防护措施。

4.请勿将试剂倒入下水道或垃圾箱中,应根据相关规定进行处理。

总结:通过以上的使用说明,我们可以了解到人外周血白细胞分离液的使用方法以及使用注意事项。

正确和规范使用试剂可以帮助我们获得高质量的分离液和细胞,进一步推动科学研究的进展。

外周血单个核细胞的分离

外周血单个核细胞的分离

外周血单个核细胞的分离
概述
外周血单个核细胞是一种白细胞。

通过分离单个核细胞,可以进行多种分子生物学实验和临床应用。

本文将介绍两种分离外周血单个核细胞的方法。

方法
密度梯度离心
1.将外周血收集到 EDTA 管中。

2.将 3 毫升 Ficoll-Paque™ PLUS 加入到 15 毫升离心管中。

3.轻轻加入同等体积的外周血到离心管,保持液面平整。

4.以 400g 的速度离心 40 分钟。

在离心温度达到室温前离心室门不得
打开。

5.用温和的力度将上清液吸出到新的离心管中,并在 1200g 的速度下
洗涤 2-3 次。

6.已经分离的单个核细胞可以在非抗凝血样上重悬。

此过程中加入生长
培养基以维持细胞质稳定。

磁性负选择法
1.将外周血收集到 EDTA 管中。

2.加入红细胞淋巴细胞分离液,根据厂家指南染色。

3.加入磁性微珠混合液,使单个核细胞与微珠组合。

4.放入磁场中过滤掉未与微珠组合的细胞及其他血细胞。

5.经过多次洗涤和离心,单个核细胞可以在非抗凝血样上重悬。

此过程
中加入生长培养基以维持细胞质稳定。

密度梯度离心法和磁性负选择法是分离外周血单个核细胞的两种有效方法。

这些方法对于多种分子生物学实验和临床应用都非常有用。

人外周血中性粒细胞分离液试剂盒使用说明

人外周血中性粒细胞分离液试剂盒使用说明

人外周血中性粒细胞分离液试剂盒使用说明货号:P9040规格:2×200mL/kit保存:18℃-25℃保存,有效期两年。

人外周血中性粒细胞分离液试剂盒易感染细菌,需无菌条件下操作。

无菌条件下操作,启封后常温保存。

如4℃保存,本分离液易出现白色结晶,影响分离效果。

试剂盒内容:试剂A200mL试剂C200mL清洗液(赠品)200mL红细胞裂解液(赠品)100mL说明书1份操作步骤:情况A:血液样本小于5mL时,实验方法如下:1.取一支15mL离心管,先加入3mL试剂A后加入2mL试剂C,制成梯度界面。

2.用吸管小心吸取血液样本加于分离液之液面之上,400-500g,离心20-30min(注:如改变血液样本及分离液用量,需相应调整离心力及离心时间,具体离心条件需客户自行摸索,以达到最佳分离效果。

)3.离心后,离心管中将出现两层环状乳白色细胞层,上层为单个核细胞,下层细胞为中性粒细胞。

4.用吸管小心吸取分离液中的中性粒细胞层,如有红细胞混杂则加入适量的红细胞裂解液,将红细胞裂解,即得目的细胞。

5.将获得的细胞层移至另一15mL离心管中,向所得离心管中加入10mL清洗液,混匀细胞。

6.250g,离心10min。

7.弃上清。

8.用5mL清洗液重悬所得细胞。

9.250g,离心10min。

10.重复7、8、9,弃上清后以0.5mL后续实验所需相应液体重悬细胞。

情况B:血液样本大于等于5mL时,实验方法如下:1.取一支适当的离心管,依次小心加入试剂A、试剂C(试剂A与试剂C体积比为3:2,试剂总量与稀释后的样本量相等),制成梯度界面。

2.将血液样本小心加于分离液之液面上,450-650g(最大离心力可至1000g),离心20-30min。

(注:根据血液样本量确定离心条件,血液量越大,离心力越大,离心时间越长,具体离心条件需要客户自己摸索,以达到最佳分离效果。

加入血液样本后,样本及分离液总体积不得超过离心管总体积的三分之二)。

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人外周血白细胞分离液试剂盒
规格:200mL/kit
保存:本产品对光敏感,应该室温避光储存,保质期2年。

无菌开封后,保存于室温。

试剂盒组成:
各种动物外周血白细胞分离液
200mL 细胞洗涤液
200mL 红细胞裂解液100mL
操作步骤:
1.取新鲜抗凝全血(EDTA 、枸橼酸钠或肝素抗凝均可)或者去纤维蛋白血液。

2.在离心管中加入适量分离液(血液体积小于5mL 时,加入5mL 分离液;大于等于5mL ,加入等体积分离液。

但二者的总体积不能超过离心管的三分之二,否则会影响分离效果),将血液平铺到分离液液面上方,注意保持两液面界面清晰。

(可以使用巴氏德吸管
吸取血液,然后将血液小心的平铺于分离液上,因为两者的密度差
异,将形成明显的分层界面。

如果样品较多,加样的时间较长,在
离心之前出现红细胞成团下沉属正常现象。


3.室温,水平转子500~1000g ,离心20~30min (血液的体积越大所
需的离心力越大,离心时间越长,最佳的分离条件需摸索,离心转
速最大不超过1200g )。

4.离心后将出现明显的分层:最上层是稀释的血浆层;血浆与分离
液之间是淋巴细胞层;分离液中为粒细胞层(个体差异或者是分离
条件不同,粒细胞层可能分离不明显);最下层为红细胞层。

5.小心的吸取淋巴细胞层及分离液层细胞到15mL 洁净的离心管
中,10mL PBS 或细胞洗涤液洗涤细胞。

250g ,离心10min (如有红
细胞混杂则加入适量红细胞裂解液)
6.弃上清,5mL 的PBS 或细胞清洗液重悬细胞,250g ,离心10min 。

7.重复步骤6
8.弃上清,细胞重悬备用。

注意事项:
A.开封前颠倒混匀,本分离液为无菌产品,为延长分离液保存时间,请在无菌条件下启封,避免微生物污染。

B.分离液使用时应始终保持室温(18℃~25℃),如室内温度较低,可将分离液预热。

4℃或者是温度较低的条件下离心,可能会导致白膜层中红细胞污染加重。

C.血液样本最好为新鲜抗凝血(采血2h 以内),为保持淋巴细胞的活性,应避免冷冻和冷藏。

D.血液样本不需稀释,直接进行分离即可。

E.稀释血液或洗涤细胞,不可使用含Ca 、Mg 离子的缓冲液及培养液,其成分会导致血细胞凝集,分离示意图
血浆层红细胞层淋巴细胞粒细胞分离液层
大大降低细胞得率及纯度。

F.部分塑料制品(如聚苯乙烯)因其带有的静电作用,可能会导致细胞挂壁,影响分离效果。

G.血液样本的粘稠度或者是温度差异,可能会影响分离效果,可以调节离心转数和离心时间,摸索最佳的分离条件。

H.如果要进一步对分离的细胞进行培养,那在收集血液和分离过程中,注意无菌操作,避免微生物污染。

I.不同动物血液在不同比重分离液中的细胞离散系数及细胞带电不同,用户在制定分离液时应提供所需分离液的比重、动物种属及被分离细胞的名称。

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