细胞膜脂肪酸成分检测
主要脂肪酸组成指标检测项目
主要脂肪酸组成指标检测项目
主要脂肪酸组成指标检测项目有水分、对羟基苯甲酸乙脂、氨基酸、灰分、膳食纤维、粗纤维、塑化剂、硝酸盐、亚硝酸盐、过氧化值、维生素、二氧化硫、酸价、氯化钠、有机酸、咖啡因、折光率、苯并[a]芘、脂肪酸、总碱度、可溶性固形物、总酸、总脂、总砷、蛋白质、还原糖、粒度、脂肪、总汞及有机汞、相对密度、重金属、甲醇、乙醇、PH 值、胆固醇、黄曲霉毒素B1、铅、食品添加剂、其它污染物等。
脂肪酸按碳链长短可分为短链脂肪酸（2-4个碳原子）、中链脂肪酸（6-12个碳原子）和长链脂肪酸（14个以上碳原子）。
按碳氢链饱和与不饱和可分为饱和脂肪酸、单不饱和脂肪酸和多不饱和脂肪酸。
磷脂脂肪酸(PLFAs)谱图分析技术
微生物生态学的研究方法——磷脂脂肪酸分析（PLFA）【内容摘要】定量描述微生物群落是微生物生态学的难题之一。
应用传统的微生物培养方法和显微技术, 需要在选择性培养基上培养微生物, 即首先从环境样品中分离出纯菌株, 再对该菌株进行一系列的生理生化分析。
文章综述了磷脂脂肪酸谱图分析法在微生物生态研究中的应用，包括估算微生物生物量、确定群落结构、指示特定微生物，指示生理和营养状况等，并指出此种方法存在的问题及改进方法。
【关键词】磷酸脂肪酸微生物生态学应用及发展一、引言：环境中微生物的种类和数量是及其丰富的[1]，微生物能把有机质作为营养源转化为组成物质和能量，它们在环境治理过程中扮演着极其重要的作用。
分离和鉴定处理系统中的优势菌，了解特定环境下微生物群落的种群分布、遗传多样性及其动态变化规律和认识微生物群落的稳定性及功能菌的作用，是环境微生物学研究的重要内容。
传统的微生物鉴定和群分析方法建立在微生物纯种培养分离基础上，但自然环境中有 99%以上的微生物还不能通过人工培养，在微生物的分析和研究工作中具有很大的局限性。
二、正文：1．磷脂脂肪酸(PLFAs)谱图分析技术概述1.1 PLFA 概念、分类和命名磷脂是含有磷酸基团的脂质，目前已发现了1000多种磷脂类物质。
磷脂作为微生物细胞膜主要成分，是甘油分子的第3位羟基被磷酸或其他羟基所酯化形成的。
其结构特点是：具有由磷酸相连的取代基团（含氨碱或醇类）构成的亲水头（hydrophilic head）和由脂肪酸链构成的疏水尾（hydrophobictail）。
PLFAs(磷脂脂肪酸，phosphohpids fattyacids)谱图分析方法的原理是基于磷脂——几乎是所有生物细胞膜的重要组成部分，细胞中磷脂的含量在自然条件下(正常的生理条件下)恒定[ 2 ]，其长链脂肪酸的形式——磷脂脂肪酸PLFAs 可作为微生物群落的标记物。
此外，磷脂不能作为细胞的贮存物质，在细胞死亡后将很快降解(厌氧条件下约需2d，而好氧条件下约需12—16d)m，可代表微生物群落中“存活”的那部分群体阁。
从人和动物血浆及红细胞膜脂肪酸谱探讨脂质代谢实验模型动物选取
家兔 相 比 ， 鼠和 人 血 浆 及 红 细 胞 膜 脂 肪 酸谱 较 接 近 ， 此 ， 选 取 脂 质 代 谢 实 验 动 物 时 ， 优 先 考 虑 大 鼠 为 模 型 大 因 在 应
【 键 词 】 人 ； 物 ； 肪 酸 ； 浆 ； 细 胞 膜 ； 型 动 物 选 择 关 动 脂 血 红 模 【 图分 类 号 ｌＲ ３ 中 ３２ 【 献 标 识 码 】Ａ 文 【 章 编 号 】１０ —８７２０ ）２０９ — 文 ０５４４ （０９ ０—０７０ ６
２０ ０ ９年 ４月
中国 实 验 动 物 学 报
ＡＣＴ ＢＯＲ ＯＲＩ Ｍ Ａ ＬＡ ＡＴ Ｕ ＡＮＩ ＡＬ Ｓ Ｓ Ｉ ＮＴ Ａ Ｉ Ｃ Ｍ Ｉ Ｃ Ｅ Ｉ Ｓ ＮＩ Ａ
Ａ ｒ ，０ ９ ｐｉ ２ ０ ｌ Ｖ０ ． ７ Ｎｏ ２ １１ ．
、
第 １ ７卷
第 ２期
研 究报告 ￥
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脂肪酸测定原理
脂肪酸测定原理
脂肪酸测定是一种常用的生化分析方法，用于测量样品中的脂肪酸含量。
脂肪酸是一种长链的羧酸，通常由数个碳原子组成。
脂肪酸在生物体内广泛存在，是细胞膜的组成成分，也是能量的重要来源。
脂肪酸测定的基本原理是利用该化合物的酸性特性，与强碱反应形成相应的盐。
常用的测定方法有酸碱中和法、比重法、色度法等。
在酸碱中和法中，首先将待测样品中的脂肪酸与硷溆作用，生成相应的盐。
随后，利用酸碱指示剂来测定反应终点的pH变化，从而确定生成的脂肪酸盐的浓度。
这种方法简单快速，适用于大批量样品的测定。
比重法是利用脂肪酸盐的密度与浓度之间的关系来进行测定。
通过测量溶液的比重，可以确定其中脂肪酸盐的含量。
这种方法需要仪器设备的支持，但具有准确性高的优点。
色度法是一种常用的分析方法，通过脂肪酸与某些特定试剂发生反应，生成有色产物，利用光度计测定产物的吸收值来间接测定样品中脂肪酸的含量。
这种方法操作简便，结果可靠，广泛应用于实验室和工业领域。
总而言之，脂肪酸测定是通过不同的原理来测量样品中脂肪酸的含量。
根据具体的实验要求和设备条件，可以选择适合的方法进行脂肪酸的测定。
脂肪酸皂液检测方法-概述说明以及解释
脂肪酸皂液检测方法-概述说明以及解释1.引言1.1 概述脂肪酸皂液检测方法是一种常用的分析技术，用于测定样品中的脂肪酸成分。
脂肪酸是构成脂质的重要组成部分，也是生物体内重要的能量来源。
因此，准确测定脂肪酸成分对于食品安全、生物医学研究和营养学等领域具有重要意义。
在脂肪酸分析中，通常会选择制备脂肪酸皂液。
脂肪酸皂液是通过将脂肪酸与碱反应生成相应的肥皂形式，使得脂肪酸溶于水中，便于提取和测定。
脂肪酸皂液检测方法主要包括原理和步骤两个方面。
在测定脂肪酸皂液的方法中，主要依据脂肪酸的理化性质和反应特点来进行分析。
脂肪酸分子结构中含有羧基，其在碱性条件下会与碱反应生成相应的盐。
这种盐的形式溶于水中，便于后续的操作和检测。
通过测定脂肪酸盐的浓度或者其它相关参数，可以获得样品中脂肪酸成分的含量和组成。
脂肪酸皂液检测方法的步骤包括样品制备、反应反应、结果测定等。
首先，将样品中的脂肪酸提取出来，并进行适当的处理。
然后，在适当的条件下，将脂肪酸与碱反应生成脂肪酸盐。
最后，通过一系列测定手段，如滴定法、色谱法或光谱法等，测定脂肪酸盐的含量或相关参数，从而确定样品中脂肪酸的组成和含量。
总之，脂肪酸皂液检测方法是一种常用且有效的分析技术，在食品、医学和营养学等领域具有广泛的应用前景。
本文将重点介绍脂肪酸皂液检测方法的原理和步骤，并探讨其优势和未来发展趋势。
通过本文的介绍，读者将能够更加全面地了解和应用脂肪酸皂液检测方法，为相关领域的研究和实验提供参考和借鉴。
1.2文章结构文章结构部分的内容如下：文章结构：我们的文章将按照以下结构来进行组织和阐述脂肪酸皂液检测方法：1. 引言1.1 概述1.2 文章结构1.3 目的2. 正文2.1 脂肪酸皂液检测方法的原理2.2 脂肪酸皂液检测方法的步骤3. 结论3.1 总结脂肪酸皂液检测方法的优势3.2 展望脂肪酸皂液检测方法的未来发展在文章引言部分，我们将提供对脂肪酸皂液检测方法的概述，包括其应用领域和重要性。
子宫内膜癌患者外周血红细胞膜脂肪酸组分变化及其与发病风险的关系
子宫内膜癌患者外周血红细胞膜脂肪酸组分变化及其与发病风险的关系李杰萍1，邹建平2，江絮萍3，谢榕21 武警福建省总队医院检验与病理科，福州350003；2 福建省肿瘤医院妇科肿瘤外科；3 武警福建省总队医院妇产科摘要：目的 探讨外周血红细胞膜脂肪酸组分变化与子宫内膜癌（EC ）发生风险的关系。
方法 收集91例EC 患者（EC 组）和203例健康对照志愿者（对照组）的空腹外周血，分离红细胞，利用气相色谱—质谱分析法检测红细胞膜脂肪酸组分，并分析脂肪酸组分变化对EC 发生风险的影响。
结果 EC 组和对照组外周血红细胞膜脂肪酸占比由高到低均为总饱和脂肪酸、总多不饱和脂肪酸和总单不饱和脂肪酸。
EC 组外周血红细胞膜总饱和脂肪酸占比高于对照组，总单不饱和脂肪酸占比低于对照组（P 均<0.05），两组总多不饱和脂肪酸占比比较差异无统计学意义（P >0.05）。
在外周血红细胞膜饱和脂肪酸中，EC 组肉豆蔻酸C14：0、硬脂酸C18：0、山俞酸C22：0、木焦油酸C24：0占比均高于对照组，花生酸C20：0占比低于对照组（P 均<0.05）。
在外周血红细胞膜单不饱和脂肪酸中，EC 组棕榈油酸C16：1n7、神经酸C24：1n9占比均高于对照组，油酸C18：1n9占比低于对照组（P 均<0.05）。
在外周血红细胞膜ω-6多不饱和脂肪酸中，EC 组亚油酸C18：2n6（LA ）低于对照组，g -亚麻酸C18：3n6（GLA ）、花生二烯酸C20：2n6、花生三烯酸C20：3n6占比均高于对照组（P 均<0.05）；在外周血红细胞膜ω-3多不饱和脂肪酸中，EC 组α-亚麻酸C18：3n3（ALA ）占比低于对照组，花生四烯酸C20：4n6（AA ）/二十二碳六烯酸C22：6n3（DHA ）占比高于对照组（P 均<0.05）。
二分类Logistic 回归分析结果显示，外周血红细胞膜总饱和脂肪酸，饱和脂肪酸中的肉豆蔻酸C14：0、山俞酸C22：0、木焦油酸C24：0，单不饱和脂肪酸中的棕榈油酸C16：1n7、神经酸C24：1n9，多不饱和脂肪酸中的GLA 占比升高均会增加EC 的发病风险（OR 值分别为2.14、2.36、2.60、3.21、3.25、4.81、2.74，P 均<0.05）；外周血红细胞膜饱和脂肪酸中的花生酸C20：0、单不饱和脂肪酸中的棕油酸C18：1n9及多不饱和脂肪酸中的LA 、ALA 占比降低均会增加EC 的发病风险（OR 值分别为0.38、0.34、0.21、0.51，P 均<0.05）。
普伐他汀调节血脂及对血小板、红细胞膜脂肪酸成份影响的研究
普伐他汀调节血脂及对血小板、红细胞膜脂肪酸成份影响的研究华嘉临;李肖蓉;邵力正;王强【期刊名称】《江苏医药》【年(卷),期】2000(026)010【摘要】目的观察普伐他汀(P)调脂疗效及对血小板、红细胞膜必需脂肪酸成份及多不饱和脂肪酸(PUFA)平衡的影响.方法对30例原发性高脂血症者应用P 12周.治疗前后分别测定血脂、血小板及红细胞膜花生四烯酸(AA)、廿碳五烯酸(EPA)、廿二碳六烯酸(DHA).结果治疗后血清胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)、低密度脂蛋白(LDL-C)、载脂蛋白B100(ApoB100)明显降低(P＜0.05～0.001);血小板、红细胞膜AA/EPA、AA/DHA比值亦明显降低(P＜0.05～0.01),且与TG、TC、LDL-C降低均呈显著正相关(P＜0.001).结论 P除有效调脂外,还能影响血小板、红细胞膜脂肪酸成份及其比率,对防治动脉粥样硬化有重要意义.【总页数】2页(P803-804)【作者】华嘉临;李肖蓉;邵力正;王强【作者单位】214002,无锡市第一人民医院;214002,无锡市第一人民医院;214002,无锡市第一人民医院;214002,无锡市第一人民医院【正文语种】中文【中图分类】R9【相关文献】1.普伐他汀对红细胞膜n-6、n-3脂肪酸成分影响的研究 [J], 谢卫星;邵力正;李肖蓉;华嘉临2.微粒化非诺贝特调节血脂及对血小板、红细胞膜脂肪酸成分影响的研究 [J], 李肖蓉;邵力正;王强;华嘉临3.普伐他汀非诺贝特鱼油调节血脂及对SOD MDA影响的研究 [J], 李肖蓉;邵力正4.原发性高脂血症患者血小板,红细胞膜脂肪酸成分测定 [J], 李肖蓉;邵力正5.普伐他汀、非诺贝特、鱼油调节血脂及对血小板、红细胞膜脂肪酸成份影响的研究 [J], 李肖蓉;邵力正;王强;华嘉临因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
细胞不饱和脂肪酸的生物功能及其检测方法
细胞不饱和脂肪酸的生物功能及其检测方法细胞不饱和脂肪酸是一种具有重要生物功能的化合物。
它能够参与细胞膜的组成和维护、调节细胞信号传递、改善血液循环和降低血脂等等。
因此，不饱和脂肪酸的含量和种类对人体健康具有重要影响。
本篇文章将探讨细胞不饱和脂肪酸的生物功能及其检测方法。
第一部分：细胞不饱和脂肪酸的生物功能1. 组成细胞膜细胞膜是细胞的重要组成部分，不饱和脂肪酸在其中发挥着重要作用。
不饱和脂肪酸能够增加细胞膜的流动性和弹性，使细胞膜对氧气和其他生物活性物质的通透性增加。
此外，细胞膜的高度含量和多样化的不饱和脂肪酸种类还能够增加其抗氧化能力和稳定性，有助于减少细胞膜的氧化和脂质过氧化损伤。
2. 调节细胞信号传递细胞信号传递是细胞内外环境信息交流的过程，不饱和脂肪酸在其中发挥着重要作用。
例如，二十碳五烯酸（AA）和二十二碳六烯酸（DHA）等多种不饱和脂肪酸能够在膜表面形成许多次生信号分子，进而通过激活或抑制下游信号通路影响细胞生物学效应。
3. 改善血液循环和降低血脂不饱和脂肪酸有助于改善血液循环和降低血脂。
例如，乙酰基肝素（EPA）和DHA等多种不饱和脂肪酸能够降低血浆甘油三酯、胆固醇和低密度脂蛋白等脂质含量，同时还能减少血小板聚集和血管内皮细胞的黏附，从而降低动脉粥样硬化和心脑血管疾病的发病率。
第二部分：细胞不饱和脂肪酸的检测方法细胞不饱和脂肪酸的检测方法多种多样，例如，气相色谱法、液相色谱法、荧光法、质谱法等。
本部分将介绍其中最常见的两种方法。
1. 液相色谱法液相色谱法是一种分离和测定化合物的方法，具有灵敏、准确、重复性好等特点。
其基本原理为利用不同物质在液相静相界面处的分配系数差异，通过液体流动进行混合和分离。
目前常用的检测不饱和脂肪酸的液相色谱法主要包括正相色谱法和反相色谱法两种。
2. 气相色谱法气相色谱法是一种基于化合物的挥发性差异性进行分离和测定的方法，具有高分辨率、高灵敏度、高选择性和快速分析等优点。
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细胞膜脂肪酸成分检测
细胞膜脂肪酸提取：
取对数生长期的发酵液，4°C，8000 r/min离心10 min后，去除上清，而后烘箱烘干，研磨成粉末状后分装成每管0.1 g, 加入2.5 mL的1.0 mol / L的NaOH-甲醇的溶液并在70°C孵育2 h。
在室温下冷却10min后，加入2.5 mL 25％的三氟化硼- 甲醇溶液中并在65°C温育2小,在室温下10分钟冷却后，加入2 mL 正己烷溶液涡旋混合1分钟。
然后加入2mL饱和的NaCl溶液静置1分钟。
将离心管在3800 r/min离心1分钟。
加入无水硫酸钠，收集上清。
而后将上清样品打气相，来分析检测细胞膜的脂肪酸成分。
细胞膜脂肪酸成分检测：
Agilent6850 气相色谱仪，氢火焰离子化检测器（FID），25 m Ultra-2 色谱柱，二级程序升温：起始温度170°C，每分钟升高5°C至260°C，在以每分钟升高40°C升至310°C，维持1.5 min。
进样口温度250°C，载气为氢气，流速0.4 mL/ min，柱压9.00 psi分流进样模式，分流比1︰100，进样量2 μl。
检测器温度300°C，氢气流速30 mL/ min，空气流速400 mL/ min,尾吹气（氮气）流速30 mL/ min。