第二章 细胞生物学实验技术

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第二章细胞生物学的研究技术和方法

第二章细胞生物学的研究技术和方法

第二章细胞生物学的研究技术和方法一、选择题:1.在光学显微镜下所观察到的组织或细胞结构一般称为A.显微结构B.超微结构C.亚显微结构D.分子结构2.研究细胞的超微结构一般要利用下列哪种技术A.光学显微镜技术B.电子显微镜技术C.X射线衍射技术D.离心技术3.利用不同性质有机染料可对细胞中不同成分选择性染色,下列哪种结果有误A.碘液可使口腔上皮细胞的细胞质和细胞核呈深浅不同的棕黄色B.吉姆萨染液可使细胞核或染色体呈紫红色或桔红色C.甲基绿可使RNA分子呈蓝绿色D.派洛宁可使RNA分子呈红色4.适于观察无色透明活细胞显微结构的光学显微镜是A.相差显微镜B.暗视野显微镜C.荧光显微镜D.偏振光显微镜5.光学显微镜的分辨率(最小分辨率)可达A. 0.1?mB. 0.2?mC. 0.3?mD. 0.4?m6.关于电子显微镜,下列哪项有误A.组织或细胞在透射电镜观察前均需做超薄切片B.分为透射式和扫描两类C.分辨率最高可达0.2nmD.利用电子束作照明源7.关于透射式电子显微镜,下列哪项叙述是错误的A.适于观察细胞的外表形貌B.以电子束作为光源C.电子透过标本后在荧光屏上成像D.分辨率较高8.关于扫描电子显微镜,下列哪项有误A.20世纪60年代才正式问世B.景深长,成像具有强烈立体感C.电子扫描标本使之产生二次电子,经收集放大后成像D.适于观察细胞的内部构造9.福尔根反应(Feulgen reaction)是一种经典的细胞化学染色方法,常用于细胞内A.蛋白的分布与定位B.脂肪的分布与定位C.酸性磷酸酶的分布与定位D. DNA的分布与定位10.研究组织或细胞显微结构的主要技术是A.光镜技术B.电镜技术C.离心技术D.电泳技术11.研究细胞超微结构的主要技术A.光镜技术B.电镜技术C.离心技术D.电泳技术12.分离细胞内不同细胞器的主要技术是A.光镜技术B.电镜技术C.离心技术D.电泳技术13.利用放射性同位素标记物能使照相乳胶感光的原理来探测细胞内某种物质的含量与分布的方法是A.放射自显影技术B.免疫荧光镜技术C.免疫电镜技术D.原位杂交技术14.用荧光染料标记的抗体处理细胞后在荧光显微镜下对细胞中特殊分子进行定位属于A.放射自显影技术B.免疫荧光镜检术C.免疫电镜技术D.原位杂交技术15.直接取材于机体组织的细胞培养称为A.细胞培养B.原代培养C.传代培养D.细胞克隆16.当体外培养的细胞增殖到一定密度后以1:2以上的比例转移到几个容器中进行再培养,称为A.细胞培养B.原代培养C.传代培养D.细胞克隆17.模拟体内的条件使细胞在体外生存、生长和繁殖的过程称为A.细胞培养B.原代培养C.传代培养D.细胞克隆18.分离出单个细胞在适当的条件下使之增殖成均一的细胞群体称为A.细胞培养B.原代培养C.传代培养D.细胞克隆19.体细胞杂交又称为A.细胞培养B.原代培养C.传代培养D.细胞融合20.适于观察细胞内超微结构的显微镜是A.透射电镜B.扫描电镜C.荧光显微镜D.倒置显微镜21.从血液中分离收集血细胞一般利用A.流式细胞分析仪B.超速离心机C.高速离心机D.低速离心机22.从破碎的细胞中分离收集线粒体一般所需的仪器是A.流式细胞分析仪B.超速离心机C.高速离心机D.低速离心机23.要观察肝组织中的细胞类型及排列,应先制备该组织的A.切片B.滴片C.涂片D.装片24小鼠骨髓细胞的染色体标本一般制备成细胞的()来进行观察。

第二章 细胞生物学研究方法

第二章 细胞生物学研究方法

第二章细胞生物学研究方法(the research method in the cell biology)教学目的1、了解主要工具和常用方法,侧重掌握基本原理和基本应用;2、认识工具和方法与学科发展的相关性。

教学内容本章从以下5个方面介绍了细胞生物学的研究方法:1.显微成像技术2.细胞化学技术3.细胞分选技术4.细胞工程技术5.分离技术6.分子生物学方法计划学时及安排本章计划3学时。

教学重点和难点生命科学是实验科学,它的很多成果都是通过实验才得以发现和发展的。

许多细胞生物学的重要进展以及新概念的形成,往往来自新技术的应用。

因此,方法上的突破,对于理论和应用上的发展具有巨大的推动作用,这是学习本章应确立的基本思想。

1.显微成像包括直接成像和间接成像。

显微技术是细胞生物学最基本的研究技术, 包括光学显微技术和电子显微技术。

在光学显微技术中要掌握几种常用显微镜成像的基本原理,包括普通双筒显微镜、荧光显微镜、相差显微镜、暗视野显微镜、倒置显微镜。

电子显微镜是研究亚显微结构的主要工具, 透射和扫描电镜的是两类主要的电子显微镜, 对其基本结构、工作原理和样品制备方法则是学习的重点。

2.细胞化学技术介绍了酶细胞化学技术、免疫细胞化学技术、细胞分选技术, 其中流式细胞分选技术是细胞生物学和现代生物技术中的重要技术, 应重点掌握。

3.细胞工程技术是细胞生物学与遗传学的交叉领域,主要利用细胞生物学的原理和方法,结合工程学的技术手段,按照人们预先的设计,有计划地改变或创造细胞遗传性的技术。

包括体外大量培养和繁殖细胞,或获得细胞产品、或利用细胞体本身。

主要内容包括:细胞融合、细胞生物反应器、染色体转移、细胞器移植、基因转移、细胞及组织培养。

4.分离技术是一大类技术的总称,包括细胞组分的分离和生物大分子的分离, 应掌握各种分离技术的原理和用途。

本章对分子生物学方法作了简要介绍, 为今后的学习奠定基础。

简言之,本章教学重点是仪器方法的基本原理和基本应用;教学难点是电镜制样及分子杂交技术。

细胞生物学实验技术

细胞生物学实验技术

细胞生物学实验技术细胞生物学实验技术是现代生命科学研究中的关键环节,它为研究人员提供了深入了解细胞结构、功能和相互作用的途径。

本文将重点介绍一些常见的细胞生物学实验技术,包括细胞培养、染色技术、分离技术和显微镜观察等。

一、细胞培养技术细胞培养是一项基础性技术,它可以将细胞从体内取出并在适当的培养基中进行增殖和维持。

细胞培养的首要任务是提供适当的培养基,其中含有必需的营养物质、生长因子和适当的温度、湿度和气体条件。

细胞培养技术广泛应用于细胞生物学实验、组织工程、药物研发等领域。

二、染色技术染色技术是细胞生物学实验中常用的方法之一,它使研究者能够对细胞内各种结构和分子进行可视化观察。

常用的染色方法包括荧光染色、酶标染色和核酸染色等。

荧光染色利用荧光标记的抗体或染料,可使特定的细胞结构或分子在显微镜下发出荧光信号,从而观察其位置和表达水平。

酶标染色则通过酶与底物的反应,使细胞或组织显示出颜色等信号。

核酸染色则利用特定染料与细胞核酸结合,以观察DNA或RNA的分布情况。

三、分离技术分离技术在细胞生物学实验中具有重要作用,它可以将不同类型的细胞或细胞组分进行分离和纯化。

常用的分离技术包括细胞离心、流式细胞术和免疫磁珠分离等。

细胞离心是通过离心机将混合细胞悬液分离成上清液和沉淀,从而获得纯化的特定类型细胞。

流式细胞术则通过流式细胞仪测量细胞的大小、形态和表面标记物,从而实现对细胞的高通量分离和分析。

免疫磁珠分离则利用特定抗体结合在磁珠表面,以实现对需要纯化的细胞或细胞组分的选择性捕获。

四、显微镜观察显微镜观察是细胞生物学实验的重要手段,它使研究者能够观察到细胞内不同的结构和过程。

传统光学显微镜可实现对细胞形态和部分细胞器的观察,但其分辨率有限。

近年来,随着超分辨显微镜技术的发展,研究者们能够突破传统光学显微镜的分辨率极限,实现对亚细胞结构和分子过程的观察。

总结细胞生物学实验技术在现代生命科学研究中发挥着至关重要的作用。

细胞生物学实验技术

细胞生物学实验技术

细胞生物学实验技术细胞生物学作为生物学的一个重要分支,研究的是生命最基本的单元——细胞。

在现代科研和医学领域中,细胞生物学实验技术扮演着至关重要的角色。

本文将介绍几种常见的细胞生物学实验技术,以及它们在科学研究和实践中的应用。

一、细胞培养技术细胞培养技术是细胞生物学研究的基础,也是许多实验的起点。

通过细胞培养技术,科研人员可以将细胞在体外进行培养,以便进行各种实验。

细胞培养技术的关键是培养基的配制和培养条件的控制,包括温度、湿度、CO2浓度等。

现代细胞培养技术已经非常成熟,可以培养多种细胞系,广泛应用于细胞生物学研究、药物筛选和临床诊断等领域。

二、细胞转染技术细胞转染技术是将外源DNA、RNA或蛋白等物质导入到细胞内的技术。

通过细胞转染技术,科研人员可以研究基因的功能、蛋白的表达以及疾病的发生机制。

常见的细胞转染方法包括化学法、电穿孔法、基因枪法等。

细胞转染技术在基因工程、基因治疗和干细胞研究等领域有着广泛的应用。

三、细胞分选技术细胞分选技术是将不同类型的细胞或不同状态的细胞进行分离和分选的技术。

通过细胞分选技术,科研人员可以获得纯化的细胞群,用于后续的实验和分析。

常见的细胞分选方法包括流式细胞术、磁性珠法、荧光显微镜法等。

细胞分选技术在免疫学、干细胞研究和癌症诊断等领域有着重要的应用。

四、细胞成像技术细胞成像技术是利用显微镜等设备对细胞进行观察和成像的技术。

通过细胞成像技术,科研人员可以了解细胞的结构、功能以及动态变化。

现代的细胞成像技术包括荧光显微镜、共聚焦显微镜、原子力显微镜等。

细胞成像技术在细胞生物学、神经科学和药物研究等领域有着广泛的应用。

五、细胞分子生物学技术细胞分子生物学技术是研究细胞内分子基因组的技术。

通过细胞分子生物学技术,科研人员可以研究细胞的DNA、RNA、蛋白等分子水平的信息。

常见的细胞分子生物学技术包括PCR扩增、基因克隆、蛋白质组学等。

细胞分子生物学技术在基因表达调控、基因组编辑和疾病诊断等方面有着重要的应用。

第二章细胞生物学研究方法

第二章细胞生物学研究方法

第二章细胞生物学研究方法1.举例(3~5个)说明研究方法的突破对细胞生物学发展的推动作用。

答:①细胞培养技术,…②离心分离技术,…③流式细胞分离技术,…④基因敲除技术,…⑤干细胞培养技术,…⑥……2.为什么说细胞培养是细胞生物学研究的最基本技术之一?3.用什么方法追踪活细胞中蛋白质合成与分泌过程?包括哪几个步骤?答:追踪活细胞中某种蛋白质合成与分泌的过程一般采用同位素示踪技术。

其基本步骤是:①将放射性同位素标记的氨基酸(3H-亮氨酸)加到细胞培养基中,在很短时间内使这些与未标记的相应氨基酸化学性质相同的标记分子进入细胞(称为脉冲标记);②除去培养液并洗涤细胞,再换以未标记氨基酸的培养基培养细胞,已进入细胞的标记氨基酸将被蛋白质合成系统作为原料加以利用,掺入到某种新合成的蛋白质中;③每隔一定时间取出一定数量的细胞,利用电镜放射自显影技术探查被标记的特定蛋白质在不同时间所处的位置。

通过比较不同时间细胞取样的电镜照片就可以了解细胞中蛋白质合成及分泌的动态过程。

4. 图2-3的解释。

答:两个儿童共同振动一根绳子产生的波动类似于光子光子和电子形成的波,以此说明物体的大小对波的干扰。

(a)两个儿童振动绳子产生的特征波长;(b)向绳子波中扔进一个球或一个物体,如果扔进物体的直径与绳子波长相近,就会干扰绳子波的移动;(3)如果扔进一个垒球或其他物体比绳子波长小得多,对绳子波的移动只有很小或没有干扰;(d)如果将绳子快速振动,波长就会大大缩短;(e)此时扔进垒球就会干扰绳子波的移动。

5.为什么电子显微镜需要真空系统(vacuum system)?答:由于电子在空气中行进的速度很慢,所以必须由真空系统保持电镜的真空度,否则,空气中的分子会阻挠电子束的发射而不能成像。

用两种类型的真空泵串连起来获得电子显微镜镜筒中的真空,当电子显微镜启动时,第一级旋转式真空泵(rotary pump)获得低真空,作为二级泵的预真空;第二级采用油扩散泵(oil diffusion pump)获得高真空。

02细胞生物学技术PPT课件

02细胞生物学技术PPT课件
把一物体放在光源和观察者之间,当光线通 过一固体物的边缘时,在高倍放大情况下所观察 到的干涉效应。
15
相差显微镜和微分干涉差显微镜
用相差显微镜和微分干涉差显微镜可直接从显微中 观察未经固定和染色的活细胞。
通过活细胞的光的相位 发生了变化,相差和微分干 涉差显微镜可使光相位变化 转变为振幅变化,产生高反 差影像。
不同显微结构的尺寸
由左至右依次为动物细胞、细菌、线粒体、流感病毒、核糖 体、绿色荧光蛋白、胸腺嘧啶。虚线为光学显微镜分辨极限。
5
凸透镜的五种成象规律
物距 (u)
像距(v) 正倒
大小
虚实
u>2f 2f>v>f 倒立 缩小 实像
u=2f v=2f 倒立 等大 实像
2f>uቤተ መጻሕፍቲ ባይዱf v>2f 倒立 放大 实像
• 由电子照明系统、电磁透镜成像系统、 真空系统、记录系统、电源系统等5部 分构成;
• 分辨率0.2nm,放大倍数达百万倍; • 用于观察超微结构(小于0.2µm)。
27
制样技术
超薄切片技术 固定技术 负染法和投影法 复型和冷冻蚀刻技术
28
超薄切片技术
电子的穿透能力很弱, 因此要把样品做成很薄。
2. 熟悉细胞生物学基本研究方法的技术特点。 3. 了解细胞生物学研究方法的进展。
3
细胞生物学的许多进展,尤其是近年来振奋 人心的发展,都是由于引入新研究方法的结果。
1 显微镜技术 2 细胞培养 3 细胞及其组份的分离和纯化 4 重组DNA技术 5 细胞工程技术
4
一、显微镜技术
一个典型的动物细胞,直径为10~20µm,比 人肉眼能见到的最小颗粒还小5倍。
最常用的是50纳米左右 的切片,即一个一般大 小的 动物细胞要切成300片。 用超 薄切片机 (ultramicrotome) 制作。

细胞生物学基本实验技术(139页)

胰酶
细胞间连接 细胞外基质
单一细胞
2.分离不同类型细胞 (1) 离心 (centrifugation)
大小 密度 形状


不规则


圆形
(2) 免疫磁珠法
利用带有特定单抗的免疫磁珠 与靶细胞的特异结合,快速地 从多细胞悬液中将目的细胞分 离出来。
Fe2O3或Fe3O4颗粒 +
单克隆抗体
免疫磁珠
(3) 流式细胞仪 ( flow cytometry)
果蝇胚胎原肠胚
(二)电子显微镜技术
利用电子与固体样品作用时所发出的信息, 对样品进行微区观察和分析的技术
亚显微结构 超微结构 1.电子显微镜的特点
高分辨率
理论上 d = 0.002 nm 实际上 d = 0.1 nm 生物标本 d = 2 nm
高放大倍率 1,000,000
2.透射电子显微镜(Transmission electron microscope, TEM) (1)基本构造
➢ 分辨率高 ➢ 可在非真空状态下工作 ➢ 直接观察大分子的三维结构
扫描隧道显微镜下的人红细胞血影
2.原子力显微镜 通过分析探针针尖与样品之间的原子间作用
力来获取所观察表面的微观信息。 ➢ 样品无需具有导电性 ➢ 可在三态下工作 ➢ 活细胞表面及生物大分子空间伸展及其结 晶体表面观测
原子力显微镜下的中国仓鼠卵巢细胞 原子力显微镜观察细胞微丝的动态变化
透射电镜 利用穿透标本的电子进行成像 (散射) 观察组织的二维切片 扫描电镜 利用标本表面发射的二次电子成像 观察组织的表面三维结构
(三)扫描探针显微镜
(Scanning probe microscope, SPM)

细胞生物学实验报告(3篇)

细胞生物学实验报告(3篇)细胞生物学实验报告(精选3篇)细胞生物学实验报告篇1一、实验目的:1、掌握显示细胞中过氧化物酶反应的原理和方法。

2.了解细胞凋亡的生物学意义3、掌握凋亡细胞的形态学检测方法二、实验原理:1、细胞内的过氧化物酶能把许多胺类氧化为有色化合物,用联苯胺处理标本,细胞内的过氧化物酶能把联苯胺氧化为蓝色的联苯胺蓝,进而变为棕色产物,因而可以根据颜色反应来判定过氧化物酶的有无或多少。

中间产物蓝色联苯胺是不稳定的,无需酶的参加即可氧化为棕色化合物。

2、细胞凋亡是指细胞在生理或病理条件下,遵循自身的程序,自己结束其生命的过程。

它是一个主动的、高度有序的,基因控制的,一系列酶参与的过程。

3、凋亡细胞形态学特征是:体积变小,细胞质浓缩;细胞核发生染色质凝聚和聚集于核膜周围(边缘化);细胞膜有小泡状形成;晚期细胞膜内陷形成大小不同的凋亡小体;根据细胞凋亡形态学特征进行显微观察是检测细胞凋亡的一种直观、可靠的方法。

三、实验步骤:细胞中过氧化物酶的显示1、在载片上滴一滴PBS缓冲液;2、取骨髓细胞:用断颈法处死小鼠,立即剪取后肢,去除肌肉,剥出后肢股骨,剪开股骨一端,用牙签尖的一端插入剪开的小孔中,抠取少许骨髓细胞置滴有PBS的载片上;3、涂片:用另一玻片将骨髓细胞沿一个方向涂布推开,室温晾干;4、媒染:在涂片上滴0.5%硫酸铜液,以盖满涂片为宜,处理30秒-1分钟。

5、倾去硫酸铜液,直接滴入联苯胺混合液反应6分钟(以盖满涂片为宜)6、清水冲洗,番红复染2min。

7、镜检:清水冲洗,室温晾干,先低倍镜下观察,后换高倍镜下观察(油镜100_)细胞凋亡的形态学检测与观察吉姆萨染色:1、取细胞爬片置于小培养皿中(有细胞面朝上)2、生理盐水轻轻漂洗细胞3、95%乙醇固定5min4、PBS缓冲液洗2次5、吉姆萨染色液染色5min6、蒸馏水轻轻洗去染液7、普通光学显微镜下观察。

吖啶橙染色:1、取细胞爬片置于小培养皿中(有细胞面朝上)2、生理盐水轻轻漂洗细胞3、甲醇:冰醋酸(3:1)固定5min4、PBS缓冲液洗2次每次1min5、0.01%吖啶橙染色液在避光环境下染色5min6、蒸馏水轻轻洗去染液6、选用蓝光激发滤片在荧光显微镜下观察。

细胞生物学实验报告[2]

细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告小鼠脾细胞原代培养姓名:杜旭学号:202*00230155系年级:202*级临七一班同组者:赵伟日期:202*/4/25【实验目的】⒈学习并掌握动物细胞培养的无菌操作技术。

⒉了解原代细胞培养的基本方法及操作过程。

⒊学习细胞计数及营养液的配制。

【实验原理】⒈细胞原代培养原代细胞培养是指直接从动物体内获取的细胞、组织和器官,经体外培养后,直到第一次传代为止。

这种培养,首先用无菌操作的方法,从动物体内取出所需的组织(或器官),经消化,分解成单个游离细胞,在人工培养下,使其不断的生长及繁殖。

细胞培养是一种操作繁琐而又要求十分严谨的实验技术。

要使细胞能在体外长期生长,必须满足两个基本要求:一是供给细胞存活所必须的条件,如适量的水、无机盐、氨基酸、维生素、葡萄糖及其有关的生长因子、氧气、适宜的温度,注意外环境酸碱度与渗透压的调节。

二是严格控制无菌条件。

⒉细胞死活鉴定死活细胞的鉴定方法有很多种,常用的有染色法和仪器分析法。

染色法是常用的细胞死活鉴定方法,简便,易于操作。

不同的死活细胞鉴定方法有各自不同具体的反应机理,但无论采用何种办法,都是利用了死活细胞在生理机能和性质上的差异。

染色法分化学染色法和荧光染色法,根据染色机理的不同,染料或使死细胞着色,或使活细胞着色。

●死活细胞在生理机能和性质上的差异主要包括:☆死活细胞细胞膜通透性的差异:活细胞的细胞膜是一种选择性膜,对细胞起保护和屏障作用,只允许物质选择性的通过;而细胞死亡之后,细胞膜受损,通透性增加。

常用的以台盼蓝鉴别细胞死活的方法就是利用了这一性质。

台盼蓝,又称锥蓝,是一种阴离子型染料,不能透过完整的细胞膜。

所以经台盼蓝染色后只能使死细胞着色,而活细胞不被着色。

甲基蓝有类似的染色机理。

植物细胞的质壁分离也可鉴定死活。

☆死活细胞在代谢上的差异:是采用美蓝染料鉴定酵母细胞死活的依据。

美蓝是一种无毒染料,氧化型为蓝色,还原型为无色。

细胞生物学技术与实验方法

细胞生物学技术与实验方法细胞生物学技术与实验方法是研究和应用于细胞的科学技术和实验方法的总称。

通过这些技术和方法,科研人员可以深入了解细胞的结构、功能和代谢,揭示细胞的生理、病理过程以及相关疾病的机制,更好地应用于生物医学研究和药物开发领域。

本文将重点介绍一些常用的细胞生物学技术和实验方法,并进行简单的介绍和说明。

1. 细胞培养技术细胞培养技术是在人工环境中保持和繁殖细胞的方法。

细胞培养是细胞生物学研究的基础,可以通过建立细胞系来进行体外实验。

细胞培养技术的主要步骤包括细胞分离、细胞培养基的配制、细胞培养器的选择和细胞培养条件的控制等。

2. 蛋白质分离与纯化技术蛋白质是细胞中最重要的功能分子之一,从细胞中提取和纯化蛋白质对于研究蛋白质的结构、功能和相互作用至关重要。

蛋白质分离与纯化技术可以通过离心、电泳、层析、电泳转印等方法来分离和纯化目标蛋白质。

3. 免疫学技术免疫学技术是研究细胞和分子免疫学的重要手段。

包括酶联免疫吸附实验(ELISA)、免疫组化、流式细胞术、免疫沉淀等技术。

通过这些技术,可以检测和分析细胞表面标记物、细胞因子的表达和分泌以及分析免疫相关的细胞相互作用等。

4. 分子生物学技术分子生物学技术是研究细胞和生命分子水平的重要工具。

包括基因克隆、DNA测序、聚合酶链反应(PCR)、蛋白质组学技术、基因组学技术等。

这些技术可以用来研究细胞的基因表达、转录调控、基因突变和DNA修复等。

5. 显微镜技术显微镜技术可以观察和研究细胞的结构和功能。

常见的显微镜技术包括光学显微镜、荧光显微镜、透射电子显微镜等。

通过显微镜技术,可以观察细胞的形态、亚细胞器的位置和运动,以及研究细胞内各种细胞器和分子的分布和相互作用。

总结:细胞生物学技术与实验方法在现代生物医学研究中起到了至关重要的作用。

通过这些技术和方法,科研人员可以研究和探索细胞的微观世界,深入了解细胞的结构、功能和代谢过程。

这些技术不仅可以增加我们对人体健康和疾病的认识,还为新药研发提供了重要的参考和依据。

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第一节 显微技术 显微镜是观察细胞的主要工具。根据光源不同,可分为光学显微镜和电子显微镜两大类。前者以可见光(紫外线显微镜以紫外光)为光源,后者则以电子束为光源。

—、光学显微镜 (一)、普通光学显微镜 普通生物显微镜由3部分构成,即:①照明系统,包括光源和聚光器;②光学放大系统,由物镜和目镜组成,是显微镜的主体,为了消除球差和色差,目镜和物镜都由复杂的透镜组构成;③机械装置,用于固定材料和观察方便(图2-1)。

图2-1 尼康E-600显微镜 显微镜物象是否清楚不仅决定于放大倍数,还与显微镜的分辨力(resolution)有关,分辨力是指显微镜(或人的眼睛距目标25cm处)能分辨物体最小间隔的能力,分辨力的大小决定于光的波长和镜口率以及介质的折射率,用公式表示为:

R=0.61λ /N.A. N.A.=nsinα/2 式中:n=介质折射率;α=镜口角(标本对物镜镜口的张角),N.A.=镜口率(numeric aperture)。镜口角总是要小于180˚,所以sina/2的最大值必然小于1。

表2-1 及中介质的折射率 介质 空气 水 香柏油 α溴萘 折射率 1 1.33 1.515 1.66

制作光学镜头所用的玻璃折射率为1.65~1.78,所用介质的折射率越接近玻璃的越好。对于干燥物镜来说,介质为空气,镜口率一般为0.05~0.95;油镜头用香柏油为介质,镜口率可接近1.5。

普通光线的波长为400~700nm,因此显微镜分辨力数值不会小于0.2μm,人眼的分辨力是0.2mm,所以一般显微镜设计的最大放大倍数通常为1000X。 (二)、荧光显微镜 图2-2 尼康E800荧光DIC显微镜 细胞中有些物质,如叶绿素等,受紫外线照射后可发荧光;另有一些物质本身虽不能发荧光,但如果用荧光染料或荧光抗体染色后,经紫外线照射亦可发荧光,荧光显微镜(图2-2,3,4)就是对这类物质进行定性和定量研究的工具之一。 图2-3 落射式照明原理 荧光显微镜和普通显微镜有以下的区别: 1. 照明方式通常为落射式,即光源通过物镜投射于样品上(图2-3); 2. 光源为紫外光,波长较短,分辨力高于普通显微镜; 3. 有两个特殊的滤光片,光源前的用以滤除可见光,目镜和物镜之间的用于滤除紫外线,用以保护人目。 图2-4 荧光显微镜照片(微管呈绿色、微丝红色、核蓝色),图片来自http://www.itg.uiuc.edu (三)、激光共聚焦扫描显微境

图2-5 激光共聚焦扫描显微镜 图2-6 LCSM照片,蓝色为细胞核,绿色为微管,图片来自http://www.itg.uiuc.edu 激光共聚焦扫描显微镜(laser confocal scanning microscope,图2-5、6)用激光作扫描光源,逐点、逐行、逐面快速扫描成像,扫描的激光与荧光收集共用一个物镜,物镜的焦点即扫描激光的聚焦点,也是瞬时成像的物点。由于激光束的波长较短,光束很细,所以共焦激光扫描显微镜有较高的分辨力,大约是普通光学显微镜的3倍。系统经一次调焦,扫描限制在样品的一个平面内。调焦深度不一样时,就可以获得样品不同深度层次的图像,这些图像信息都储于计算机内,通过计算机分析和模拟,就能显示细胞样品的立体结构。

激光共聚焦扫描显微镜既可以用于观察细胞形态,也可以用于细胞内生化成分的定量分析、光密度统计以及细胞形态的测量。

(四)、暗视野显微镜 暗视野显微镜(dark field microscope,图2-7)的聚光镜中央有当光片,使照明光线不直接进人物镜,只允许被标本反射和衍射的光线进入物镜,因而视野的背景是黑的,物体的边缘是亮的。利用这种显微镜能见到小至 4~200nm的微粒子,分辨率可比普通显微镜高50倍。 图2-7 暗视野照明方式 (五)、相差显微镜 相差显微镜(phasecontrast microscope,图2-8、9)由P.Zernike于1932年发明,并因此获1953年诺贝尔物理奖。这种显微镜最大的特点是可以观察未经染色的标本和活细胞。

相差显微镜的基本原理是,把透过标本的可见光的光程差变成振幅差,从而提高了各种结构间的对比度,使各种结构变得清晰可见。光线透过标本后发生折射,偏离了原来的光路,同时被延迟了1/4λ(波长),如果再增加或减少1/4λ,则光程差变为1/2λ,两束光合轴后干涉加强,振幅增大或减下,提高反差。在构造上,相差显微镜有不同于普通光学显微镜两个特殊之处:

1. 环形光阑(annular diaphragm) 位于光源与聚光器之间,作用是使透过聚光器的光线形成空心光锥,焦聚到标本上。 2. 相位板(annular phaseplate)在物镜中加了涂有氟化镁的相位板,可将直射光或衍射光的相位推迟1/4λ。分为两种:

1. A+相板:将直射光推迟1/4λ,两组光波合轴后光波相加,振幅加大,标本结构比周围介质更加变亮,形成亮反差(或称负反差)。

2. B+相板:将衍射光推迟1/4λ,两组光线合轴后光波相减,振幅变小,形成暗反差(或称正反差),结构比周围介质更加变暗。

图2-8 相差显微镜照明原理 图2-9 一种介壳虫的染色体(PCM照片) (六)、偏光显微镜 偏光显微镜(polarizing microscope)用于检测具有双折射性的物质,如纤维丝、纺锤体、胶原、染色体等等。和普通显微镜不同的是:其光源前有偏振片(起偏器),使进入显微镜的光线为偏振光,镜筒中有检偏器(一个偏振方向与起偏器垂直的的起偏器),这种显微镜的载物台是可以旋转的,当载物台上放入单折射的物质时,无论如何旋转载物台,由于两个偏振片是垂直的,显微镜里看不到光线,而放入双折射性物质时,由于光线通过这类物质时发生偏转,因此旋转载物台便能检测到这种物体。

(七)、微分干涉差显微镜 1952年,Nomarski在相差显微镜原理的基础上发明了微分干涉差显微镜(differential interference contrast microscope)。DIC显微镜又称Nomarski相差显微镜(Nomarki contrast microscope),其优点是能显示结构的三维立体投影影像。与相差显微镜相比,其标本可略厚一点,折射率差别更大,故影像的立体感更强。

DIC显微镜的物理原理完全不同于相差显微镜,技术设计要复杂得多。DIC利用的是偏振光,有四个特殊的光学组件:偏振器(polarizer)、DIC棱镜、DIC滑行器和检偏器(analyzer)。偏振器直接装在聚光系统的前面,使光线发生线性偏振。在聚光器中则安装了石英Wollaston棱镜,即DIC棱镜,此棱镜可将一束光分解成偏振方向不同的两束光(x和y),二者成一小夹角。聚光器将两束光调整成与显微镜光轴平行的方向。最初两束光相位一致,在穿过标本相邻的区域后,由于标本的厚度和折射率不同,引起了两束光发生了光程差。在物镜的后焦面处安装了第二个Wollaston棱镜,即DIC滑行器,它把两束光波合并成一束。这时两束光的偏振面(x和y)仍然存在。最后光束穿过第二个偏振装置,即检偏器。在光束形成目镜DIC影像之前,检偏器与偏光器的方向成直角。检偏器将两束垂直的光波组合成具有相同偏振面的两束光,从而使二者发生干涉。x和y波的光程差决定着透光的多少。光程差值为0时,没有光穿过检偏器;光程差值等于波长一半时,穿过的光达到最大值。于是在灰色的背景上,标本结构呈现出亮暗差。为了使影像的反差达到最佳状态,可通过调节DIC滑行器的纵行微调来改变光程差,光程差可改变影像的亮度。调节DIC滑行器可使标本的细微结构呈现出正或负的投影形象,通常是一侧亮,而另一侧暗,这便造成了标本的人为三维立体感,类似大理石上的浮雕(图2-10)。 图2-10 DIC显微镜下的硅藻(伪彩色) DIC显微镜使细胞的结构,特别是一些较大的细胞器,如核、线粒体等,立体感特别强,适合于显微操作。目前像基因注入、核移植、转基因等的显微操作常在这种显微镜下进行。

(八)、倒置显微镜 组成和普通显微镜一样,只不过物镜与照明系统颠倒,前者在载物台之下,后者在载物台之上(图2-11),用于观察培养的活细胞,具有相差物镜。 图2-11 莱卡倒置显微镜 进入20世纪80年代以来,光学显微镜的设计和制作又有了很大的发展,其发展趋势主要表现在,注重实用性和多功能方面的改进。在装配设计上趋于采用组合方式,集普通光镜加相差、荧光、暗视野、DIC、摄影装置于一体,从而操作灵活,使用方便。

二、电子显微镜 (一)、透射电子显微镜 1、基本原理 在光学显微镜下无法看清小于0.2µm的细微结构,这些结构称为亚显微结构(submicroscopic structures)或超微结构(ultramicroscopic structures;ultrastructures)。要想看清这些结构,就必须选择波长更短的光源,以提高显微镜的分辨率。1932年Ruska发明了以电子束为光源的透射电子显微镜(transmission electron microscope,TEM),电子束的波长要比可见光和紫外光短得多,并且电子束的波长与发射电子束的电压平方根成反比,也就是说电压越高波长越短。目前TEM的分辨力可达0.2nm。

电子显微镜(图2-12)与光学显微镜的成像原理基本一样,所不同的是前者用电子束作光源,用电磁场作透镜。另外,由于电子束的穿透力很弱,因此用于电镜的标本须制成厚度约50nm左右的超薄切片。这种切片需要用超薄切片机(ultramicrotome)制作。电子显微镜的放大倍数最高可达近百万倍、由电子照明系统、电磁透镜成像系统、真空系统、记录系统、电源系统等5部分构成。

表2-2不同光源的波长

名 称 可见光 紫外光 X射线 α射线 电子束 0.1Kv 10Kv 波长(nm) 390~760 13~390 0.05~13 0.005~1 0.123 0.0122

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