第八章 植物细胞培养及次生物质生产

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第八章植物原生质体培养及细胞融合

第八章植物原生质体培养及细胞融合

3 原生质体的纯化(净化)
指将酶解后的溶液中的原生质体与组织残渣(如去未脱壁 的细胞、细胞碎片)分开的过程。 (1) 沉降法 原理:利用比重原理,在具有一定渗透压的溶液中进行过 滤离心,使纯净完整的原生质体沉积于试管底部。 首先将含有原生质体与酶混合液过网筛(44~169μm孔 径),除去叶脉大组织块。然后低速离心(900~ 4500r/min)收集沉于底部的完整的原生质体。 一般叶肉原生质体均采用沉降法,优点是采集方便,缺点 是不能完全除去少量的细胞和破碎的原生质体。
2、意义 1、可将外来遗传信息通过不同基因载体(噬菌体、细菌质 粒)引入植物细胞,使细胞性状在分子水平上发生变化, 再生出具有新性状的植物。 2、通过异源原生质体融合,充分组合核质基因组,进行植 物品种的改良,创建新品种及种质。 3、以原生质体为材料,并进行体细胞遗传、远缘杂交不亲 和机理等方面的研究。可进行细胞生物学、植物生理学、 遗传学、分子生物学等方面的研究。
1、物理方法 利用离心、振动、电刺激等物理方法促使原生质体融合。 电融合:
1)微电极控制仪:两个微电极尖端,同时与两个靠近的原生 质体表面接触,用5~12μA电波1~5ms(毫秒)。原生质体 发生暂时收缩,引起了原生质膜状态暂时变化,从点连到面 再到形成球形融合体约需要20~30min。
2)平行电极: 融合槽的两极通过交流电场产生电泳效应,电场产生的力作 用于原生质体,使之偶极化,原生质体相互接触形成珍珠串。 加适当强度的直流电脉冲,高强度的只需几个微秒就细胞膜 发生可逆穿击而形成融合体。
PCR检测(限制性片段长度多态性,RFLP)
1 2 3 4 5 6 7
转Barnase 基因植株的PCR检测 1 HaeIII/pBR322 Marker;2阳性对照;3-7转基因材料

植物细胞培养

植物细胞培养
均一性好,细胞形状和细胞团大小大致相同。悬 浮系外观为大小均一的小颗粒,培养基清澈透 亮,细胞色泽呈鲜艳的乳白或淡黄色。
细胞生长迅速,悬浮细胞的生长量一般2~3天甚 至更短时间便可增加一倍。
6、影响悬浮细胞生长的因素:
起始愈伤组织的质量:松散性好、增殖快、再 生能力强。其外观一般是色泽呈鲜艳的乳白或 淡黄色,呈细小颗粒状,疏松易碎。
Culture
1、细胞可以不断增殖,形成高密度的细 胞群体,适于大规模培养;
2、能够提供大量较为均匀的细胞,为研 究细胞的生长、分化创造方法和条件。
细胞悬浮培养的应 用
植物
细胞悬浮
人工种子
原生质体分离
突变筛选
Secondary products
三.细胞悬浮培养的方法
1、培养基 对于用愈伤组织制备的悬浮细胞培养的 培养基以原愈伤组织继代时的培养基除 去琼脂为好。为了提高细胞的分散度, 对于生长素和细胞分裂素的比例需要进
接种细胞密度:接种初期的细胞密度过低往往使 延迟期加长,悬浮细胞的起始密度一般在 0.5~2.5×105个细胞/毫升,低于这一密度则 会使细胞生长延迟。
培养条件:方式、温度、继代周期
四、悬浮细胞的同步化
细胞同步化是指同一悬浮培养体系的所有细 胞都同时通过细胞周期的某一特定时期。
同一培养体系中,细胞不同步使悬浮细胞的 分裂、代谢以及生理、生化状态等更趋复杂化, 所以人们一直希望通过一定的技术途径,使同一 培养体系中的细胞能保持相对一致的细胞学和生 理学状态,工作中常用的处理方法: 1、物理方法 1)分选法:通过细胞体积大小分级,直接将处 于相同周期的细胞进行分选,然后将同一状态的 细胞继代培养于同一培养体系中。
植板:将1份已调整好密度的单细胞悬浮液与4 份35℃的固体培养基充分混合均匀,然后均匀 的平铺在培养皿中,其厚度为1-2mm。 待植板后的培养基完全凝固后,用石蜡或

植物细胞培养和次生代谢产物生产PPT课件

植物细胞培养和次生代谢产物生产PPT课件

酶解法
1. 细胞受到酶的伤害; 2. 要质壁分离; 3. 细胞产量高; 4. 细胞不易破。
一、植物单细胞培养技术
1.单细胞的分离 3)由培养组织分离单细胞:指将愈伤组织反复继代,再转移
至液体培养基振荡培养。添加生长素或酶有利。 这是分离单细胞通常采取的方法。 ①诱导产生愈伤组织; ② 愈伤组织反复继代,使组织不断增殖,提高愈伤组
①相差显微镜观察法 ② FDA染色法:在活细胞中,FDA被裂解,荧光素被释放 出来,在活细胞积累,而在死细胞中不能积累。 ③伊凡蓝染色法:与FDA相反,死细胞能摄取染料。
二、植物细胞的大规模培养
2.植物细胞固定化培养 细胞固定化定义 指将游离的细胞包埋在多糖或多聚化合物制备成的网状 支持物中,培养液呈流动状态,进行无菌培养的一种技术。 细胞固定化具有以下意义 1)细胞生长较慢,有利于次生代谢物的积累。 2)易控制化学环境、收获次生代谢产物。 3)细胞经包埋后受剪切力损伤小。 4)有利于进行连续培养和生物转化。
是指在人工制造的无菌小室中,将一滴悬浮细胞液培 养在少量培养基上,使其分裂增殖形成细胞团的方法。
此法是De Ropp (戴洛普,1955) 首创,Torry (托瑞, 1957)、Jones(琼斯,1960)改进。优点是便于在显微镜下 进行少量单细胞活体连续观察。
一、植物单细胞培养技术
2.单细胞培养技术-微室培养
2.单细胞培养技术 1)平板培养法
平板培养的效果一般用植板率来衡量。植板率是能长出 细胞团的单细胞在接种单细胞总和中所占的比例。
每个平板形成的细胞团数
植板率=
每个平板接种的细胞总数
一、植物单细胞培养技术
2.单细胞培养技术 2)看护培养与饲养层培养法
看护培养:是指用一块活跃生长的愈伤组织来促进培 养细胞持续分裂和增殖的培养方法。

植物组织培养技术第八章植物组织培养在育种中的应用

植物组织培养技术第八章植物组织培养在育种中的应用
第八章 植物组织培养 在育种中的养 胚乳培养 •胚珠和子房培养 胚珠和子房培养
雌蕊的主要 部分是子房, 部分是子房, 子房的胚珠 中产生胚囊, 中产生胚囊, 并在成熟胚 囊中产生卵 细胞, 细胞,胚珠 是子房中的 重要结构。 重要结构。
胚发育和种子结构
合子发育成胚
珠被发育成种皮 受精极核发育成胚乳
一、胚培养
1、含义 、
• 1.1 含义 采用人工的方法将胚从种子、 采用人工的方法将胚从种子、 子房或胚珠中分离出来, 子房或胚珠中分离出来,再放在无菌的 条件下,让其进一步生长发育, 条件下,让其进一步生长发育,以至形 成幼苗的过程。 成幼苗的过程。 • 1.2 培养对象 胚胎发生过程中的不同发 育时期的胚和具胚的器官。 成熟胚、 育时期的胚和具胚的器官。如:成熟胚、 幼胚、胚珠培养、子房培养。 幼胚、胚珠培养、子房培养。
2、花培意义 、
诱导形成单倍体,快速获得纯系, 诱导形成单倍体,快速获得纯系, 缩短育种周期; 缩短育种周期; 有利于筛选隐性突变体, 有利于筛选隐性突变体,提高选择 效率。 效率。 获得无病毒个体。 获得无病毒个体。
3、花药培养简史 、
1964年:Guha&Maheshwari南洋金花花 年 南洋金花花 药培养发育成胚; 药培养发育成胚; 1967年:Bourgin&Nitsch花药培养获得烟 年 花药培养获得烟 草植株; 草植株; 1973年:我国首次报道了小麦花药培养获 年 得再生植株; 得再生植株; 目前: 目前:许多农作物及经济植物通过花粉培 养都能诱导成植株。 养都能诱导成植株。
第二节 花药培养和花粉培养
• • • 主要内容 花粉和花药培养技术 花粉和花药培养应用
1.名词 名词
植物的花粉是花粉母细胞经减数分裂形成的, 植物的花粉是花粉母细胞经减数分裂形成的, 其染色体数目只有体细胞的一半,叫做单倍体 其染色体数目只有体细胞的一半,叫做单倍体 细胞(haploid cell)。 细胞 。 花粉和花药的培养(pollen and anther culture) 花粉和花药的培养 是指花粉在培养基上改变其正常发育和机能, 是指花粉在培养基上改变其正常发育和机能, 不经受精而发生细胞分裂, 不经受精而发生细胞分裂,由单个花粉粒发育 成完整植株的技术。 成完整植株的技术。 用离体培养花药的方法使花粉发育成一个完整 的植株,叫做单倍体植物 单倍体植物(haplobiont)。 的植株,叫做单倍体植物 。

第八章 细胞工程基本原理

第八章 细胞工程基本原理

第八章细胞工程基本原理8-1 什么是细胞工程?答:所谓细胞工程是指应用现代细胞生物学、发育生物学、遗传学和分子生物学的理论与方法,按照人们的需要和设计,在细胞水平上的遗传操作,重组细胞的结构和内含物,以改变生物的结构和功能,即通过细胞融合、核质移植、染色体或基因移植以及组织和细胞培养等方法,快速繁殖和培养出人们所需要的新物种的生物工程技术。

8-2 动物细胞的主要生理特点是什么?答:细胞的主要生理特点表现在如下几个方面。

1. 分裂周期长——动物细胞的分裂周期相对长,一般完成一个细胞分裂周期需12-24h。

2.需贴附于基质生长,并有接触抑制现象——大多数二倍体细胞的生长都需要在一定的基质上贴附,伸展后才能生长繁殖;当细胞在基质上进行分裂增殖并逐步汇成片时(细胞与周围细胞接触),细胞就停止增殖——接触抑制现象。

3.生长寿命有限——正常二倍体细胞传代培养都是有限的,大约在50代左右,然后细胞就会逐步死亡。

4.对环境敏感——由于动物细胞没有细胞壁的保护,使得周围环境物理、化学因素的变化均会影响到动物细胞的生长。

5.对培养基要求高——动物细胞的培养不仅需要 12种必须的氨基酸、8种以上的维生素、多种无机盐、微量元素和葡萄糖外,还需要多种细胞生长因子和贴壁因子。

6.蛋白质的合成途径和修饰途径功能与细菌不同——动物细胞蛋白质的合成在游离的核糖体和粗面型内质网上都可以进行。

内质网上合成的蛋白质多为糖蛋白,需要糖基化;而细菌细胞则没有糖基化过程。

8-3 植物细胞的主要培养特性是什么?答:植物细胞的培养特性主要表现在如下几个方面。

1.个体较大——植物细胞个体一般较微生物大,其直径通常约在10-200微米之间(微生物的体形一般只有几个微米),有纤维素细胞壁。

—76—2.常以非均相集合细胞团方式存在——植物细胞很少单细胞的形式悬浮生长,通常是以直径2mm 大小的多细胞团方式存在于培养系统中,由于组成细胞团的细胞数量差异,容易在培养系统中形成非均匀相的集合细胞团。

第八章第九章植物原生质体培养与体细胞杂交ppt课件

第八章第九章植物原生质体培养与体细胞杂交ppt课件

烧伤病人的治疗通常是取烧伤病人的 健康皮 肤进行 自体移 植,但 对于大 面积烧 伤病人 来讲, 健康皮 肤很有 限,请 同学们 想一想 如何来 治疗该 病人
第二节 植物原生质体培养的发展与意义
原生质体的培养技术,近年来也有很大改进,特别 值得指出的是单个原生质体培养再生植株的成功 (Spangenberg等,1986)。
利用这一技术,可以在单细胞水平上研究不同类型原 生质体的生理特性,相互之间的作用以及单个原生质体 的遗传操作。对不同亲本单个原生质体进行融合的研究 也是有利的(Schweigo等,1987)。
饲养层培养法可大大提高水稻(Kyozu等,1987)、 玉米(Rhodes等,1988)等作物原生质体的植板率。 已有不少报道说明,琼脂糖能促进原生质体的分裂 (Shillto等,1983),并有利于对原生质体生长过程 的观察。
第一节
植物原生质体的定义及特点
(5)能摄取外来物质,可作遗传转化工具。
外来物质如核酸、蛋白质等高分子物质乃至病毒、 叶绿体、细胞核和细菌等,是进行遗传转化研究的 理想工具。
(6)变异为单细胞,变异性状易纯。
原生质体在培养中会发生变异,由于其是纯粹单 细胞,因此变异原生质体再生植株的变异性状会更 纯。
第三节 植物原生质体培养方法
2、酶法分离原生质体: 即用细胞壁降解酶,脱除植物细胞壁,获得原生
质体的方法(Cocking,1960)。目前多用此法。 常用的细胞壁降解酶种类有:纤维素酶、半纤维
素酶、果胶酶、R-10(日本纤维素酶)、蜗牛酶 胼胝质酶、EA3-867酶等。 国内常用EA3-867酶是一种复合酶,其成分含 纤维素酶、半纤维素酶、果胶酶(上海植物生化研 究所产)。
特别是一直认为难以培养的禾谷类作物,例如,水 稻(Fujimura等,1985)、玉米(蔡起贵等,1987; Rhodes等,1988)、小麦(Harris等,1988;王海 波等,1989)、谷子(夏镇澳等,1989),以及高粱 的原生质体培养都已相继成功。

植物细胞培养


2.1.1 含义:将愈伤组织培养在一定容积的 密闭容器中进行培养。它是进行细胞生 长和 细胞分裂的生理生化研究常用的培养方法。
但要进行下一批培养,则生长一定时间后, 需要继代转移。
悬浮培养 2.1.2

特点
培养基体积固定 • 培养过程中,细胞生长,其数目 不断发生变化,呈S增长。 • 必须适当搅拌
植物细胞培养
细胞培养内容包括两方面
悬浮培养 单细胞培养 促进细胞生长和生物合成 促进细胞生长和形成完整植株
获得单细胞的方法 悬浮培养 单细胞培养
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
单细胞的分离
由完整的植物器官分离单细胞 由培养组织中分离单细胞
单细胞的分离
1、由完整的植物器官分离单细胞
叶片是分离单细胞的最好材料
机械法 酶解法
• 植物生长激素:植物生长素、细胞激动素、 赤霉素和脱落酸等四大类。 • 有机氮源:通常采用的有机氮源有蛋白质 水解物、谷氨酰胺或氨基酸混合物等。 • 有机酸:加入丙酮酸,或者柠檬酸、苹果 酸和琥珀酸等三羟酸循环的中间产物 • 复合物质:在植物细胞的培养过程中,酶 母抽提液、麦芽抽提液、椰子汁和水果汁 等复合物质通常可以作为细胞的生长剂。
• Reinhard等(1968)首先将这种设想转变成现实, 生产出了哈尔碱(harmine)。 • 紧接着Kaul等(1969)、Furrya等(1972)和 Teuscher等(1973)分别培养植物细胞获取了其 中的薯蓣(yu山药)皂苷、人参皂角苷和维斯纳精 (visnagin)。 • 现在一些发达国家已集中相当数量的人力、财力 潜心开拓这个经济潜力十分巨大的生产领域。目 前世界最大批量工业化培养细胞(烟草细胞)已 达2万升(20吨)。 • 我国在“八五”、“九五”和“863计划”中连 续拨款资助工业化培养红豆杉细胞生产抗肿瘤药 物紫杉醇的研究,目前已达到60mg/L的世界先进 水平

植物细胞培养生产次生代谢产物的影响

植物细胞培养生产次生代谢产物的影响植物细胞培养条件温度:培养温度对植物细胞生长及二次代谢产物生成有重要影响。

通常,植物细胞培养采用25℃。

搅拌:在摇瓶实验中,通常摇床的转速取90―120r/min。

pH值:通过细胞膜进行的H+离子传递对细胞的生育环境、生理活性来说无疑是重要的。

在培养过程中,通常pH作为一个重要参数被控制在一定范围内。

植物细胞培养的适宜pH值一般为5―6。

通气:通气是细胞液体深层培养重要的物理化学因子。

好气培养系统的通气与混合及搅拌是相互关联的。

对摇瓶试验,通常500m1的三角瓶内装80―200m1的植物细胞培养液较适宜。

当然,气液传质还与瓶塞的材料有关。

试验表明,从溶氧速率考虑,以棉花塞最好,微孔硅橡胶塞次之,铝箔塞最差。

光:光对植物有着特殊的作用。

光照射条件不仅通过光照周期、光的质量(即种类、波长)而且通过光照量(光强度)的调节来影响植物细胞的生理特性和培养特性。

研究表明,光调节着细胞中的关键酶的活性,有时光能大大促进代谢产物的生成,有时却起着阻害作用。

细胞龄:在培养过程的不同时期,细胞的生理状况、生长与物质生产能力差异显著。

而且,使用不同细胞龄的种细胞,其后代的生长与物质生产状况也会大不一样。

通常,使用处于对数生长期后期或稳定期前期的细胞作为接种细胞较合适。

接种量:在植物细胞培养中,接种量也是一个影响因素。

在再次培养中,往往取前次培养液的5―20%作为种液,也以接种细胞湿重为基准,其接种浓度为15―50g(湿细胞)/L。

由于接种量对细胞产率及二次代谢物质的生产有一定影响,故应根据不同的培养对象通过试验,确定其最大接种量。

影响植物细胞培养的因素植物细胞生长和产物合成动力学也可分为三种类型:①生长偶联型,产物的合成与细胞的生长呈正比;②中间型,产物仅在细胞生长一段时间后才能合成,但细胞生长停止时,产物合成也停止;③非生长偶联型,产物只有在细胞生长停止时才能合成。

事实上,由于细胞培养过程较复杂,细胞生长和次级代谢物的合成很少符合以上模式,特别是在较大的细胞群体中,由于各细胞所处的生理阶段不同,细胞生长和产物合成也许是群体中部分细胞代谢的结果。

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植板率=
每个平板接种的细胞总数
细胞平板培养 (plating culture)
• 优点:
– 单细胞在培养基中分布均匀,便于在显 微镜下对细胞进行定点观察,是单细胞 株筛选和突变体筛选的常用方法。
– 由于它具有筛选效率高、筛选量大、操 作简便等优点,被广泛应用于细胞分裂、 分化、生理生化、遗传变异、次生代谢 产物合成等。 • 缺点:通气状况不好,排泄物质易积累造 成毒害或影响组织吸收。
• 要求:松散性好、增殖快、再生能力强。其外观 一般是色泽呈鲜艳的乳白或淡黄色,呈细小颗粒 状,疏松易碎
悬浮系的建立与培养
callus
1g/10ml medium
150~250ml flask
100~120 rmp culture transfer 1 time/3d
centrifuge isolation
– 应用条件培养基(生长过愈伤组织或悬 浮细胞的液体培养基)提供单细胞生长 和分裂所需的特殊代谢物。 – 基本培养基成分的调节视不同的培养目 的而定 培养基设计时,一般均以诱导愈 伤组织形成的培养基为基础进行调整。 常用的培养基有MS、B5、LS 、N6等。 – 植物激素和其他附加成分的应用。
影响悬浮细胞生长的因素
悬浮培养细胞的同步化
• 细胞同步化:同一悬浮培养体系的所有细 胞都同时通过细胞周期的某一特定时期。 • 植物细胞在悬浮培养中容易团聚并进入不 同程度的分化状态,因此,要达到完全同 步化是十分困难的。 • 同一培养体系的植物细胞经常不能处于同 一细胞周期,这种差异使悬浮细胞分裂、 代谢以及生理生化状态等复杂化。 • 通过一定的理化措施可以使同一体系中的 细胞达到相对同步化。 什么措施?
Isolation protoplasts
细胞悬浮培养的建立
愈伤组织的诱导
悬浮系的建立与继代培养 悬浮细胞的生长动态
悬浮细胞同步化
愈伤组织的诱导
• 选择适宜的外植体: – 幼胚 – 下胚轴 – 子叶 • 选择适宜的培养基:MS,B5,N6 – 较高激素浓度 – 必要的附加物质
适宜悬浮培养
适宜再生植株
80 rpm
subculture
成功的悬浮细胞培养体系特征
• 悬浮培养分散性良好,细胞团较小,一般 在30~50个细胞以下。 • 均一性好,细胞形状和细胞团大小大致相 同。悬浮系外观为大小均一的小颗粒,培 养基清澈透亮,细胞色泽呈鲜艳的乳白或 淡黄色。 • 细胞生长迅速,悬浮细胞的生长量一般2~ 3天便可增加一倍。
细 胞 周 期
饥饿法
• 饥饿导致的细胞分裂受阻常常是使细胞不能 合成DNA,即不能进入S期,或细胞分裂不 能进行,即不能进入M期。因此,通过饥饿 法可以获得处于G1和G2期的同步化细胞。 – 氮饥饿时,通常获得G1期的同步化细胞 – 磷和碳饥饿时,获得G1和G2期的同步化 细胞。 • 将饥饿细胞转入完整培养基中继代培养时, 细胞分裂又可重新恢复。
看护培养(nurse culture)
• Muir(1953)首创此法获得烟草单细胞体系。 • 优点:简便易行,效果好。 • 缺点:不能在显微镜下追踪细胞分裂、生长 过程。
微室培养(microchamber culture)
• 在人工制造的无菌小室中,将一滴悬浮细 胞液培养在少量培养基上,使其分裂增殖 形成细胞团的方法。由Jones等在1960年 设计的。 • 优点:可对培养细胞连续进行显微观察, 了解一个细胞的生长、分裂、分化等过程 • 缺点:培养基少,营养和水分难以保持, pH变动幅度大,培养细胞仅能短期分裂。 • 细胞起始密度:30~80个/室。
– 植板:将1份已调整好密度的单细胞悬浮液
与4份35℃的固体培养基充分混合均匀,然 后均匀地平铺于培养皿中,其厚度为5mm 左右。
细胞平板培养(plating culture)
• 平板培养的效果一般用植板率来衡量。植 板率是能长出细胞团的单细胞在接种单细 胞总和中所占的比例。
每个平板形成的细胞团数
• 悬浮培养 是细胞培养的基本方法,是将单
个游离细胞或小细胞团在液体培养基中进行 培养增殖的技术。 • 特点 1. 培养细胞可不断增殖,且生长速度快。 2. 液体状态下便于细胞和营养物质的充分接 触和交换,细胞状态可以相对保持一致。
细胞悬浮培养的应用
Suspension cells Plants Artificial seeds Mutation select Secondary pro大小 • 方法 – 常规分选方法是梯度离心 – 精细的分选可采用流式细胞仪 • 优点 – 操作简单 – 分选细胞维持了自然生长状态,不会有 其它处理带来的副作用 • 缺点 – 分选精细度较差
低温处理
• 可以提高培养体系中细胞同步化的程度 – Okamura等曾采用此方法使胡萝卜悬浮细 胞较好地同步化。 – 梅兴国等(2001)采用6℃低温处理红豆 杉细胞也获得较明显同步化效果。 • 可能的原因 – 不同的温度对细胞的有丝分裂有极明显的 影响,在一定范围内,温度下降使细胞分 裂速度减慢,细胞周期延长,从而相应地 延长了分裂期的时间,使分裂指数提高, 细胞同步化率升高。
植物细胞培养
是指在离体条件下, 将愈伤组织或其它 易分散的组织臵于 液体培养基中进行 振荡培养,得到分 散成游离的悬浮细 胞,通过继代培养 增殖,获得大量细 胞的一种技术。
细胞培养与组织培养的区别
• 1979年国际组织培养协会专业术语委员会 建议: – 组织培养:从机体内取出组织或细胞, 模拟机体内生理条件,在体外进行培养, 使之生存或生长成组织。 – 细胞培养:动植物细胞在体外条件下的 存活或生长,此时细胞不再形成组织。
细胞培养培养类型
• 根据培养规模:小规模和大批量培养 • 根据培养方式:悬浮、平板、看护培养 • 根据要求产物:用于诱变和生产次生(级)产 物(Secondary products)的细胞培养
悬浮培养 单细胞培养
细胞规模化培养 培养细胞的次级代谢及产物积累
悬浮培养(Suspension culture)
抑制剂法
• 通过一些DNA合成抑制剂处理细胞,使细胞 滞留在DNA合成前期,当解除抑制后,即可 获得处于同一细胞周期(G1)的同步化细胞。
– 常用抑制剂主要有5-氟脱氧尿苷(FudR)和羟 基尿(HU)。 – 用羟基尿处理获得同步化细胞的方法在小麦、 玉米、西芹等植物细胞培养中已有成功应用。
• 利用破坏微管的药物将细胞阻断在中期,常用 的药物有秋水仙素和秋水仙酰胺,后者毒性较 小。
植物细胞规模化培养体系的建立
• 种子细胞选择 – 外植体 – 高产细胞 • 种子细胞增殖与放大培养 • 大规模培养体系建立
种子细胞选择
• 外植体选择 – 植物类型:遗传基础。在确定生产某一 种化合物以后,首先必须准确选择那些 能够产生目的化合物的植物种类及品种 或单株。 – 组织器官:由于天然产物一般为次生代 谢产物,而植物次生代谢产物的积累具 有组织器官的特异性,因此,在起始细 胞培养时尽量选择自然状态下产生天然 产物的器官、组织作为外植体。
部分代表性植物次生产物及其植物资源
工业用途 医药 次生产物 可待因
薯蓣皂苷配基 奎宁 地高辛 莨菪胺 长春花碱 除虫菊酯 留兰香 茉莉油
植物资源 罂粟
三角叶薯蓣 金鸡纳树 狭叶毛地黄 曼陀罗 长春花 除虫菊 薄荷 茉莉花
农业化学 食品,饮料 化妆品
植物细胞大规模培养的技术要求
• 从工程的角度讲必须要进一步研究和开发适宜 于植物生长和生产的生物反应器,建立最佳的 控制和调节系统。 • 从培养技术方面讲必须满足以下三个条件: – 培养的细胞在遗传上应是稳定的,以得到产 量恒定的产物。 – 细胞生长速度快,短时间内能生产较多产物 – 产物不被迅速降解,最好能分泌到培养基中
悬浮细胞的生长动态
悬浮细胞生长的衡量
• 根据不同培养时间的细胞数变化,或细胞 质量变化。 • 生长速率(p):不同时间细胞密度(x)的自然 对数与起始密度(x0)的自然对数之差与培养 时间(t)的比值 p=(lnx-lnx0)/t • 鲜重:真空减压过滤后称重,反应细胞生 长情况 • 干重:鲜细胞烘干至衡重,反应细胞质量
克隆愈 伤组织
细胞悬浮
过滤
与培养基 混合
植板
培养
细胞平板培养 (plating culture)
• 指将一定密度的悬浮细胞接种到一薄层固体培 养基中进行培养的技术。Bergman(1960)首创 – 单细胞的分离:一般采用酶分离法,小细胞 团不能超过6个细胞。 – 单细胞悬浮液的制备:分离的单细胞经培养 基洗涤2次以后,调整密度为5×103个/毫升
• 培养方式:摇瓶,反应器(气动式、搅拌 式);分批培养,半连续培养和连续培养 • 温度 25℃ • 继代周期
–指具有一定起始密度的细胞,从开始培养 到细胞数目和总重量增长停止的一个过程。 –培养周期的长短是由起始细胞密度、延迟 期的长短、生长速率等决定。 –继代培养(Subculture):继初代培养之 后的连续数代的扩繁殖培养过程。
双层滤纸植板培养
Horsch 等 ( ) 建 立 1980
转移滤纸 培养基 培养细胞 培养皿 看护滤纸 饲养细胞层
植物细胞规模化培养
• • • • 意义 规模化培养体系的建立 生物反应器 规模化培养的技术问题
意义
• 应用培养细胞系统合成有用的天然产物在 医药、食品、轻化工业等领域具有重要意 义。 – 目前有约25%的法定药品来自植物,其 有效成分均为次生产物。 – 许多植物次生代谢产物是优良的食品添 加剂和名贵化妆品原料。有些是生物毒 素的主要来源,可用于杀虫、杀菌,而 对环境和人畜无害,是理想的环保产品
影响悬浮细胞生长的因素
• 起始愈伤组织的质量 • 接种细胞密度:悬浮细胞的起始密度一般 在0.5~2.5×105个细胞/毫升。接种初期的 细胞密度过低往往使延迟期加长。 – 最低有效密度:即能使细胞分裂、增殖 的最低接种量。 • 培养条件:培养基、方式、温度、继代周 期。
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