实验七植物抗逆性实验设计报告
植物的抗逆性研究
植物的抗逆性研究植物作为生物界的重要一员，面临着各种各样的环境压力和挑战。
从极端的温度、干旱、盐碱地到病原菌、逆境环境等，植物必须具备一定的抗逆性才能够在这些复杂的环境条件下存活和繁衍。
因此，研究植物抗逆性成为了当前植物科学研究的热点之一。
一、植物抗逆性的定义及重要性植物抗逆性是指植物在受到外界环境压力的干扰时，通过调节其生理、生化和分子水平的表达来适应和反应，从而保持正常的生长与发育。
尽管植物自身无法迅速逃脱环境压力，但其在长期演化适应过程中，形成了一系列抗逆性相关的机制和途径。
植物的抗逆性对于维持生态系统的平衡、增加农作物产量以及改善环境质量都具有重要意义。
二、植物抗逆性的机制研究1. 生理途径植物通过诸如调节渗透调节物质（如脯氨酸等）的积累、调节离子的平衡、维持水分平衡、增强光合作用等方法来增强其抗逆性。
例如，在干旱条件下，植物会通过减少气孔开放、增加根系吸水能力等方式保持水分平衡。
2. 生化途径植物通过诸如抗氧化剂的产生、膜脂过氧化物的降解、气孔导度的调节等途径来应对环境压力。
抗氧化剂可以抑制或中和自由基产生，减少细胞氧化损伤；膜脂过氧化物降解则可以维持细胞膜的完整性和功能；而调节气孔导度则可以控制植物对水分和二氧化碳的吸收。
3. 分子途径植物通过激活或抑制特定基因的表达来调节其抗逆性。
植物在受到外界环境压力时，会激活一系列抗逆性相关基因的表达，从而产生一系列蛋白质和其他抗逆性相关的分子物质，以应对环境压力。
这些分子物质包括抗寒蛋白、抗干旱蛋白、热休克蛋白等。
三、植物抗逆性的提高途径1. 遗传改良通过选育出具有更好抗逆性的品种来提高植物的抗逆性。
利用传统育种方法或基因工程技术，可以选择具有抗逆性相关基因的物种进行杂交或转基因，从而培育出具有更好抗逆性的品种。
2. 生理处理通过诸如提前浸泡、贮运时的冷藏等处理方法，可以提高植物对干旱、寒冷等环境压力的抵抗能力。
此外，还可以通过调节植物生长环境（如光照、气温等）来提高其抗逆性。
植物逆境生理学实验指导
植物逆境生理学实验是植物学习不同环境根据营养物质的变化而产生的反应所研究的实验方法。
它是植物营养学和土壤科学研究中不可或缺的一部分，旨在探究不同环境对植物生长和发育的影响。
本文将着重介绍植物逆境生理学实验的过程、意义以及实施的方法，从而帮助读者更好地理解并开展实用植物学实验。
首先，植物逆境生理学实验的目的是研究不同环境对植物生长及发育的影响。
实验操作是通过对长期处在某一特定环境条件下的植物进行比较研究，以及通过对植物生长诱导物质所产生的影响进行研究，来研究植物对环境影响产生的生理和生物反应。
举例来说，实验组可以考察植物在正常饮水量下的生理反应和生物反应，对照组可以评估植物在缺水的情况下的生理反应和生物反应，以及它们对缺水情况作出的适应性。
如此，实验室可以比较植物在良性环境下与负性环境下的生理反应，掌握它们在不同环境下的生长性状等变化。
其次，植物逆境生理学实验是一种复杂的实验，需要科学家从多个层面了解实验的具体流程和过程。
首先，要准备品种，选择不同的植物来进行实验，此外，要完成各项实验之前的实验前准备，如清洁实验室、进行植物的培养；其次，要设计实验并开始实验，并收集、记录实验数据；最后，要对实验数据进行分析并形成结论。
最后，植物逆境生理学实验是一种非常重要的实验，它为植物营养学和土壤科学研究奠定了基础。
通过它，科学家不仅可以了解植物在不同环境下的生长特性，而且可以控制植物的生长，依靠它开发出能够抵抗负性环境的植物品种并且进行更大范围的研究，从而使植物具有更强的环境抵抗能力。
植物的抗性（低温、高温）评价测定实验方法
植物的抗性（低温、⾼温）评价测定实验⽅法植物的抗性（低温、⾼温）评价测定实验⽅法（张平贤收集）实验⼀植物体内游离脯氨酸含量的测定⼀、⽬的在逆境条件下（旱、热、冷、冻），植物体内脯氨酸的含量显著增加，植物体内脯氨酸含量在⼀定程度上反映了植物的抗逆性，抗旱性强的品种积累的脯氨酸多。
因此测定脯氨酸含量可以作为抗旱育种的⽣理指标。
另外，由于脯氨酸亲⽔性极强，能稳定原⽣质胶体及组织内的代谢过程，因⽽能降低冰点，有防⽌细胞脱⽔的作⽤。
在低温条件下，植物组织中脯氨酸增加，可提⾼植物的抗寒性，因此，亦可作为抗寒育种的⽣理指标。
⼆、原理磺基⽔杨酸对脯氨酸有特定反应，当⽤磺基⽔杨酸提取植物样品时，脯氨酸便游离于磺基⽔杨酸溶液中。
然后⽤酸性茚三酮加热处理后，茚三酮与脯氨酸反应，⽣成稳定的红⾊化合物，再⽤甲苯处理，则⾊素全部转移⾄甲苯中，⾊素的深浅即表⽰脯氨酸含量的⾼低。
在520nm波长下测定吸光度，即可从标准曲线上查出脯氨酸的含量。
三、材料、仪器及试剂1. 材料：植物叶⽚。
2. 仪器：分光光度计；电⼦分析天平；离⼼机；⼩烧杯；普通试管；移液管；注射器；恒温⽔浴锅；漏⽃；漏⽃架；滤纸；剪⼑；洗⽿球。
3 .试剂及配制：2.5﹪酸性茚三酮溶液配制：将1.25g茚三酮溶于30ml冰醋酸和20ml 6mol·L －1磷酸中，搅拌加热（70℃）溶解，贮于4℃冰箱中,2-3⽇有效。
3％磺基⽔杨酸配配制：3g磺基⽔杨酸加蒸馏⽔溶解后定容⾄100ml。
10µg·ml-1脯氨酸标准母液配制：精确称取20mg脯氨酸，倒⼊⼩烧杯内，⽤少量蒸馏⽔溶解，再倒⼊200ml容量瓶中，加蒸馏⽔定容⾄刻度（为100µg·ml －1脯氨酸母液），再吸取该溶液10ml, 加蒸馏⽔稀释定容⾄100ml, 即为10µg·ml-1脯氨酸标准液。
100µg·ml－1脯氨酸母液:称10mg脯氨酸溶于少量的⼄醇中，⽤蒸馏⽔定容⾄100ml冰醋酸；甲苯。
关于芹菜植物实验报告(3篇)
第1篇实验目的：通过本实验，了解芹菜植物的生长习性、根系吸水功能以及叶片的光合作用，并探究环境因素对芹菜生长的影响。
实验材料：1. 新鲜芹菜植株若干2. 实验用土（富含养分）3. 测量工具（尺子、天平）4. 灯泡（模拟光照）5. 遮光布6. 温度计7. 实验记录表实验方法：1. 根系吸水实验：- 将芹菜植株的根系洗净，放入装有实验用土的花盆中，确保根系与土壤充分接触。
- 将花盆放置在阳光下，每隔一定时间用尺子测量芹菜植株的高度变化，并记录数据。
- 设置对照组，将相同数量的芹菜植株放置在遮光布下，进行对比实验。
2. 光合作用实验：- 将芹菜植株放置在光照充足的地方，用温度计测量环境温度，并记录数据。
- 每隔一定时间观察芹菜叶片的颜色变化，记录数据。
- 设置对照组，将相同数量的芹菜植株放置在遮光布下，进行对比实验。
3. 环境因素影响实验：- 设置不同温度（如10℃、20℃、30℃）的实验组，将芹菜植株放置在相应温度的环境中，观察生长情况。
- 设置不同光照强度（如强光、弱光）的实验组，将芹菜植株放置在相应光照强度下，观察生长情况。
实验步骤：1. 根系吸水实验：- 将芹菜植株的根系洗净，放入装有实验用土的花盆中，确保根系与土壤充分接触。
- 将花盆放置在阳光下，每隔一定时间用尺子测量芹菜植株的高度变化，并记录数据。
- 设置对照组，将相同数量的芹菜植株放置在遮光布下，进行对比实验。
2. 光合作用实验：- 将芹菜植株放置在光照充足的地方，用温度计测量环境温度，并记录数据。
- 每隔一定时间观察芹菜叶片的颜色变化，记录数据。
- 设置对照组，将相同数量的芹菜植株放置在遮光布下，进行对比实验。
3. 环境因素影响实验：- 设置不同温度（如10℃、20℃、30℃）的实验组，将芹菜植株放置在相应温度的环境中，观察生长情况。
- 设置不同光照强度（如强光、弱光）的实验组，将芹菜植株放置在相应光照强度下，观察生长情况。
实验结果与分析：1. 根系吸水实验：- 观察到芹菜植株在阳光下生长速度较快，高度变化明显，说明根系具有吸水功能。
植物抗逆性检测方法及流程
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毛竹苗的硅含量与抗逆性关系研究
毛竹苗的硅含量与抗逆性关系研究引言：毛竹是我国重要的经济林木之一，其具有良好的抗逆性能，广泛应用于林业和农业领域。
硅是毛竹体内含量较高的元素之一，且被认为与植物的抗逆性密切相关。
本研究旨在探究毛竹苗的硅含量与其抗逆性的关系，以期提供科学依据和理论支持，进一步促进毛竹种植和利用的发展。
一、背景与意义：毛竹（Phyllostachys pubescens）是我国南方常见的竹类植物，其生长快、产量高、具有较强的适应性和抗逆性。
在不同环境条件下，毛竹的生长状况和抗逆性存在差异。
硅是大部分植物体内必需的微量元素，已被证实与植物的抗逆性密切相关。
然而，毛竹苗的硅含量与其抗逆性之间的关系仍然存在较大的争议。
因此，深入研究毛竹苗的硅含量与其抗逆性之间的关系，具有重要的理论和应用价值。
二、硅对毛竹苗的影响机制：1.提高植物细胞壁的强度和稳定性：硅可以结合在细胞壁中，形成二氧化硅（SiO2）的沉积物，增加细胞壁的硬度，提高植物组织的稳定性。
2.增强抗逆性：通过硅的积累，植物可以增强对非生物胁迫（如干旱、盐碱等）的抵抗力，减轻外界环境对植物造成的伤害。
3.调节植物生理代谢：硅参与调节植物的生理代谢过程，如光合作用、呼吸、养分吸收等，进而维持植物生长发育的正常运转。
三、研究方法和实验设计：1.收集样本：选择生长健壮且具有一定生长历史的毛竹苗作为研究对象，根据不同的硅含量进行分组。
2.测定硅含量：采用简化的硅酸钠浸出法或硅酸化学分析法，测定毛竹苗体内硅的含量。
3.评估抗逆性：通过测量苗木的生物量、叶绿素含量、根系形态、抗氧化酶活性等指标，对毛竹苗的抗逆性进行综合评估。
4.统计分析：采用适当的统计方法，分析硅含量与毛竹苗的抗逆性之间的关系。
四、预期结果与讨论：通过对毛竹苗的硅含量与抗逆性关系的研究，可以得出以下预期结果：1.硅含量与毛竹苗的抗逆性呈正相关关系：高硅含量的毛竹苗具有较高的抗逆性，能够更好地适应恶劣环境条件。
2.硅的富集可以增强毛竹苗的生长和发育：适量的硅供应可以促进毛竹苗的根系发育、提高叶绿素含量、增强光合作用效率，从而促进整体生长。
实验四植物抗逆性的测定
实验四植物抗逆性的测定实验植物抗逆性的测定（电导仪法）⼀实验⽬的进⼀步理解和认识逆境胁迫对植物细胞膜透性的影响，了解电导法在植物逆境⽣理与抗性育种研究中的应⽤范围。
⼆、实验原理在正常⽣长状况下，植物细胞膜保持着良好的选择透性，⽽当植物组织受到逆境（例如⼲旱、低温、⾼温、盐渍等）伤害时，由于膜脂过氧化、膜蛋⽩变性及膜脂流动性改变，造成膜相变和膜结构破坏，使得细胞膜透性增⼤，从⽽使细胞内的电解质外渗，以致植物细胞浸提液的电导率增⼤。
膜透性增⼤的程度与逆境胁迫强度有关，胁迫强度越⼤，伤害越重，外渗越多，电导率的增加也越⼤。
同时也与植物抗逆性的强弱有关，抗性越强，伤害越轻，外渗越少，电导率的增加也越⼩。
所以，通过测定外渗液电导率的变化，就可以反映出细胞膜的伤害程度和所测材料抗逆性的⼤⼩。
三、材料、仪器和试剂1. 材料：各种植物叶⽚（如丁⾹、⼩麦等）2. 仪器设备：电导仪；天平；恒温箱；真空⼲燥器；抽⽓机；恒温⽔浴锅；烧杯；剪⼑或打孔器；吸⽔纸；纱布等。
3.试剂：去离⼦⽔四、实验步骤1．容器的洗涤：电导法对⽔和容器的洁净度要求严格，所⽤容器必须彻底清洗，再⽤去离⼦⽔冲净，倒臵于洁净滤纸上备⽤。
2．试验材料的处理：选取正常⽣长的⼩麦或其他植物相同部位叶⽚若⼲，剪下后，先⽤纱布拭净，分成2份，将其中⼀份放臵50℃左右的恒温箱中处理30min，进⾏逆境胁迫处理。
另⼀份放臵在室温下作对照。
3. 测定步骤(1) 将处理组叶⽚与对照组叶⽚⽤去离⼦⽔冲洗2次，再⽤洁净滤纸吸净表⾯⽔分，各称取2g，然后剪成长约1cm⼩段放⼊⼩烧杯中（⼤⼩以够容电极为度），并⽤玻璃棒压住，在杯中准确加⼊蒸馏⽔20ml，浸没叶⽚。
将其放⼊真空⼲燥器中，⽤抽⽓机抽⽓7～8min以抽出细胞间隙中的空⽓；重新缓缓放⼊空⽓，⽔即被压⼊组织中⽽使叶⽚下沉。
（注：材料为阔叶时，最好使⽤打孔器取材）(2) 将抽过⽓的⼩烧杯取出，放在实验桌上静臵20min ，然后⽤玻棒轻轻搅动叶⽚，在20～25℃恒温下，⽤电导仪分别测定处理组和对照组得电导值为T 1和C 1。
植物韧性实验报告总结(3篇)
第1篇一、实验背景植物韧性是指植物在遭受外界环境胁迫时，通过自身的生理、生化及形态学等调节机制，维持生命活动的能力。
植物韧性对于植物的生长发育、抗逆性和适应性具有重要意义。
本实验旨在探究不同植物品种在干旱、盐胁迫等环境胁迫下的韧性表现，以期为植物育种和栽培提供理论依据。
二、实验材料与方法1. 实验材料实验选用小麦、玉米、大豆、棉花等四种植物品种作为研究对象。
2. 实验方法（1）干旱胁迫实验：将植物品种分别种植于不同干旱程度的土壤中，观察植物的生长状况、叶片失水率、根系活力等指标。
（2）盐胁迫实验：将植物品种分别种植于不同盐浓度的土壤中，观察植物的生长状况、叶片失水率、根系活力等指标。
（3）生理生化指标测定：测定植物叶片的相对电导率、脯氨酸含量、丙二醛含量等指标。
三、实验结果与分析1. 干旱胁迫实验结果（1）小麦：在干旱胁迫下，小麦叶片失水率逐渐增大，根系活力逐渐降低，但较其他植物品种具有较好的抗性。
（2）玉米：在干旱胁迫下，玉米叶片失水率较大，根系活力较低，抗性较差。
（3）大豆：在干旱胁迫下，大豆叶片失水率较小，根系活力较高，抗性较好。
（4）棉花：在干旱胁迫下，棉花叶片失水率较大，根系活力较低，抗性较差。
2. 盐胁迫实验结果（1）小麦：在盐胁迫下，小麦叶片失水率逐渐增大，根系活力逐渐降低，但较其他植物品种具有较好的抗性。
（2）玉米：在盐胁迫下，玉米叶片失水率较大，根系活力较低，抗性较差。
（3）大豆：在盐胁迫下，大豆叶片失水率较小，根系活力较高，抗性较好。
（4）棉花：在盐胁迫下，棉花叶片失水率较大，根系活力较低，抗性较差。
3. 生理生化指标测定结果（1）相对电导率：小麦、大豆在干旱、盐胁迫下的相对电导率均低于玉米和棉花，表明小麦、大豆的细胞膜相对稳定性较好。
（2）脯氨酸含量：小麦、大豆在干旱、盐胁迫下的脯氨酸含量较高，表明其具有一定的渗透调节能力。
（3）丙二醛含量：小麦、大豆在干旱、盐胁迫下的丙二醛含量较低，表明其具有较强的抗氧化能力。
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实验七实验设计报告
实验名称：干旱对植物的伤害及植物对干旱的适应性调节实验目的：（1）了解干旱对植物的伤害作用；
(2)了解植物适应干旱的生理调节；
(3)掌握干旱对植物伤定程度的测定方法；
(4)掌握植物适应干旱的一些生理指标的测定方法。
实验设计
逆境类型：干旱（不浇水）
逆境强度：不浇水天数
待小麦苗长到7-8厘米高时进行干旱处理。
逆境处理时间：1天，2天，3天，4天，5天，
测定指标：水分含量
逆境对植物的伤害：相对电导率（膜透性）
植物对逆境的适应调节：脯氨酸
（一）植物体内游离脯氨酸含量的测定
一、目的
在逆境条件下（旱、热、冷、冻），植物体内脯氨酸的含量显著增加，植物体内脯氨酸含量在一定程度上反映了植物的抗逆性，抗旱性强的品种积累的脯氨酸多。
因此测定脯氨酸含量可以作为抗旱育种的生理指标。
另外，由于脯氨酸亲水性极强，能稳定原生质胶体及组织内的代谢过程，因而能降低冰点，有防止细胞脱水的作用。
在低温条件下，植物组织中脯氨酸增加，可提高植物的抗寒性，因此，亦可作为抗寒育种的生理指标。
二、原理
磺基水杨酸对脯氨酸有特定反应，当用磺基水杨酸提取植物样品时，脯氨酸便游离于磺基水杨酸溶液中。
然后用酸性茚三酮加热处理后，茚三酮与脯氨酸反应，生成稳定的红色化合物，再用甲苯处理，则色素全部转移至甲苯中，色素的深浅即表示脯氨酸含量的高低。
在520nm波长下测定吸光度，即可从标准曲线上查出脯氨酸的含量。
三、材料、仪器及试剂
3.1. 材料：植物叶片。
3.2. 仪器：分光光度计；电子分析天平；离心机；小烧杯；普通试管；移液管；恒温水浴
锅；滤纸；剪刀；洗耳球。
3.3.试剂及配制：
2.5﹪酸性茚三酮溶液配制：将1.25g茚三酮溶于30ml冰醋酸和20ml 6mol·L－1磷酸中，搅拌加热（70℃）溶解，贮于冰箱中。
3％磺基水杨酸配配制：3g磺基水杨酸加蒸馏水溶解后定容至100ml。
10μg·ml-1脯氨酸标准母液配制：精确称取20mg脯氨酸，倒入小烧杯内，用少量蒸馏水溶解，再倒入200ml容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度（为100μg·ml－1脯氨酸母液），再吸取该溶液10ml, 加蒸馏水稀释定容至100ml, 即为10μg·ml-1脯氨酸标准液。
冰醋酸；甲苯。
四、实验步骤
4.1脯氨酸标准曲线的制作
4.1.1取6支试管，编号，按下表配制每管含量为0～12μg的脯氨酸标准液。
加入表中试剂后，置于沸水浴中加热30min。
取出冷却，各试管再加入4ml甲苯，振荡30秒钟，静置片刻，使色素全部转至甲苯溶液。
4.1.2用注射器轻轻吸取各管上层脯氨酸甲苯溶液至比色杯中，以甲苯溶液为空白对照，在520mm波长处测定吸光度（A）值。
4．2标准曲线的绘制
以1～5号管脯氨酸含量为横坐标，吸光度值为纵坐标，绘制标准曲线。
4.3. 样品的测定
4.3.1脯氨酸的提取
称取不同处理的植物叶片各0.5g，分别置大试管中，然后向各管分别加入5ml 3％的磺
基水杨酸溶液，在沸水浴中提取10min（提取过程中要经常摇动），冷却后过滤于干净的试管中，滤液即为脯氨酸的提取液。
4.3.2测定
吸取2ml提取液于带玻塞试管中，加入2ml冰醋酸及2ml 2.5﹪酸性茚三酮试剂，在沸水浴中加热30min，溶液即呈红色。
冷却后加入4ml甲苯，摇荡30秒钟，静置片刻，取上层液至10ml离心管中，在3000r/min离心5min。
用吸管轻轻吸取上层脯氨酸红色甲苯溶液于比色杯中，以甲苯溶液为空白对照，在520mm波长处测定吸光度（A）值。
五、计算结果
从标准曲线上查出样品测定液中脯氨酸的含量，按下公式计算样品中脯氨酸含量：
X ×提取液总量（ml）脯氨酸含量（μg·g－1Fw）＝———————————————————
样品鲜重（g）×测定时提取液用量（ml）
公式中：X －从标准曲线中查得的脯氨酸含量（μg）
实验数据表格1
梯度
吸光度值A 吸光度平均值脯氨酸含量（μg·g－1Fw）
处理一天1 2 3
处理两天1 2 3
处理三天1 2 3
处理四天1 2 3
处理五天1 2 3
对照1 2 3
（二）相对电导率测定
一、原理
细胞膜不仅是分隔细胞质和胞外环境的屏障，而且也是细胞与环境发生物质交换的主要通道，又是细胞感受环境变化刺激的部位。
细胞膜的选择透性是其维持生理功能的最重要的条件之一。
各种逆境伤害都会造成质膜选择透性的改变或丧失，例如低温、冰冻、干旱脱水等导致的细胞膜机械损伤以及逆境和衰老过程中的膜脂过氧化作用，都可以增大细胞膜通透性。
因此，细胞质膜透性的测定常作为植物抗性研究中的一个重要生理指标。
当质膜的选择透性因逆境伤害而明显改变或丧失时，细胞内的物质(尤其是电解质)大量外渗，从而引起组织浸泡液的电导率发生变化，通过测定外渗液电导率的变化，就可反映出质膜的伤害程度和所测材料抗逆性的大小。
Dexter (1930)首先用电导法测定了植物的抗冻性，经过不断地改进和完善，目前已得到广泛应用。
二、材料、仪器及试剂
2.1. 材料：植物叶片。
2.2．仪器：30ml指形管（18个），剪刀，水浴锅，试管架，电导率仪。
2.3 .试剂：去离子水
三、实验步骤
（1）取根系或植物叶片，自来水洗净，蒸馏水冲洗干净，吸干表面水分。
秤取1g，剪成长约1cm小段。
将材料装到30ml指形管内，加入去离子水15ml，抽真空至材料下沉，室温放置1~2h。
测电导率R1。
（用根系时可以不用抽真空）
（2）将指形管沸水浴15~20min（注意加盖防止水分蒸发），以充分杀死植物组织，取出放入自来水中冷却至室温，测电导率R2。
相对电导率=R1÷R2×100
实验数据表格2
梯度电导率R1 平均值电导率R2 平均值相对电导率
处理一天1 1
2 2
3 3
处理两天1 1
2 2
3 3
处理三天1 1
2 2
3 3
处理四天1 1
2 2
3 3
处理五天1 1
2 2
3 3
对照组1 1
2 2
3 3
（三）植物水分含量测定
一、原理
自然含水量= 鲜重/鲜重-干重×100％
相对含水量（Relative Water Content，RWC）
RWC =实际含水量/饱和含水量×100％=自然鲜重-干重/水饱和鲜重-干重×100％
二、材料、仪器及试剂
2.1.材料：植物叶片
2.2.仪器：电子天平，试管（18个），剪刀，烘箱，滤纸
2.3.试剂：蒸馏水，
三、实验步骤
1、取成熟植物叶片，剪成适当大小，迅速称量鲜重Wf（~1g）。
2、将植物材料浸入蒸馏水并置于4℃冰箱中数小时至恒重（因植物材料而异）。
3、将材料从水中取出，用吸水纸迅速吸去材料表面水分，称取其饱和鲜重Wfs。
（12h以上）
4、将上述材料放入一信封内，放入烘箱中，在105℃下杀青30min，然后将温度调到80℃烘至恒重。
5、称取材料干重Wd。
实验数据表格3
梯度鲜重wf 平均值1 鲜重wfs 平均值2 干重wd 平均值3 RWC 1
处理一天 2
3
1
处理两天 2
3
1
处理三天 2
3
1
处理四天 2
3
1
处理五天 2
3
1
对照组 2
3
注意：（1）在称量1g叶片后将叶片装入用记号笔标记的试管中，一一对应。
（2）在称量wfs时，称量一个包装一个并做好标记和记录，最后三个平行包装在一个大的报纸中进行烘焙。
（3）在称量wd时称量一个记录一个。