两种基因敲除小鼠的培育
基因敲除模式小鼠的饲养与交配
基因敲除模式小鼠的饲养与交配
首先，基因敲除小鼠的饲养需要提供适当的饲养环境。
小鼠的饲养箱
应设有合适的温度、湿度和光照条件，并保持干净卫生。
此外，提供干燥
而适宜的饮水和高质量的饲料也非常重要。
饲养箱内应使用吸水床或纸巾
等材料作为底材，以提供一定的保暖和舒适性。
其次，基因敲除小鼠的饮食需要特殊考虑。
一些基因敲除小鼠可能会
出现食欲不振或消化问题，因此饲养者应根据实际情况提供适合的饮食。
常用的饮食成分包括高能量饲料、高蛋白饲料等，以满足小鼠的营养需求。
基因敲除小鼠的交配需要注意遵守一定的原则以确保实验的有效性和
数据的可靠性。
一般来说，为了保持基因突变的稳定性，最好采用同基因
型的小鼠进行交配。
如果希望获得特定基因型的后代，可以选择雄性和雌
性基因敲除小鼠进行杂交。
交配时间和交配比例也需要根据具体实验设计
确定，通常可采用经典的一雄多雌的交配模式。
交配后，及时观察并记录
孕鼠的妊娠情况以及出生幼鼠的数量和基因型。
此外，基因敲除小鼠的饲养和交配还需要注意一些伦理和法律规定。
例如，需要合法获得该基因敲除小鼠的授权，并遵守实验动物的使用和保
护规定。
总而言之，基因敲除小鼠的饲养和交配需要提供良好的饲养环境和适
宜的饮食，遵守适当的饲养和交配原则，以及遵守相关的伦理和法律规定。
这些措施的实施将有助于保证实验的有效性和数据的可靠性。
《Bdh2基因敲除的小鼠胚胎干细胞的生物特性研究》范文
《Bdh2基因敲除的小鼠胚胎干细胞的生物特性研究》篇一摘要：本研究关注于Bdh2基因敲除的小鼠胚胎干细胞（ESCs）的生物特性研究。
通过基因编辑技术，我们成功构建了Bdh2基因敲除的ESCs模型，并对其细胞增殖、分化潜能、基因表达谱等方面进行了深入分析。
本文旨在解析Bdh2基因在小鼠ESCs中的作用，并进一步揭示其在生物医学研究中的应用潜力。
一、引言Bdh2基因，作为细胞内脂肪酸β-氧化途径的重要一环，其在生物体内具有至关重要的功能。
然而，Bdh2基因在小鼠胚胎干细胞中的具体作用尚未完全明确。
本研究旨在探讨Bdh2基因敲除对小鼠胚胎干细胞生物特性的影响，为研究其生物学功能提供理论基础。
二、材料与方法1. 材料实验选用的小鼠胚胎干细胞来自实验室前期培养的野生型和Bdh2基因敲除型ESCs。
2. 方法（1）通过CRISPR-Cas9技术，成功构建Bdh2基因敲除的小鼠胚胎干细胞模型；（2）运用细胞增殖实验、细胞周期检测、克隆形成实验等手段，研究Bdh2基因敲除对细胞增殖的影响；（3）采用实时定量PCR、免疫荧光等实验技术，探讨Bdh2基因敲除对小鼠胚胎干细胞分化潜能及基因表达谱的影响；（4）运用生物学信息分析方法，分析数据并绘制相关图表。
三、实验结果1. Bdh2基因敲除对小鼠胚胎干细胞增殖的影响实验结果显示，Bdh2基因敲除后，小鼠胚胎干细胞的增殖能力显著降低。
通过细胞周期检测发现，Bdh2基因敲除导致细胞周期停滞在G1期，S期细胞数量减少。
此外，克隆形成实验也证实了Bdh2基因敲除对细胞增殖的抑制作用。
2. Bdh2基因敲除对小鼠胚胎干细胞分化潜能的影响实时定量PCR和免疫荧光实验表明，Bdh2基因敲除后，小鼠胚胎干细胞的分化潜能发生改变。
在特定诱导条件下，Bdh2基因敲除的ESCs在向特定细胞类型分化的过程中出现障碍。
这表明Bdh2基因在小鼠胚胎干细胞的分化过程中发挥重要作用。
3. Bdh2基因敲除对小鼠胚胎干细胞基因表达谱的影响通过对Bdh2基因敲除前后小鼠胚胎干细胞的基因表达谱进行分析，我们发现一系列与细胞增殖、分化及代谢相关的基因表达发生改变。
基因敲除小鼠的实验流程
基因敲除小鼠的实验流程
一、前期准备
1、检索标记基因：采用全基因组测序技术或大规模基因组关联分析法筛选出敲除对研究有重要作用的基因；
2、设计敲除构建：根据筛选出的基因特异性序列，对基因进行深入分析，结合已有研究成果，根据基因的功能和结构确定可有效敲除的基因结构模型；
3、制备修饰质粒：根据设计模型，制备适当的质粒，使其具有足够的重组能力和具有全套的特异性对象；
4、选择载体：选择合适的载体（含有敲除的质粒），使敲除的基因更容易被载入小鼠细胞中进行修饰；
二、基因敲除实验
1、小鼠胚胎动物模型：小鼠胚胎是敲除小鼠研究的传统动物模型，采用小鼠母体体外受精，利用载体质粒将敲除基因引入胚胎，敲除的基因将被遗传给后代小鼠；
2、小鼠嵌合体模型：采用基因修饰技术将敲除基因嵌入小鼠细胞的质粒，多功能的抗体定位蛋白可以用来将质粒载入小鼠细胞，利用抗体定位系统，将修饰的嵌入小鼠胚胎，诱导而成嵌合体，使敲除的基因能够传递给后代；
3、选择敲除后的小鼠：将敲除实验的小鼠孵化。
H2-Eb1+H2-Ab1双基因敲除小鼠的鉴定及繁育
H2-Eb1+H2-Ab1双基因敲除小鼠的鉴定及繁育唐志元;王燕;吕靓;李林格;张华【摘要】目的饲养、繁殖和鉴定H2-Eb1+H2-Ab1双基因敲除小鼠,获得双纯合子H2-Eb1-/-+H2-Ab1-/-及双野生型H2-Eb1+/++H2-Ab1+/+小鼠,为深入研究H2-Eb1、H2-Ab1的基因功能奠定基础.方法基因敲除小鼠经适应性饲养2 w 后,分别将雌性杂合子和雄性杂合子小鼠合笼饲养并繁殖,提取鼠尾DNA,利用PCR 法鉴定其基因型.生产后代中的野生型和纯合子小鼠用于后续的生物学功能研究,杂合子小鼠用于繁殖及保种.结果小鼠成功繁殖,其中双纯合子H2-Eb1-/-+H2-Ab1-/-20只(20％),双野生型H2-Eb1+/++H2-Ab1+/+26只(26％),未鉴定出基因型54只(54％).成功获得H2-Eb1+H2-Ab1双基因敲除纯合子小鼠,并建立了饲养、繁殖和鉴定方法.结论采用雌性和雄性H2-Eb1+H2-Ab1双基因敲除杂合子小鼠交配,不仅可以获H2-Eb1+H2-Ab1双基因敲除纯合子小鼠,而且有利于长期饲养与繁殖.%Objective To feed,breed and identify the H2-Eb1+H2-Ab1 double gene knockout mice,in or-der to get the double homozygote type of H2-Eb1 -/- + H2-Ab1 -/- mice and double wild type of H2-Eb1 +/+ +H2-Ab1 +/+ mice,thereby laying the foundation for the study of the H2-Eb1and the H2-Ab1. Methods After the adaptive feeding of the knockout mice for 2 weeks,the female heterozygote type mice and the male heterozygous type mice were mated.The DNA of rat tail was extracted;the genotyping was determined using PCR method.The wild type mice and the homozygous type will be used for the following biological function research;the heterozygous type mice will be used for reproduction and survive.Results After successful reproduction,There were 20 doublehomozygote type of H2-Eb1 -/- + H2-Ab1 -/- (20％), 26 double wild type of H2-Eb1 +/+ +H2-Ab1 +/+ (26％),54 of unidentified the genes (54％).the homozy-gous type double knockout mice of H2-Eb1+H2-Ab1 were successfully established,and the breeding,re-production and appraisal method were done expectedly.Conclusion Mating of the male and female of het-erozygous type of double knockout mice of H2-Eb1 + H2-Ab1,not only can give birth to he homozygous type double knockout mice of H2-Eb1 + H2-Ab1,but also good for the reproduction and breeding long-term.【期刊名称】《新疆医科大学学报》【年(卷),期】2017(040)010【总页数】4页(P1261-1264)【关键词】双基因敲除;小鼠;基因鉴定;繁育方法【作者】唐志元;王燕;吕靓;李林格;张华【作者单位】新疆医科大学第一附属医院耳鼻咽喉科,乌鲁木齐 830054;新疆医科大学第一附属医院耳鼻咽喉科,乌鲁木齐 830054;新疆医科大学第一附属医院耳鼻咽喉科,乌鲁木齐 830054;新疆医科大学第一附属医院耳鼻咽喉科,乌鲁木齐830054;新疆医科大学第一附属医院耳鼻咽喉科,乌鲁木齐 830054【正文语种】中文【中图分类】Q784Abstract: Objective To feed, breed and identify the H2-Eb1+H2-Ab1 double gene knockout mice, in order to get the double homozygote typeof H2-Eb1-/-+H2-Ab1-/- mice and double wild type of H2-Eb1+/++H2-Ab1+/+ mice, thereby laying the foundation for the study of the H2-Eb1and the H2-Ab1. Methods After the adaptive feeding of the knockout mice for 2 weeks, the female heterozygote type mice and the male heterozygous type mice were mated. The DNA of rat tail was extracted; the genotyping was determined using PCR method. The wild type mice and the homozygous type will be used for the following biological function research; the heterozygous type mice will be used for reproduction and survive. Results After successful reproduction, There were 20 double homozygote type of H2-Eb1-/-+H2-Ab1-/- (20%), 26 double wild type of H2-Eb1+/++H2-Ab1+/+(26%), 54 of unidentified the genes (54%). the homozygous type double knockout mice of H2-Eb1+H2-Ab1 were successfully established, and the breeding, reproduction and appraisal method were done expectedly. Conclusion Mating of the male and female of heterozygous type of double knockout mice of H2-Eb1+H2-Ab1,not only can give birth to he homozygous type double knockout mice of H2-Eb1+H2-Ab1, but also good for the reproduction and breeding long-term. Keywords: double knockout; mice; gene identification; reproduction; mating基因敲除小鼠是建立在胚胎干细胞技术与基因同源重组等技术上的一种定向改变生物活体遗传信息的转基因动物，是研究疾病的发病机制、分子基础及寻找合适药物靶标的重要工具[1-2]。
两种基因敲除小鼠的生长与繁殖性能测定
浙江畜牧兽医2019年第2期收稿日期：2019－01－29两种基因敲除小鼠的生长与繁殖性能测定傅军（浙江大学实验动物中心，浙江杭州310058）摘要：本试验测定了Cathepsin S－null小鼠和Cystatin C－null小鼠的生长繁殖指标，具体测定指标为产仔数，离乳数和胎间隔等。
试验实行严格的兄妹交配，1雌1雄长期同窝，仔鼠在3－4周后离开母鼠，按性别分笼饲养，从初生之日起，每周称重一次，连续15周。
Cathepsin S－null小鼠的平均产仔数是6．3ʃ1．8只，Cystatin C－null小鼠的平均产仔数是7．2ʃ2．1；Cathepsin S－null小鼠平均胎间隔43．1ʃ15．6日，Cystatin C －null小鼠平均胎间隔为39．1ʃ15．4日。
各项指标均较稳定，基本符合近交系小鼠的特征。
关键词：近交系；小鼠；生长；繁育；测定中图分类号：S865．1+3文献标识码：A文章编号：1005－7307（2019）02－0002－003基因敲除小鼠是在C57BL/6品系小鼠上，敲除了机体产生组织蛋白酶S（cathepsin s）和胱抑素C （Cystatin C）的相关基因后培育成的新品系。
本试验的目的通过与C57BL/6比较，探索敲除了这两个基因后是否会影响小鼠的生长繁育。
1材料和方法1．1试验材料1．1．1动物来源Cystatin C－null小鼠（C－C）和Cathepsin S－null小鼠（C－S）是美国哈佛大学Guo Ping shi教授研制培育的基因敲除小鼠。
2005年11月份，浙江大学医学院附属二院的项美香教授获得哈佛大学的赠送，引进了两对种鼠，饲养在学校实验动物中心。
经繁殖后动物数量：Cystatin C－null（C －C）雌性小鼠193只，雄性小鼠：199只；Cathepsin S－null（C－S）雌性小鼠183只，雄性小鼠179只。
1．1．2饲料和水浙江大学实验动物中心自己配制生产的全价饲料，经121ħ、20min、真空高压蒸汽灭菌。
基因敲除小鼠
基因敲除小鼠摘要基因敲除小鼠是一种常用的实验动物模型，可以帮助科学家研究基因在生物体发育和功能中的作用。
本文将介绍基因敲除小鼠的定义、用途以及常用的敲除方法，帮助读者了解基因敲除小鼠在生物学研究中的重要性和应用。
引言基因敲除小鼠是指通过干扰或删除特定基因，使小鼠体内该基因表达受到抑制或消失的实验模型。
这种模型被广泛应用于基因功能研究、疾病机制研究以及药物开发等领域。
基因敲除方法基因敲除小鼠的制备有多种方法，其中最常用的是胚胎干细胞敲除和CRISPR/Cas9系统。
胚胎干细胞敲除胚胎干细胞敲除是一种传统的基因敲除方法。
首先，从小鼠胚胎中获得胚胎干细胞，然后通过基因转染或基因突变等方式，使目标基因发生敲除突变。
最后，将敲除的胚胎干细胞注入到早期小鼠胚胎中，形成敲除小鼠。
CRISPR/Cas9系统CRISPR/Cas9系统是一种新兴的基因编辑技术，已经在基因敲除小鼠制备中得到广泛应用。
该系统利用Cas9核酸酶和特定的引导RNA来定向切割目标基因的DNA链，从而导致基因发生敲除或突变。
基因敲除小鼠的应用基因敲除小鼠在生物学研究中有着广泛的应用，以下是其中几个重要的应用领域：基因功能研究通过敲除特定基因，科学家可以观察与该基因相关的表型变化，从而揭示该基因在生物体发育和功能中的作用。
这对于揭示基因调控网络、疾病机制的研究具有重要意义。
疾病模型研究基因敲除小鼠常被用来构建各种疾病模型，如癌症、心血管疾病等。
这些模型可以模拟人类疾病的发生和发展过程，为相关疾病的研究提供了有力的工具。
药物开发基因敲除小鼠在药物开发中也起着重要的作用。
通过敲除特定基因可以观察药物对目标基因的影响，从而评估药物的疗效和安全性。
结论基因敲除小鼠是一种重要的实验动物模型，被广泛应用于基因功能研究、疾病模型研究以及药物开发等领域。
不同的敲除方法可根据具体实验需求选择使用。
基因敲除小鼠在解析基因功能、揭示疾病机制和评估药物疗效方面发挥着重要的作用，为生物学研究提供了强大的工具。
基因敲除小鼠
neo、tk基因均被保留 对G418有抗性，对GANC敏感
2.基因敲除技术步骤
2.4 基因敲除小鼠的产生 2.4.1 将中靶的ES细胞注入到BALB/c小鼠囊胚，接种到新的培养皿中进行培养。 2.4.2 将正常发育含ES细胞的囊胚移植入受体小鼠子宫内 2.4.3 嵌合体小鼠的鉴别：通过观察小鼠被毛的颜色就可确定嵌合体小鼠。 2.4.4 基因敲除小鼠的制备：因为在同源重组过程中，ES细胞的2条染色体中一般只有1条进行重组，得到嵌合 体小鼠后，还要经过至
甚至发现有健康不良者或逃出笼外 , 其它鼠也最好淘汰 , 这种动物不宜用于繁殖。
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谢谢观赏
少2代的繁育过程才能得到基因敲除小鼠。
二、
基因敲除小鼠的基因型鉴定
1.利用PCR和琼脂糖凝胶电泳鉴定
1.1 提取小鼠尾部DNA组织 1.2 PCR扩增与琼脂糖凝胶电泳鉴定基因型
1.2.1 针对不同的Fam172a+/-，Fam172a-/-，WT设计不同的引物 1.2.2 采用PCR仪进行扩增：变性→退火→延伸 1.2.3 取PCR扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳 1.2.4 根据凝胶成像仪中的条带鉴别基因型 可能的结果分析 Fam172a+/-出现两条带，Fam172a-/-只出现一条带，WT出现一条带，但Fam172a-/-和WT出现的位置不 同。
细胞筛选出来， 目前常用的筛选方法有正负双向选择法。
正负双向选择法
neo基因保留，tk基因被切除 对G418和GANC都有抗性
筛选出中靶ES
靶向载体
neo:正向选择基因。具有新霉 素(G418)抗性，其在发生随机 组合和同源重组的细胞中都可 以表达。 HSV-tk：负向选择基因。在发 生同源重组时别剪切掉，发生 随机组合时被保留。tk基因可 使无毒的丙氧鸟苷（GANC） 转化为毒性核苷酸而杀死细胞。
Nrf2基因敲除小鼠的繁育及生长发育的生物学特性
ｏ ｒＰ＜０．５ ；ｔｅｒａｅａｅｗ ｉｈｓｏ ０ ） ｈ ｉ ｖｒｇ ｅｇ ｔ ｆ ５～２ ｅｋｏｄ ｍｉ ｒ ｌ ｅｒａｅ ｉ ｉｃｎｌ Ｐ ＜０ ０ ） ｏ ｃｕｉｎ Ｔ ｅ ５ ｗ ｅ —ｌ ｃ ｗｅｅａｓ ｄ ｃｅｓｄ ｓ ｎｆ ａｔ ｅ ｏ ｇｉ ｙ（ ． １ ．Ｃ ｎｌｓｏ ｈ
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七周重
黑鼠 灰鼠
八周重
黑鼠 灰鼠
九周重
黑鼠 灰鼠
十周重
黑鼠 灰鼠
十一周重
黑鼠 灰鼠
十二周重
黑鼠
3
心电图
4
生理指标
HR
SBP
DBP
MBP
心率
收缩压
舒张压
平均动脉压
C-S
547.1
104.3
67.0
79.2
C-C
448.3
98.4
68.5
78.8
5
项目
血液常规
单位 C-S C-C C57BL/6
WBC
两种基因敲除小鼠的培育
摘要
从美国哈佛大学引进了两种基因敲除小鼠。
这两种品系小鼠的体内分别缺少Cystatin C （胱抑素C ）和 Cathepsin S（组织蛋白 酶 ），简称C-C 和 C-S。在三年的培育过程 中，我们对其生长繁殖、生理生化等一系列 指标作了测定，现将结果汇报如下。
一、材料和方法
#LUC %NEUT %LYMPH
白细胞计数
大未染色细胞计数 中性细胞比率 淋巴细胞比率
10^9/L
10^9/L % %
4.54
0 5.8 .4 76.2
5.89
14.2 81.2
%MONO
%EOS %BASO %LUC RBC HGB HCT MCV MCH MCHC
项目名称 血清总蛋白 血清白蛋白 血清球蛋白
项目代码 TP ALB GLOB
单位 g/L g/L g/L
C-S 50.4 35.1 15.4
C-C 50.8 34.1 16.6
血清白球比
血清丙氨酸氨基转移酶 血清天门冬氨酸氨基转移酶 血清总胆红素 血清碱性磷酸酶 血清甘油三酯 血清总胆固醇 血清肌酸激酶 血清肌酐 尿素 钠
谢 谢！
灰鼠
一周重（g） 黑鼠 灰鼠 二周重 黑鼠 灰鼠 三周重 黑鼠 灰鼠
100
100 100 100 100 100 100
1.5061
4.1209 4.1283 8.1034 8.9003 9.9448 10.086
0.119501448
0.488258284 0.468962007 0.793080199 5.431822518 0.834169859 0.914429778
二、结果
1、 Cystatin C-null小鼠和 Cathepsin S-null
小鼠的生长
Cystatin C-null小鼠(♂)
Cystatin C-null小鼠(♀)
Cathepsin S-null小鼠(♀)
Cathepsin S-null小鼠(♂)
各品系雌雄小鼠生长曲线 30 25 20 15 10 5 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 时间（周） 系列1 系列2 系列3 系列4
单核细胞比率
嗜酸细胞比率 嗜碱细胞比率 大未染色细胞比率 红细胞计数 血红蛋白 红细胞积压 平均红细胞体积 平均血红蛋白含量 平均血红蛋白浓度
%
% % % 10^12/L g/dL % fL Pg g/dL
0.3
4.8 0.18 0.24 10.05 16.1 5.1 50.76 16.15 31.86
重量（克）
2、Cystatin C-null小鼠（C-C）和 Cathepsin S-null小鼠（C-S）的繁育
胎次 品系 1 2 3 4 5 C57BL/6 C-S
分娩间隔(天) C-C 27.3±9.8 35.8±13.4 40.6±15.5 42.7±14.7 49.3±23.8 C-S 6.5±2.3 7.1±2.1 6.7±1.8 6.9±1.9 4.2±1.1
小鼠的生长发育跟周围的环境条件，如温度、
湿度、光照、噪音等和饲养，饮水的关系十 分大，甚至饲养员的喂养习惯都会影响到它 们的生长。因此，世界上各地方，各实验室 饲养的小鼠情况是不一样的。即使同一种品 系，也会随着环境的不同而生长的不同。所 以该两个品系小鼠的生长情况与来源于网上 C57BL/6数据的可比性教差，只能参考。
产仔数 C-C 7.2±2.2 7.5±1.7 7.3±1.9 7.1±2.1 6.9±2.5 C-S 91.6 93.5 94.7 92.3 91.8
成活率(%) C-C 93.4 95.6 92.8 91.7 92.5 87～93％
29.5±7.8 43.5±17.2 45.8±14.5 44.7±15.4 51.6±22.9 28～36天
0.011950145
0.048825828 0.046896201 0.07930802 0.543182252 0.083416986 0.091442978
四周重
黑鼠
灰鼠
100
100
13.3974
13.4348
1.377563814
1.117567235
0.137756381
0.111756724
1.75018146 1.461944188 1.891622923 1.668771432 1.989326395 1.773938889 1.968843097 1.824729815 1.966599886 1.841133555 1.921727663 1.860193799 1.922308532
A/G
ALT AST T-BIL ALP TG TCHOL CK Crea UREA Na U/L U/L ū mol/L U/L mmol/L mmol/L U/L ū mol/L mmol/L mmol/L
2.3
66.7 184.5 0.8 112.4 7.0 2.9 8.7 9.7 21.2 147.0
2.53
3.61 0.04 7.22 9.59 13.53 4.87 50.78 14.29 28.18
6.72
1.1
9.28 14.1
51.11 16.2 29.8
6 血液生化指标
Group Statistics 品系 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 黑鼠 灰鼠 N 11 17 11 17 11 17 11 17 11 17 11 17 11 17 11 17 11 17 11 17 11 17 11 17 11 17 11 17 Mean 50.4364 50.7706 35.0636 34.1294 15.3727 16.6412 2.3364 2.1882 66.7273 49.7059 184.2727 122.8824 .8364 1.3353 112.3636 78.7059 7.0136 .8076 2.8555 2.4065 5080.0909 1230.6471 8.7273 19.1765 9.7273 9.6471 147.0000 153.6471 Std. Deviation 2.08148 4.77857 2.09870 3.98133 2.27820 4.11644 .45667 .61531 20.60627 14.68743 57.33078 37.02682 .22482 .69995 28.36643 45.17434 20.56027 .38982 .59774 .58100 3475.17302 595.14714 5.84963 24.43163 1.93085 5.06250 2.52982 4.37237 Std. Error Mean .62759 1.15897 .63278 .96561 .68690 .99838 .13769 .14923 6.21302 3.56222 17.28588 8.98032 .06779 .16976 8.55280 10.95639 6.19915 .09454 .18022 .14091 1047.804 144.34438 1.76373 5.92554 .58217 1.22784 .76277 1.06046 血 清总 蛋 白 血 清白 蛋 白 血 清球 蛋 白 血 清白 球 比 血 清丙 氨 酸 氨基 转 移 酶 血 清天 门 冬 氨酸 氨 基 转 移酶 血 清总 胆 红 素 血 清碱 性 磷 酸酶 血 清甘 油 三 酯 血 清总 胆 固 醇 血 清肌 酸 激 酶 血 清肌 酐 尿素 钠
六周重
黑鼠 灰鼠
100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100 100
18.4461 19.388 19.4197 20.4483 20.2587 21.3429 21.0823 22.0643 21.6702 22.7236 22.1954 23.3232 22.6631
2.2
49.7 122.9 1.3 78.7 0.8 2.4 1230.6 19.2 9.6 153.6
三、讨论与结论
组织蛋白酶(cathepsin)是一大类裂解肽键的蛋白水
解酶，其中组织蛋白酶 S(cathepsin s) 属于半胱氨 酸蛋白酶,其作用非常广泛，参与机体多种生理、病 理过程。它不但可敛细胞的炎性坏死，还参与细胞 凋亡的调控 ，在多种疾病的发生发展过程中发挥重 要的作用。 Cystatin C(Cys C) 又称半胱氨酸蛋白酶抑制蛋白C , 中译名为胱抑素C 是半胱氨酸蛋白酶的细胞外抑制 剂,在cystatin 中含量最为丰富,并对细胞内蛋白的转 换起作用。它广泛存在于脊椎动物的组织中，参与 炎症过程及一些神经性疾病。因此，这两类物质成 为近来医学研究的热点．
0.175018146 0.146194419 0.189162292 0.166877143 0.198932639 0.177393889 0.19688431 0.182472982 0.196659989 0.184113356 0.192172766 0.18601938 0.192230853