检测蛋白磷酸化的六种方法及其优缺点实验
磷酸化蛋白质分析方法：解读蛋白质磷酸化的奥秘
磷酸化蛋白质分析方法：解读蛋白质磷酸化的奥秘磷酸化是一种常见的蛋白质修饰形式，通过添加磷酸基团调控蛋白质的功能和活性。
磷酸化蛋白质的分析对于了解细胞信号转导和蛋白质功能调控机制至关重要。
本文将深入探索磷酸化蛋白质分析方法的原理和应用，介绍一种利用新技术进行磷酸化蛋白质分析的方法，揭示磷酸化对蛋白质功能调控的重要性。
【磷酸化蛋白质分析方法】。
磷酸化蛋白质分析方法包括多种技术，以下将介绍其中几种常用的方法。
1.免疫印迹：免疫印迹是一种常见的磷酸化蛋白质分析方法。
该方法利用特异性抗体与磷酸化蛋白质结合，通过可视化方法检测磷酸化修饰的存在和程度。
免疫印迹需要将蛋白样品进行电泳分离，然后转移到膜上，并使用特异性抗体来探测磷酸化修饰。
通过比较磷酸化和非磷酸化蛋白质的信号强度，可以评估磷酸化的程度。
2.质谱分析：质谱分析是一种高分辨率的磷酸化蛋白质分析方法。
该方法通过质谱仪对蛋白样品进行离子化和分析，鉴定和定量磷酸化修饰的存在。
常用的质谱方法包括质谱图谱和定量质谱。
质谱图谱通过比对已知标准或数据库来鉴定修饰的位置和类型。
定量质谱通过比较磷酸化和非磷酸化蛋白质的峰强度，定量测定修饰的相对丰度。
3.磷酸化特异性酶切：磷酸化特异性酶切是通过使用具有磷酸化修饰位点的酶来切割磷酸化蛋白质，从而确定磷酸化修饰的位置和程度。
该方法使用磷酸化特异性的酶将磷酸化蛋白质切割成特定的片段，然后可以通过质谱分析等方法对这些片段进行进一步分析。
图1。
【利用新技术实现磷酸化蛋白质分析】。
最近，一种利用新技术进行磷酸化蛋白质分析的方法被开发出来，具有更高的灵敏度和分辨率。
这种方法基于磷酸化修饰对蛋白质的电荷和结构的影响，利用电化学和质谱等技术来实现磷酸化蛋白质的检测和鉴定。
该方法可以通过分析蛋白质样品中的电流信号或质谱图谱，确定磷酸化修饰的位置和程度。
磷酸化蛋白质分析方法是揭示蛋白质功能调控机制的重要工具。
通过免疫印迹、质谱分析、磷酸化特异性酶切和利用新技术实现的方法，可以准确测定和解读蛋白质中磷酸化修饰的存在和程度。
检测蛋白磷酸化的六种方法及其优缺点实验
检测蛋白磷酸化的六种方法及其优缺点实验生物在线蛋白激酶将磷酸基团从ATP转移到蛋白多肽底物上的丝氨酸、苏氨酸或酪氨酸残基，直接影响目标的活性和功能。
放射性研究表明，真核细胞中大约30%的蛋白经过磷酸化修饰。
这一关键的翻译后修饰调控了广泛的细胞活性，包括细胞周期、分化、代谢和神经元通讯。
此外，异常的磷酸化事件与许多疾病状态相关。
在评估磷酸化时，选择的方法可能会有所不同，这取决于多个因素，包括提出的具体问题以及特殊仪器或试剂的可用性。
如何检测蛋白磷酸化，本文简要介绍了几种常用方法，并提出了每种方法的优点和缺点。
激酶活性分析蛋白激酶通常是多个信号转导网络的常见组分，它们影响了众多负责生物反应的下游效应物，因此，评估某个特定激酶的活性可能为平行通路提供宝贵信息。
生物学样品中的激酶活性通常是在体外测定的，在ATP的存在下将免疫沉淀的激酶与外源底物共同孵育。
之后通过一些报告系统来评估特定激酶对底物的磷酸化，包括显色、放射性或荧光检测。
此外，R&D Systems还提供非放射性的Universal Kinase Activity Kit，能够定量任何可产生ADP的激酶的活性。
尽管我们能够获得有关特定激酶行为的信息，但评估细胞提取物中的酶活性仅仅揭开了信号通路的冰山一角。
我们对蛋白如何被修饰还知之甚少，且体外活性分析也不能说明内源磷酸酶活性的潜在作用。
磷酸化蛋白的直接检测可能为细胞如何应对外界刺激提供更详细的分析，因为磷酸化肽段的鉴定为蛋白的表达和功能状态提供信息。
磷酸化特异抗体的开发直接测定蛋白磷酸化的一种经典方法是将整个细胞与放射性标记的32P-磷酸盐共同孵育，获得细胞提取物，通过SDS-PAGE分离，并曝光在胶片上。
这种繁琐的方法需要多次几小时的孵育，且使用放射性同位素。
其他传统方法包括2D凝胶电泳，这种技术假定磷酸化会改变蛋白的迁移率和等电点。
鉴于这些方法很费力，磷酸化依赖抗体的开发受到研究人员的极大欢迎。
磷酸化蛋白质组如何鉴定
磷酸化蛋白质组如何鉴定磷酸化蛋白质（Phosphorylated protein）是指在特定氨基酸残基上附加了一个磷酸基团（PO4）的蛋白质。
磷酸化是一种重要的蛋白质修饰方式，可以调节蛋白质的结构、功能和相互作用，进而控制细胞的信号转导、代谢和增殖等生物学过程。
因此，鉴定磷酸化蛋白质组对于理解蛋白质调控网络具有重要意义。
本文将介绍几种常用的磷酸化蛋白质组鉴定方法。
一、质谱法质谱法是目前最常用的鉴定磷酸化蛋白质组的方法之一，主要分为两种：质谱分析前磷酸化富集和质谱分析后磷酸化识别。
1.质谱分析前磷酸化富集质谱分析前磷酸化富集主要包括亲和富集、非亲和富集和凝胶富集等。
亲和富集是利用特定亲和剂与磷酸化蛋白质结合，然后用洗脱剂将磷酸化蛋白质洗脱出来进行质谱分析。
常用的亲和剂有磷酸化特异性抗体、磷酸化结合结构域和亲和岛等。
非亲和富集是利用质谱分析前的蛋白质化学改变，如巯基化、新生代谢标记等来增加磷酸化蛋白质的质谱分析信号，进而富集磷酸化蛋白质。
凝胶富集是将细胞提取物先进行电泳分离，然后使用聚焦法将不同等电点区域的蛋白质提取，再进行质谱分析。
2.质谱分析后磷酸化识别质谱分析后磷酸化识别主要通过质谱数据分析软件来鉴定磷酸化位点。
质谱分析常用的方法包括肽段质谱法、质谱配对法和磷酸化肽酶法等。
其中，肽段质谱法是将蛋白质经酶切分解成肽段后进行质谱分析，通过质谱数据分析鉴定磷酸化位点；质谱配对法是对酶切后的肽段进行残基识别和质谱数据匹配，进而确定磷酸化位点；磷酸化肽酶法是酶切肽段后通过特定的肽酶去除非磷酸化肽段，进而富集磷酸化肽段进行质谱分析。
二、免疫化学检测法免疫化学检测法是利用抗体与磷酸化蛋白质特异性结合，并使用标记物进行检测的方法。
常用的免疫化学检测方法有免疫印迹、免疫荧光和免疫组化等。
1.免疫印迹免疫印迹是利用抗体与磷酸化蛋白质特异性结合，然后使用辅助抗体与标记物结合，通过酶学反应或化学发光的方式检测磷酸化蛋白质的存在。
磷酸化蛋白组的差异统计方法
磷酸化蛋白组的差异统计方法
磷酸化蛋白组的差异统计方法主要包括以下步骤：
1. 磷酸化肽段鉴定及统计：通过搜库、校正、筛选、磷酸化肽段统计、磷酸化蛋白统计和磷酸化位点统计等步骤，从样品中提取磷酸化蛋白，酶解成肽段，再富集出有磷酸化修饰的肽段，以肽段为单位进行分析。
2. 磷酸化蛋白的差异分析：对于两个组学的数据，通常有两种关联方式。
一是用全蛋白质丰度校正磷酸化肽段丰度，即用磷酸化肽段的丰度除以对应蛋白质的丰度，再进行差异磷酸化的分析，对二者均鉴定的差异蛋白数量进行统计，找出重叠的蛋白。
二是二者分别做差异分析，用中位数分别校正丰度，再将整体的差异倍数进行比较，差异倍数更大的才是丰度变化的主因。
3. 磷酸化蛋白的功能分析：统计这些差异蛋白富集结果，进一步分析这些蛋白的磷酸化的变化影响了哪些分子通路的改变，进而分析在实验处理下，分子机制的改变。
以上信息仅供参考，建议咨询专业人士获取更准确的信息。
蛋白质磷酸化检测方法
蛋白质磷酸化检测方法
蛋白质磷酸化是一种重要的蛋白质修饰方式，对于细胞信号传导、基因表达等生命过程具有重要的影响。
因此，开发可靠的蛋白质磷酸化检测方法对于生命科学研究具有重要意义。
目前，常用的蛋白质磷酸化检测方法包括免疫印迹、质谱分析、荧光探针法等。
其中，免疫印迹法是最为常用的方法之一。
该方法利用特异性的抗体对目标蛋白质进行识别，再通过化学反应将蛋白质磷酸化部位与抗体结合，最终通过光学检测手段进行检测。
质谱分析则是一种高通量、高灵敏度的蛋白质磷酸化检测方法。
该方法通过将蛋白质分离出来，并将其分子量与磷酸化状态进行鉴定，从而确定蛋白质的磷酸化情况。
荧光探针法则是一种新兴的蛋白质磷酸化检测方法。
该方法利用荧光探针的特异性与磷酸化蛋白质结合，并通过荧光读数的方式进行检测。
总之，不同的蛋白质磷酸化检测方法各有优缺点，可以根据实验需求进行选择。
未来，随着蛋白质组学技术的不断发展，新的蛋白质磷酸化检测方法也将不断涌现。
- 1 -。
磷酸化蛋白检测方法
磷酸化蛋白检测方法
常见的磷酸化蛋白检测方法包括免疫印迹（Western blot）、
免疫组织化学染色（Immunohistochemistry，IHC）、免疫荧光染色（Immunofluorescence staining）、质谱分析（Mass spectrometry）等。
这些方法各有特点，可以根据具体的实验目的
和样本类型选择合适的方法进行磷酸化蛋白的检测。
在免疫印迹中，首先需要提取蛋白质样本，然后进行电泳分离，接着转膜到膜上，随后使用特异性的抗体结合磷酸化蛋白进行检测。
而在免疫组织化学染色和免疫荧光染色中，可以通过组织切片或细
胞制片的方式，利用特异性抗体对磷酸化蛋白进行染色，从而观察
其在组织或细胞中的表达情况。
质谱分析则是通过质谱仪对蛋白质样本进行分析，可以鉴定蛋
白质中的磷酸化位点和程度，是一种比较直接和准确的方法。
除了上述方法外，近年来还出现了一些新的磷酸化蛋白检测技术，例如蛋白质芯片技术、蛋白质质谱成像技术等，这些新技术在
高通量、高灵敏度等方面具有优势。
总的来说，磷酸化蛋白检测方法的选择应该根据具体的实验需求和样本特点来确定，合理选择合适的方法可以提高实验的准确性和可靠性。
希望以上信息能够对你有所帮助。
药物分析中的蛋白质磷酸化分析技术研究
药物分析中的蛋白质磷酸化分析技术研究1. 引言蛋白质磷酸化是一种重要的细胞信号传导方式，参与调控细胞的生理和病理过程。
药物研究中，了解蛋白质是否被磷酸化，以及磷酸化的程度，对于理解药物靶点、药效机制以及发现新的治疗靶点具有重要意义。
本文将介绍药物分析中的蛋白质磷酸化分析技术的研究进展及应用。
2. 蛋白质磷酸化的分析方法2.1 免疫印迹法免疫印迹法是最早用于检测蛋白质磷酸化的方法之一。
该方法利用特异性的抗体与目标蛋白质结合，再通过酶标记的二抗进行信号放大，最终通过底物的发光或显色反应来检测蛋白质磷酸化水平。
免疫印迹法具有灵敏度高、操作简便等优点，且可同时检测多个靶点。
2.2 质谱法质谱法是一种高分辨率的蛋白质分析技术，也被广泛应用于蛋白质磷酸化的研究。
代表性的方法有质谱光谱法和质谱成像法。
质谱光谱法通过质谱仪器分析磷酸化产生的质谱图谱，从而鉴定和定量蛋白质磷酸化水平。
质谱成像法则可以将荧光探针和质谱技术结合，实现对蛋白质磷酸化的直观可视化。
2.3 磷酸化位点特异性酶切法磷酸化位点特异性酶切法利用特定的蛋白酶识别和切割蛋白质的磷酸化位点，从而将磷酸化和非磷酸化的蛋白质区分开来。
通过质谱法或免疫印迹法等技术进一步分析切割后蛋白质的磷酸化水平，用于研究磷酸化的生物学功能和相应靶向药物的发现。
3. 蛋白质磷酸化的应用3.1 药物靶点鉴定蛋白质磷酸化分析可用于帮助药物研究人员鉴定药物的作用靶点。
通过分析药物处理后的蛋白质磷酸化模式，可以确定药物是否与特定的蛋白质发生相互作用，并进一步研究该蛋白质在疾病发生发展中的作用机制。
3.2 药效机制研究药物的疗效与其作用靶点及所调控的信号通路密切相关。
蛋白质磷酸化分析可以帮助研究人员深入了解药物对靶点蛋白质的调控机制，揭示药物与细胞信号传导之间的相互作用关系，从而为药效机制的研究提供重要的信息。
3.3 新药物靶点发现通过对疾病相关信号通路上关键蛋白质的磷酸化分析，可以发现新的治疗靶点。
蛋白磷酸化检测相关技术
蛋白磷酸化检测相关技术蛋白磷酸化检测相关技术主要包括流式Phosflow技术和传统的Western blotting检测。
以下是两种技术的比较：- 实验时长：流式Phosflow技术实验时长为3-4小时，而传统的Western blotting 检测实验时长为2天。
- 参数分析：流式Phosflow技术可以进行多参数分析，而传统的Western blotting 检测只能进行单参数分析。
- 所需细胞量：流式Phosflow技术所需细胞量为>1x10^4，传统的Western blotting 检测所需细胞量为>1x10^6。
- 检测水平：流式Phosflow技术可以在单细胞水平进行检测，体现细胞异质性；传统的Western blotting检测只能在样本平均水平进行检测。
- 细胞分群：流式Phosflow技术可以通过标记物分细胞亚群；传统的Western blotting 检测需要在检测前分选出目的细胞亚群。
- 分析结果：流式Phosflow技术可以通过FACS多样图进行定量分析；传统的Western blotting检测只能通过胶片条带展示，不能定量。
- 毒性：流式Phosflow技术毒性较小；传统的Western blotting检测毒性较大，实验过程中需要使用SDS和甲醇。
- 实验步骤：流式Phosflow技术需要进行表面染色、固定破膜、胞内染色和上机；传统的Western blotting检测需要进行制胶、转膜、切胶片、一抗/二抗、底物和照胶。
- 成本：流式Phosflow技术的成本取决于指标；传统的Western blotting检测需要一抗/二抗、转膜、ECL底物和细胞分选试剂。
总的来说，流式Phosflow技术具有快速、准确、灵活等优点，在蛋白磷酸化检测中具有广泛的应用前景。
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检测蛋白磷酸化的六种方法及其优缺点实验生物在线蛋白激酶将磷酸基团从ATP转移到蛋白多肽底物上的丝氨酸、苏氨酸或酪氨酸残基，直接影响目标的活性和功能。
放射性研究表明，真核细胞中大约30%的蛋白经过磷酸化修饰。
这一关键的翻译后修饰调控了广泛的细胞活性，包括细胞周期、分化、代谢和神经元通讯。
此外，异常的磷酸化事件与许多疾病状态相关。
在评估磷酸化时，选择的方法可能会有所不同，这取决于多个因素，包括提出的具体问题以及特殊仪器或试剂的可用性。
如何检测蛋白磷酸化，本文简要介绍了几种常用方法，并提出了每种方法的优点和缺点。
激酶活性分析蛋白激酶通常是多个信号转导网络的常见组分，它们影响了众多负责生物反应的下游效应物，因此，评估某个特定激酶的活性可能为平行通路提供宝贵信息。
生物学样品中的激酶活性通常是在体外测定的，在ATP的存在下将免疫沉淀的激酶与外源底物共同孵育。
之后通过一些报告系统来评估特定激酶对底物的磷酸化，包括显色、放射性或荧光检测。
此外，R&D Systems还提供非放射性的Universal Kinase Activity Kit，能够定量任何可产生ADP的激酶的活性。
尽管我们能够获得有关特定激酶行为的信息，但评估细胞提取物中的酶活性仅仅揭开了信号通路的冰山一角。
我们对蛋白如何被修饰还知之甚少，且体外活性分析也不能说明内源磷酸酶活性的潜在作用。
磷酸化蛋白的直接检测可能为细胞如何应对外界刺激提供更详细的分析，因为磷酸化肽段的鉴定为蛋白的表达和功能状态提供信息。
磷酸化特异抗体的开发直接测定蛋白磷酸化的一种经典方法是将整个细胞与放射性标记的32P-磷酸盐共同孵育，获得细胞提取物，通过SDS-PAGE分离，并曝光在胶片上。
这种繁琐的方法需要多次几小时的孵育，且使用放射性同位素。
其他传统方法包括2D凝胶电泳，这种技术假定磷酸化会改变蛋白的迁移率和等电点。
鉴于这些方法很费力，磷酸化依赖抗体的开发受到研究人员的极大欢迎。
1981年，第一个有记录的磷酸化抗体在兔子中产生，使用的是钥孔虫戚血蓝蛋白(KLH)的苯甲酰磷酸结合物。
这一抗体广泛地识别了包含磷酸酪氨酸的蛋白。
十年后，利用合成的磷酸化肽段来免疫兔子，开发出多个磷酸化状态特异抗体，这些磷酸化肽段代表了目标蛋白磷酸化位点周围的氨基酸序列。
之后将免疫血清上样到肽段亲和柱中，产生高度特异的免疫试剂。
磷酸化特异抗体的出现为传统方法的改进以及新的免疫分析技术的开发打开了大门。
在任何技术中使用磷酸化特异抗体的忠告是，成功的检测依赖于抗体与目的磷酸化蛋白的特异性和亲和力。
western BlotWestern blot是评估蛋白磷酸化状态的最常用方法，大部分细胞生物学实验室都拥有开展这些实验的设备。
利用SDS-PAGE分离生物样品，随后转移到膜上(通常是PVDF或尼龙膜)，之后利用磷酸化特异的抗体来鉴定目的蛋白。
典型的Western blot实验步骤避免了使用放射性同位素时的危险品和废物处理要求。
许多磷酸化特异抗体十分灵敏，可轻松检测常规样品(如10-30 μg细胞提取物)中的磷酸化蛋白。
由于测得的磷酸化蛋白水平可能随处理或凝胶上样误差而变化，研究人员常常利用一个抗体来检测同源蛋白的总水平(而不考虑磷酸化状态)，以确定磷酸化组分相对于总组分的比例，并充当上样内对照。
化学发光和显色法都很常用，而分子量marker常用来提供蛋白分子量的信息。
酶联免疫吸附分析(ELISA)ELISA已逐渐成为测定蛋白磷酸化的一种有力方法。
ELISA的定量能力优于Western blot，且在调节激酶活性和功能的研究中表现出巨大的作用。
这种微孔板形式的分析一般利用目的蛋白特异的捕获抗体，与磷酸化状态无关。
随后让目的蛋白结合在抗体包被的分析板中，目的蛋白可以是纯的，也可以是复杂的异质样品(如细胞裂解液)中的一个组分。
加入待分析的磷酸化位点特异的检测抗体。
这些分析通常设计为显色或荧光检测。
产生的信号强度与最初样品中存在的磷酸化蛋白的浓度成正比。
与更为传统的免疫印迹相比，磷酸化特异的ELISA技术具有一些优点。
首先，利用经过校准的标准品，可轻松定量结果。
其次，以三明治形式使用目的蛋白特异的两个抗体，带来了高的特异性。
第三，ELISA的灵敏度更高允许使用更少量样品，检测低丰度的蛋白。
最后，微孔板形式的通量比传统的Western blotting要高得多。
ELISA通常带来了激酶活性的间接测定。
不过，另一类ELISA技术使用固定化的捕获抗体、底物和磷酸化底物的检测方法，带来激酶活性的更直接测定。
基于细胞的ELISA尽管体外生物化学激酶分析(如典型的三明治ELISA)常用于假说检验和药物筛选，但它们无法复制细胞内的环境。
分析完整细胞内的蛋白磷酸化也许能更准确地代表特定信号通路网络的状态。
一些免疫分析最近被开发出来，能够在完整细胞的背景下测定蛋白磷酸化。
细胞在同一个孔中被刺激、固定和阻断。
使用磷酸化特异抗体，利用荧光或显色检测系统来评估磷酸化状态。
此外，在微孔板的同一个孔中同时检测磷酸化蛋白和总蛋白。
因此，来自目的蛋白的信号可通过第二种蛋白来标准化，校正各孔之间的差异，实现磷酸化蛋白水平的准确评估，并比较多个样品，与传统免疫印迹中使用磷酸化特异和总蛋白抗体相似。
这些分析绕过了制备细胞裂解液的需要，因此更适合高通量分析。
细胞内流式细胞术和ICC/IHC传统的细胞内流式细胞术和免疫细胞化学/免疫组织化学(ICC/IHC)是检测磷酸化事件的有力工具。
流式细胞仪利用激光来激发用于抗体检测的荧光染料。
在评估同一个细胞中的多个蛋白时，必须精心选择滤光片组合和荧光染料，其光谱不能重叠。
流式细胞术很有优势，因其实现了快速、定量的单细胞分析。
通过细胞表面标志的分型可检测异质群体中特定细胞类型的蛋白，而无需在物理上分离细胞。
通过这种方法可分析稀有的细胞群体，而不用担心细胞损失或细胞分选过程中可能发生的蛋白表达变化。
ICC通常指的是利用显微镜对培养细胞中的蛋白进行检测，而IHC 指的是对完整组织切片中的蛋白进行检测。
与流式细胞术相似，这些技术实现了细胞或组织内多个蛋白的评估，只是要足够重视，避免荧光光谱或颜色的重叠。
荧光和显色检测技术都经常使用。
与监控磷酸化的其他形式不同，ICC通常是确定细胞内定位的首选方法。
流式细胞术和ICC/IHC都需要高亲和力、高特异性的抗体、阻断步骤、对照和抗体滴定，以避免因非特异性结合而带来的不明确结果。
通过流式细胞术和ICC来检测磷酸化蛋白要求蛋白是稳定的，且抗体能够接近。
细胞通常经过刺激，并由甲醛或多聚甲醛固定，以交联磷酸化蛋白，使其稳定，便于分析。
固定后的细胞必须经过透化处理，让磷酸化特异抗体可进入细胞。
对于不同的亚细胞定位，通常使用不同的透化技术。
温和的去垢剂可实现细胞质蛋白的检测，而抗体要想接近核蛋白，可能需要使用酒精。
酒精透化也可增强磷酸化特异抗体的磷酸化蛋白检测，因酒精具有变性的特点。
质谱复杂的生物样品(如细胞裂解液)中蛋白质磷酸化的全面评估(磷酸化蛋白质组学)对于了解基于磷酸化的信号网络很重要。
复杂的蛋白混合物中大规模的磷酸化蛋白分析包括磷酸化蛋白和磷酸化肽段的鉴定，以及磷酸化残基的测序。
质谱(MS)技术是完成这些任务的有用工具。
尽管质谱在鉴定单个蛋白上具有出色的灵敏度和分辨率，但对于磷酸化蛋白的分析，还有一些固有的困难。
首先，磷酸化肽段的信号通常较弱，因为它们带负电荷，而电喷雾质谱在正电模式下作用，因此电离效果不好。
其次，在大量非磷酸化蛋白的高背景之下，很难观察到低丰度目的蛋白的信号。
为了克服这些缺点，人们已经开发出一些富集策略，包括固定化金属亲和层析(IMAC)、磷酸化特异抗体富集、化学修饰法(如磷酸化丝氨酸和苏氨酸的β-消去反应)，以及用生物素化的基团取代磷酸基团。
多个分析物图谱分析质谱技术如碰撞诱导解离(CID)和电子转移解离(ETD)，提供了肽段序列和翻译后修饰(磷酸化)的全面平行分析。
这些技术相当费力，而当特定通路作为主要研究目标时，可能不需要全面的磷酸化分析策略。
这导致一些同时测定多个分析物的蛋白磷酸化的新方法被开发出来。
总的来说，这些方法涉及到磷酸化特异抗体的使用，包括基于微孔板、磁珠和膜，基于磁珠和基于膜的检测形式。
这些分析最明显的好处在于通量能力被大大提高，避免了运行多个Western blot或传统的ELISA分析的需要。
这些技术也能够提供更多的数据，而所需的样品量极少。
相应地，蛋白图谱分析通常被认为灵敏度不及传统的对应技术，因潜在的抗体交叉反应性。
磷酸化蛋白多重分析新的基于微孔板的Proteome Profiler 96 Phospho Antibody Arrays特点· 高达16个分析物/孔· 3小时的快速分析时间· 低的样品量要求· 化学发光和近红外检测· 易于高通量结论评估蛋白磷酸化往往是细胞生物学家保留曲目中必不可少的一部分，可了解引起细胞活性的细胞内因子。
考虑到激酶扮演的重要角色，研究人员必须要有优质的工具，才能测定蛋白磷酸化和/或激酶活性。
每种技术在不同的背景下发挥优势，因此必须精心挑选最适合实验设计的方法(表1)。
这篇综述简要介绍了一些评估蛋白磷酸化的最常用方法。
由于需求在不断增长，方法也在不断改善，让研究人员能够更深入地了解这些复杂而重要的过程，最终控制细胞功能。