SDS-聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离蛋白质-PPT精选文档
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【精品课件教案ppt】 实验八 sds-聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离蛋白质24页文档

【精品课件教案ppt】 实验八 sds-聚 丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离蛋白质
16、自己选择的路、跪着也要把它走 完。 17、一般情况下)不想三年以后的事, 只想现 在的事 。现在 有成就 ,以后 才能更 辉煌。
18、敢于向黑暗宣战的人,心里必须 充满光 明。 19、学习的关键--重复。
20、懦弱的人只会裹足不前,莽撞的 人只能 引为烧 身,只 有真正 勇敢的 人才能 所向披 靡。
▪
30、意志是一个强壮的盲人,倚靠在明眼的跛子肩上。——叔本华
谢谢!
24
▪
26、要使整个人生都过得舒适、愉快,这是不可能的,因为人类必须具备一种能应付逆境的态度。——卢梭
▪
27、只有把抱怨环境的心情,化为上进的力量,才是成功的保证。——罗曼·罗兰
ห้องสมุดไป่ตู้
▪
28、知之者不如好之者,好之者不如乐之者。——孔子
▪
29、勇猛、大胆和坚定的决心能够抵得上武器的精良。——达·芬奇
16、自己选择的路、跪着也要把它走 完。 17、一般情况下)不想三年以后的事, 只想现 在的事 。现在 有成就 ,以后 才能更 辉煌。
18、敢于向黑暗宣战的人,心里必须 充满光 明。 19、学习的关键--重复。
20、懦弱的人只会裹足不前,莽撞的 人只能 引为烧 身,只 有真正 勇敢的 人才能 所向披 靡。
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30、意志是一个强壮的盲人,倚靠在明眼的跛子肩上。——叔本华
谢谢!
24
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26、要使整个人生都过得舒适、愉快,这是不可能的,因为人类必须具备一种能应付逆境的态度。——卢梭
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27、只有把抱怨环境的心情,化为上进的力量,才是成功的保证。——罗曼·罗兰
ห้องสมุดไป่ตู้
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28、知之者不如好之者,好之者不如乐之者。——孔子
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29、勇猛、大胆和坚定的决心能够抵得上武器的精良。——达·芬奇
SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳法测定蛋白质分子量-21页PPT精品文档

剥胶时要小心,保持胶完好无损,染色 要充分.
影响电泳速度的外界因素
1.电场强度 2.溶液的pH值 3.溶液的离子强度 4.电渗现象 5.温度的影响 6.支持物的影响
四、结果分析
蛋 白 样 品 距 加 样 端 迁 移 距 离 ( c m ) 相 对 迁 移 率 =
溴 酚 蓝 区 带 中 心 距 加 样 端 距 离 ( c m )
蛋白质变性
0.1-1% SDS 0.1 M 2-巯基乙醇 蛋白质变与SDS分子按比例结合 1 :1.4
SDS
聚丙烯酰胺凝胶性质
聚丙烯酰胺凝胶(PAG)是由丙烯酰胺(Acr) 和甲叉双丙烯酰胺(Bis)在催化剂的作用下, 聚合交联而成的。
聚丙烯酰胺凝胶性质
聚丙烯酰胺凝胶(PAG)具有三维网状结构,能 起分子筛作用。用它作电泳支持物,对样品 的分离取决于各组分所带电荷的多少及分子 大小。
2.过硫酸铵的主要作用是提供自由基引发丙烯酰胺和双丙烯 酰胺的聚合反应,故一定要新鲜,贮存过久的过硫酸铵商品 不能使用。此外,10%过硫酸铵必须现用现配,4℃冰箱贮存 不超过48小时。
3.灌制凝胶时,应避免产生汽泡,因为汽泡会影响电泳分离 效果。
4.刚灌注分离胶混合溶液后,应在分离胶液面上加1—2cm高 的水层,以阻隔空气。胶液面上加水层时要特别小心,缓缓 叠加,以免冲坏凝胶的胶面。
上样及电泳
浓缩胶 pH 8.6
开始电流恒定在10mA,当进入分离胶后改为20mA, 溴酚蓝距凝胶边缘约5mm时,停止电泳。
分离将凝胶板 做好标记后放在大培养皿内,加入染 色液,染色1小时左右。
脱色:染色后的凝胶板用蒸馏水漂洗 数次,再用脱色液脱色,直到蛋白质 区带清晰。
影响电泳速度的外界因素
1.电场强度 2.溶液的pH值 3.溶液的离子强度 4.电渗现象 5.温度的影响 6.支持物的影响
四、结果分析
蛋 白 样 品 距 加 样 端 迁 移 距 离 ( c m ) 相 对 迁 移 率 =
溴 酚 蓝 区 带 中 心 距 加 样 端 距 离 ( c m )
蛋白质变性
0.1-1% SDS 0.1 M 2-巯基乙醇 蛋白质变与SDS分子按比例结合 1 :1.4
SDS
聚丙烯酰胺凝胶性质
聚丙烯酰胺凝胶(PAG)是由丙烯酰胺(Acr) 和甲叉双丙烯酰胺(Bis)在催化剂的作用下, 聚合交联而成的。
聚丙烯酰胺凝胶性质
聚丙烯酰胺凝胶(PAG)具有三维网状结构,能 起分子筛作用。用它作电泳支持物,对样品 的分离取决于各组分所带电荷的多少及分子 大小。
2.过硫酸铵的主要作用是提供自由基引发丙烯酰胺和双丙烯 酰胺的聚合反应,故一定要新鲜,贮存过久的过硫酸铵商品 不能使用。此外,10%过硫酸铵必须现用现配,4℃冰箱贮存 不超过48小时。
3.灌制凝胶时,应避免产生汽泡,因为汽泡会影响电泳分离 效果。
4.刚灌注分离胶混合溶液后,应在分离胶液面上加1—2cm高 的水层,以阻隔空气。胶液面上加水层时要特别小心,缓缓 叠加,以免冲坏凝胶的胶面。
上样及电泳
浓缩胶 pH 8.6
开始电流恒定在10mA,当进入分离胶后改为20mA, 溴酚蓝距凝胶边缘约5mm时,停止电泳。
分离将凝胶板 做好标记后放在大培养皿内,加入染 色液,染色1小时左右。
脱色:染色后的凝胶板用蒸馏水漂洗 数次,再用脱色液脱色,直到蛋白质 区带清晰。
聚丙烯酰胺凝胶电泳ppt课件

精选ppt
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5 .电泳
将电泳仪的正极与下槽连接,负极与上槽连接,接 通冷却水,打开电泳仪开关,开始时电流为10 mA,待 样品进入分离胶后,将电流调至20-30 mA,当溴酚蓝 染料距硅胶框1 cm时,停止电泳,关闭电源及冷却水。
6 .染色与脱色
电泳结束后,取下凝胶模,卸下硅胶框,用不锈钢 药铲或镊子撬开短玻璃板,从凝胶板上切下一角作为加 样标记,在两侧溴酚蓝染料区带中心,插入细铜丝作为 前沿标记。加入染色液染色1-2 h,再用脱色液脱色, 直至蛋白质区带清晰,即可计算相对迁移率。
表3.4 分子量范围与凝胶浓度的关系
分子量范围
适用的凝胶浓度/(%)
蛋白质
104 1-4×104 1-5×104-1×105 1×105 5×105
104 104–105 105-2×106
核酸(RNA)
20-30 15-20 10-15 5-10 2-5
15–20 5-10 2-2.6
精选ppt
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当进入pH8.9的分离胶时,甘氨酸解离度增加,其有效迁移 率超过蛋白质;
(c)电位梯度的不连续性:
(2)分子筛效应
(3)电荷效应
精选ppt
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图4 电泳过程示意图
A为电泳前3层凝胶排列顺序,3层胶中均有快离子,慢离子 B显示电泳开始后,蛋白质样品夹在快、慢离子之间被浓缩成极窄的
区带。C显示蛋白质样品分离成数个区带。
电泳(polyacrylamide gel electrophoresis,简称
PAGE)。
精选ppt
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聚丙烯酰胺凝胶有下列特性:
(1)在一定浓度时,凝胶透明,有弹性,机械性能好;
(2)化学性能稳定,与被分离物不起化学反应,在很多溶剂中不 溶;
垂直板电泳分离蛋白质--教学PPT课件

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(5)利用特异性的颜色反应使蛋白 质着色,这样就可在凝胶中展现出蛋 白质条带。
2021/3/9
授课:XXX
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2、仪器设备及试剂
• (1)仪器设备: • 恒流恒压电泳仪及配套电泳槽 • 冷冻离心机及离心管 • 制冰机 • pH计 • 真空机 • 取样器 • 进样器
2021/3/9
授课:XXX
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2021/3/9
授课:XXX
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• 固定液
– 甲醇200ml,乙酸50ml,加水定容到ห้องสมุดไป่ตู้00ml.
• 考马斯亮蓝染色液
– 42ml水,58ml磷酸加50g硫酸胺溶解后再加0.6g G250溶解,加水定容到400ml,再加入100ml甲醇
• AP%
– 100mg过硫酸胺溶于1ml水
• 上样缓冲液
– 1g SDS,5ml Glycerol,0.5mg Bromophenol blue,2.5ml 巯基乙醇,10ml 浓缩胶 buffer,dd H2O to 50ml.
• 分离胶buffer(1.5M Tris-HCl buffer, pH 8.8 )
– 18.17g Tris,0.4g SDS,加双蒸水80ml溶解,用HCl 调pH为8.8后定容到100ml,过滤后贮存
• Tris-甘氨酸电泳缓冲液(pH 8.3)
– 30g Tris,10g SDS, 144g甘氨酸,加双蒸水800ml 溶解后定容到1000ml
• 0.1%溴酚蓝水溶液
2021/3/9
授课:XXX
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3.SDS-PAGE实验步骤
分离胶的制备 浓缩胶的制备
待分离样品的制备
加样
电泳 剥胶
2021/3/9
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• 2 配胶
试剂名称 表 SDS–不连续体系凝胶的制备 配制20 mL不同浓度的分离胶 配制10 mL浓缩 所需试剂用量/mL 所需试剂用量/mL 7.5% 10% 15% 3% 5.00 6.66 10.0 1.00 2.50 — 0.10 0.20 12.10 2.50 — 0.10 0.20 10.44 2.50 — 0.10 0.20 7.10 — 1.25 0.05 0.10 7.55
聚丙烯酰胺凝胶有下列特性:
(1)在一定浓度时,凝胶透明,有弹性,机械性能好; (2)化学性能稳定,与被分离物不起化学反应,在很多溶剂中不 溶; (3)对pH和温度变化较稳定; (4)几乎无吸附和电渗作用,只要Acr纯度高,操作条件一致, 则样品分离重复性好; (5)样品不易扩散,且用量少,其灵敏度可达10-6g (6)凝胶孔径可调节,根据被分离物的分子量选择合适的浓度, 通过改变单体及交联剂的浓度调节凝胶的孔径; (7)分辨率高,尤其在不连续凝胶电泳中,集浓缩、分子筛和电 荷效应为一体。因而较醋酸纤维薄膜电泳、琼脂糖电泳等有 更高的分辨率。
五、 操作方法 1.安装夹心式垂直板电泳槽 (1)装上贮槽和固定螺丝销钉,仰放在桌面上。 (2)将长、短玻璃板分别插到凵形硅橡框的凹形槽中, 注意勿用手接触灌胶面的玻璃。 (3)将已插好玻璃板的凝胶模平放在上贮槽上,短玻璃 板应面对上贮槽。 (4)将下贮槽的销孔对准已装好螺丝销钉的上贮槽,双 手以对角线的方式旋紧螺丝帽。 (5)竖直电泳槽,在长玻璃板下端与硅胶模框交界的缝 隙内加入已融化的1%琼脂(糖)。其目的是封住空隙, 凝固后的琼脂(糖)中应避免有气泡。
聚丙烯酰胺凝胶电泳分为连续系统与不连续系统两
大类。 目前常用的多为圆盘电泳 (如图1)和板状电泳 (如图2), 两者电泳原理完全相同。
图1 聚丙烯酰胺凝胶圆盘电泳示意图 (A为正面,B为剖面) (1)样品胶pH6.7 (2)浓缩胶pH6.7 (3)分离胶pH8.9 (4)电极缓冲液pH8.3
(c)电位梯度的不连续性: (2)分子筛效应 (3)电荷效应
图4 电泳过程示意图 A为电泳前3层凝胶排列顺序,3层胶中均有快离子,慢离子 B显示电泳开始后,蛋白质样品夹在快、慢离子之间被浓缩成极窄的 区带。C显示蛋白质样品分离成数个区带。
图5 不连续系统浓缩效应示意图
SDS - 聚 丙 烯 酰 胺 凝 胶 电 泳 ( SDS-
实验八 SDS-聚丙烯酰胺凝胶 垂直板电泳分离蛋白质
一、目的要求 1.学习电泳原理和技术 2.学习和掌握SDS-聚丙烯酰胺凝胶垂直板电 泳分离蛋白质技术
二、原理 聚丙烯酰胺凝胶是由单体丙烯酰胺 (acrylamide , 简 称 Acr) 和 交 联 剂 N,N- 甲 叉 双 丙 烯 酰 胺 (N , N— methylene-bisacylamide ,简称 Bis) 在加速剂 N , N , N , N— 四 甲 基 乙 二 胺 (N , N , N , N— tetramethyl ethylenedia mine,简称TEMED)和催 化剂过硫酸铵(ammonium persulfate (NH4)2S2O8, 简 称 AP) 或 核 黄 素 (ribofavin 即 vita min B2 , C17H20O6N4)的作用下聚合交联成三维网状结构的凝 胶,以此凝胶为支持物的电泳称为聚丙烯酰胺凝胶 电泳 (polyacrylamide gel electrophoresis ,简称 PAGE)。
三、试剂与器材 试剂:10%SDS、 凝胶贮液(30%ACr-0.8%Bis)、 分离胶缓冲液(3.0 mol/L pH8.9Tris-HCl 缓冲 液)、 浓缩胶缓冲液( 0.5 mol/L pH6.7Tris- HCl 缓冲液)、10%过硫酸铵、 10%TEMED、 pH8.3Tris-Gly电极缓冲液、 1%琼脂糖溶液、 0.05%考马斯亮兰R250 、7%醋酸 器材:垂直板电泳槽、稳压稳流电泳仪 、脱色摇 床
图2 夹心垂直板电泳槽示意图 图3 凝胶模示意图 1.样品槽模板 2.长玻璃板 1.导线接头 2.下贮槽 3.凹形橡胶框
4.样品槽模板 5.固定螺丝 6.上贮槽 7.冷凝系统
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不连续体系由电极缓冲液、浓缩胶及分离胶所组成。
浓缩胶是由AP催化聚合而成的大孔胶,凝胶缓冲液 为pH6.7的Tris-HC1。分离胶是由AP催化聚合而成 的小孔胶,凝胶缓冲液为pH8.9 Tris-HC1。电极缓 冲液是pH8.3 Tris-甘氨酸缓冲液。2种孔径的凝胶、 2种缓冲体系、3种pH值使不连续体系形成了凝胶孔 径、pH值、缓冲液离子成分的不连续性,这是样品 浓缩的主要因素。
(1)样品浓缩效应 (a)凝胶孔径不连续性: (b)缓冲体系离子成分及pH值的不连续性;
在pH6.7的凝胶缓冲体系中
前导离子或快离子:HC1解离出的氯根(C1-) 尾随离子(trailing ion)或慢离子:甘氨酸根 mclcl>mpp>mGG(Cl代表氯根,P代表蛋白质,G代表甘氨 酸根)有效迁移率=m,m为迁移率,为解离度) 当进入 pH8.9 的分离胶时,甘氨酸解离度增加,其有效迁移 率超过蛋白质;
凝胶浓度(T)的选择与被分离物质分子量密切相关。
表3.4 分子量范围与凝胶浓度的关系
分子量范围 104 1-4×104 1-5×104-1×105 1×105 5×105 核酸(RNA) 104 104–105 105-2×106 15–20 5-10 2-2.6 适用的凝胶浓度/(%) 蛋 白 质 20-30 15-20 10-15 5-10 2-5
ห้องสมุดไป่ตู้
PAGE) :蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶电泳时, 它的迁移率取决于它所带净电荷以及分子 的大小和形状等因素。如果在丙烯酰胺凝 胶系统中加入阴离子去污剂十二烷基磺酸 钠 (sodium dodecyl sulfate, 简称 SDS) , 则蛋白质分子的电泳迁移率主要取决于它 的分子量,而与所带电荷和形状无关。因 此可以利用 SDS-PAGE 测定蛋白质分子量。