汉恒-自噬及其研究方法第三版

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自噬研究方法工具汇总---BIO-RAD

自噬研究方法工具汇总---BIO-RAD

自噬研究方法工具汇总---BIO-RAD细胞自噬细胞自噬(autophagy)是依赖溶酶体途径对胞质蛋白和细胞器进行降解的一种过程。

这个过程可以清除功能异常的细胞器、细胞内病原体以及再循环细胞组分。

尽管自噬最早被发现是应答饥饿,现在发现自噬受到各种胁迫信号的诱导,基础水平的自噬有利于细胞内稳态的维持.很多因素包括激素刺激的天然免疫信号及能量耗尽或高温等引起的物理胁迫会诱导自噬上调。

相反,很多疾病如癌症、传染性疾病和神经退行性疾病及衰老和自噬的下调都有关联。

自噬主要有三种信号通路:●Microautophagy小自噬通过溶酶体的膜内陷“吞入”目标分子,起到降解细胞质中小体积物质的作用.这个过程研究得不是很清楚,膜内陷相关的GTPaseVps1p蛋白和自噬相关蛋白(Atg)参与其中。

● 分子伴侣介导的自噬(chaperone-mediatedautophagy,CMA)直接将细胞质蛋白带到溶酶体。

带KFERQ—序列的蛋白质和热休克蛋白Hsc70及其它分子伴侣相互作用形成的复合体和溶酶体膜上的Lamp-2A受体结合后,导致Lamp—2A 聚合引发复合体中的底物易位穿越溶酶体膜.● Macroautophagy大自噬被研究得最多,可以降解更大量的胞浆物质,由特殊的细胞器自噬小体介导。

大自噬起始于吞噬泡装配点(PAS)的形成和Unc51—likekinase (Ulk)复合体的组装,这启动了自噬小体的形成(图1)。

接着是成核阶段,Ulk复合物与由beclin—1、Vps15、Vps34、Atg14组成classIII PI3K 复合物相互作用形成吞噬泡。

接着吞噬泡膜扩展形成自噬小体,在这个过程中Atg12/5/16复合物促成了磷脂酰乙醇胺(PE)和LC3(酵母中是Atg8)的偶联,这是自噬小体膜唯一已知的标志物。

PE-LC3偶联物在几个关键步骤中起作用:自噬泡膜的扩展、自噬体的识别及自噬溶酶体的形成。

整个过程涉及30多个自噬相关基因(Atg蛋白),包括Beclin-1、溶酶体相关膜蛋白(Lamp—1 and Lamp—2)和微管相关蛋白1A/1Blight chains 3A/B (MAP1LC3A/B 或简称LC3),这些都是自噬常见的标志物.最后一步,完全形成的自噬小体与溶酶体融合释放内含的物质被降解。

自噬双标腺病毒(mRFP-GFP-LC3)使用指南1404

自噬双标腺病毒(mRFP-GFP-LC3)使用指南1404

自噬双标腺病毒〔mRFP-GFP-LC3〕使用指南背景:自噬是细胞内的一种“自食〔Self-eating〕〞的现象,凋亡是“自杀〔Self-killing〕〞的现象,二者共用相同的刺激因素和调节蛋白,但是诱发阈值和门槛不同,如何转换和协调目前还不清楚. 自噬是指膜〔目前来源还有争议,大部分表现为双层膜,有时多层或单层〕包裹部分胞质和细胞内需降解的细胞器、蛋白质等形成自噬体,最后与溶酶体融合形成自噬溶酶体,降解其所包裹的内容物,以实现细胞稳态和细胞器的更新。

目前文献对自噬过程进行观察和检测常用的策略和手段有:通过western blot检测LC3的剪切;通过电镜观测自噬体的形成;在荧光显微镜下采用GFP〔-RFP〕-LC3等融合蛋白来示踪自噬体形成以与降解。

近几年对自噬流的研究日趋增多,针对于此我们汉恒生物科技〔XX〕XX自主研发了用于实时监测自噬(流)的mRFP-GFP-LC3腺病毒,mRFP 用于标记与追踪LC3,GFP的减弱可指示溶酶体与自噬小体的融合形成自噬溶酶体,即由于GFP荧光蛋白对酸性敏感,当自噬体与溶酶体融合后GFP 荧光发生淬灭,此时只能检测到红色荧光。

这种串联的荧光蛋白表达载体系统直观清晰的指示了细胞自噬流的水平,是我们自噬研究尤其是自噬流研究不可或缺的利器。

mRFP-GFP-LC3腺病毒的操作收到病毒后的处理〔一〕、腺病毒的储存1、腺病毒采用冰袋运输。

〔1〕、收到病毒液后如未融化请置于-80℃冰箱,下次使用时再进行分装;〔2〕、如客户收到时腺病毒已融化,请直接分装后置于-80℃冰箱保存;若短期内用于实验,可分装部分于4℃保存〔尽量一周内用完〕。

2、尽量避免反复冻融,否则会降低病毒滴度〔每次冻融会降低病毒滴度10%〕。

建议不要在-20℃下长期保存。

如果病毒储存时间超过6个月,应该重新测定病毒滴度。

3、建议收到病毒产品后根据实验需求自行分装或购买经过分装的小包装病毒产品〔购买时请提出〕。

自噬研究方法

自噬研究方法

MDC:取12 mg粉末溶于720 nl DMSO使其浓度为50 mmol/L,分装后-20冰箱保存。

临用前用MEM稀释到终浓度50 umol/L;Rapamycin:用MEM培养基配成终浓度为1 umol/L,现用现配;400ng/ml喹乙醇:称取4 mg喹乙醇,DMSO预溶(体积<0.1%)后加入10 ml MEM培养液至完全溶解,现用现配,避光保存;3-MA:首先用PBS溶解粉末,临用前加热至完全溶解后再加入MEM培养基至终浓度10mmol/L; PI3K抑制剂(3-MA,Wortmannin)可干扰或阻断自噬体的形成用RAPAMYCIN诱导自噬我也查过一部分文献,有用无血清的,也有用,一般培养基的,浓度从25nM到100nM都有,用的是50nM的雷帕霉素,加入一般的培养基中,目的是排除无血清所诱导出来的自噬。

文献说饥饿初期激活的是大分子自噬,在4-6小时活力达到最大,24h后以CMA途径为主Earle's balanced salts solution (EBSS) for 48 hsigma的EBSS,货号E2888,有碳酸氢钠,有酚红的,酚红到不是很必须,只是一个PH指示作用,好看些无血清诱导自噬:EBSS 诱导6个小时就可以了。

EBSS一定可以诱导出来,只是需要说明的是时间点的设置,因为从饥饿诱导开始半个小时就可能开始自噬了,一直到24小时都持续,所以应该设置不同的时间点观察这个作用。

另外一个很大的问题是,饥饿诱导的一个很大的弊端是细胞死亡,这也是我面临的问题,就是在细胞收养的时候蛋白浓度太小了。

24小时就很少了,更不要说48小时和72小时了Hank's诱导,也就是通常所说的饥饿诱导,细胞培养到对数生长期后以Hank's替代常规完全培养基,3h后就可诱导出自噬。

我用Hank's诱导了3h后电镜观察有30%细胞都有自噬这种现象,但不如国外报道的高。

细胞自噬培训(一)

细胞自噬培训(一)
第一个自噬调控基因 ➢APG1(Autophagy-relaetd Genes),后更名为ATG1。
液泡内不会出现自噬小体。
ATG -/-
在饥饿状态下只能存活两天。
Autophagy-细胞自噬分子机制
自噬调控基因
Autophagy-细胞自噬分子机制
自噬调控基因
Autophagy-细胞自噬分子机制
✓ 1977年回到东京大学任助教,9年之后1986年晋升讲师。
✓ 1981年 大隅良典和安乐泰宏教授在《生物化学杂志》(J. Biol. Chem.)上联合发表文章:占酵母细胞体积30%的液泡并非只是一 个“垃圾池”,它实际上在不断地向外输送氨基酸、离子等物质,从 而使酵母细胞质得以维持稳定态-开启了液泡膜ATP水解酶研究。
Autophagy-细胞自噬
➢细胞自噬发展历史
✓ 1956年,洛克菲勒大学教授德迪夫(Christian de Duve,19172013)借助光学显微镜和电子显微镜观察到了动物细胞中的溶酶 体.
Autophagy-细胞自噬
➢细胞自噬发展历史
✓ 1963年,Christian de Duve在溶酶体国际会议上提出,将描述 细胞内由包裹细胞质和细胞器送入溶酶体的过程命名为“自噬”
Autophagy-细胞自噬
➢细胞自噬发展历史
✓ 1956年,圣路易斯华盛顿大学医学院的Sam Clark用电镜观察新 生小鼠肾脏组织时发现细胞中有大量具有膜性结构的致密体,而 且其中常含有类似于线粒体等的胞质结构。
Autophagy-细胞自噬
➢细胞自噬发展历史
✓ 1956年,Sam Clark用电镜观察新生小鼠肾脏组织时发现细胞中 有大量具有膜性结构的致密体,而且其中常含有类似于线粒体等 的胞质结构。

自噬基因融合蛋白重组多克隆抗体的纯化与检测

自噬基因融合蛋白重组多克隆抗体的纯化与检测

自噬基 因融合蛋 白重组 多克隆抗体 的纯化与检测
朱 雄伟, 张 佑 红, 徐智 鹏, 苏 腾甲 , 熊 瑶, 翟 莉 莉
( 武汉 工程 大 学化 工与制 药学院 , 绿 色化工 过程 省部 共建教 育部 重点 实验 室 , 湖北 武汉 4 3 0 0 7 4 )
摘 要: 为 了提 纯 并 鉴 定 自噬 基 因 融 合 蛋 白重 组 多 克 隆 抗 体 , 探讨 其在部分 组织 中的免疫 定位. 首 先 合 成 带
第 3 5卷 第 2期 2 0 1 3年 O 2月



程பைடு நூலகம்




Vo 1 . 3 5 NO . 2 Fe b . 2 0 1 3
J . Wu h a n I n s t . Te c h .
文章编号 : 1 6 7 4 —2 8 6 9 ( 2 0 1 3 ) 0 2— 0 0 3 7 一O 5
( E L I S A)检 测 抗 体 效 价 、 蛋 白印迹 ( We s t e r n
的试剂 盒 、 多克 隆抗 体 、 基 因 工 程抗 体 和 疫 苗等 已
经 或正 在投 入 临床 使 用 , 特 别 是 抗 体 药 物 以其 对 人 体无 毒无 副作 用 、 完 全 天 然 和 高度 特 异 性 的 疗 效, 越来 越显 示其 优 势 , 并创 造 出 巨大 的社 会 效 益
抗原 ; 乙醇 ; 2 0 mmo l / L 磷
动现 代 医学 的发 展 l _ 1 ] 。 杂 交 瘤 技 术 的建 立 和 细 胞
因子对 免疫 细胞 发 育 、 分化 的发 现 , 基 因工 程技 术 的发展 , 使 实 验 室 的 研 究 直 接 转 向 生 物 高 技 术 产

自噬双标腺病毒(mRFP-GFP-LC3)使用指南

自噬双标腺病毒(mRFP-GFP-LC3)使用指南

自噬双标腺病毒(mRFP-GFP-LC3)使用指南背景:自噬是细胞内的一种“自食(Self-eating)”的现象,凋亡是“自杀(Self-killing)”的现象,二者共用相同的刺激因素和调节蛋白,但是诱发阈值和门槛不同,如何转换和协调目前还不清楚. 自噬是指膜(目前来源还有争议,大部分表现为双层膜,有时多层或单层)包裹部分胞质和细胞内需降解的细胞器、蛋白质等形成自噬体,最后与溶酶体融合形成自噬溶酶体,降解其所包裹的内容物,以实现细胞稳态和细胞器的更新。

目前文献对自噬过程进行观察和检测常用的策略和手段有:通过western blot检测LC3的剪切;通过电镜观测自噬体的形成;在荧光显微镜下采用GFP(-RFP)-LC3等融合蛋白来示踪自噬体形成以及降解。

近几年对自噬流的研究日趋增多,针对于此我们汉恒生物科技(上海)有限公司自主研发了用于实时监测自噬(流)的mRFP-GFP-LC3腺病毒,mRFP 用于标记及追踪LC3,GFP的减弱可指示溶酶体与自噬小体的融合形成自噬溶酶体,即由于GFP荧光蛋白对酸性敏感,当自噬体与溶酶体融合后GFP 荧光发生淬灭,此时只能检测到红色荧光。

这种串联的荧光蛋白表达载体系统直观清晰的指示了细胞自噬流的水平,是我们自噬研究尤其是自噬流研究不可或缺的利器。

mRFP-GFP-LC3腺病毒的操作收到病毒后的处理(一)、腺病毒的储存1、腺病毒采用冰袋运输。

(1)、收到病毒液后如未融化请置于-80℃冰箱,下次使用时再进行分装;(2)、如客户收到时腺病毒已融化,请直接分装后置于-80℃冰箱保存;若短期内用于实验,可分装部分于4℃保存(尽量一周内用完)。

2、尽量避免反复冻融,否则会降低病毒滴度(每次冻融会降低病毒滴度10%)。

建议不要在-20℃下长期保存。

如果病毒储存时间超过6个月,应该重新测定病毒滴度。

3、建议收到病毒产品后根据实验需求自行分装或购买经过分装的小包装病毒产品(购买时请提出)。

自噬的抑制

自噬的抑制

自噬的抑制2009-06-07 18:33:44 来源:未知根据自噬形成的过程,自噬的抑制也分为不同的阶段,包括自噬的起始阶段,自噬泡和溶酶体融合阶段,以及溶酶体内的降解阶段。

目前常用的一些抑制药物如下:(1)对自噬体形成的抑制:主要是PI3K通路的抑制剂(如3-MA, Wortmannin,LY294002等),这些药物均可干扰或阻断自噬体形成。

3-甲基腺嘌呤(3-Methyladenine, 3-MA)是磷脂酰肌醇3激酶的抑制剂,可特异性阻断Autophagy中自噬体的形成,被广泛用作Autophagy的抑制剂。

另外,渥曼青霉素(Wortmannin)、LY294002 也可用作Autophagy的抑制剂。

(2)对自噬体与溶酶体融合的抑制:对自噬体与溶酶体融合过程进行阻断也能起着抑制自噬的作用,这些药物有巴伐洛霉素A1、长春碱、诺考达唑等。

巴伐洛霉素A1(Bafilomycin A1)是一种来源于灰色链霉菌的大环内酯类抗生素,分子式C35H58O9,是空泡型H+-ATP酶的特异性抑制剂,具有抗菌、抗真菌、抗肿瘤等作用。

当突触小泡经历胞外分泌时,巴伐洛霉素A1可以避免小泡重新酸化。

有研究表明,在已发生自噬的肿瘤细胞中加入巴伐洛霉素A1,可使蛋白降解被抑制,自噬体增多而自噬溶酶体数目减少,并且自噬体中的酸性磷酸酶的活性也明显降低,从而证明其阻断了自噬体与溶酶体的融合过程。

这种阻断是可逆的,在去除了药物作用后,自噬体仍可以与溶酶体融合形成自噬溶酶体,继续自噬进程。

(3)对溶酶体降解的抑制: 自噬体与溶酶体融合后最终被溶酶体中的水解酶水解,它首先经过囊泡酸化,达到所需的PH值后经多种蛋白酶作用使囊内容物降解,降解产物在细胞内再循环利用。

对溶酶体的降解进行抑制,使得被降解的囊泡内容物大量蓄积于溶酶体内,而不能释放出来进入细胞内再循环利用,这也同样起着抑制自噬的作用。

因此,蛋白酶抑制剂,如E64d、Pepstatin A等,在抑制溶酶体降解的过程中发挥着自噬抑制剂的作用。

自噬的热点研究方法及步骤

自噬的热点研究方法及步骤

自噬的热点研究方法及步骤自噬作为时下的研究热点,有非常深远的研究意义。

一、自噬病毒工具1)GFP-LC3单荧光自噬指示病毒系统GFP-LC3病毒系统可高效感染目的细胞,表达GFP-LC3,感染感染后细胞可在荧光显微镜下实时观察自噬的整体水平;由于电镜耗时长,不利于监测(Monitoring)自噬形成。

我们利用LC3在自噬形成过程中发生聚集的现象开发出了GFP-LC3指示技术:无自噬时,GFP-LC3融合蛋白弥散在胞浆中;自噬形成时,GFP-LC3融合蛋白转位至自噬体膜,在荧光显微镜下形成多个明亮的绿色荧光斑点,一个斑点相当于一个自噬体,可以通过计数来评价自噬活性的高低。

汉恒生物已开发出高效的评价用GFP-LC3病毒载体,通过瞬时高效感染细胞,配合活细胞工作站成功评价自噬流。

2)mRFP-GFP-LC3双荧光自噬指示病毒系统表达mRFP-GFP-LC3 融合蛋白的病毒产品。

mRFP 用于标记及追踪LC3,GFP 的减弱可指示溶酶体与自噬小体的融合形成自噬溶酶体,即由于GFP 荧光蛋白对酸性敏感,当自噬体与溶酶体融合后GFP 荧光发生淬灭,此时只能检测到红色荧光。

已多种双荧光病毒系统提供,具体如下:a)mRFP-GFP-LC3腺病毒系统——可高效感染目的细胞,表达mRFP-GFP-LC3,感染后细胞可在荧光显微镜下实时观察自噬发生过程;b)mRFP-GFP-LC3慢病毒系统——可以稳定表达持续检测细胞的自噬流检测;c)mRFP-GFP-LC3腺相关病毒(AAV)系统——最有效的在体自噬流检测工具;二、自噬检测以及整体服务1)自噬检测服务常规自噬检测服务包括western blot检测细胞自噬的水平,优惠提供自噬常规抗体LC3、p62以及beclin1等,我们的研究团队长期为客户提供自噬技术服务,有丰富的自噬研究经验,我们的优势是周期短,质量高;a)利用Western Blot检测LC3-II/I比值的变化以评价自噬形成。

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自噬(Autophagy)及其研究方法概述汉恒Th物技术服务手册目录1概念2自噬的过程3自噬的特性4自噬过程的调控5自噬与肿瘤的关系6自噬的研究方法概述7汉恒自噬研究特色服务自噬研究相关产品及服务1.病毒工具(独家推出)mRFP-GFP-LC3腺病毒系统,可高效感染目的细胞,表达mRFP-GFP-LC3,感染后细胞可在荧光显微镜下实时观察自噬发Th过程(具体内容后面有介绍);2.自噬相关服务汉恒Th物可提供自噬研究整体科研服务,若您的时间紧张或是对实验有所顾忌,我们可以为您代劳部分实验内容;3.自噬研究相关试剂汉恒Th物可以根据您的实验需求为您提供最实用的试剂产品,让你用的放心,省心!产品厂商规格A14292,Premo自噬TB/GFP TR-FRETinvitrogen6000Tests LC3B抗体试剂盒pllabs0.1mgAnti-MAP1A/LC3A/B自噬微管相关蛋白轻链3抗体pllabs0.1mgAnti-MAP1LC3A(microtubule-associated protein1light chain3)自噬微管相关蛋白轻链3抗体Invitrogen1mg/1ml兔抗人、大、小APG4B细胞自噬相关抗体\Anti-APG4B/AUTL1BD1mg/1ml自噬微管相关蛋白轻链3抗体\Anti-MAP1LC3AAnti-SQSTM1/p62antibody abcamSigma1g溶酶体抑制剂Hydroxychloroquine(羟氯喹)mTOR抑制剂rapamycin Sigma20mM自噬抑制剂3-Methyladenine(3-MA)Sigma100mg1概念目前根据发Th过程分为三类:Macroautophagy,Microautophagy和Chaperone-mediated autophagy(CM A)大自噬(Macroautophagy)即我们说的自噬(autophagy);微自噬(Microautophagy):是指溶酶体主动、直接吞噬胞浆成分的一种方式;分子伴侣介导的自噬(Chaperone-mediated autophagy,CMA):一些分子伴侣,如hsp70,能帮助未折叠蛋白转位入溶酶体。

通常说的自噬泛指Macroautophagy。

自噬是细胞内的一种“自食(Self-eating)”的现象,凋亡是“自杀(Self-killing)”的现象,二者共用相同的刺激因素和调节蛋白,但是诱发阈值和门槛不同,如何转换和协调目前还不清楚.自噬是指膜(目前来源还有争议,大部分表现为双层膜,有时多层或单层)包裹部分胞质和细胞内需降解的细胞器、蛋白质等形成自噬体(autophagosome),最后与溶酶体融合形成自噬溶酶体(autophagolysosome),降解其所包裹的内容物,以实现细胞稳态和细胞器的更新。

自噬的过程步骤1:细胞接受自噬诱导信号后,在胞浆的某处形成一个小的类似“脂质体”样的膜结构,然后不断扩张,但它并不呈球形,而是扁平的,就像一个由2层脂双层组成的碗,可在电镜下观察到,被称为Phagophore,是自噬发Th的铁证之一。

步骤2:Phagophore不断延伸,将胞浆中的任何成分,包括细胞器,全部揽入“碗”中,然后“收口”,成为密闭的球状的autophagosome,即“自噬体”。

电镜下观察到自噬体是自噬发Th的铁证之二。

有两个特征:一是双层膜,二是内含胞浆成分,如线粒体、内质网碎片等。

步骤3:自噬体形成后,可与细胞内吞的吞噬泡、吞饮泡和内体融合(这种情况不是必然要发Th的)。

步骤4:自噬体与溶酶体融合形成autolysosome,期间自噬体的内膜被溶酶体酶降解,两者的内容物合为一体,自噬体中的“货物”也被降解,产物(氨基酸、脂肪酸等)被输送到胞浆中,供细胞重新利用,而残渣或被排出细胞外或滞留在胞浆中。

3自噬的特性1)自噬是细胞消化掉自身的一部分,即self-eating,初一看似乎对细胞不利。

事实上,细胞正常情况下很少发Th自噬,除非有诱发因素的存在。

这些诱发因素很多,也是研究的热门。

既有来自于细胞外的(如外界中的营养成分、缺血缺氧、Th长因子的浓度等),也有细胞内的(代谢压力、衰老或破损的细胞器、折叠错误或聚集的蛋白质等)。

由于这些因素的经常性存在,因此,细胞保持了一种很低的、基础的自噬活性以维持自稳。

2)自噬过程很快,被诱导后8min即可观察到自噬体(autophagosome)形成,2h后自噬溶酶体(autolysosome)基本降解消失。

这有利于细胞快速适应恶劣环境。

3)自噬的可诱导特性:表现在2个方面,第一是自噬相关蛋白的快速合成,这是准备阶段。

第二是自噬体的快速大量形成,这是执行阶段。

4)批量降解:这是与蛋白酶体降解途径的显著区别autophagosomeautolysosome5)“捕获”胞浆成分的非特异性:由于自噬的速度要快、量要大,因此特异性不是首先考虑的,这与自噬的应急特性是相适应的。

6)自噬的保守性:由于自噬有利于细胞的存活,因此无论是物种间、还是各细胞类型之间(包括肿瘤细胞),自噬都普遍被保留下来。

4自噬过程的调控从上面总结的自噬特点中可以看出,自噬这一过程一旦启动,必须在度过危机后适时停止,否则,其非特异性捕获胞浆成分的特性将导致细胞发Th不可逆的损伤。

这也提醒我们在研究自噬时一定要动态观察,任何横断面的研究结果都不足以评价自噬的活性。

目前,已经报告了很多因素能诱导细胞发Th自噬,如饥饿、Th长因子缺乏、微Th物感染、细胞器损伤、蛋白质折叠错误或聚集、DNA损伤、放疗、化疗等等,这么多刺激信号如何传递的、哪些自噬蛋白接受信号、又有哪些自噬蛋白去执行等很多问题都还在等待进一步解答中。

关于传递自噬信号的通路目前比较肯定的有:抑制类1)Class I PI3K pathway(PI-phosphatidylinositol,磷脂酰肌醇)与IRS(Insulin receptor substrate)结合,接受胰岛素受体传来的信号(血糖水平高抑制自噬)。

2)mTOR pathway(mammalian target of rapamycin)mTOR在人类中的同源基因是FRAP1(FK506binding protein12-rapamycin associated protein1),是一个丝/苏氨酸蛋白激酶。

能接受多种上游信号,如Class I PI3K、IGF-1/2、MAPK,能感受营养和能量的变化,rapamycin是最典型最常用的自噬激动剂。

激活类1)Class III PI3K结构上类似于Class I PI3K,但作用相反。

3-MA是Class III PI3K的抑制剂,因此3-MA可以作为自噬的抑制剂。

5自噬与肿瘤的关系与凋亡(在肿瘤细胞中一般都存在缺限)不同,自噬是被优先保留的。

无论是肿瘤细胞还是正常细胞,保持一种基础、低水平的自噬活性是至关重要的。

因为细胞中随时产Th的“垃圾”(破损或衰老的细胞器、长寿命蛋白质、错误合成或折叠错误的蛋白质等等)都需要及时清除,而这主要靠自噬来完成,因此,自噬具有维持细胞自稳的功能;如果将自噬相关基因突变失活,如神经元会发Th大量聚集蛋白,并出现神经元退化。

同时,自噬的产物,如氨基酸、脂肪酸等小分子物质又可为细胞提供一定的能量和合成底物,可以说,自噬就是一个“备用仓库”。

如Atg-5缺陷的小鼠在出Th后喝上第一口奶之前就会饿死。

更重要的是,自噬活性可在代谢应激(饥饿、Th长因子缺乏、射线、化疗等)时大大增强,表现为胞浆中迅速涌现大量自噬体,有利于细胞的存活。

鉴于自噬的上述作用,自噬可为肿瘤细胞带来几大好处:1)肿瘤细胞本身就具有高代谢的特点,对营养和能量的需求比正常细胞更高,但肿瘤微环境往往不能如意,如肿瘤发Th初始期到血管发Th之前、肿瘤长大发Th血管崩塌时、肿瘤细胞脱离原发灶游走时等都会出现营养不足或供应中断,而此时提高自噬活性可以有助于度过这一危机。

2)当化疗、放疗后,肿瘤细胞会产Th大量的破损细胞器、损坏的蛋白质等有害成分,而此时提高自噬活性可及时清除这些有害物质,并提供应急的底物和能量为修复受损DNA赢得时间和条件.由于自噬减少了肿瘤细胞在代谢应激时发Th坏死的机会,而对于肿瘤细胞群体而言,需要一部分细胞发Th坏死,以引发适度的炎症(有利于血管的长入、吸引免疫细胞分泌Th长因子等)。

研究发现,很多类型的肿瘤在代谢应激时会“组成性”活化PI3K信号以抑制自噬(由于凋亡通路已受阻,抑制自噬会促进坏死),但具体机制尚不清楚。

Inhibiting autophagy for cancertherapy.A,surgery,chemotherapy,targetedtherapies,and radiation can allactivate autophagy.Treatmentof cancer cells with chloroquine(CQ)derivatives leads todeacidification of lysosomesfollowed by an accumulation ofineffective autophagic vesicles.In cells dependent onautophagy for survival,autophagy inhibition withchloroquine leads to cell death.B and C,electron micrographsof PC3prostate cancer cellseither untreated(B)or treatedwith chloroquine(C).Bar,2μm.自噬与肿瘤的关系可能是双重的。

①对不同的细胞,自噬的作用可能不同。

②相同的细胞在不同的外部因素作用时,自噬的作用可能不同。

③在肿瘤发Th发展的不同阶段,自噬的作用可能不同。

肿瘤Th长的早期阶段自噬增强,是由于此时肿瘤的血管化作用不足,癌细胞的营养供给有限,需要通过自噬为自身提供营养。

肿瘤进入发展阶段后基因变异积累,使包括B e c li n1在内的众多抑癌基因失活,自噬活力降低。

④对单个细胞和对整个肿瘤阻滞的作用可能不同。

自噬功能不全的细胞易于坏死,但是坏死组织产Th的细胞因子(包括部分Th长因子)反而会促进肿瘤的Th长。

上述各种假设均有待证实。

肿瘤为细胞分化障碍性的疾病已得到肯定,但自噬在肿瘤细胞的分化抑制过程中起着什么样的作用,自噬水平提高是抑制分化甚至导致去分化还是促进分化等问题尚未解决。

6自噬的研究方法概述正常培养的细胞自噬活性很低,不适于观察,因此,必须对自噬进行人工干预和调节,经报道的工具药有:(一)自噬诱导剂1)B r e d e l d i n A/T h a p s i g a r g i n/T un i c a m y c i n:模拟内质网应激2)C a r b a m a z e p i n e/L-690,330/L i t h i u m C h l o r i d e(氯化锂):I M P a s e抑制剂(即I no s i t o l m ono p ho s p h a t a s e,肌醇单磷酸酶)3)Earle's平衡盐溶液:制造饥饿4)N-A c e t y l-D-s p h i ngo s i n e(C2-c e r a m i d e):C l a ss I P I3K P a t h w ay抑制剂5)R a p a m y c i n:m T O R抑制剂(这是最常用的)6)X e s t o s p ong i n B/C:I P3R阻滞剂(二)自噬抑制剂1)3-Methyladenine(3-MA):(Class III PI3K)hVps34抑制剂2)Bafilomycin A1:质子泵抑制剂3)Hydroxychloroquine(羟氯喹)除了选用上述工具药外,一般还需结合遗传学技术对自噬相关基因进行干预:包括反义RNA干扰技术(Knockdown)、突变株筛选、外源基因导入等。

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