家兔高钾血症及抢救
实验性高钾血症及抢救实验报告

实验性高钾血症及抢救实验报告一、实验目的1、观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。
2、了解高钾血症对机体的影响以及抢救治疗的措施。
二、实验原理钾离子是细胞内液中的主要阳离子,对维持细胞的生理功能具有重要作用。
正常情况下,血清钾浓度维持在 35 55 mmol/L 之间。
当血清钾浓度高于 55 mmol/L 时,称为高钾血症。
高钾血症可导致心肌兴奋性、自律性、传导性和收缩性发生改变,引起心律失常甚至心跳骤停。
通过静脉注射氯化钾溶液可造成家兔实验性高钾血症,观察心电图变化,并采取相应的抢救措施,如注射钙剂、碳酸氢钠溶液、葡萄糖胰岛素溶液等,以纠正高钾血症对心肌的影响。
三、实验材料1、实验动物:健康家兔一只,体重 2 3 kg。
2、药品与试剂:25% 氯化钾溶液、5% 氯化钙溶液、5% 碳酸氢钠溶液、25% 葡萄糖溶液、胰岛素(10 U/ml)、肝素生理盐水溶液(500 U/ml)、生理盐水。
3、实验器材:计算机生物信号采集处理系统、心电图导联线、手术器械(手术刀、手术剪、镊子等)、动脉插管、静脉插管、注射器(1 ml、5 ml、10 ml)、输液装置。
四、实验步骤1、家兔称重后,用 20% 乌拉坦溶液(5 ml/kg)于耳缘静脉注射进行麻醉。
仰卧位固定于手术台上。
2、分离一侧颈总动脉,插入动脉插管,通过压力换能器连接计算机生物信号采集处理系统,监测动脉血压。
3、分离一侧颈外静脉,插入静脉插管,以备输液和注射药物使用。
4、将心电图导联线连接到家兔四肢,记录正常心电图。
5、经颈外静脉缓慢滴注 25% 氯化钾溶液(5 10 滴/分钟),密切观察心电图变化。
当出现 P 波低平增宽、QRS 波群增宽、T 波高耸等典型高钾血症心电图改变时,停止滴注氯化钾溶液,记录此时的心电图。
6、抢救治疗:立即静脉注射5% 氯化钙溶液2 ml/kg,观察5 分钟后记录心电图。
随后静脉注射 5% 碳酸氢钠溶液 5 ml/kg,观察 5 分钟后记录心电图。
家兔高钾血症及抢救

家兔高钾血症及抢救【实验目的】掌握家兔高钾血症模型的复制及抢救的方法。
观察高钾血症及抢救后的心电图变化。
分析高血钾引起心电异常的机制【实验原理】钾离子是人体内重要的电解质之一,是维持细胞内外酸碱平衡、渗透压平衡和神经肌肉电生理特性的重要离子。
正常血清钾离子浓度保持在3.5mmol/L~5.5mmol/L的范围内,当家离子浓度大于5.5mmol/L时称为高钾血症。
以下是高血钾对心肌功能的影响及其基本机制:心急兴奋性降低:当血钾浓度迅速轻度升高时,心肌细胞静息电位也轻度减小,引起兴奋所需的阈刺激也较小,即心肌兴奋性增高。
当血钾浓度迅速显著升高时,由于静息电位过小,心急兴奋性也将降低甚至消失。
高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性明显增高,故钾外流速加快,复极化(3期)加速。
因此,动作电位时间和有效不应期均缩短,但由于细胞外高钾抑制钙离子在复极化2期内流,故2期有所延长,心电图上显示T波狭窄高尖,Q-T间期缩短。
心肌传导性降低:高钾血症时,由于静息电位减小,故动作电位0期,即去极化的幅度变小,速度减慢,因而兴奋的扩布减慢,即传导性降低。
心房内、房室间或心室内均可发生传导延缓或阻滞。
心电图上显示P波压低、增宽或消失;P-R间期延长,ST段压低,QRS综合波增宽’S波加深。
心肌自律性降低:高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性增高,故在到达最大复极电位后,细胞内钾的外流比正常时加快而钠内流相对减慢,因而自动去极化减慢,自律性降低。
心肌收缩性降低:高钾血症抑制钙内流,使心肌收缩性降低。
综上,高钾血症时,心电图显示特点为:T波高尖,Q-T间期缩短,P-R间期延长,ST段压低,QRS波增宽,S波加深。
应用钙剂可拮抗高钾血症的心急毒性作用,期机制为:Ca2+一方面能促使阈电位上移,使Em-Et间距离增加,回复心肌的兴奋性‘另一方面使复极化2期Ca2+竞争性内流增加,提高心肌的收缩性。
本实验通过静脉注射氯化钙溶液可纠正家兔高钾血症,心电图恢复正常。
家兔高钾血症实验抢救原理(一)

家兔高钾血症实验抢救原理
1. 了解家兔高钾血症的原因
- 高钾血症是指血液中钾离子浓度超过正常范围,可能导致心脏问题和其他严重并发症。
- 家兔高钾血症通常由于肾脏功能异常、饮食问题或其他疾病引起。
2. 探讨家兔高钾血症的症状
- 家兔高钾血症的症状可能包括虚弱、食欲不振、心律不齐等。
- 一旦发现这些症状,需要立即进行抢救和治疗。
3. 分析家兔高钾血症的实验抢救原理
- 实验抢救原理主要包括降低血钾浓度、恢复心脏功能和治疗潜在病因。
4. 详述降低血钾浓度的方法
- 注射胰岛素和葡萄糖,促进细胞内钾离子的转运和利用。
- 给予盐酸碳酸氢钠口服或静脉注射,通过尿液排出多余的钾离子。
- 使用离子交换树脂,将血液中的钾离子与树脂结合,再通过排尿排出。
5. 论述恢复心脏功能的手段
- 给予钙剂,增加心肌细胞对钙离子的感受性,促进心肌收缩。
- 使用β受体激动剂,增加心脏收缩力和心输出量。
6. 解释治疗潜在病因的措施
- 针对肾脏功能异常,需及时进行肾功能检查,并根据检查结果采取相应的治疗措施。
- 针对饮食问题,需要调整家兔的饮食结构,限制高钾食物的摄入。
7. 总结家兔高钾血症实验抢救原理
- 家兔高钾血症的实验抢救原理涉及降低血钾浓度、恢复心脏功能和治疗潜在病因。
- 在实际抢救过程中,需要根据具体情况综合应用不同的抢救措施,以提高抢救效果。
通过以上对家兔高钾血症实验抢救原理的详细解释,使读者对该主题有了更深入的了解。
抢救措施的多样性和综合性为读者提供了更全面的知识,有助于在实际抢救中更好地处理相关问题。
实验一家兔高钾血症及抢救

实验一家兔高钾血症及抢救实验一家兔高钾血症及抢救一、实验目的(1)掌握家兔高钾血症模型的复制方法。
(2)观察高钾血症叫家兔心电图变化的特征。
(3)自行设计和实施抢救治疗方案。
(4)了解血钾升高后,对心肌细胞的毒性作用。
二、实验动物、药品与器材1.动物家兔,雌雄不拘,体重2.0~3.0 kg。
2.药品2.5 %戊巴比妥钠溶液,肝素生理盐水溶液(125U肝素/ml生理盐水),2 %、5 %、10 %氯化钾生理盐水溶液,10%氯化钙溶液,4 %碳酸氢钠溶液,葡萄糖胰岛素溶液(每4 ml的%葡萄糖加1U胰岛素)。
3.器材计算机实验系统,心电记录与转换设备,一般手术器械,静脉输液装置,5 ml、l0 ml、20ml注射器,小儿头皮针,抗凝试管。
三、观察指标精神神经状态(是否兴奋、躁动、昏迷、痉挛),呼吸频率、深度和节律,心电图变化,血浆钾浓度。
四、方法与步骤1.动物的麻醉与手术动物称重后,用2.5 %戊巴比妥钠,按1.0 ml/kg剂量给药,由耳缘静脉缓慢注入。
注射期间注意观察动物肌张力、呼吸频率和角膜反射的变化,防止麻醉过深。
麻醉后动物仰卧固定在家兔手术台上。
颈部剪毛,沿甲状软骨下正中切开皮肤约 6 cm,分离左侧颈总动脉和右侧颈外静脉并插管。
颈动脉导管用于取血;颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置,缓慢输入生理盐水(5~10滴/min),以保持管道通畅。
2.测血钾用抗凝试管通过颈总动脉取血l ml,用电解质测量仪测置动物实验前的血浆钾浓度。
3.心电描记将针型电极分别插入四肢踝部皮下。
导联线按右前肢(红)、左前肢(黄)、左后肢(蓝)、右后肢(黑)的顺序连接,通过计算机和心电记录系统描记实验前的心电图波形。
用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。
方法是将胸导联电极插入胸部皮下,将头部导联电极插入下颏部皮下,将心电转换盒上的导联旋钮旋到头胸导联位置。
这样记录的心电图高大清晰,高血钾的异常心电图波形出现早而清晰。
家兔高血钾症及抢救原理的感想

家兔高血钾症及抢救原理的感想
近期,我在家养了一只宠物兔子,可是最近发现它患有高血钾症,这让我非常担心和焦虑。
经过查询了解,高血钾症是一种严重的疾病,如果不及时治疗,可能会导致兔子死亡。
高血钾症是指血液中钾离子的浓度过高,会影响兔子的心跳和神经功能。
兔子的肾脏是维持血钾平衡的重要器官,如果肾脏功能不良或者饲养不当,就会出现高血钾症。
当我发现兔子出现了高血钾症的症状,我立刻带它去了兽医院。
兽医建议给兔子进行抢救治疗,包括以下几个方面:
1. 使用降钾剂:降钾剂可以帮助降低血液中钾离子的浓度,减轻对兔子身体的影响。
不过,使用降钾剂也需要谨慎,因为过度使用会对兔子的肾脏造成损害。
2. 给兔子补钙:高血钾症会导致兔子体内缺乏钙离子,因此需要给兔子补钙,以维持正常的身体功能。
3. 维持兔子的水电解质平衡:兔子在高血钾症期间容易出现脱水和电解质失衡等问题,需要及时补充水分和电解质,以保持兔子身体的正常运转。
通过这次抢救治疗,我深刻认识到了兔子高血钾症的危害,也学到了如何有效抢救和预防高血钾症的方法。
除了仔细观察兔子的饮食和生活环境,我还要定期带兔子去兽医院进行体检和检查,及时发现和处理兔子的健康问题。
只有做好这些预防和护理措施,才能让我的小兔子健康快乐的成长。
高血钾对家兔的毒性作用表现及其解救实验

高血钾对家兔的毒性作用表现及其解救实验组别:9组长:白晓阳11202170578组员:杨小容11202170572黎艳11202170573陈欣欣11202170574林春玲11202170575李雪梅11202170576高血钾对家兔的毒性作用表现及其解救实验【前期汇总】高钾血症是临床上多种疾病所并发的一种常见病理生理过程,是最易危及生命的水、电解质紊乱性疾病之一,在临床上属于急症范畴,主要表现为对心肌、骨骼肌和酸碱平衡的影响。
当血清钾为5~7mmol/L时,心肌细胞静息电位轻度减小,引起兴奋所需的阈刺激也减小,心肌兴奋性增高,导致室颤的发生;当血清钾>7mmol/L时,使心肌细胞产生去极化阻滞,静息电位低于阈电位,兴奋性、传导性、自律性、收缩性均降低,导致心率减慢甚至心搏停止。
轻度高钾血症时,患者可有手足感觉异常、疼痛、肌肉轻度震颤等症状;严重高钾血症则可导致四肢软弱无力、腱反射消失甚至驰缓性麻痹。
同时,高钾血症可导致代谢性酸中毒,表现为尿液呈碱性。
[1]对于高钾血症,最简便、最有效、最快捷的检查方法就是心电图检查,因为此病在临床症状表现不明显时,心电图就早已出现了显著的改变。
不同程度的高血钾在心电图上有不同的特征表现,表现为P 波低平或消失、T波高尖和QRS波群增宽。
[2]所以,心电图检查是临床诊断高钾血症的最具重要价值的检查方法,且具有对假性高血钾的判别作用。
它比血清钾的测定更为准确、便捷、无创,且可重复监测。
在高钾血症的治疗中,葡萄糖酸钙被用作心脏保护剂。
虽然它并不能影响血液中钾离子的浓度,但它能够降低心肌细胞的兴奋度,从而降低发生心律失常的可能性。
【实验目的】学习用家兔建立高钾血症模型,使用MedLab生物信号采集处理系统监测家兔正常时、高血钾时以及给予解救药后的心电变化并采集心电图,观察高钾血症时家兔的病理生理学表现。
【实验材料】1、实验动物:家兔一只2、实验器材:兔手术台,手术器械1套,心电针形电极,MedLab 生物信息采集处理系统。
功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。
二.实验动物未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为2.00 kg。
三.实验过程1. 取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重2.00 kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。
2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。
3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。
分离3-4cm长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。
颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。
4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。
5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。
6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。
待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。
7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。
待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。
8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。
从心室第四次抽取血液。
9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100 ul,混合蒸馏水9.9 ml稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。
四.实验器材及注意事项实验器材:肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极注意事项:1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。
家兔高钾血症

注意事项
1. 心电图电极插在皮下,不可插入肌肉。导线 避免纵横交错和接触液体。 2. 动脉插管保持畅通。 3. 采集好的血标本静置不要摇动,待凝固后离 心制备血清(试管一定要清洁、干燥、无油 脂)。 4. 先用生理盐水调好滴速再转换氯化钾滴注, 同时准备好推注葡萄糖酸钙的静脉通路。 5. 动物对氯化钾的耐受性有个体差异。
实验步骤
1.称重,麻醉,固定,颈动脉插管。 2.第一次采血 和描记心电图 (正常)。 3.高钾模型:静滴KCl,记心电图,作好标 记。P波低平、QRS波压低增宽、T波高尖, 停止滴注。第二次采血。 4.抢救:静滴KCl 2ml,心电图出现室颤或 室扑即停,10%葡萄糖酸钙推注,如抢救 成功(窦性心律)第三次采血液。 5.致死:开胸看心跳,推注KCl,观察停搏。 从心脏抽取第四个血标本。 6.测钾 配平-离心-取血清-稀释-送检
II导联电极 的插接方法
红→右上肢
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
黄→左上肢
蓝→左下肢
黑→右下肢
实验内容
5.抢救:静滴KCl 2ml,观察心电图, 出现室颤或室扑即停,10%葡萄糖酸 钙推注(>1ml/kg),如抢救成功 (出现窦性心律)即采集第三次血液。 6.致死作用观察:开胸观察心跳,推注 KCl(10ml/kg),观察心脏停搏。从 心脏抽取第四个血标本。 7.测钾:血样本离心,取血清100ul, 加入10ml蒸馏水中,混匀送检。 读数= [K+](mmol/L)。
家兔高钾血症
实验目的
1. 2.
学习高钾血症模型的复制方法。 观察高钾血症对家兔心电图的影响。
3.
4.
了解高钾血症的抢救措施。
通过实验结果的分析、理解钾对心肌电
生理的影响。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
家兔高钾血症及抢救
【实验目的】
掌握家兔高钾血症模型的复制及抢救的方法。
观察高钾血症及抢救后的心电图变化。
分析高血钾引起心电异常的机制
【实验原理】
钾离子是人体内重要的电解质之一,是维持细胞内外酸碱平衡、渗透压平衡和神经肌肉电生理特性的重要离子。
正常血清钾离子浓度保持在3.5mmol/L~5.5mmol/L的范围内,当家离子浓度大于5.5mmol/L时称为高钾血症。
以下是高血钾对心肌功能的影响及其基本机制:
心急兴奋性降低:当血钾浓度迅速轻度升高时,心肌细胞静息电位也轻度减小,引起兴奋所需的阈刺激也较小,即心肌兴奋性增高。
当血钾浓度迅速显著升高时,由于静息电位过小,心急兴奋性也将降低甚至消失。
高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性明显增高,故钾外流速加快,复极化(3期)加速。
因此,动作电位时间和有效不应期均缩短,但由于细胞外高钾抑制钙离子在复极化2期内流,故2期有所延长,心电图上显示T波狭窄高尖,Q-T间期缩短。
心肌传导性降低:高钾血症时,由于静息电位减小,故动作电位0期,即去极化的幅度变小,速度减慢,因而兴奋的扩布减慢,即传导性降低。
心房内、房室间或心室内均可发生传导延缓或阻滞。
心电图上显示P波压低、增宽或消失;P-R间期延长,ST段压低,QRS综合波增宽’S波加深。
心肌自律性降低:高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性增高,故在到达最大复极电位后,细胞内钾的外流比正常时加快而钠内流相对减慢,因而自动去极化减慢,自律性降低。
心肌收缩性降低:高钾血症抑制钙内流,使心肌收缩性降低。
综上,高钾血症时,心电图显示特点为:T波高尖,Q-T间期缩短,P-R间期延长,ST段压低,QRS波增宽,S波加深。
应用钙剂可拮抗高钾血症的心急毒性作用,期机制为:Ca2+一方面能促使阈电位上移,使Em-Et间距离增加,回复心肌的兴奋性‘另一方面使复极化2期Ca2+竞争性内流增加,提高心肌的收缩性。
本实验通过静脉注射氯化钙溶液可纠正家兔高钾血症,心电图恢复正常。
【实验材料】
家兔1只,兔手术台,婴儿秤,手术器械,BL-420生物信号采集系统,心电记录电极,5ml、10ml注射器各一个、静脉输液装置一套,小儿头皮针,静脉导管、气管插管各1套,3%戊巴比妥钠溶液,4%氯化钾溶液,10%氯化钙溶液。
【实验步骤】
1.麻醉
取家兔称重,耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠1.0ml/kg麻醉,仰卧位固定于手术台,分离气管和右侧颈外静脉并进行插管,颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置,以备滴注氯化钾溶液用。
2.将针形电极分别插图家兔四至皮下,并连接BL=420生物机能实验系统,红色连右前肢,黑色连右后,绿色连左后,描述正常心电图。
3.耳缘静脉插入头皮针固定以备抢救注射氯化钙用。
4.造成高钾及抢救
待心电曲线平稳后,向静脉内缓慢滴注4%氯化钾溶液,以每分钟15-20滴为宜,注意观察心电曲线的变化,20--30min后如仍没有改变,可加快滴注速度。
如心电图出现P波低平、增宽,QRS波群低压变宽,高尖T波等改变,立即停止滴注,立即用10%氯化钙溶液按2ml/kg体重通过头皮针快速注入。
5.待心电曲线基本恢复正常后,继续滴注氯化钾溶液使家兔心肌纤颤致死,观察发生心肌纤颤时的心电曲线。
【实验结果预期】
静脉滴注氯化钾溶液可导致家兔急性高钾血症,血钾增高使心急兴奋性,传导性,收缩性,自律性降低,心电图出现P波低平,增宽,QRS波群低压变宽,高尖T波等异常。
通过注射氯化钙能纠正高血钾,心电曲线能基本恢复正常。
最后注射致死量氯化钾,高钾血症加剧,导致家兔心肌纤颤而死。
【注意事项】
1.麻醉要适度,过深抑制呼吸,过浅时家兔疼痛则易引起肌颤,干扰心电图波形。
2.严格控制好氯化钾滴注的速度,以防过量导致家兔过早死亡。
3.滴注氯化钾时要时刻关注心电曲线,出现特征性异常即停止输液,快速基于氯化钙抢救,如果10S内无法输入抢救药物,则久之效果欠佳。
参考文献
[1]朱健平生理科学实验教程,第一版,北京,科学出版社 2008年5月
[2]姚泰麻醉生理学第六版人民卫生出版社2006年5月P75-88
(注:专业文档是经验性极强的领域,无法思考和涵盖全面,素材和资料部分来自网络,供参考。
可复制、编制,期待你的好评与关注)。